Summary
Bu deneyin temel amacı, primer duyusal nöronlar bir hayvan için proprioseptif bilgi olarak eklem hareketleri ve pozisyonları bilgi iletmek nasıl anlamak için. Bu raporun ek bir amacı diseksiyon mikroskobu altında diseksiyon ve nöron inceleyen hazırlık anatomi mevcuttur.
Abstract
Bu deneyin temel amacı, bir hayvan için proprioseptif bilgi olarak eklem hareketleri ve pozisyonları ile primer duyu nöron taşıma bilgi göstermektir. Bu deneyde ek bir amacı, boyama, diseksiyon ve nöron ve duysal yapıları inceleyen bir diseksiyon mikroskobu altında hazırlanması anatomisini öğrenmek için. Bu, ortak bir reseptör organ ve boyama teknikleri elektriksel aktivite kayıt temel nörofizyolojik ekipmanlar kullanılarak yapılır. Kerevit kas reseptör organ (MRO) sistemi, memelilerde elektrofizyolojik kayıtlar için daha kolay erişilebilir karşılaştırmalı bir model olarak hizmet veren yardımcı intrafusal kas mil, benzer. Ayrıca, bu hazırlıklar arasında tanımlanabilir duyusal nöronlar. Hazırlık öğrenci laboratuvar çalışmaları için müsait olan en az bir saat boyunca tuzlu su içinde yaşayabilir. MRO, ayrıca düzenleyici eylem ve entegrasyon hareketleri ve bir kazanç sistemi değiştirilebilir ile birlikte statik konumu dinamik sinyaller sitelerinde ilginç sorular teşvik eder nöromodülasyon duyarlı.
Protocol
1) GİRİŞ
Proprioseptörlere eklem pozisyon, yön, hız ve kas gerilmesine tespit nöronlar. Proprioseptörlere dış dünya yerine vücut içinde interoceptors anlamda uyaranlara çünkü Propriyoseptör, eşsiz bir duyusal yöntemidir.
Omurgalı sistemi, eklem ve gerginlik alıcıları brüt proprioseptif bilgileri tespit etmek için pek çok gerekli olmadığını görünür. Propriosepsiyon için gerekli iki temel reseptör gruplar ablasyon yanı sıra titreşim ve anestezi çalışmalar kas lifleri annulospiral ve flowerspray (duyusal sinir uçlarının) reseptörleri gösterilmiştir (Burgess ve ark. Eleştiri, 1982). Ancak, bu hareketleri ince kontrolü için kullanılan diğer eklemlerde gibi reseptörleri tarafından toplanan gereksiz bilgiler olduğunu dikkate değerdir. Eklembacaklılar omurgalılar gibi eklemli uzantıları var. Bu nedenle, omurgalılar için açıklanan proprioseptörlere eklembacaklı bacaklarda ve eklemlerde muhataplarıyla olması şaşırtıcı değildir.
Yengeçler chordotonal organların anatomik düzenleme işlevine göre her bir nöronun analizi sağlar. Buna ek olarak hayvan büyüdükçe, gelişim sorular ele ya da hayvan bir uzuv (Cooper ve Govind, 1991; Hartman ve Cooper, 1993) yeniler. Yengeçler bazı ortak chordotonal organların primer duyu nöronlarının yüzlerce içeren (Cooper, 2008) ve bu nöronların, eklem hareketleri ve pozisyonları ile aralık fraksiyonasyon yönlerini izlemek. , Eklem hareketleri ve pozisyonları izleme daha az karmaşık proprioseptif sistem kerevit karın kas reseptör organlar (MROs) (McCarthy ve MacMillan, 1995 Eckert, 1961a, b). Kerevit karın MROs mechanoreceptors kademeli bir reseptör potansiyel bir kas içine gömülü duyusal sonları, bir streç uyaran transduce. Potansiyel bir eşiği aştığında, bir aksiyon potansiyeli akson üssünde neden olacaktır. Bu nörobiyoloji "başak inisiyasyon site" olarak tanımlanır ve bilinir. Bu sistemde hücre gövdesi izler kas yakın apozisyon bulunur. İki ayrı tipte gerilme reseptörleri bu duyu sistemi mevcut: yavaş adapte ve hızla adapte reseptör. Aktivite, mekanik gerilme gücüne bağlıdır. Kerevit MRO sistemi, memelilerde intrafusal kas mili benzer ve memelilerde intrafusal kaslar için bilinen kaslarının gergin doğasını korumak için kasları da efferent kontrolü var.
