Följande protokoll är ett utdrag från Prior et al, A Rapid and Facile Pipeline for Generating Genomic Point Mutants in C. elegans Using CRISPR/Cas9 Ribonucleoproteins, J. Vis. Exp. (2018).
PCR och genotypning med en mask
- Efter 1 - 2 dagars äggläggning överför du F1s till enskilda PCR-bandrörslock som innehåller 7 μL Worm Lysis Buffer med hjälp av en maskplockning(tabell 1, figur 1D, dag 4 - 5).
- Centrifug PCR-rör med maximal hastighet i 1 min vid rumstemperatur för att föra djur till rörbotten och frysa rör vid -80 °C i 1 timme.
OBS: Maskar kan förvaras vid -80 °C på obestämd tid.
- Lysfrysta maskar i en termocyklist med följande program: 60 °C i 60 min, 95 °C i 15 min, 4 °C håll.
- Set-up PCR mastermix enligt tabell 2.
- Tillsätt 21 μL PCR mastermix i rena PCR-rör och tillsätt sedan 4 μL masklys från steg 3. Blanda väl med en pipett och kör PCR-program enligt tillverkarens riktlinjer (se Materialtabell).
- Rena PCR-reaktionerna med hjälp av ett DNA Clean and Concentrate-kit enligt tillverkarens instruktioner (se materialtabellen). Eluera DNA genom att tillsätta 10 μL vatten till spinnkolonnen.
- Set-up begränsning enzym mastermix som visas i tabell 3.
- Tillsätt 10 μL av begränsningsenzymet mastermix till varje rengjord PCR-reaktion och inkubera i 1- 2 h vid 37 °C.
- Separera smälta PCR-produkter på en 1,5% agarose gel som körs vid 120 V med 1x Tris-acetat-EDTA (TAE) buffert.