Summary

إعداد وثقافة شرائح الدجاج الدماغ السمعية

Published: March 21, 2011
doi:

Summary

ويتكون الدماغ السمعية الدجاج من النوى المسؤولة عن معالجة الصوت الأذنين. A إعداد شريحة واحدة الاكليلية يحافظ على الدوائر كلها في حين أن النهج مثقف يوفر إعداد دراسة فريدة من نوعها لتطوير البنية العصبية وظيفة السمع على الصعيدين الجزيئية والخلوية وشبكة الاتصال.

Abstract

جذع الدماغ السمعية الدجاج هو النظام النموذجي الراسخة التي استخدمت على نطاق واسع لدراسة علم التشريح وعلم وظائف الأعضاء من تجهيز السمعية في فترات رصينة للتنمية 1-4 فضلا عن آليات لترميز الزمنية في النظام العصبي المركزي 5-7.

هنا نقدم طريقة لتحضير شرائح الدجاج الدماغ السمعية التي يمكن استخدامها لإجراءات تجريبية حادة أو لشرائح ثقافة عضوي النمط على المدى الطويل التلاعب التجريبية.

يتكون الدماغ السمعية الدجاج من الزاوي النواة ، magnocellularis والزيتون laminaris ومتفوقة. هذه النواة هي المسؤولة عن معالجة الصوت والأذنين واحد الاستعدادات شريحة الاكليلية الحفاظ على الدوائر كلها. وفي نهاية المطاف ، يمكن للثقافات شريحة عضوي النمط يتيح الفرصة للتلاعب المعلمات تنموية عدة مثل النشاط متشابك ، والتعبير من قبل عناصر وبعد المشبكي ، والتعبير عن جوانب السيطرة على استثارة والتفاضلية التعبير الجيني

ويمكن استخدام هذا النهج لتوسيع المعرفة العامة حول تطوير الدوائر العصبية ، والصقل والنضج.

Protocol

1. إعداد تشريح المنطقة فقاعة مصطنعة باستمرار السائل الشوكي الدماغي (ACSF) مع خليط من 95 ٪ O 2 / 5 ٪ CO 2 (درجة الحموضة بين 7،2-7،4 ، الأسمولية 295-310 mOsm / لتر). بينما هو ACSF محتدما ونظيفة ومنطقة عم…

Discussion

لعدة عقود ، وقد استخدمت في إعداد شريحة حاد في الدماغ السمعية الدجاج لدراسة تجهيز 9 و 10. وقد قدم هذا النهج على كمية هائلة من البيانات في المختبر الفيزيولوجي على معالجة الأذنين من كل من الولايات التنموية وناضجة 4 ، 11 ، 12. ويعرف الكثير عن هذه الدائرة درجة ع…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

أعضاء حاليين وسابقين مختبر روبل.

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
Chicken ACSF        
NaCl   Fisher Scientific M-11624 130 mM
NaHCO3   Fisher Scientific M-10576 26 mM
KCl   Sigma P-9333 3 mM
NaH2PO4   Sigma S-8282 1.25 mM
Glucose   Sigma G-7528 10 mM
MgCl2   Fisher Scientific M33-500 1 mM
CaCl2   Acros Organics 423525000 2 mM
Chicken culture medium (store at 4°C)        
advanced minimum essential medium (with NEAA, sodium pyruvate at 110 mg/l, without L-glutamate)   Gibco Invitrogen 12492-013 48.00%
Earl’s balanced salt solution   Sigma E-2888 24.00%
L-glutamine (200 mM)   Sigma G-7513 1.00%
Glucose solution (200 g/l, sterile filtered)   Sigma G-7528 2.75%
horse serum (heat inactivated, sterile filtered)   Sigma H-1138 24.00%
Penicillin-streptomycin*   Sigma P-0781 1.00 ml
* = Add to 100 ml culture medium if needed to prevent contamination
Specific equipment        
Millicell-CM cell culture inserts PICMORG50 Millipore    
6-well plate 6 Well Cell Culture Cluster Corning Incorporated    
Incubator Forma Scientific CO2 Water Jacketed Incubator Forma Scientific    

References

  1. Howard, M. A., Burger, R. M., Rubel, E. W. A developmental switch to GABAergic inhibition dependent on increases in Kv1-type K+ currents. J Neurosci. 27, 2112-2123 (2007).
  2. Kuba, H., Koyano, K., Ohmori, H. Development of membrane conductance improves coincidence detection in the nucleus laminaris of the chicken. J Physiol. 540, 529-542 (2002).
  3. Gao, H., Lu, Y. Early development of intrinsic and synaptic properties of chicken nucleus laminaris neurons. Neuroscience. 153, 131-143 (2008).
  4. Sanchez, J. T., Wang, Y., Rubel, E. W., Barria, A. Development of glutamatergic synaptic transmission in binaural auditory neurons. J Neurophysiol. 104, 1774-1789 (2010).
  5. Jackson, H., Hackett, J. T., Rubel, E. W. Organization and development of brain stem auditory nuclei in the chick: ontogeny of postsynaptic responses. J Comp Neurol. 210, 80-86 (1982).
  6. Rubel, E. W., Parks, T. N. Organization and development of brain stem auditory nuclei of the chicken: tonotopic organization of n. magnocellularis and n. laminaris. J Comp Neurol. 164, 411-433 (1975).
  7. Rubel, E. W., Smith, D. J., Miller, L. C. Organization and development of brain stem auditory nuclei of the chicken: ontogeny of n. magnocellularis and n. laminaris. J Comp Neurol. 166, 469-489 (1976).
  8. Stoppini, L., Buchs, P. A., Muller, D. A simple method for organotypic cultures of nervous tissue. J Neurosci Methods. 37, 173-182 (1991).
  9. Reyes, A. D., Rubel, E. W., Spain, W. J. Membrane properties underlying the firing of neurons in the avian cochlear nucleus. J Neurosci. 14, 5352-5364 (1994).
  10. Monsivais, P., Rubel, E. W. Accommodation enhances depolarizing inhibition in central neurons. J Neurosci. 21, 7823-7830 (2001).
  11. Lu, T., Trussell, L. O. Development and elimination of endbulb synapses in the chick cochlear nucleus. J Neurosci. 27, 808-8017 (2007).
  12. Kuba, H., Yamada, R., Fukui, I., Ohmori, H. Tonotopic specialization of auditory coincidence detection in nucleus laminaris of the chick. J Neurosci. 25, 1924-1934 (2005).
  13. Trussell, L. O. Cellular mechanisms for preservation of timing in central auditory pathways. Curr Opin Neurobiol. 7, 487-492 (1997).
  14. Trussell, L. O. Synaptic mechanisms for coding timing in auditory neurons. Annu Rev Physiol. 61, 477-496 (1999).
  15. Sorensen, S. A., Rubel, E. W. The level and integrity of synaptic input regulates dendrite structure. J Neurosci. 26, 1539-1550 (2006).
check_url/2527?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Sanchez, J. T., Seidl, A. H., Rubel, E. W., Barria, A. Preparation and Culture of Chicken Auditory Brainstem Slices. J. Vis. Exp. (49), e2527, doi:10.3791/2527 (2011).

View Video