Memelilerde kas mili duyusal nöronlar çünkü duyusal uçları küçük doğa elektrofizyolojik araştırmak için meydan okuyorlar. Periferik sonlar dorsal kök ganglion hücre organlarının yerini takip etmek de oldukça zordur. Buna karşılık, kerevit de MRO nöronlar, uzun süreli kayıtlar için ekstrasellüler ve intrasellüler elektrotlar için kolayca erişilebilir. MRO duyu nöronlarının hücre gövdeleri nispeten büyük (çapı 50-100 mikron). Edwards ve ark, 1981;. Erxleben, 1989 Duyu nöronları da nöronların fonksiyonu kanalları, duyu nöronlarının iyonik akış kanal dağılımı, ve yoğunluğu (Brown ve ark, 1978 "streç aktif" nasıl ele bir model olarak hizmet etmiş; Hunt ve ark, 1978; Purali ve Rydqvist, 1992; Rydqvist ve Purali, 1991; Rydqvist ve Swerup, 1991; Cooper ve ark, 2003). Bir segmentinde MRO duyusal girdi entegrasyonu diğer komşu kesimleri (Eckert, 1961a, b) etkileyebilir. Duyusal girdi modülasyon birkaç raporlar vardır MRO (Pasztor ve Macmillan, 1990; Cooper ve ark, 2003). Modülasyon nöral devrelerin temel bilim gelecekteki araştırmalar için zengin bir alan ve bu hazırlık potansiyel omurgalıların omurilik, gelecekteki uygulamalar için memelilerde bir temel olarak hizmet edebilir (Rossignol ve ark, 2001, 2002; Donnelan, 2009)
1.1) Öğrenme çıktıları
Bu laboratuvar, bir kerevit karın incelemek ve ilgili anatomi ve fizyoloji MRO öğrenmek. Bir ekstrasellüler kayıtları ile nöron aktivitesini izlemek için nasıl öğrenecek ve elektrofizyolojik ortak ekipman kullanımı. Bir grafik ve duyusal stimülasyon dayalı veri elde yorumlamak. Duyusal stimülasyon statik pozisyonları yanı sıra izlenmekte olan segment dinamik hareketler aralığı olacaktır. Bir bu duyu sistemi ve önemi propriosepsiyon kavramı ele alınacaktır. Duyusal adaptasyon bir dizi deney görülecektir. Önemi yanı sıra potansiyel duyusal adaptasyon arkasında mekanizması öğrenciler tarafından ele alınacaktır.
2) yöntemleri
2.1) Malzeme
2.2) Kurulum
Şekil 1: donatım
- Faraday kafesi Kur. Mikroskop, yüksek yoğunluklu aydınlatma, mikromanipülatör, ve tuzlu su banyosu kafes (Faraday kafesi elektrik kayıt etkileyebilecek dış elektrik alanları engellemek için kullanılır) içinde kurulacaktır.
- Mikroskop aşamasında bakan bir konumda mikroskop Kur.
- Yüksek yoğunluklu aydınlatma, uygun bir pozisyonda yerleştirin.
- Bir Sylgard tabak içinde kerevit tuzlu su ile tuzlu su hazırlayın ve (bu disseke kerevit karın nerede alınacaktır) mikroskop altında yerleştirin.
- Mikromanipülatör tuzlu su emme elektrot kolay erişimi olan bir konuma yerleştirin.
- Emme Emme elektrot içindeki gümüş tel ile temas kadar tuzlu kadar. Elektrot ucu yakın emme elektrot kesim tarafında diğer tel düzenlemek, hem teller tuzlu su ile temas halinde olacak.
- Güç Lab 26T AC / DC Diferansiyel Amplifikatör (Amfi) bağlayın. PowerLab 26T Giriş 1 amplifikatör çıkış için uygun bir kablonun bunu.
- Amplifikatör araç kontrolleri aşağıdaki ayarları ayarlanması gerekir:
- High Pass-DC
- Notch Filtre-OFF
- Pass-20kHz Düşük
- Kapasite Zorunlu .- saat yönünün tersine
- DC ofset topuzu-saat yönünün tersine Güzel ve Ders
- DC ofset (+ OFF-) - KAPALI
- Gain-50
- Giriş (DIFF MONO GND) - FARK
- MODE (STIM-GATE-REC) - REC
- ΩTEST-off
- Amplifikatör araç kontrolleri aşağıdaki ayarları ayarlanması gerekir:
- 'Giriş-prob amplifikatör başkanı aşamasında bağlayın.
- Elektrik telleri kafa aşamasına emme elektrot bağlayın. Tellerin ortasında siyah yeşil (zemin), (altta negatif, sol üst köşede kırmızı (pozitif) bağlı olmalıdır. Şekil 2'de gösterilmiştir. Topraklama kablosu sadece tuzlu su bulunan konabilir.
Şekil 2: Baş sahne Yapılandırma - Şimdi dizüstü bilgisayar, PowerLab 26T USB kablosu bağlayın. Amplifikatör ve PowerLab26T hem de takılı ve bilgisayara LabChart7 açmadan önce açık olun.
- LabChart7 açın.
- LabChart Welcome Center kutusu açılır. Kapatın.
- Kur'a tıklayın
- Kanal ayarları tıklayın. Tamam'a basın 1 (kutunun sol alt) kanal numarasını değiştirin.
- Grafiğin sol üst 2k hakkında saniyede döngüleri ayarlayın. 500 veya 200mV volt (y-ekseni) ayarlayın.
- Kanal 1 grafiğin sağ tıklayın. Giriş Amplifikatör tıklayın. Emin olun ayarları: ac birleştiğinde, tek uçlu ve invert (gerekirse sinyali ters çevirir) ve anti-alias, kontrol edilir.
- Kaydetmeye başlamak başlamak için.
2.3) Diseksiyon
- Kerevit (Procamarus clarkii) vücut uzunluğu ölçme 6-10 cm zaten diseksiyonu başlamadan önce hayvan uyutmak için buz üzerinde yer almalıdır.
- Anestezi kerevit pençeleri arkasından tek elle tutun. Çabuk, göz yuvası, her iki tarafta baş orta kesim, kerevit (Not: kan hazırlanması tamamlanmış zaman kurur, bu yüzden araçları yıkamak yapışkan olacaktır) ve sonra kafasını uçurma.
Şekil 3: kerevitler Decapitation - Bir zamanlar kerevit ventral tarafta Göğüs ve karın (kuyruk) arasında kesilen, kafası kesildi. Toraks karın ayırmak için daha kolay olacaktır. Not: kerevit erkek ise, styl kesmekkapalı, karın ve göğüs ayıran önce ETS (erkek üreme parçalar). (Şekil 4A aşağıda gösterilmiştir).
Şekil 4: karın İzolasyon- Karın içinde ve makas ipuçları lateral sınırı boyunca kesilen hazırlık, uzak işaret makas bir bıçak yerleştirin. Karşı tarafta tekrarlayın.
Şekil 5: karın Boyuna diseksiyon - Cımbız arka uç (# 3) alın ve hazırlanması dorsal tarafına uzak kaslar ve gastrointestinal sistem itin. Kasları aşağı itmek için değil emin olun.
- Kuyruk ventral yan (lateral tarafına lateral) son kaburga üzerinden kaldırmak için kesin.
Şekil 6: karnın ventral kısmının Kaldırma - Kerevit salin (Van modifiye Harreveld çözümü) hazırlanmasında ortaya çıkar.
