撤退の血私

Lab Animal Research

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Overview

< p クラス = 'jove_content' > ソース: ケイ ・ スチュワート、RVT、RLATG、CMAR;ヴァレリー A. シュレーダー、RVT、RLATG。ノートルダムのノートルダム大学

血のコレクションにはマウスやラットを含む研究のための一般的な要件。マウスおよびラットの血液回収の方法は、必要血液量、サンプリングの頻度、抽気される動物の健康状態と、技術者のスキルレベルに依存です。1 すべてのメソッド説明レトロ軌道洞裁ち落とし位置、初期尻尾切り取り領域の出血、および心腔内の出血・全身麻酔の使用を必要とします。

Cite this Video

JoVE Science Education Database. ラボ動物研究の必需品. 撤退の血私. JoVE, Cambridge, MA, (2017).

Principles

< p クラス = 'jove_content' > 出血の手続きの前に必要なサンプルの種類を決定する必要があります。実験手順は、全血、血漿または血清を必要があります。全血などの抗凝固剤をサンプルに追加されていなければなりません。フィブリノゲンと赤の血液細胞から分離したとき、他の凝固因子を含む血漿高血圧症サンプルから抽出できます。血清は抗凝固剤なしの血のコレクションを通じて取得されます。血栓形成後、血清サンプルの遠心からなります。サンプルはクロテッド クリームてい、フィブリノゲンあるいは他凝固因子血清は含まれません。血漿、血清は 2200-2500 RPM で 15 分の最小値を実行する遠心分離機を使用して得られる

。 < p クラス = 'jove_content' > 全血または血漿をもたらす必要がありますサンプルでは、適切な抗凝固剤を使用する必要があります。実験動物の一般的に使用される抗凝固剤はヘパリン、クエン酸ナトリウム、エチレンジアミン四酢酸 (EDTA);選択は、リサーチのニーズに基づいています。EDTA、ヘパリン、クエン酸ナトリウムが液状を隔離、表面をコートする注射器に直接読み込みます。これにより、抗凝固薬の接触直接血液を描画すると、凝固の防止で助けます。ほとんどの哺乳類の血より血栓をラット、適切な割合の血液に抗凝固剤の血のコレクションを使用すること非常に重要です

。 < p クラス = 'jove_content' > 針選択動物のサイズと静脈穿刺のサイトに基づきます。一般的には、穴径が大きいほど針のより急速にサンプルが収集することができます。血液細胞以下のダメージは大きい針にもう一つの利点です。しかし、大口径針の主な欠点は、船が損傷する可能性です。マウス、ラットに 0.5 1.5 20 29 ゲージ針からサイズの範囲の選択肢インチ長さ。針が長すぎる場合だけでなく、使いにくいですが、凝固針で余分なスペースを持っている可能性があります。手順」の各メソッドの適切な針のサイズを表示します

。 < p クラス = 'jove_content' > 必要サンプルのサイズも事前にする必要があります。マウスまたはラットのサイズが小さいため生存ブリードの血のコレクションの最大の量を計算する必要があります。25 グラムの重量を量る平均マウスは 1.8 ml の全血液量250 グラムの重量を量る平均ラットは 16 ml の総血液量です。マウスまたはラット水分補給せずに単一の血液サンプル、安全に削除することができます最大血液量は総血液量または 7.7 8 μ l/g の 10% です。 このように平均的なマウスの血液量の 10% は 193-200 μ l です。250 グラムの平均ラット、これは相当に 1.9 2.0 ml. 研究血液量の 15% 以上を削除乏血性ショックを引き起こすことが示されています。1, 2 とエンガード、ただし、全血液量の 15% まで- または 12 μ l/g-缶が削除されます。25 グラムのマウス、これは 300 μ l; に相当250 グラムのラットを 3 ml と同じです。水分補給の流体が温めたし、注射は皮下投与します

。 < p クラス = 'jove_content' > 複数サンプルを取得する必要がある、描画される血液量は減少します。週描画可能性があります最大の血液量は総血液量または 6 μ l/g の 7.5% です。 25 グラム マウスこれ、週 145-150 μ l に相当します。250 グラムのラットでは、この、週 1.45 1.50 ml に相当します。 2 週間毎、サンプリングが発生する総血液量 (8 μ l/g) の 10% までが描かれるかもしれません。これは 200 μ l 平均マウスに 2 週間ごとに相当、最大 2.00 ml 250 グラムのラットに 2 週間ごと。250 グラムの平均重量とラットに対して、1 つの研究では、血液量の 15-20% が削除されたときそれは血糖を正常化するため 29 日以上を取ったことを明らかにしました。1, 2 繰り返し採血のため水分補給はできません血液量が多いまたはより頻繁に採血のボリュームだけ代わりになります。動物の血液細胞を補充するために時間が必要になります

。 < p クラス = 'jove_content' > レトロ軌道神経叢の使用は過去に一般的な練習をされています。ただし、この手順の挫折について多くの懸念が生じています。中には、目の眼に一度置かれてヘマトクリット管の過剰な運動は、まぶたや結膜膜の腫脹をもたらす周囲の組織への損傷を引き起こす可能性が。腫れた組織眼球突出まで十分なので、まぶたの閉鎖は妨げ、角膜乾燥に至るおそれと損傷する可能性があります。腫れの痛みは、傷、自傷による眼球摘出の結果をトリガーできます。レトロな軌道出血中にヘマトクリット管の不適切な配置は、失明の生じる視神経を断ち切ることができます。ヘマトクリット管は不適切な角度で高度な目が眼球の後ろに落下するまぶたをできるように、軌道を外れて強制できます。この場合、ソケットに目を正しく交換する非常に困難です。壊れやすい軌道骨、ガラス質ユーモアの損失または目の圧力のために極度の痛みにつながる目の奥に血腫の形成の結果の眼球の浸透の破砕とその周辺に発生する他の問題が含まれて構造。すべてのこれらの懸念にもかかわらず、熟練した技術者は、手順を実行、動物イソフルレン吸入麻酔などの一般的な麻酔薬で麻酔をかけられ完全にレトロな軌道出血に示されている血の効果的な方法齧歯動物のコレクション

。 < p クラス = 'jove_content' > 眼窩領域の解剖学的構造はマウスおよびラットの間で異なる。マウスには、眼窩領域の副鼻腔を作成する血管のコレクション洞、レトロな軌道があります。ネズミ目の軌道上では、その目の背後に流れる血管の神経叢です。しかし、彼らはマウスのように、副鼻腔を形成しません。したがって、マウスでこの手順を実行する方が簡単です。レトロ軌道神経叢を介して繰り返しサンプリング コレクション、最低 10 日間の出血を癒すために地区組織を許可する必要です。全身麻酔をお勧めします、プロパラカイン、テトラカインなどの局所点眼麻酔が手続きの前に適用される場合、プロシージャをマウス全身麻酔なしで実行できます。ラットは、レトロな軌道洞を持っていないと、軌道の周りの膜は非常に強いので、この手順のためそれらの麻酔は必須では

