Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Biology

Количественная оценка γH2AX Очаги в образцах тканей

Published: June 28, 2010 doi: 10.3791/2063

Summary

Количественный анализ ДНК двунитевых разрывов на основе γH2AX очагов стал бесценным инструментом, особенно в области радиационной биологии, для оценки радиочувствительности тканей и воздействию радиации изменения соединений. Здесь мы демонстрируем использование иммунофлуоресценции для количественного определения γH2AX очагов в образцах тканей.

Abstract

ДНК двунитевых разрывов (ДР) особенно смертоносным и генотоксического повреждения, которые могут возникнуть либо эндогенного (физиологического или патологического) процессов или экзогенных факторов, в частности, ионизирующего излучения и радиомиметическое вещество соединений. Фосфорилирование H2A гистонов вариант, H2AX, на серин-139 остатка, в хорошо сохранились и С-концевой мотив SQEY, образуя γH2AX, является ранний ответ на ДНК двунитевых разрывов

Protocol

Ткани

  1. Легкие ткани, встроенные в формы в оптимальной температуры резания (октябрь) 4583 соединения, была разделена (5 мкм) с помощью CM Leica 1950 криостата и установлен на поли-L-лизин слайдов.

Замороженные образцы были получены от д-р Саймон Royce на научно-исследовательского института Мердока детей. Легкие ткани была получена из необработанного Balb / с мышами и с мышиной модели хронические аллергические заболевания дыхательных путей, который показывает многие из патологических особенностей человеческого астмы 6. Эксперименты на животных были проведены в соответствии с руководящими принципами и правилами, установленными Комитетом животных Этика научно-исследовательского института Мердока детей, которая придерживается австралийский Кодекс практики по уходу и использованию лабораторных животных для научных целей.

  1. Разделы было позволено высохнуть на воздухе при комнатной температуре в течение 1 часа.

Иммунофлуоресценции окрашивание

  1. Разделы были зафиксированы с 2% (м / о) параформальдегид в фосфатном буферном растворе (PBS) в течение 20 минут.
  2. Срезы уравновешенной с двумя моется в PBS в течение 15 минут каждый.
  3. Срезы обрабатывают 70% этанола (охлажденной до -20 ° С) в течение 20 минут, затем три моет в PBS в течение 10 минут каждый.

На данный момент слайды могут храниться в плотно закрытых емкостях при температуре 4 ° С в течение 2 недель.

  1. Срезы трижды промывали PBS в течение 10 минут каждый, а затем заблокировали с 100 мкл свежеприготовленного в PBS, содержащий 8% BSA в PBS, содержащем 0,5% Твин-20 и 0,1% Тритон Х-100 (PBS-ТТ) в течение 1 часа при комнатной температуре .

    Все инкубации проводили в увлажненной корыта окрашивания.
  2. Разделы промывали PBS-TT в течение 5 минут и гидрофобных периметру был отмечен вокруг ткани с Пап пера.
  3. Превышение буфер наклонили и 100 мкл первичных кролик поликлональных анти-γH2AX антител (разбавленной 1:500, в 1% БСА в ФСБ; Millipore), был добавлен в каждом разделе 2 часа инкубации при комнатной температуре.

    Инкубация с первичными антителами может быть выполнена в течение ночи при 4 ° C.

    Для дальнейшего доказательства, что γH2AX очаги представляют ДР, первичное антитело признании белка DSB ремонта могут быть также использованы. Например, совместно локализации γH2AX и фосфорно-банкомат обычно используется комбинация.
  4. Разделы промывали два раза PBS-TT в течение 5 минут каждая, и инкубируют с 100 мкл вторичных антител (Alexa Fluor 488 козьего анти-IgG кролика разбавленной 1:500, в 1% BSA; Invitrogen) в течение 1 часа при комнатной температуре в темноте . (Разводненная антител был в неведении в течение всей процедуры).
  5. Срезы трижды промывали PBS-TT в течение 5 минут каждый, и инкубировали с 0.5mg/mL РНКазы в течение 30 минут при температуре 37 ° C.
  6. Ядерная counterstaining и монтаж был выполнен с Vectashield среде, содержащей пропидий йодида.
  7. Слайды были опечатаны с лаком для ногтей и храниться в течение ночи при 4 ° С в темноте перед проведением анализа.