- Hazırlık mikroskop altında bakıldığında, lineer elyaf ile bir sarmal içinde bükülmüş lifler, ve derin ekstansör lateral kasları, derin ekstansör medial kas (DEM) yer ayırt edilebilir (bkz. Şekil 1 ve 2 Ek). Midsagittal bölgede birinci ve ikinci kaburga (Şekil 7) DEM kaslar arasındaki karın distal kısmında iki iğneli.
Şekil 7: güvenliğini içeren, duyusal MRO sinir sinir kayıt için hazırlık . - Kütikül (Şekil 7) yanındaki lateral kenarı boyunca uzanan kaydetmek için kullanılan olacak sinir demetleri. (Hazırlanması darbe ya da hareketini sinir bulmak için bir damlalık kullanarak banyo içine serum fizyolojik damla gerekli olabilir)
Not:
Her karın segment, sağ ve sol hemisegments hızlı ve yavaş adapte MROs iki grup vardır. Ilişkili sinir demetleri kütikül yanında lateral kenarı boyunca çalıştırın. Bu bir kayıt olacak ki sinir demetidir. DEL1 ve 2 kasları (Ek Şekil 1 ve 2) altında bulunması nedeniyle Bir MROs görüntülemek mümkün olmayacaktır. Şekil 8 karın izole etmek için yapılması diseksiyonları genel bir bakış sağlar.
Şekil 8: karın izole etmek için, genel bir diseksiyon bakış . A, B ve C serisi kerevit diseksiyon adım.
3) idi.Sonuçlar
3.1) Kayıt
Yavaş ve germe ve bir streç korurken MROs hızla adapte elde Genelleştirilmiş yanıtları Şekil 9'da tasvir edilmektedir. Bu alıştırmada bir aksonlar aynı sinir demeti bulunan iki MROs birlikte kayıt olacak.
Şekil 9: kerevit MRO nöronların iki çeşidi vardır. Hızlı motor aksonlar ve yavaş motor aksonlar tarafından innerve tonik tarafından innerve fazik. (A) bir tonik reseptör uyarıldığında yavaş yavaş uyarana adapte olur ve aksiyon potansiyelleri sabit bir atış paterni devam ediyor. (B) fazik reseptör stimüle olduğunda uyaran hızla adapte olur ve sadece kısa bir aksiyon potansiyelleri desen ateşler.
(Şekil 10), motor ve duysal nöron içeren tüm sinir kaydedilir. Ancak tek motor sürücü hayvan ventral sinir kablosu kopmuş olduğu gibi duyusal nöronlar algılar.
Şekil 10: kayıt elektrot içine emdi sinir demeti. (A) serbest sinir disseke karın üzerinde yüzen gösterilmiştir. (B) sinir sinir demeti ve plastik emme elektrot yakın özetliyor. (C) segmental sinir mavi ana hatlarıyla emme elektrot, içine çekilir.
Bir MROs elektrik cevaplarını kaydetmek için hazır.
- Diseksiyon kapsamında hazırlık yerleştirin ve kayıt kurmak hazırlamak.
- Elektrikle, banyo ve ortak bir zemin, diğer ucunu bir gümüş klorür topraklama kablosu koyarak banyo zemin. Not: Bazen bu kayıt sırasında elektriksel parazite neden olabilir. Bu durumda, banyo yere yok.
- Kaydedilecek sinir bulmak için mikroskop kullanın.
Not: en kolay sinir segmenti için bak. Sinir beyaz, ya da sinir etrafında tuzlu su püskürtme pipet kullanarak tarafından görülebilir hazırlık hafifçe üfleyerek. Bu hareket için sinir nedenleri ve tespit etmek daha kolay hale getirir. - Sinir sinir üzerinde doğrudan mikromanipülatör (Şekil 10) emme elektrot yer tespit edilmiştir Şimdi.
- Elektrot (bir mikroskop kullanımı ile elektrot içine çekilir sinir görebilirsiniz) sinir çekmek için şırınga yavaşça çekin.
- Labscope7 başlangıç düğmesine basın.