。 < p クラス = 'jove_content' > 尾 clip メソッドを使用して、小さなボリュームのシリアルのサンプルを取得できます。尾の最初の切断は尻尾の先端、約 0.5 〜 1.0 mm のマウスとラットの 2.0 mm 長さに制限されなければなりません。かさぶたか元の塊を破壊してシリアル コレクション、採血の尻尾切り取り領域手順 1 尾の端でカットします。一般的には、尾の先端の追加の切断は必要ではありません。血のボリュームがマウスの 20-100 μ L と 75 150 μ L から範囲を収集 for ラット。収集量は動物間の変数、年齢、健康状態、および体重の影響を受けます

。 < p クラス = 'jove_content' > 尻尾切り取り領域から採取された試料は組織製品汚染と一緒に、動脈、静脈の血液を含むことができます。尻尾を撫でまたは「搾乳」より多くの血液を取得する場合、サンプルの質が低下します。血流を増やす、温湿布、熱ランプ、または暖かい水に浸された尾を加熱できます。止血、尾の先端に圧力を適用して、動物は、止血が達成されていることを確認するすべての 5 〜 10 分をチェック必要があります。止血が繰り返しサンプリングとよく遅れています。Styptic 粉は止血に使用可能性があります。初期の切断の麻酔 (一般的なまたはローカル) の使用をお勧めします。その後出血は必要麻酔、動物手順に慣れるように特にありません。麻酔はこの手法で採血が困難、血圧の低下を引き起こす

。 < p クラス = 'jove_content' > 尻尾切り取り領域に代わる、尾容器ニックです。この手順を簡単にマウスとラットの両方で実行します。ただし、尻尾切り取り領域と同様、サンプルが組織製品、特にマウスと汚染されます。ラットの血管に注射針を挿入し、は採血針のハブから。1 つの研究は、直上の針穿刺血のコレクションを支援する止血帯の使用を認めた。3注射器は注射器から作成された圧力容器は崩壊するでしょう、容器から採血を使いません。このメソッドは、再び出血しサイトを引き起こす血栓を削除できるよう、シリアルのサンプリングで使用もできます。尻尾切り取り領域と同様、サイトに圧力をかけて、5-10 分ごとに動物を再確認して止血を確認することが不可欠です。

研究が nonsurvival、心腔内の出血または後大静脈経由で外れると出血により収集されて大規模な血液サンプルを必要とする多くの場合、します 。4 約全体の血液量の半分から収集できますマウスまたはラット心臓穿刺によって。これは 40 μ l/g または平均 25 グラムのマウスの約 1 ml と同じです。250 グラムのラットでは、血液の約 10 ml をもたらすでしょう。急激な多量の麻酔動物 必要があります。熟練の技術者による吸入麻酔や CO 2 麻酔を使用できます。注射麻酔を使用もできます。ただし、血圧や血液の量を減らすことができる循環の減少があるかもしれません

。 < p クラス = 'jove_content' > 後大静脈メソッドは、動物が外科的血管を公開する深く麻酔が必要です。CO 2 麻酔が不十分、心する必要があり、血の撤退中に呼吸動物です。中も血撤退の急速なは遮蔽開口の予防および採血、注射器の傾斜面に崩壊する船を可能性があります。また、血管壁が薄く、破裂や針の穿刺部位からの血液の漏れを防ぐためにこのように手と針の動きを避ける必要があります。針は皮膚を通過しない、このメソッドは、滅菌サンプルのコレクションの結果します。動物が麻酔から回復しないように補助安楽死の方法を用いなければなりません。このメソッドは、多くの場合心臓や大動脈の血流が続きます。

心腔内のメソッドがすることができますそれが麻酔 (閉鎖法) は、または、中心部を手術後大静脈血コレクション方法 (プロトコルに従って公開すること手動で拘束された動物のいずれかを実行open メソッド)。クローズ メソッドの針の配置のランドマークまで動物の左側の剣状突起、肋骨で形成される溝です。

Procedure

1。 レトロな軌道出血

  1. 設備
    1. 準備鐘瓶やイソフルランなど麻酔ガスを管理するための麻酔導入室。ガラスベル ジャーを使用すると、液体の麻酔薬は、皮膚からの吸収を避けるために、動物に接しないことが不可欠です。小さな穴を持つプラットフォームを使用できます
    2. 50-75 マイクロリットルを保持 Microhematocrit チューブが優先されます。マイラー ラップ管オペレーターの指の間を破る可能性は低く、安全対策として見なす必要があります
    3. いくつかの紙タオルの厚さ、または他の絶縁材料は動物を維持するために作業台の上に配置 ' プロシージャの間に s 体温
  2. 準備と動物の位置決め
    1. 動物に麻酔がかかる吸入麻酔剤、効果、ベルジャーやガスの麻酔誘導室におけるイソフルランなどと
    2. 動物完全に麻酔をかけられ、一度それが削除され、外側の臥床に配置します
    3. 目の爆風と、下顎の輪郭に沿って頭の上に指を置くことで、バックアップ上下の皮膚を引っ張ってします
    4. 、気管に圧力をかけて崩壊または窒息によって死を引き起こす気道を閉塞する可能性を回避します
  3. 撤退を血
    1. 、microhematocrit、目の眼に置かれ、鼻の面から 30-45 ° の角度で尾の方に指示します
    2. 。 ヘマトクリット管をゆっくり回転させながら
    3. 適用圧力。これは結膜膜をカットし、眼の神経叢を破裂します
    4. 毛管作用によってヘマトクリット管に血液が流し込まれます
    5. 眼腔の後ろに骨を叩くので、深いを押す避けてください
    6. 血流し始めると、一度はみ出した目を維持する圧力を維持します
    7. 血の複数のチューブを収集する必要はありません眼神経叢に次の管を配置する、血は流れ続けますと眼から来て収集することができます
    8. 。 出血を停止する
    9. 皮を解放でき、正常な位置に戻ります目。止血を確認するために軌道に圧力を適用します

Figure 1
図 1。マウスでレトロな軌道血撤退

2。 尾ブリード プロシージャ: 尾ちょきんと尾ニック

生殖不能のメスの刃、
  1. 設備
    1. A、できれば 11 番ブレードまたは片面かみそりの刃尾スニップ メソッドの最初の切断をするため。はさみでカットを粉砕すると、凝固し、血流を減らすことを促進するため、はさみを使用されませんする必要があります。尾ニック プロシージャ数 11、または 15 のメス刃がカットをすること使用されます
    2. マウスの尾にアクセスできる拘束チューブを用意しています
    3. 吸水紙タオルやガーゼは尻尾切り取り領域を実行するため、基板として使用されます
    4. ヘマトクリット管の収集も必要です
    5. Styptic 粉は止血のために使用する必要があります
  2. 拘束
    1. 尾がアクセスできるように、動物は管に配置されます。ブルーム型 restrainers の動物では、チューブにまず尻を引かれます。頭をまず動物その他の管の配置されています
    2. 好転できない、または尾を撤回するように、動物は管にセキュリティで保護されています
    3. 粗面をつかむために許可されている場合、いくつかのマウスは最小限のマニュアル抑制とテールちょきんと血液コレクションになります
    4. いくつかのラット血のコレクションのこのメソッドの吸入麻酔が必要になります
  3. 撤退を血
    1. 尾の残骸を削除し、わずかな血管拡張を引き起こすぬるま湯で拭きます。お湯を使用しないでください
    2. 尻尾切り取り領域のテールを延長してメスの刃で尾 (0.5-1 mm マウス用とラット用 mm 2 まで) の非常に端をカットします
    3. 尾ニックの尾部を延長して約 2/3 のメス刃でカットをしている尻を外側尾静脈の真上からの距離します
    4. 血流を奨励するための先端に尻から尾の境界線が描画できます; しかし、これはサンプルの品質を減少します
    5. 血のヒントまたはヘマトクリット管を使用してニックから収集またはコレクションのバイアルに滴る

