Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Neuroscience

Inhibition préimpulsion habituation et du réflexe de sursaut acoustique dans Rongeurs

Published: September 1, 2011 doi: 10.3791/3446

Summary

L'inhibition de l'accoutumance et préimpulsion du réflexe de sursaut sont les mesures opérationnelles du filtrage sensoriel. Gating sensoriel est perturbé dans la schizophrénie, et certains autres troubles mentaux et les maladies neurodégénératives. Nous décrivons ici un protocole standard pour évaluer l'habituation à court terme et à long terme ainsi que préimpulsion inhibition des réponses sursaut acoustique dans les rats et les souris.

Abstract

La réaction de sursaut acoustique est une réponse protectrice, provoquée par une stimulation acoustique soudaine et intense. Les muscles du visage et du squelette sont activés en quelques millisecondes, ce qui conduit à un corps tout entier tressaillir chez les rongeurs 1. Bien que les réponses sont des réponses sursaut réflexif qui peut être fiable suscité, ils ne sont pas stéréotypés. Ils peuvent être modulés par les émotions comme la peur (peur sursaut potentialisé) et de la joie (joie atténué sursaut), par des processus d'apprentissage non associatifs tels que l'accoutumance et de sensibilisation, et par d'autres stimuli sensoriels grâce à des processus de déclenchement sensoriels (préimpulsion inhibition), en tournant sursaut réponses dans un excellent outil pour évaluer les émotions, l'apprentissage et filtrage sensoriel, pour revue, voir 2, 3. La voie principale médiatrice réactions effarouchées est très court et bien décrit, la qualification sursaut aussi comme un excellent modèle pour étudier les mécanismes sous-jacents de la plasticité comportementale au niveau cellulaire / moléculaire 3.

Nous décrivons ici une méthode pour évaluer à court terme accoutumance, habituation à long terme et de l'inhibition de la préimpulsion acoustiques réactions effarouchées chez les rongeurs. L'accoutumance décrit la diminution de l'amplitude de sursaut sur présentation répétée du même stimulus. L'accoutumance au sein d'une session de test est appelé à court terme accoutumance (STH) et est réversible après une période de plusieurs minutes sans stimulation. L'accoutumance entre les sessions de test est appelé habituation à long terme (LTH) 4. L'accoutumance est stimulus spécifique 5. Préimpulsion inhibition est l'atténuation d'un sursaut par une précédente non surprenante stimulus sensoriel 6. L'intervalle entre préimpulsion et relance sursaut peut varier de 6 à jusqu'à 2000 ms. La préimpulsion peut être n'importe quelle modalité, cependant, préimpulsions acoustiques sont les plus couramment utilisés.

L'accoutumance est une forme de non-associatif apprentissage. Il peut également être considérée comme une forme de filtrage sensoriel, car elle réduit la réponse de l'organisme à un stimulus non menaçant. Préimpulsion inhibition (PPI) a été initialement développé dans la recherche neuropsychiatriques humaines comme mesure opérationnelle pour le filtrage sensoriel 7. Déficits PPI peut représenter l'interface de la «psychose et de la cognition», comme ils semblent prédire 80-10 déficience cognitive. Les deux accoutumance et PPI sont perturbés chez les patients souffrant de schizophrénie 11, et les perturbations PPI ont montré pour être, au moins dans certains cas, se prêtent à un traitement avec des antipsychotiques atypiques pour la plupart 12, 13. Toutefois, d'autres maladies mentales et neurodégénératives sont également accompagnés de perturbations dans l'accoutumance et / ou IPP, comme les troubles du spectre autistique (plus lent accoutumance), trouble obsessionnel compulsif, le syndrome de Gilles de la Tourette, maladie de Huntington, la maladie de Parkinson et la maladie d'Alzheimer (PPI) 11, 14, 15 dopamine induit des déficits IPP sont un modèle animal couramment utilisé pour le dépistage de 16 médicaments antipsychotiques, mais les déficits PPI peut aussi être induite par de nombreux autres médicaments psychomimétiques, les modifications de l'environnement et les procédures chirurgicales.