- Cımbız kullanarak 180 için 45 ve 90 açılardan kerevit kuyruk hafifçe yukarı taşımak ve aşağı. Her biri farklı bir açıyla kayıtlarında farka dikkat edin. (Açıları pozisyon değiştirirken ekranda ilgili nöronal aktivite ile açı değişiklikleri not etmek emin olun. Bu yazılım yorum kalem kullanarak yapılabilir.)
- Aşağıdaki grafikte de çeşitli statik hareketlere tepki hareketleri kaydedin.
- Kerevit kuyruk on beş saniye süreyle 45 ° açıyla tutun.
- LabChart7 ekranda stop. Kaydedilen son saniyede sırasında meydana gelen aksiyon potansiyelleri numarasını kaydedin.
- Kerevit kuyruk bir dakika süreyle 45 ° açıyla tutun.
- LabChart7 ekranda stop. Kaydedilen son saniyede sırasında meydana gelen aksiyon potansiyelleri numarasını kaydedin.
Grafik 1:
| Açısı (°) | # 1 saniye 3 saniye sonra Aksiyon Potansiyelinin | Aksiyon Potansiyelinin # 1 saniye 10 saniye sonra |
| 180 ° (düz) | ||
| 45 ° | ||
| 90 ° | ||
Bu deneyler yapılırken düşünmek sorular şunlardır: bir desen ve eklem ekstansiyon ve fleksiyon hareketleri tutarlı bir yanıt var mı? Telzon çeşitli sabit pozisyonlarda tutarak bağlantılarını veya uyarılmış yanıtların ne tür? Tekrarlanan bu tepki tutarlı mı?
Gözlenen yanıtların türlü dikkatli notlar alın. Gözlemler memnun sonra, veri dosyaları kaydederek, bu faaliyetin sürekli kayıt olun. Segmentinde 3 yaptığınız gözlemleri ile memnun, sonra 4 veya 5 segmentleri sinirler daha da kayıtları veya aktivitesini izlemek için 3 segmentinde diğer tarafında taşıyın.
Bir nöromodülatör (octopamine, serotonin ve proctolin) veya diğer bileşikler veya serum fizyolojik iyonik yapısı değiştirilmiş bir kompozisyon tanımlanan tuzlu su elde edilen çeşitli tepkiler üretir belirlemek isteyebilirsiniz.
Metilen mavisi ile 3.2) Boyama
Bir MROs bir boyama tekniği ile (bakınız Ek) kas incelemek mümkün olabilir. Hazırlanması ve kerevit tuzlu su dökeceğim. Metilen mavisi çözeltisinin yaklaşık 5 mL hazırlanması ve tabak birkaç dakika hafifçe girdap içine yerleştirin. Ardından çöp konteyner içine aşırı metilen mavisi dökün ve taze tuzlu su hazırlanması üzerine dökün. Şimdi MROs görmek için kas diseksiyon başlatmak için mikroskop altında çanak yerleştirin. (Midsagittal lateral) kaburga kas altına makas bir parçası yerleştirerek ve kas boyunca kesilmiş gibi yukarı çekerek boyunca segment kesin. DEL 1 ve 2 kasları, ardından kas geri soyma kesilir ve ince bir kas tabakası (SEM) dikkat edilmelidir. MROs sarmal kas (Şekil 11) paralel uzanan son iki medial lifleri vardır.
"Alt =" Şekil 11 "/>
Şekil 11: Şemanın bir karın segment kas gruplarının (A) ve mavi (B) sağlam bir hazırlık kas gruplarını tanımlamak için yardımcı olur metilen lekeli bir hazırlık göstermektedir . B, A ana hatlarıyla alanı genişlemiş bir görünümü ile gösterilir. Şematik alt yarısında görüldüğü gibi B A'da görüldüğü gibi, DEL1 ve 2 kas gruplarını kesip değildir
Bir öğrenci egzersizleri için öğrenciler aşağıdaki sorulara cevap isteyebilirsiniz:
- Interoceptive reseptör nedir?
- Interoceptive reseptörleri proprioseptörlere nasıl bir ilgisi var?