3。心臓採血

22 25 ゲージ x 1
  1. 設備
    1. マウスを 3 cc シリンジ " 針をお勧めします。小さい注射器には同じ背圧がなくより困難な血の撤退を確認することができます。針は 25 ゲージより小さい増加凝固血液の流れを制限して血液細胞にダメージを与えます。1 より短い針 " 横隔膜から近づいていく心のレベルに達しなかったです
    2. ラット、1.5 x 18 ゲージで 10-12 cc シリンジ用 " 針をお勧めします。ラットのサイズ、に応じて、収集する全体の血液量を保持するかもしれない小さい注射器、従って注射器の処理中に変更するでしょう。20 ゲージより小さい針は、増加血液凝固に至る、血液の流れを制限します。1.5 より短い針 " 横隔膜から近づいていく心のレベルに達しなかったです
    3. 集められた血を保持するために十分なサイズの採血管を使用します
  2. 拘束
    1. 適切な拘束がこのメソッドの成功に不可欠であります。動物は、垂直にぶら下がって体と首筋が開催されます。本体は中心部のたわみや胸のねじれを防ぐためにまっすぐであることが重要です
    2. 代替位置は、動物の肋骨間針を置き背臥床 ' s 左側します。これは非常に大きなラットや、複数の動物が抽気される場合に特に便利です

Figure 2
図 2。マウスの心臓血回収が垂直に開催

  1. 血撤退
    1. 横隔膜を貫通、後面からのアプローチでマウスやラットは首筋を垂直に開催されたときより簡単に。
      1. 針はちょうど動物の左側に切り込みに高度な ' s 剣
      2. 針背骨に平行でなければなりません、肋骨のすぐ下に配置します
      3. 中心部が肘のレベルにおよそある
      4. 針を置いて、胸に、ベベル、中心部を穿刺します
      5. 適用わずかに戻す圧力注射器。血流が注射器に針が中心である場合
      6. 血が syr に追加の背圧を追加する前に、シリンジをいっぱいまで待ってインゲ
    2. 動物から側方進入 ' s 左側背臥床での動物の配置が必要です。
      1. のエントリ ポイントは、胸部に肘のポイントに対して測定されます。中心部が肘のレベルにおよそある
      2. 針は胸壁のポイント中間でテーブルの平面に垂直に挿入した dorsoventrally 測定します
      3. 針を置いて、胸に、ベベル、中心部を穿刺します
      4. 適用わずかに戻す圧力注射器。血流が注射器に針が中心である場合
      5. 血液が注射器に追加の背を追加する前に、シリンジをいっぱいまで待ちます

Figure 3
図 3。背臥床位置でマウスと心臓血撤退

  1. 技術的なヒント
    1. 正常な心臓は左を指している頂点が位置しています。まれに、心臓が反転されるので、中心部に穴をあけるの難しさの結果です
    2. 過度の背面圧力注射器針ベベルを遮蔽と注射器への血流を停止、心に崩壊するかもしれない
    3. バック プレッシャを適用し、繰り返しリリースがシリンジ内凝固開始されます
    4. 撤退可能にする循環系に追加血液量を強制的ことができます軽く肝臓に圧力を適用すること

4。後部の下大静脈血撤退

  1. 設備
      マウスの血のコレクションの
    1. A TB 25 29 g 針付きシリンジを使用します。ラット、22-25 ゲージ x 1 と 10-12 cc シリンジ用 " 針が必要です
    2. 手術のプラットフォーム、郭清のトレイ、または他の表面動物を確保するために必要な関係、テープ、またはピン位置で手足を貼る
    3. 注射麻酔や麻酔は必要。吸入麻酔を使用している場合それは麻酔薬を鼻の円錐形の精度気化器を介して配信されることが望ましいです。プロシージャの長さは追加の麻酔ガスの配達せず誘導チャンバーを使用しても、動物が復活する前に血の撤退を完了するための十分な時間は得られないようにします
    4. マウスのアイリスはさみや、ラットの手術室シャープ鈍はさみ小さな非外科的親指鉗子と 2 する必要が " x 2 " ガーゼ スポンジ
  2. 拘束
    1. ときつま先ピンチまたは尾ピンチによって決定される、動物完全に麻酔をかけられ、動物は背臥位にします
    2. 手足はテープやピンでプラットフォームに固定されます。手足は体から拡張する必要があります
  3. 撤退
    1. 皮膚を持ち上げ、女性の骨盤のすぐ上またはすぐ上男性の包皮の皮膚を通して作られる小さな横カット
    2. のカットへはさみのポイントが配置され、正中切開は、剣に骨盤/包皮から皮膚を介して行われます
    3. 皮膚は、それぞれの側に横方向に反映されます。鈍的切離基になる筋肉から緩める必要があります
    4. 筋肉を解除するとすぐ皮膚切り取り上筋を通じて小さな横カットが作成します
    5. はさみのポイントは腹部に置かれ、剣への筋肉を介して正中切開を作成します。はさみの角度を必ず ' 任意の臓器を切断を避けるために上向きのポイント
    6. は、それぞれの側に横肋骨の曲線に沿ってカット。肝臓穿刺に余分な注意が必要です
    7. 優しく動物に腸を移動 ' 後部の上大静脈を公開する左します
    8. 肝臓にガーゼのパッドを配置し、肝臓に人差し指と中指を休む
    9. 他の手で針を挿入、腎血管の接合部と腸骨の分岐上大静脈の中間に上向き、ベベルします
    10. ゆっくりと肝臓に加圧しながら血を撤回します

Figure 4
図 4。後部上大静脈からの撤退を血

採血はマウスやラットを含むいくつかの研究に共通する要件です。サンプリングの頻度、抽気される動物の健康状態、技術者の技能レベル、血液の量が必要なように、これらの動物の血液回収のための方法の選択は多くの要因に依存します

ここで、我々 はこれらの考慮事項を確認および概要採血手順レトロ軌道目出血を含む、尾の切れ端し、ニックネーム、心臓内の血液のコレクションだけでなく。他の方法は、このシリーズの 2 番目のビデオを参照してください。

血撤退プロトコルを掘り下げる前に ' s はまずサンプル タイプ、針の選択、収集することができます最大血液量などいくつかの一般的な考慮事項を確認します。マウスやラットの血液を収集する前に必要な血液サンプルの種類を決定する必要があります。全血、血漿または血清実験的手続きが必要となります

全血を収集、抗凝固剤が凝固を防ぐためにサンプルを追加必要があります。一般的に使用される抗凝固薬は、ヘパリン、クエン酸ナトリウム、エチレンジアミン四酢酸、EDTA と略します。抗凝固剤は、表面をコートする注射器に直接ロードできます。これにより、抗凝固薬の接触直接描画する血凝固の防止を支援します。齧歯動物の血液が急速に凝固、ためには、適切な割合の血液に抗凝固剤を使用することが重要です。プラズマ コレクション全血の凝固を遠心分離が必要です。次のスピン、白血球と血小板の層の上の透明の液体は、プラズマです。他の凝固因子、フィブリノーゲンを含まれています。一方で血清、全血サンプルなし抗凝固薬から収集されます。トップ プレーヤーである血清にフィブリノゲンや他の凝固因子が含まれていないのでサンプルがクロテッド クリームてい

針の選択は、動物のサイズと静脈穿刺のサイトに基づいています。一般に、大口径針は血液細胞に損傷の少ないより迅速な血液コレクションを有効にします。血管損傷を引き起こす可能性が高いです。針の長さも考慮する必要があります。針が長すぎる場合、使いにくいかもしれないまたは血液凝固針内に始めることができます。18 29 ゲージと長さは 0.5 から 1.5 インチからサイズの範囲の選択肢。各メソッドの適切な針のサイズは、手順のセクションで説明します

最後に、齧歯動物のサイズが小さいため、有機体に深刻な害をもたらすない単一血液から集めることができる血の最大量があります。血撤退はなし、または流体交換 - 通常行われます 0.9% 生理食塩水を使用して可能性があります。各場合の上限は、テキスト プロトコルの下に表示されます。さらに、いくつかの実験を必要とする複数のサンプルのコレクション、動物においても水分補給と共に同様の血液細胞を補充するために間に時間を必要があります。もう一度、シリアルのコレクション中に集めることができる最大量があるし、上限は以下のプロトコルに記載されています

いくつか見直し後の一般的な注意事項、let & #39; レトロ軌道から始まる特定血液回収技術に飛び込む出血 - 目の近くの血管から少量を収集するために科学者によって使用される技術。眼窩領域の解剖学的構造はマウスとラット間で異なることに注意してください。ラットある、目の後ろに流れる血管の神経叢マウス レトロな軌道副鼻腔を作るそれは簡単にマウスでこの手順を実行するを作成する船のコレクションがあります

。 血のコレクションの管を掴んで

開始。50-75 マイクロリットルを保持マイクロ ヘマトクリット管が優先されます。いくつかのペーパー タオルや作業台の上の他の絶縁材料を置きます。これは動物を維持するために、' プロシージャの間に s 体の熱。今イソフルラン麻酔などの麻酔を使用して動物を麻酔します。動物完全に麻酔をかけられ、一度部屋から削除し、臥床の横方向の位置には、その側にそれを置きなさい。次に、あごのラインに沿って、頭の上に指を置く皮膚を引き戻すし、下向きの眼球突出を誘発します。窒息によって死を引き起こす可能性がありますを気管に圧力を適用することを避けるため。その後、目の眼でマイクロ ヘマトクリット チューブを置き、尾側鼻の面から 30 に 45 度の角度でそれを直接します。軽くチューブを回転させながら圧力を適用します。これは結膜膜を切って、眼の神経叢や副鼻腔を破裂します。毛管作用によってヘマトクリット管に血液が流れます。眼腔の後ろに骨を叩くので、深いチューブを押すことは避けてください。血は流れを開始、一度はみ出した目を維持する圧力を維持します。出血を止める、皮を解放でき、目正常な位置に戻ります。止血を促進するために圧力を適用します。繰り返されるサンプル コレクションの裁ち落としの間 10 日間の最小値を許可します。これにより組織、いくつかの時間を癒すために

レトロ軌道出血は、一般的な手順は、その寛大さ多くの懸念事項があります。ヘマトクリット管の過剰な運動による腫れが含まれます。これは順番眼球突出を引き起こす、角膜乾燥、損傷、痛み、傷、自傷を引き起こすことで生じる瞼の閉鎖を妨げることができます。ヘマトクリット管の不適切な配置は、失明の生じる視神経を断ち切ることができます。別の可能な合併症は、眼球の後ろに落下するまぶたをできるように、軌道を外れて目が出来ます。さらに、眼球の硝子体液の損失結果極度の痛み、目の奥に血腫の形成の浸透、壊れやすい軌道骨の破砕から問題が発生します。すべてのこれらの懸念にもかかわらず、手順を行い、動物完全に麻酔をかけられ、熟練した技術者レトロ軌道出血が効果的な方法である齧歯動物の血のコレクションの

さあ ' s 評価考慮事項と尾が出血のため手順の小さなボリューム シリアル サンプルのコレクションを可能にします。装置に必要なこのプロシージャの滅菌数 11 メスが含まれます。はさみは使えませんので、はさみでカットを粉砕すると、凝固を促進して血流を減らすことができます。他の楽器が動物にアクセスできる拘束管 ' s 尾;吸水紙タオルコレクションまたはヘマトクリット管と止血を支援する - styptic 粉

拘束チューブに動物を保護することによって開始します。その後、暖かい水の残骸を削除し、わずかな血管拡張を引き起こすと尾を拭いてください。お湯を使用しないでください。尾を拡張し、メスの刃でヘマトクリット値またはコレクション チューブを使用して血液を収集する尾の非常に端を切り取る。尾を描画することができますまたは " 搾乳 " 血流を奨励するための先端に尻から。ただし、サンプルの品質が低くなります、これ

。 停止する

出血、ガーゼのパッドと尾の先端に圧力を適用されます。Styptic 粉は止血を達成するために使用可能性があります。繰り返しサンプリングの後に遅れる可能性があります止血が達成されていることを確認するすべて 5 〜 10 分の動物を確認します。尻尾切り取り領域から採取された試料は、組織製品汚染と一緒に、動脈、静脈の血液を含めることができます。ただし、採血のこの手順により、シリアル コレクションの黒星病や尾の末尾に元のカットの塊を破壊しています

尻尾切り取り領域に代替血液コレクション メソッドは尾容器ニックは、比較的低侵襲です。このため、同じメス刃を使用してカットをする小さな直接外側尾静脈、約 3 分の 2 以上臀部からの距離。として尻尾の切れ端と血を収集できますコレクションまたはヘマトクリット管に。サイトに圧力をかけて、5-10 分ごとに動物を再確認して止血を確保することが不可欠です。ただし、尻尾切り取り領域と同様に、サンプルをティッシュ製品で汚染される可能性があります

内心臓出血または後大静脈経由で外れると出血によって非生存大きな血のサンプルを必要とする研究多い

22-25 ゲージ 1 インチの針で 3 cc 注射器マウスの心筋内メソッドは、必要な。ラットの 1.5 インチ、18 ゲージの針で 10-12 cc 注射器が好ましい。理由を理解するのには、以下のプロトコルを参照してくださいこれらのニーズと注射器が最適です