Микроскопия / Анализ

  1. Мета Zeiss LSM510 конфокальной микроскопии был использован для приобретения изображений с помощью стандартного GFP (для γH2AX - Alexa Fluor 488 козьего анти-IgG кролика) и PI (543 нм) лазеры.

Изображения были приобретены в Z-серии модель с шагом в 0,5 мкм. При анализе отдельных самолетов deconvoluted и сложены для получения максимальной проецируемого изображения, чтобы минимизировать перекрытие очагов.

Метод создания максимально проецируемого изображения до количество частиц должно использоваться только в тех случаях, когда тонкий срез (например, 5 мкм) используется и где фоне окрашивание незначительно. Где толще разделов со значительным фон должен быть проанализирован, более сложного анализа, таких как 3D объект счетчика, как описано в Болте и Cordelieres (2006) должны быть использованы 7.

  1. Метаморф (Molecular Devices, США) была использована для создания объединенных (красный и зеленый) изображения для количественного определения количества очагов.

Хотя Метаморф может быть использована для количественного определения очагов номера, как правило, при использовании срезов ткани очагов подсчитываются вручную (на глаз) для большей точности.

Конкретные типы клеток интересов могут быть выбраны для количественного определения, например, легких эпителиальных клеток. Это может быть сделано на основе гистологических и со ссылкой на гематоксилин-эозином окрашенных серийных срезов.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

Для этой демонстрации мы использовали ткани легких мышей из необработанных Balb / с мышами и с мышиной модели хронические аллергические заболевания дыхательных путей. Мы количественно различия в количестве очагов на клетку с несколько более высокие средние наблюдается в поврежденных легких по сравнению с необработанными разделов. В частности, количественный указанных очагов на 6,5 / 9,4 клетки и очаги в / элемент (ручной подсчет 20 ячеек в каждой секции), в необработанной ткани и хронические аллергические заболевания дыхательных путей, ткани, соответственно. Тем не менее, использование DSB-индуцирующих агентов, например, нафталин, который, как известно, вызывают ДР в модели легких мыши, даст большее число очагов. Действительно, этот протокол больше всего подходит для исследования воздействия ионизирующего излучения в тканях; более поразительные результаты, с точки зрения γH2AX номера очагов и разрешении получаются, когда ионизирующего излучения. Хорошо известно, что после воздействия рентгеновских лучей, γH2AX очагов форме быстро и очагов номера достигают максимума между 30-60 минут 2. Таким образом, 1 час моменты времени (после облучения) идеально подходят для оценки начального формирования DSB и более длительное время (как правило, до 48 часов) может быть использован для мониторинга репарации ДНК.

В целом, количественного определения γH2AX в тканях, используется для мониторинга DSB формирования и ремонта. Помимо своей полезности в контексте ионизирующего излучения, метод может быть применен к оценке эффективности DSB-индуцирующих веществ в различных тканях, например, широко используются противоопухолевые антрациклины, такие как доксорубицин как известно, вызывают ДР, и, возможно, для контроля различных патологий, которые характеризуются активных форм кислорода-опосредованной ДР. Важно отметить, что данный протокол подходит для различных тканей мыши.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

Нет конфликта интересов объявлены.

Acknowledgments

Поддержке австралийского Института ядерной науки и техники не будет подтверждено. TCK был удостоен AINSE наград. Эпигеномном Лаборатории медицины при поддержке национального здравоохранения и медицинских исследований Совета Австралии (566 559). Л. М. поддерживается Мельбурне исследований (Университет Мельбурна) и биомедицинской визуализации стипендии CRC дополнительных. Поддержка Micro Монаш Imaging (доктора Стивена Коди и ISKA Кармайкл) был бесценен для этой работы. ММТ выражает благодарность за экспертную помощь и совет от д-р Ольга Седельникова из Национального института здоровья.