- Duyusal adaptasyon ve nasıl bu laboratuvar ile ilgili açıklayın.
- Aralığı fraksiyonasyon nedir? Ne MSS yapmaya olanak sağlar?
- Nöron fazik veya tonik tip nöron kaydetti mi? Neden?
(İpucu: motor nöron aktivitesi içinde duyusal nöron aktivitesi ile ilgili sağlam bir hayvan gibi görünecektir ne önerme) - AP frekans vs kerevit kuyruk açısı kağıt ayrı bir sayfada bir grafik çizin.
- Grafikte gözlemlemek olabilir herhangi bir eğilim açıklayın
Discussion
Ilgili film ve metin sağlanan detayları in situ yeterince kerevit MRO faaliyet kaydetmek için önemli adımlar sağladı. Bir gol raporu duyu fizyolojisi temel kavramları öğretmek için soruşturma laboratuvarlarda çalışacak öğrenci bu hazırlık için potansiyel bilincini artırmak. Minimal bir tuzlu su yıkanıyor hazırlıkları canlılığı çok sağlam.
MRO kasları üzerinde motor kontrol tanımlanan ancak iletim ve eksitatör ve inhibitör nöronlar için iletim etkinliğinin yanı sıra, sinaptik plastisite potansiyeli düzenleme için açık bir araştırma alanı (Elekes ve Florey, 1987a, b kalır; Florey ve Florey, 1955; Kuffler, 1954; Kuffler ve Eyzaguirre, 1955).
Bu preparat, birincil araştırma yanı sıra, gösterim amaçlı MRO biyolojisi daha iyi anlamak için deneysel koşulların yanı sıra çok sayıda hayvan içinde hareketin doğal aralık araştırmak için kullanılabilir. Edwards ve ark, 1981;. Purali, 1997; Rydqvist ve Purali, 1991; Rydqvist bu duyusal nöron biyofiziksel özelliklerini kısmen muhafaza uyaran (Brown ve ark, 1978 ile nöral aktivitede uyum doğaları ele olmuştur Swerup, 1991). Ancak, bu duyu reseptörleri ve ilişkili kas lifleri (Cooper ve ark, 2003; Pasztor ve Macmillan, 1990) sadece birkaç raporları adresi nöromodülasyon. Raporlar hemolimf mevcut olduğu bilinen birçok bileşikler sadece birkaç anlaşma. Birçok modülatörlerin modülatörleri ve kokteyller MRO kompleks (kas ve nöronlar) incelenmek üzere kalır. Pasztor ve Macmillan (1990), çeşitli kabuklu türler arasında MROs faaliyet nöromodülatör 5-HT ve octopamine incelemek ve türler farklılıklar olduğunu fark etti. MRO farklı statik pozisyonlarda bu nöromodülatör uzun dönemli etkileri de faaliyet üzerindeki etkilerini ayrıntılı incelemek vermedi.
Rabin ve ark, 2009;. Marino ve ark hazırlık Bu tip motor ünitesi abnormities (Patel ve ark, 2009 ile insanlar için rehabilitasyon ve hastalık yönetimi için önemli olan nöral işleme duyusal algı ve düzenleme temelini anlamada yardımcı olabilir , 2010). Giriş ve erişilebilir omurgasız hazırlıkları eklem hareketlerinin izlenmesi için ateş desenler çeşitli türleri robotik / protez (Macmillan, Patullo 2001) içinde kullanılabilir. Şekillerde bir dizi faydalı olabilir bu hazırlık cevap bekleyen birçok soru hala vardır.
Disclosures
Çıkar çatışması ilan etti.
Acknowledgments
Kentucky Üniversitesi, Biyoloji Bölümü, Lisans ve College of Arts & Sciences Ofisi tarafından desteklenir.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| PowerLab 26T |  ADInstruments |
||
| LabChart 7 | ADI Instruments, Colorado Springs, CO, USA |
References
- Alexandrowicz, J. S. Muscle receptor organs in the abdomen of Homarus vulgaris and Palinurus vulgaris. Q. J. Microsc. Sci. 92, 163-199 (1951).