。 二酸化炭素を用いた動物を安楽死させる

スタート。次の安楽死、垂直にぶら下がって体と襟首齧歯類を保持します。この抑制は、体がまっすぐ心のたわみや胸のねじれを防ぐためにする必要がありますが重要です。中心部が肘のレベルに約あることに注意してください。挿入側は、肋骨の下、背骨に平行に、剣状の左側にちょうどノッチ

針を挿入、胸に、ベベルし、中心部に穴をあけます。注射器でわずかな背圧を適用します。中心部に針がある場合は、血液が注射器に流れます。血が追加の背を追加する前にバレルをいっぱいまで待ちます。約心臓穿刺によってマウスまたはラットからこの全体の血液量の半分を収集できます。これはマウスの平均から平均のラットからの血液の約 10 mL の血液の約 1 mL に相当

代替位置は、外側アプローチによる背臥床。この場合、動物の肋骨間の針の場所 ' s 左側します。エントリ ポイントは、胸部に肘のポイントに対して測定されます。針を挿入し、胸壁のポイント中間でテーブルの平面に垂直に、ベベルします。注射器でわずかなバック プレッシャを適用します。針は、心臓は血液の場合は、注射器に流れます。再び、血が追加の背を追加する前にバレルをいっぱいまでを待機します。メモいずれかの位置に過度の背が倒れるかもしれない針ベベルを遮蔽、注射器への血流を停止する中心部

心臓の血液を収集する別の方法は後大静脈、です。この手順に必要な装置が適切なシリンジ添付; 正しいサイズ針付き腹腔内、小さな非外科的親指鉗子とガーゼ スポンジを開くためのはさみ。この手法は、動物が麻酔が深く、必要があります、d プロシージャ全体で麻酔下で維持されます。CO2 ナルコーシスはこのプロシージャの動物の心臓を打つ必要がありますので、オプションではありません。背臥床位置に動物を置き、プラットフォームに手足を固定します。手足は体から拡張する必要があります

鉗子を使って肌をリフトし、骨盤のすぐ上の皮膚を通して小さな横カットは、女性または男性の包皮にはさみを使用します。次、カットにはさみの点を配置し、剣に骨盤や包皮から皮膚を通して正中切開します。横方向に反映肌、持ち上げる筋肉と皮膚切り取りの真上の筋肉の小さな横カットを作る

腹部にシザーの点を配置し、剣状に筋を正中切開を加えます。シザー ポイント任意の臓器を切断を防ぐために上向きの角度を確認します。両側の肋骨の曲線に沿って横にカットします。肝臓を穿刺しないように注意します。動物に優しく腸を移動 ' 左後部の上大静脈を公開します。肝臓にガーゼのパッドを配置し、人差し指と中指を上に置きます。もう一方の手で針を挿入し、下大静脈、腎血管の接合部と腸骨の分岐の中間にベベルを。ゆっくりと血液を肝臓に圧力を適用するとき撤回します

回避の手の動き、それと容器破裂があります。また、あまりにも急速な血撤退オープニングの予防および採血を遮蔽かさに折りたたみに容器を引き起こします。この手法の主な利点は、針が皮膚を通過しませんので滅菌サンプルを収集する能力

最後に、聞かせて ' これらの血液回収技術のいくつかのアプリケーションを見て。免疫腫瘍、新興分野であるし、この分野で研究者はしばしば癌の開発のさまざまな段階で免疫細胞を研究するための血のコレクションを実行します。たとえば、ここで研究者収集心臓血液腫瘍生着 20 と 30 日の 10 時に好中球を定量化して担癌マウスから

一方、血液組成もよく生理学者によって研究されています。本研究でのような研究者は、糖尿病で腎臓機能の評価に興味を持っていた。そのために、これらの科学者は最初糖尿病動物モデルに色素を注入します。次に、彼らは、糖尿病腎臓機能の違いを強調した糸球体濾過率の計算に使用された最終的に血液中の染料濃度を評価するためのいくつかの時点で血液を収集するのに尻尾切り取り領域法を使用誘導

最後に、幹細胞研究者使用血液サンプル受信者へのドナー細胞の取り込みの成功を評価する ' s システム。ここでは、調査官は最初野生型および尾静脈注射を介して雌の遺伝子組み換え動物に男性マウスの骨髄細胞を移植しました。次に、彼らはポリメラーゼ連鎖反応を使用して血液細胞のゲノム DNA を研究する受信者のマウスのレトロな軌道洞から血液を収集しました。これは動物の 2 つのタイプのドナー細胞の生着率を提供します

あなた ' ve を見たゼウス ' s 血回収技術の最初の割賦です。実験動物の血のコレクションの他の一般的に使用されるテクニックを実行する方法を確認するシリーズの次のビデオを参照してください。いつも、見てくれてありがとうとして!

Summary

< p クラス = 'jove_content' > マウス、ラットの採血はさまざまな手法で行うことができます。サンプル サイズ、サンプリング、周波数、サイズ、動物の年齢など、多くの要因で影響を及ぼす、最も重要なコンポーネントはサンプルの収集を実行する技術者のスキルレベル。 ここで説明する方法の麻酔薬の適切な使用は、また品質のサンプルと動物の健康のために重要です

References

  1. Guidelines for the survival bleeding of mice and rats. 2010.
  2. Diehl, K.H., Hull, R., Morton, D., Pfister, R., Rabemampianina, Y., Smith, D., Vidal, J.M., and van de Vorstenbosch, C. 2001. A good practical guide to the administration of substances and removal of blood, including routes and volumes. Journal of Applied Toxicology. 21. 15-23.
  3. Omaye, S.T., Skala, J.H., Gretz, M.D., Schaus, E.E., and Wade, C.E. 1987. Simple method for bleeding the unanaesthetized rat by tail venipuncture. Laboratory Animals. 21. 261-264.
  4. Adeghe, A.J-H. and Cohen, J. 1986. A better method for terminal bleeding of mice. Laboratory Animals. 20. 70-72.