Protocol

1. Protocole de design

  1. Calibrage: Avant une série d'expériences, d'étalonner les haut-parleurs. Ceci est important afin que les haut-parleur afficher le volume exact qui a été fixé par l'expérimentateur. Aussi calibrer la sensibilité de la plate-forme du transducteur des boîtes sursaut selon le manuel du fournisseur. Le transducteur convertit le mouvement vertical de la plate-forme en un signal de tension. Assurez-vous qu'il n'y ait pas des expériences en cours lors de l'étalonnage du système, et que toutes les cases sont calibrés de la même façon.
  2. i / o Fonction: Si de nouvelles souches de souris ou de rats est mesurée, une fonction d'entrée / sortie doit être établi. Après une période d'acclimatation de 5-10 minutes avec un bruit de fond constant blanche de 65 à 68 dB (voir ci-dessous), les stimuli sursaut (20 ms bruit blanc) doit être affichée toutes les 20 secondes, commençant à environ 70 à 75 dB. L'intensité du stimulus sursaut sera accrue entre chaque stimulus de 2-5 dB jusqu'à atteindre 120 à 130 dB, ce qui entraîne dans 10-30 essais avec des stimuli sursaut (voir figure 1).
  3. Structure de protocole: l'habituation et de préimpulsion inhibition peut être mesurée dans un protocole. Le protocole se divise en une période d'acclimatation, un bloc I (accoutumance), immédiatement suivie par un bloc II (PPI, figure 2). Avant de mesurer l'inhibition préimpulsion, les animaux doivent toujours subir accoutumance sursaut, de sorte que atténuations sursaut à cause de l'accoutumance ne pas interférer avec les mesures PPI.
  4. Période d'acclimatation: Chaque fois qu'un animal est testé, il subit d'abord une phase d'acclimatation afin d'adapter au détenteur des animaux, la boîte de sursaut et un bruit de fond. Au cours d'une période d'acclimatation de 5-10 minutes, le bruit de fond constant de 65 68dB de bruit blanc (en fonction du bruit de l'environnement) est affichée, mais aucun stimulus sursaut. Durant cette phase, l'animal va se calmer, arrêter d'explorer l'environnement et arrêter de bouger autour.
  5. Bloc I accoutumance: à court terme accoutumance (STH), entre 30 stimuli sursaut -100 doit être appliqué sur le fond. Stimuli sursaut sont des bruits blancs généralement de 20 ms et un temps de montée très raide (0, si possible). L'intensité est idéalement au volume où la fonction I / O a atteint le plateau de réaction de sursaut au maximum, généralement de 105 à 115 dB. Les intervalles entre les essais unique devrait être soit toujours 20 secondes ou randomisés entre 10 et 30 sec (voir la discussion et figure 3).
  6. Bloc II préimpulsion inhibition: Afin de mesurer l'IPP, les essais avec une impulsion sursaut seul et essais avec un préimpulsion sont pseudorandomized dans le bloc II. Le bruit de fond et de relance de sursaut sont les mêmes que dans le bloc I. La préimpulsion est un bruit blanc de 4 ms et le temps de montée raide. Deux paramètres peuvent être variés: l'intervalle entre les interstimulus préimpulsion et sursaut d'impulsion et l'intensité de la préimpulsion (voir la discussion). Nous proposons d'utiliser deux différents couramment préimpulsion intensités (75 et 85 dB) et deux intervalles différents interstimulus (30 ms et 100 ms). Ainsi, il existe quatre différents préimpulsion impulsion des essais ainsi que le pouls sursaut seuls essais à pseudorandomized et affiché 10 fois chacun, ce qui totalise 50 essais. Inter-procès intervalles peut être 20 sec ou aléatoire entre 10 et 30 sec (voir la discussion). Dans certains cas, il pourrait être bénéfique d'ajouter un sixième type d'essais, qui est un essai préimpulsion seul (voir la discussion et la figure 4).
  7. Habituation à long terme: Afin de mesurer LTH, l'ensemble du protocole est exécuté sur au moins cinq jours suivants. Sinon, seule la phase d'acclimatation et de bloquer je pourrais être exécuté, cependant, afin de voir LTH, bloc I doit contenir au moins 100 sursaut stimuli. La présentation de 30 stimuli par jour conduit à LTH très peu ou pas dans la plupart des animaux, en particulier chez la souris. Fonctionne devrait être approximativement le même temps de chaque jour, depuis amplitudes réaction de sursaut fluctuent avec le cycle diurne.