- Brown, H. M., Ottoson, D., Rydqvist, B. Crayfish stretch receptor: An investigation with voltage-clamp and ion-sensitive electrodes. J. Physiol. 284, 155-179 (1978).
- Burgess, P. R., Wei, J. Y., Clark, F. J., Simon, J. Signaling of kinesthetic information by peripheral sensory receptors. Ann. Rev. Neurosci. 5, 171-187 (1982).
- Cooper, R. L. Proprioceptive neurons of chordotonal organs in the crab, Cancer magister Dana Decapoda, Brachyura). Crustaceana. 81, 447-475 (2008).
- Cooper, R. L., Govind, C. K. Axon composition of the proprioceptive PD nerve during growth and regeneration of lobster claws. J. Exp. Zool. 260, 181-193 (1991).
- Cooper, R. L., Ward, E., Braxton, R., Li, H., Warren, W. M. The effects of serotonin and ecdysone on primary sensory neurons in crayfish. Microscopy Res. Technique. 60, 336-345 (2003).
- Donelan, J. M., McVea, D. A., Pearson, K. G. Force regulation of ankle extensor muscle activity in freely walking cats. J. Neurophysiol. 101, 360-371 (2009).
- Eckert, R. O. Reflex relationships of the abdominal stretch receptors of the crayfish. I. Feedback inhibition of the receptors. J. Cell. Comp. Physiol. 57, 149-162 (1961).
- Eckert, R. O. Reflex relationships of the abdominal stretch receptors of the crayfish. II. Stretch receptor involvement during the swimming reflex. J. Cell. Comp. Physiol. 57, 163-174 (1961).
- Edwards, C., Ottoson, D., Rydqvist, B., Swerup, C. The permeability of the transducer membrane of the crayfish stretch receptor to calcium and other divalent cations. Neurosci. 6, 1455-1460 (1981).
- Elekes, K., Florey, E. New types of synaptic connections in crayfish stretch receptor organs: an electron microscopic study. J. Neurocytol. 16, 613-626 (1987).
- Elekes, K., Florey, E. Immunocytochemical evidence for the GABAergic innervation of the stretch receptor neurons in crayfish. Neurosci. 22, 1111-1122 (1987).
- Erxleben, C. Stretch-activated current through single ion channels in the abdominal stretch receptor organ of the crayfish. J. Gen. Physiol. 94, 1071-1083 (1989).
- Mill, P. J. Crustacean abdominal and thoracic muscle receptor organs. Structure and function of proprioceptors in the invertebrates. , Chapman & Hall. New York. 65-114 (1976).
- Florey, E., Florey, E. Microanatomy of the abdominal stretch receptors of the crayfish Astacus fluviatilis L. J. Gen. Physiol. 39, 69-85 (1955).
- Hartman, H. B., Cooper, R. L. Regeneration and molting effects on the proprioceptor organ in the Dungeness crab, Cancer magister. J. Neurobiol. 25, 461-471 (1994).
- Hunt, C. C., Wilkerson, R. S., Fukami, Y. Ionic basis of the receptor potential in primary endings of mammalian muscle spindles. J. Gen. Physiol. 71, 683-698 (1978).
- Kuffler, S. W. Mechanisms of activation and motor control of stretch receptors in lobster and crayfish. J. Neurophysiol. 17, 558-574 (1954).
- Kuffler, S. W., Eyzaguirre, C. Synaptic inhibition in an isolated nerve cell. J. Gen. Physiol. 39, 155-184 (1955).
- Macmillan, D. L., Patullo, B. W. Insights for robotic design from studies of the control of abdominal position in crayfish. Biol. Bull. 200, 201-205 (2001).
- Marino, B. F., Stucchi, N., Nava, E., Haggard, P., Maravita, A. Distorting the visual size of the hand affects hand pre-shaping during grasping. Exp. Brain Res. , 202-202 (2010).
- McCarthy, B. J., MacMillian, D. L. The role of the muscle receptor organ in the control of the abdominal extension in the crayfish Cherax. J. Exp. Biol. 198, 2253-2259 (1995).