1。 レトロな軌道出血

  1. 設備
    1. 準備鐘瓶やイソフルランなど麻酔ガスを管理するための麻酔導入室。ガラスベル ジャーを使用すると、液体の麻酔薬は、皮膚からの吸収を避けるために、動物に接しないことが不可欠です。小さな穴を持つプラットフォームを使用できます
    2. 50-75 マイクロリットルを保持 Microhematocrit チューブが優先されます。マイラー ラップ管オペレーターの指の間を破る可能性は低く、安全対策として見なす必要があります
    3. いくつかの紙タオルの厚さ、または他の絶縁材料は動物を維持するために作業台の上に配置 ' プロシージャの間に s 体温
  2. 準備と動物の位置決め
    1. 動物に麻酔がかかる吸入麻酔剤、効果、ベルジャーやガスの麻酔誘導室におけるイソフルランなどと
    2. 動物完全に麻酔をかけられ、一度それが削除され、外側の臥床に配置します
    3. 目の爆風と、下顎の輪郭に沿って頭の上に指を置くことで、バックアップ上下の皮膚を引っ張ってします
    4. 、気管に圧力をかけて崩壊または窒息によって死を引き起こす気道を閉塞する可能性を回避します
  3. 撤退を血
    1. 、microhematocrit、目の眼に置かれ、鼻の面から 30-45 ° の角度で尾の方に指示します
    2. 。 ヘマトクリット管をゆっくり回転させながら
    3. 適用圧力。これは結膜膜をカットし、眼の神経叢を破裂します
    4. 毛管作用によってヘマトクリット管に血液が流し込まれます
    5. 眼腔の後ろに骨を叩くので、深いを押す避けてください
    6. 血流し始めると、一度はみ出した目を維持する圧力を維持します
    7. 血の複数のチューブを収集する必要はありません眼神経叢に次の管を配置する、血は流れ続けますと眼から来て収集することができます
    8. 。 出血を停止する
    9. 皮を解放でき、正常な位置に戻ります目。止血を確認するために軌道に圧力を適用します

Figure 1
図 1。マウスでレトロな軌道血撤退

2。 尾ブリード プロシージャ: 尾ちょきんと尾ニック

生殖不能のメスの刃、
  1. 設備
    1. A、できれば 11 番ブレードまたは片面かみそりの刃尾スニップ メソッドの最初の切断をするため。はさみでカットを粉砕すると、凝固し、血流を減らすことを促進するため、はさみを使用されませんする必要があります。尾ニック プロシージャ数 11、または 15 のメス刃がカットをすること使用されます
    2. マウスの尾にアクセスできる拘束チューブを用意しています
    3. 吸水紙タオルやガーゼは尻尾切り取り領域を実行するため、基板として使用されます
    4. ヘマトクリット管の収集も必要です
    5. Styptic 粉は止血のために使用する必要があります
  2. 拘束
    1. 尾がアクセスできるように、動物は管に配置されます。ブルーム型 restrainers の動物では、チューブにまず尻を引かれます。頭をまず動物その他の管の配置されています
    2. 好転できない、または尾を撤回するように、動物は管にセキュリティで保護されています
    3. 粗面をつかむために許可されている場合、いくつかのマウスは最小限のマニュアル抑制とテールちょきんと血液コレクションになります
    4. いくつかのラット血のコレクションのこのメソッドの吸入麻酔が必要になります
  3. 撤退を血
    1. 尾の残骸を削除し、わずかな血管拡張を引き起こすぬるま湯で拭きます。お湯を使用しないでください
    2. 尻尾切り取り領域のテールを延長してメスの刃で尾 (0.5-1 mm マウス用とラット用 mm 2 まで) の非常に端をカットします
    3. 尾ニックの尾部を延長して約 2/3 のメス刃でカットをしている尻を外側尾静脈の真上からの距離します
    4. 血流を奨励するための先端に尻から尾の境界線が描画できます; しかし、これはサンプルの品質を減少します
    5. 血のヒントまたはヘマトクリット管を使用してニックから収集またはコレクションのバイアルに滴る

3。心臓採血

22 25 ゲージ x 1
  1. 設備
    1. マウスを 3 cc シリンジ " 針をお勧めします。小さい注射器には同じ背圧がなくより困難な血の撤退を確認することができます。針は 25 ゲージより小さい増加凝固血液の流れを制限して血液細胞にダメージを与えます。1 より短い針 " 横隔膜から近づいていく心のレベルに達しなかったです
    2. ラット、1.5 x 18 ゲージで 10-12 cc シリンジ用 " 針をお勧めします。ラットのサイズ、に応じて、収集する全体の血液量を保持するかもしれない小さい注射器、従って注射器の処理中に変更するでしょう。20 ゲージより小さい針は、増加血液凝固に至る、血液の流れを制限します。1.5 より短い針 " 横隔膜から近づいていく心のレベルに達しなかったです
    3. 集められた血を保持するために十分なサイズの採血管を使用します
  2. 拘束
    1. 適切な拘束がこのメソッドの成功に不可欠であります。動物は、垂直にぶら下がって体と首筋が開催されます。本体は中心部のたわみや胸のねじれを防ぐためにまっすぐであることが重要です
    2. 代替位置は、動物の肋骨間針を置き背臥床 ' s 左側します。これは非常に大きなラットや、複数の動物が抽気される場合に特に便利です

Figure 2
図 2。マウスの心臓血回収が垂直に開催

  1. 血撤退
    1. 横隔膜を貫通、後面からのアプローチでマウスやラットは首筋を垂直に開催されたときより簡単に。
      1. 針はちょうど動物の左側に切り込みに高度な ' s 剣
      2. 針背骨に平行でなければなりません、肋骨のすぐ下に配置します
      3. 中心部が肘のレベルにおよそある
      4. 針を置いて、胸に、ベベル、中心部を穿刺します
      5. 適用わずかに戻す圧力注射器。血流が注射器に針が中心である場合
      6. 血が syr に追加の背圧を追加する前に、シリンジをいっぱいまで待ってインゲ
    2. 動物から側方進入 ' s 左側背臥床での動物の配置が必要です。
      1. のエントリ ポイントは、胸部に肘のポイントに対して測定されます。中心部が肘のレベルにおよそある
      2. 針は胸壁のポイント中間でテーブルの平面に垂直に挿入した dorsoventrally 測定します
      3. 針を置いて、胸に、ベベル、中心部を穿刺します
      4. 適用わずかに戻す圧力注射器。血流が注射器に針が中心である場合
      5. 血液が注射器に追加の背を追加する前に、シリンジをいっぱいまで待ちます

Figure 3
図 3。背臥床位置でマウスと心臓血撤退

  1. 技術的なヒント
    1. 正常な心臓は左を指している頂点が位置しています。まれに、心臓が反転されるので、中心部に穴をあけるの難しさの結果です
    2. 過度の背面圧力注射器針ベベルを遮蔽と注射器への血流を停止、心に崩壊するかもしれない
    3. バック プレッシャを適用し、繰り返しリリースがシリンジ内凝固開始されます
    4. 撤退可能にする循環系に追加血液量を強制的ことができます軽く肝臓に圧力を適用すること