Materials

Name Type Company Catalog Number Comments
Bovine Serum Albumin (BSA) Sigma-Aldrich A7906 BSA (1%) is used to block any non-specific antibody binding. Primary and secondary antibodies are diluted in BSA.
PBS (without Ca2+ and Mg2+) Invitrogen 17-517Q
Optimal Cutting Temperature (OCT) Compound 4583 Tissue-Tek 4583
Superfrost Plus Polysine slides Menzel-Glaser SF41296SP Electrostatically attracts frozen tissue sections and reduces the need for additional coatings and adhesives.
Tween 20 Reagent Calbiochem 655205 Tween 20 (0.5%), is a detergent to permeabilise cells
Triton X-100 Reagent Sigma-Aldrich T8787 Triton X-100 (0.1%) used to permeabilise cells.
Paraformaldehyde Reagent Sigma-Aldrich 158127
Anti-phospho-γH2AX (rabbit polyclonal antibody) Primary Antibody Upstate, Millipore 07-164 Dilution of primary antibody (1:500), in 1% BSA.
Alexa Fluor 488 goat anti-rabbit IgG (H+L) Secondary Antibody Invitrogen A-11008 Dilution of secondary antibody (1:500), in 1% BSA.
Ethanol (70%) Thermo Fisher Scientific, Inc. BSPEL316
RNAse A Reagent Qiagen 19101
Vectashield PI Reagent Vector Laboratories H-1300 A glycerol based mounting medium containing propidium iodide (a red nuclear stain).This medium must be used with an oil based lense that matches its refractive index.

Note: DNA stain commonly used: 4,6-diamidino-2-phenylindole dihydrochloride (DAPI). Can only be used with microscopes with the appropriate excitation laser.
Mini PAP Pen Invitrogen 008877
Coverslips (22x50mm) Menzel-Glaser CS2250100
Coplin Jar, glass Grale Scientific P/L 1771-OG
Staining Trough Grale Scientific P/L V1991.99
Zeiss LSM 510 Meta Confocal Confocal Microscope
CM Leica 1950 Cryostat Leica Microsystems
Metamorph Software for Imaging analysis Molecular Devices

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Rogakou, E. P., Boon, C., Redon, C., Bonner, W. M. Megabase chromatin domains involved in DNA double-strand breaks in vivo. J. Cell Biol. 146, 905-916 (1999).
  2. Bonner, W. M. Gamma H2AX and cancer. Nature Reviews Cancer. 8 (12), 957-967 (2008).
  3. Dickey, J. S. H2AX: functional roles and potential applications. Chromosoma. 118 (6), 683-692 (2009).
  4. Bhogal, N. Late residual gamma-H2AX foci in murine skin are dose responsive and predict radiosensitivity in vivo. Radiat Res. 173 (1), 1-9 (2010).
  5. Redon, C. E., Dickey, J. S., Bonner, W. M., Sedelnikova, O. A. gamma-H2AX as a biomarker of DNA damage induced by ionizing radiation in human peripheral blood lymphocytes and artificial skin. Adv Space Res. 43 (8), 1171-1178 (2009).
  6. Locke, N. R., Royce, S. G., Wainewright, J. S., Samuel, C. S., Tang, M. L., L, M. Comparison of airway remodeling in acute, subacute, and chronic models of allergic airways disease. Am J Respir Cell Mol Biol. 36 (5), 625-632 (2007).
  7. Bolte, S. &, Cordelieres, F. P. A guided tour into subcellular colocalization analysis in light microscopy. J Microsc. 224 (Pt 3), 213-232 (2006).

Tags

Клеточной биологии выпуск 40 иммунофлюоресценции ДНК двунитевых разрывов гистон вариант H2AX повреждение ДНК ионизирующее излучение активные формы кислорода
Количественная оценка γH2AX Очаги в образцах тканей
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Tang, M. M., Mah, L., Vasireddy, R.More

Tang, M. M., Mah, L., Vasireddy, R. S., Georgiadis, G. T., El-Osta, A., Royce, S. G., Karagiannis, T. C. Quantitation of γH2AX Foci in Tissue Samples. J. Vis. Exp. (40), e2063, doi:10.3791/2063 (2010).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter