Summary
Различные факторы роста и белки взаимодействуют, чтобы побудить клетки взять на себя разные судьбы клетка в процессе разработки. Здесь мы показываем, использование в ово подготовки к устранению возможных взаимодействий между различными белками в развитии путем размещения бусины на E2.5 куриных эмбрионов.
Abstract
Нервной трубки выражает многие белки в конкретных пространственно-временных моделей в процессе разработки. Эти белки, как было показано иметь решающее значение для сотовых судьба решимость, миграции клеток и формирования нейронных цепей. Нейронные индукции и структурирование привлекать костные морфогенетические белки (BMP), звуковой еж (SHH), фактор роста фибробластов (FGF), среди других. В частности, выражение структуры Fgf8 находится в непосредственной близости к регионам выражения BMP4 и SHH. Это выражение же ситуация наблюдается и с отклонениями в развитии взаимодействия, которые облегчают структурирование в конечном мозге.
Здесь мы предлагаем наглядной демонстрации метода, в котором в ово препарат может быть использован для тестирования эффектов FGFs в формировании переднего мозга. Бусины покрыты белком и помещен в развивающихся нервной трубки оказывать постоянную экспозицию. Поскольку процедура использует маленькие, тщательно помещены шарики, это минимально инвазивный и позволяет несколько бусин, чтобы быть размещены в пределах одной нервной трубки. Более того, метод позволяет в постоянном развитии, так что эмбрионы могут быть проанализированы на более зрелой стадии, чтобы обнаружить изменения в анатомии и в нейронных кучность стрельбы. Этот простой, но полезный протокол позволяет в режиме реального времени изображения. Он обеспечивает средства, чтобы во времени и пространстве ограниченных изменений к эндогенным белка.
Protocol
1. Удалить яйца из инкубатора
На E2-2.5 (~ 17 Санкт-НН), удалить яйца и готовить их соответствующим образом. Они могут быть разработаны сразу же или возвращен в инкубаторе в течение нескольких часов. Яйца могут быть размещены при комнатной температуре безопасно в течение часа. Яйца могут оставаться в течение всего срока манипуляций. Иногда это может занять час или более.
Примечание: Чем дольше они сидят при комнатной температуре, тем меньше шансов, что они, чтобы выжить.
2. Подготовка тушь
- Подготовка свежего раствора 4% тушь в стерильном PBS.
- Заполните 3 мл шприц с раствором.
- Место 27 калибр, ½ дюйма иглу на шприц.
- Используя пару hemostats, согните иглу под углом 90 °.
3. Открытие яйца и введения тушь
- Используя пару щипцов, отогните ленту и открыть окно, закрепив его с помощью обратной стороне ленты на обратной стороне яйца.
- Руководство в угловых иглу, пока она лежит прямо под эмбриона. Размещение иглы под плавающий диск гарантирует, что чернила, который является токсичным для эмбриона, не придет в непосредственном контакте.
- Вам нужно только вводить достаточно чернил для создания комфортной контрастности. Это, как правило, менее ¼ мл.
4. Открытие нервной трубки
- Возьмите пару тонких ножниц рассечение и нарезать тонкой мембраной, которая лежит сверху, а иногда и вокруг, эмбрион.
- Возьмите пару из 55 щипцов или вольфрама зонда и открытой нервной трубки от задних к передним. Убедитесь, что открытие является достаточно большой, чтобы разместить в ней шарик.
Примечание: В зависимости от возраста, прекрасно вольфрамовый зонд может использоваться, чтобы сделать то же самое.
5. Получение покрытые гепарином акриловые бусины
- Использование пары из 55 пинцетов, найти нетронутый бисер в растворе. Пусть шарик присоединится к кончику, медленно закройте щипцы.
- Удалить шарик из раствора и перенести его на верхней части яйца.
- Как только шарик из ее решения, это вряд ли отрываться, пока он был помещен в альбумин.
6. Размещение бусину
- Как только шарик был размещен в верхней части целевой области, использование вольфрамового зонда направлять его на передний мозг или исправить его в задний мозг.
- Добавить несколько капель PBS с использованием 10 мкл пипетки.
7. Закрытие яйцо
- Закрыть яйцо использованием тонкий кусок ленты, чтобы закрыть окно.
- Печать яйцо в соответствии с Prepping протокол, доступны на http://jove.com/index/Details.stp?ID=306 .
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
В зависимости от белка вы хотите использовать, Существуют различные протоколы о том, как подготовить бисером. В этих экспериментах мы используем гепарин-акриловые бусины, но Аффи-гель бусины могут быть также использованы. Мы обнаружили, что гепарин-акриловые бусины легче манипулировать в водной среде яичного альбумина. Бисер замачивают в 5 л белка на ночь при 4 ° C. Управление бусины помещают в стерильную PBS до момента размещения. Преимущество использования в ово подготовки является то, что эмбрион еще живы и свободно развиваться нормально 1. Хотя среда, в которой хранится эксплантов можно управлять для отдельных переменных, живой эмбрион обеспечивает точное представление аффект белка на развитие модели 2-3. Все анализы, которые можно выполнять на эксплантов, вы можете с эмбрионом.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Materials
Name | Type | Company | Catalog Number | Comments |
Eggs | Animal | Fertilized, E2-2.5 (~ St. 17 HH) | ||
Incubator | Profi-I | Lyon | ||
India Ink | Tool | Higgins | Prepare a 4% solution in sterile PBS. | |
Sterile PBS | Alternatively, an antibody cocktail can be used | |||
1ml syringe | ||||
27G 1/2 needles | Tool | BD Biosciences | 305109 | Angled at 90 degrees |
Forceps | Tool | World Precision Instruments, Inc. | size 55 | |
Hemostats | ||||
Dissection scissors | Tool | World Precision Instruments, Inc. | 500086 | vannas, 8.5cm |
Parafilm tape | to seal eggs | |||
Tungsten Probe | Tool | Electron Microscopy Sciences | 62091 | Tool #24. Handle optional. |
References
- Korn, M. J., Cramer, K. S. Windowing Chicken Eggs for Developmental Studies. Jounal of Visualized Experiments. 8, http://www.jove.com/index/Details.stp?ID=306 (2007).
- Crossley, P. H., Martinez, S., Ohkubo, Y., Rubenstein, J. L. Coordinate expression of Fgf8, Otx2, Bmp4, and Shh in the rostral prosencephalon during development of the telencephalic and optic vesicles. Neuroscience. 108, 183-206 (2001).
- Alexandre, P., Bachy, I., Marcou, M., Wassef, M. Positive and negative regulations by FGF8 contribute to midbrain roof plate developmental plasticity. Development . 133, 2905-2913 (2006).