4。後部の下大静脈血撤退

  1. 設備
      マウスの血のコレクションの
    1. A TB 25 29 g 針付きシリンジを使用します。ラット、22-25 ゲージ x 1 と 10-12 cc シリンジ用 " 針が必要です
    2. 手術のプラットフォーム、郭清のトレイ、または他の表面動物を確保するために必要な関係、テープ、またはピン位置で手足を貼る
    3. 注射麻酔や麻酔は必要。吸入麻酔を使用している場合それは麻酔薬を鼻の円錐形の精度気化器を介して配信されることが望ましいです。プロシージャの長さは追加の麻酔ガスの配達せず誘導チャンバーを使用しても、動物が復活する前に血の撤退を完了するための十分な時間は得られないようにします
    4. マウスのアイリスはさみや、ラットの手術室シャープ鈍はさみ小さな非外科的親指鉗子と 2 する必要が " x 2 " ガーゼ スポンジ
  2. 拘束
    1. ときつま先ピンチまたは尾ピンチによって決定される、動物完全に麻酔をかけられ、動物は背臥位にします
    2. 手足はテープやピンでプラットフォームに固定されます。手足は体から拡張する必要があります
  3. 撤退
    1. 皮膚を持ち上げ、女性の骨盤のすぐ上またはすぐ上男性の包皮の皮膚を通して作られる小さな横カット
    2. のカットへはさみのポイントが配置され、正中切開は、剣に骨盤/包皮から皮膚を介して行われます
    3. 皮膚は、それぞれの側に横方向に反映されます。鈍的切離基になる筋肉から緩める必要があります
    4. 筋肉を解除するとすぐ皮膚切り取り上筋を通じて小さな横カットが作成します
    5. はさみのポイントは腹部に置かれ、剣への筋肉を介して正中切開を作成します。はさみの角度を必ず ' 任意の臓器を切断を避けるために上向きのポイント
    6. は、それぞれの側に横肋骨の曲線に沿ってカット。肝臓穿刺に余分な注意が必要です
    7. 優しく動物に腸を移動 ' 後部の上大静脈を公開する左します
    8. 肝臓にガーゼのパッドを配置し、肝臓に人差し指と中指を休む
    9. 他の手で針を挿入、腎血管の接合部と腸骨の分岐上大静脈の中間に上向き、ベベルします
    10. ゆっくりと肝臓に加圧しながら血を撤回します

Figure 4
図 4。後部上大静脈からの撤退を血

採血はマウスやラットを含むいくつかの研究に共通する要件です。サンプリングの頻度、抽気される動物の健康状態、技術者の技能レベル、血液の量が必要なように、これらの動物の血液回収のための方法の選択は多くの要因に依存します

ここで、我々 はこれらの考慮事項を確認および概要採血手順レトロ軌道目出血を含む、尾の切れ端し、ニックネーム、心臓内の血液のコレクションだけでなく。他の方法は、このシリーズの 2 番目のビデオを参照してください。

血撤退プロトコルを掘り下げる前に ' s はまずサンプル タイプ、針の選択、収集することができます最大血液量などいくつかの一般的な考慮事項を確認します。マウスやラットの血液を収集する前に必要な血液サンプルの種類を決定する必要があります。全血、血漿または血清実験的手続きが必要となります

全血を収集、抗凝固剤が凝固を防ぐためにサンプルを追加必要があります。一般的に使用される抗凝固薬は、ヘパリン、クエン酸ナトリウム、エチレンジアミン四酢酸、EDTA と略します。抗凝固剤は、表面をコートする注射器に直接ロードできます。これにより、抗凝固薬の接触直接描画する血凝固の防止を支援します。齧歯動物の血液が急速に凝固、ためには、適切な割合の血液に抗凝固剤を使用することが重要です。プラズマ コレクション全血の凝固を遠心分離が必要です。次のスピン、白血球と血小板の層の上の透明の液体は、プラズマです。他の凝固因子、フィブリノーゲンを含まれています。一方で血清、全血サンプルなし抗凝固薬から収集されます。トップ プレーヤーである血清にフィブリノゲンや他の凝固因子が含まれていないのでサンプルがクロテッド クリームてい

針の選択は、動物のサイズと静脈穿刺のサイトに基づいています。一般に、大口径針は血液細胞に損傷の少ないより迅速な血液コレクションを有効にします。血管損傷を引き起こす可能性が高いです。針の長さも考慮する必要があります。針が長すぎる場合、使いにくいかもしれないまたは血液凝固針内に始めることができます。18 29 ゲージと長さは 0.5 から 1.5 インチからサイズの範囲の選択肢。各メソッドの適切な針のサイズは、手順のセクションで説明します

最後に、齧歯動物のサイズが小さいため、有機体に深刻な害をもたらすない単一血液から集めることができる血の最大量があります。血撤退はなし、または流体交換 - 通常行われます 0.9% 生理食塩水を使用して可能性があります。各場合の上限は、テキスト プロトコルの下に表示されます。さらに、いくつかの実験を必要とする複数のサンプルのコレクション、動物においても水分補給と共に同様の血液細胞を補充するために間に時間を必要があります。もう一度、シリアルのコレクション中に集めることができる最大量があるし、上限は以下のプロトコルに記載されています

いくつか見直し後の一般的な注意事項、let & #39; レトロ軌道から始まる特定血液回収技術に飛び込む出血 - 目の近くの血管から少量を収集するために科学者によって使用される技術。眼窩領域の解剖学的構造はマウスとラット間で異なることに注意してください。ラットある、目の後ろに流れる血管の神経叢マウス レトロな軌道副鼻腔を作るそれは簡単にマウスでこの手順を実行するを作成する船のコレクションがあります

。 血のコレクションの管を掴んで

開始。50-75 マイクロリットルを保持マイクロ ヘマトクリット管が優先されます。いくつかのペーパー タオルや作業台の上の他の絶縁材料を置きます。これは動物を維持するために、' プロシージャの間に s 体の熱。今イソフルラン麻酔などの麻酔を使用して動物を麻酔します。動物完全に麻酔をかけられ、一度部屋から削除し、臥床の横方向の位置には、その側にそれを置きなさい。次に、あごのラインに沿って、頭の上に指を置く皮膚を引き戻すし、下向きの眼球突出を誘発します。窒息によって死を引き起こす可能性がありますを気管に圧力を適用することを避けるため。その後、目の眼でマイクロ ヘマトクリット チューブを置き、尾側鼻の面から 30 に 45 度の角度でそれを直接します。軽くチューブを回転させながら圧力を適用します。これは結膜膜を切って、眼の神経叢や副鼻腔を破裂します。毛管作用によってヘマトクリット管に血液が流れます。眼腔の後ろに骨を叩くので、深いチューブを押すことは避けてください。血は流れを開始、一度はみ出した目を維持する圧力を維持します。出血を止める、皮を解放でき、目正常な位置に戻ります。止血を促進するために圧力を適用します。繰り返されるサンプル コレクションの裁ち落としの間 10 日間の最小値を許可します。これにより組織、いくつかの時間を癒すために

レトロ軌道出血は、一般的な手順は、その寛大さ多くの懸念事項があります。ヘマトクリット管の過剰な運動による腫れが含まれます。これは順番眼球突出を引き起こす、角膜乾燥、損傷、痛み、傷、自傷を引き起こすことで生じる瞼の閉鎖を妨げることができます。ヘマトクリット管の不適切な配置は、失明の生じる視神経を断ち切ることができます。別の可能な合併症は、眼球の後ろに落下するまぶたをできるように、軌道を外れて目が出来ます。さらに、眼球の硝子体液の損失結果極度の痛み、目の奥に血腫の形成の浸透、壊れやすい軌道骨の破砕から問題が発生します。すべてのこれらの懸念にもかかわらず、手順を行い、動物完全に麻酔をかけられ、熟練した技術者レトロ軌道出血が効果的な方法である齧歯動物の血のコレクションの