- Mill, P. J., Lowe, D. A. The fine structure of the PD proprioceptor of Cancer pagurus.I. The receptor strand and the movement sensitive cells. Proc. R. Soc. Lond. B. 184, 179-197 (1973).
- Nakajima, Y., Onodera, K. Membrane properties of the stretch receptor neurons of crayfish with particular reference to mechanisms of sensory adaptation. J. Physiol. 200, 161-185 (1969).
- Nakajima, Y., Takahashi, K. Post-tetanic hyperpolarization and electrogenic Na pump in stretch receptor neurone of crayfish. J. Physiol. 187, 105-127 (1966).
- Pasztor, V. M., MacMillan, D. L. The actions of proctolin, octopamine and serotonin on the crustacean proprioceptors show species and neurone specificity. J. Exp. Biol. 152, 485-504 (1990).
- Patel, M., Fransson, P. A., Karlberg, M., Malmstrom, E. M., Magnusson, M. Change of body movement coordination during cervical proprioceptive disturbances with increased age. Gerontol. 56, 284-290 (2010).
- Patullo, B., Faulkes, Z., Macmillan, D. L. Muscle receptor organs do not mediate load compensation during body roll and defense response extensions in the crayfish Cherax destructor. J. Exp. Zool. 290, 783-790 (2001).
- Purali, N. Mechanisms of adaptation in a mechanoreceptor. A study of mechanical and ionic factors in the crayfish stretch receptors [dissertation]. , Karolinska Institutet. Stockholm, Sweden. (1988).
- Purali, N., Rydqvist, B. Block of potassium outward currents in the crayfish stretch receptor neurons by 4-aminopyridine, tetraethylammonium chloride and some other chemical substances. Acta Physiol. Scand. 146, 67-77 (1992).
- Rabin, E., Muratori, L., Svokos, K., Gordon, A. Tactile/proprioceptive integration during arm localization is intact in individuals with Parkinson's disease. Neurosci. Lett. 470, 38-42 (2010).
- Rydqvist, B., Purali, N. Potential-dependent potassium currents in the rapidly adapting stretch receptor neuron of the crayfish. Acta Physiol. Scand. 142, 67-76 (1991).
- Rydqvist, B., Swerup, C. Stimulus-response properties of the slowly adapting stretch receptor neuron of the crayfish. Acta Physiol. Scand. 143, 11-19 (1991).
- Rossignol, S. Locomotion and its recovery after spinal injury. Curr. Opin. Neurobiol. 10, 708-716 (2000).
- Rossignol, S., Giroux, N., Chau, C., Marcoux, J., Brustein, J., Reader, T. A. Pharmacological aids to locomotor training after spinal injury in the cat. J. Physiol. 533, 65-74 (2001).
- Rossignol, S., Bouyer, L., Barthelemy, D., Langlet, C., Leblond, H. Recovery of locomotion in the cat following spinal cord lesions. Brain Res. Rev. 40, 257-266 (2002).
- Sohn, J., Mykles, D. L., Cooper, R. L. The anatomical, physiological and biochemical characterization of muscles associated with the articulating membrane in the dorsal surface of the crayfish abdomen. J. Exp. Zool. 287, 353-377 (2000).
- Svensson, E., Woolley, J., Wikström, M., Grillner, S. Endogenous dopaminergic modulation of the lamprey spinal locomotor network. Brain Res. 970, 1-8 (2003).
- Swerup, C., Rydqvist, B. The abdominal stretch receptor organ of the crayfish. Comp. Biochem. Physiol. A. 103, 433-431 (1992).
- Vargas, J. G., Yu, W. Audio aided electro-tactile perception training for finger posture biofeedback. Conf. Proc. IEEE Eng. Med. Biol. Soc. 2008, 4230-4233 (2008).
- Vedel, J. P., Clarac, F. Combined reflex actions by several proprioceptive inputs in the rock lobster legs. J. Comp. Physiol. 130, 251-258 (1979).