さあ ' s 評価考慮事項と尾が出血のため手順の小さなボリューム シリアル サンプルのコレクションを可能にします。装置に必要なこのプロシージャの滅菌数 11 メスが含まれます。はさみは使えませんので、はさみでカットを粉砕すると、凝固を促進して血流を減らすことができます。他の楽器が動物にアクセスできる拘束管 ' s 尾;吸水紙タオルコレクションまたはヘマトクリット管と止血を支援する - styptic 粉

拘束チューブに動物を保護することによって開始します。その後、暖かい水の残骸を削除し、わずかな血管拡張を引き起こすと尾を拭いてください。お湯を使用しないでください。尾を拡張し、メスの刃でヘマトクリット値またはコレクション チューブを使用して血液を収集する尾の非常に端を切り取る。尾を描画することができますまたは " 搾乳 " 血流を奨励するための先端に尻から。ただし、サンプルの品質が低くなります、これ

。 停止する

出血、ガーゼのパッドと尾の先端に圧力を適用されます。Styptic 粉は止血を達成するために使用可能性があります。繰り返しサンプリングの後に遅れる可能性があります止血が達成されていることを確認するすべて 5 〜 10 分の動物を確認します。尻尾切り取り領域から採取された試料は、組織製品汚染と一緒に、動脈、静脈の血液を含めることができます。ただし、採血のこの手順により、シリアル コレクションの黒星病や尾の末尾に元のカットの塊を破壊しています

尻尾切り取り領域に代替血液コレクション メソッドは尾容器ニックは、比較的低侵襲です。このため、同じメス刃を使用してカットをする小さな直接外側尾静脈、約 3 分の 2 以上臀部からの距離。として尻尾の切れ端と血を収集できますコレクションまたはヘマトクリット管に。サイトに圧力をかけて、5-10 分ごとに動物を再確認して止血を確保することが不可欠です。ただし、尻尾切り取り領域と同様に、サンプルをティッシュ製品で汚染される可能性があります

内心臓出血または後大静脈経由で外れると出血によって非生存大きな血のサンプルを必要とする研究多い

22-25 ゲージ 1 インチの針で 3 cc 注射器マウスの心筋内メソッドは、必要な。ラットの 1.5 インチ、18 ゲージの針で 10-12 cc 注射器が好ましい。理由を理解するのには、以下のプロトコルを参照してくださいこれらのニーズと注射器が最適です

。 二酸化炭素を用いた動物を安楽死させる

スタート。次の安楽死、垂直にぶら下がって体と襟首齧歯類を保持します。この抑制は、体がまっすぐ心のたわみや胸のねじれを防ぐためにする必要がありますが重要です。中心部が肘のレベルに約あることに注意してください。挿入側は、肋骨の下、背骨に平行に、剣状の左側にちょうどノッチ

針を挿入、胸に、ベベルし、中心部に穴をあけます。注射器でわずかな背圧を適用します。中心部に針がある場合は、血液が注射器に流れます。血が追加の背を追加する前にバレルをいっぱいまで待ちます。約心臓穿刺によってマウスまたはラットからこの全体の血液量の半分を収集できます。これはマウスの平均から平均のラットからの血液の約 10 mL の血液の約 1 mL に相当

代替位置は、外側アプローチによる背臥床。この場合、動物の肋骨間の針の場所 ' s 左側します。エントリ ポイントは、胸部に肘のポイントに対して測定されます。針を挿入し、胸壁のポイント中間でテーブルの平面に垂直に、ベベルします。注射器でわずかなバック プレッシャを適用します。針は、心臓は血液の場合は、注射器に流れます。再び、血が追加の背を追加する前にバレルをいっぱいまでを待機します。メモいずれかの位置に過度の背が倒れるかもしれない針ベベルを遮蔽、注射器への血流を停止する中心部

心臓の血液を収集する別の方法は後大静脈、です。この手順に必要な装置が適切なシリンジ添付; 正しいサイズ針付き腹腔内、小さな非外科的親指鉗子とガーゼ スポンジを開くためのはさみ。この手法は、動物が麻酔が深く、必要があります、d プロシージャ全体で麻酔下で維持されます。CO2 ナルコーシスはこのプロシージャの動物の心臓を打つ必要がありますので、オプションではありません。背臥床位置に動物を置き、プラットフォームに手足を固定します。手足は体から拡張する必要があります

鉗子を使って肌をリフトし、骨盤のすぐ上の皮膚を通して小さな横カットは、女性または男性の包皮にはさみを使用します。次、カットにはさみの点を配置し、剣に骨盤や包皮から皮膚を通して正中切開します。横方向に反映肌、持ち上げる筋肉と皮膚切り取りの真上の筋肉の小さな横カットを作る

腹部にシザーの点を配置し、剣状に筋を正中切開を加えます。シザー ポイント任意の臓器を切断を防ぐために上向きの角度を確認します。両側の肋骨の曲線に沿って横にカットします。肝臓を穿刺しないように注意します。動物に優しく腸を移動 ' 左後部の上大静脈を公開します。肝臓にガーゼのパッドを配置し、人差し指と中指を上に置きます。もう一方の手で針を挿入し、下大静脈、腎血管の接合部と腸骨の分岐の中間にベベルを。ゆっくりと血液を肝臓に圧力を適用するとき撤回します

回避の手の動き、それと容器破裂があります。また、あまりにも急速な血撤退オープニングの予防および採血を遮蔽かさに折りたたみに容器を引き起こします。この手法の主な利点は、針が皮膚を通過しませんので滅菌サンプルを収集する能力

最後に、聞かせて ' これらの血液回収技術のいくつかのアプリケーションを見て。免疫腫瘍、新興分野であるし、この分野で研究者はしばしば癌の開発のさまざまな段階で免疫細胞を研究するための血のコレクションを実行します。たとえば、ここで研究者収集心臓血液腫瘍生着 20 と 30 日の 10 時に好中球を定量化して担癌マウスから

一方、血液組成もよく生理学者によって研究されています。本研究でのような研究者は、糖尿病で腎臓機能の評価に興味を持っていた。そのために、これらの科学者は最初糖尿病動物モデルに色素を注入します。次に、彼らは、糖尿病腎臓機能の違いを強調した糸球体濾過率の計算に使用された最終的に血液中の染料濃度を評価するためのいくつかの時点で血液を収集するのに尻尾切り取り領域法を使用誘導

最後に、幹細胞研究者使用血液サンプル受信者へのドナー細胞の取り込みの成功を評価する ' s システム。ここでは、調査官は最初野生型および尾静脈注射を介して雌の遺伝子組み換え動物に男性マウスの骨髄細胞を移植しました。次に、彼らはポリメラーゼ連鎖反応を使用して血液細胞のゲノム DNA を研究する受信者のマウスのレトロな軌道洞から血液を収集しました。これは動物の 2 つのタイプのドナー細胞の生着率を提供します

あなた ' ve を見たゼウス ' s 血回収技術の最初の割賦です。実験動物の血のコレクションの他の一般的に使用されるテクニックを実行する方法を確認するシリーズの次のビデオを参照してください。いつも、見てくれてありがとうとして!

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