2. Manipulation et l'acclimatation des animaux

Il ya de grandes différences dans la manipulation et l'acclimatation des rats par rapport souris. Souris sera placé dans le porte-animal approprié (ils ne devraient pas être retenu) pendant 2-5 minutes avec un bruit de fond, mais pas de stimuli sursaut (phase d'acclimatation du programme). Cette procédure doit être répétée 3-5 fois, une ou deux fois par jour, jusqu'à la défécation et la miction dans le support de la souris cesse ou diminue considérablement. Les détenteurs d'animaux doivent toujours être remplacés ou nettoyés après qu'un animal est retiré.

Les rats doivent être manipulés pendant au moins trois sessions de 17 ans. A la fin des séances de manipulation troisième, ils sont placés dans un porte-animal approprié (pas de freiner) et exposés à un bruit de fond pendant plusieurs minutes. Après les enlever, ils peuvent être récompensés par des graines de tournesol pour former ples associations ositive à la procédure de test. Cette procédure est répétée deux fois plus, en élargissant progressivement le temps d'acclimatation, avant l'ensemble du protocole est exécuté.

Pour tester les sessions, les animaux sont placés dans toutes les chambres, les portes fermées et le protocole avec la phase d'acclimatation, je bloc et bloc II est exécuté. S'il ya différents groupes d'animaux (injections, génotypes), ils doivent être mélangés ou randomisées sur les différents passages et les différentes cases. Si un animal est testé à plusieurs reprises (par exemple avec des traitements différents), il devrait être re-testés dans la même boîte. Pour les tests PPI répétées chez le rat, nous recommandons également d'exécuter un protocole complet avant la collecte effective des données a lieu. PPI améliore souvent entre la première et la session du second test (PPI apprentissage), et reste constante par la suite. Il permettra également d'éliminer une grande partie de LTH.

3. Analyse des données

  1. À court terme accoutumance: Pour l'analyse d'habituation à court terme, toutes les réactions effarouchées du bloc I sont tracées pour chaque animal. Si les animaux dans un groupe ont les mêmes amplitudes réaction de sursaut, les valeurs peuvent être en moyenne entre les animaux. Dans la plupart des cas, cependant, absolue amplitudes sursaut diffèrent considérablement entre les animaux et les niveaux de sursaut sont pas distribuées normalement. Dans ce cas, il est plus rentable pour normaliser les données de chaque animal à sa première, ou la moyenne des deux premiers, réactions effarouchées dans le bloc I (animaux, parfois de s'endormir pendant la phase d'acclimatation résultant en une réaction de sursaut bas du premier et une haute sursaut seconde). Les données peuvent ensuite être normalisé en moyenne sur tous les animaux afin de tracer le cours de l'habituation. Pour une évaluation quantitative de la quantité d'accoutumance, un score peut être calculé pour chaque animal, par exemple, la moyenne des 10 dernières réactions effarouchées, divisé par la moyenne des deux premières réponses (figure 6).
  2. Préimpulsion inhibition: Pour analyser l'inhibition préimpulsion, les données du bloc II doit être trié selon le type d'essai (par exemple en exportant toutes les colonnes de données pertinentes dans Excel et trier par préimpulsion intensité et la durée de l'ISI). Les dix traces par type d'essai sont alors en moyenne, et les valeurs obtenues pour les essais préimpulsion impulsions sont divisés par le pouls sursaut seuls valeur et multiplié par 100. Ceci révèle la quantité de sursaut restantes (en pour cent de base sursaut) sous différentes conditions préimpulsion pour chaque animal. Base sursaut (impulsions seul) est de 100%. Ces valeurs peuvent alors être en moyenne sur les animaux d'un groupe et être tracée (figure 7a). Alternativement, le montant de l'IPP peuvent être tracées en soustrayant la réponse reste sursaut de 100% (figure 7b). S'il vous plaît être conscient: lorsque vous comparez PPI dans différents groupes d'animaux, vous devriez toujours aussi signaler si il ya une différence dans la base amplitudes sursaut, par exemple en comparant les amplitudes sursaut absolue des essais sursaut seuls impulsion (ou amplitudes sursaut dans le bloc I) .
  3. Habituation à long terme: Afin d'analyser LTH les deux premières réponses de I bloc de chaque jour sont en moyenne et tracée sur le minimum de cinq séances d'essais consécutifs. Cela élimine la possibilité que les différences de STH affecter le résultat de l'analyse des LTH. S'il a été établi que le gène de traitement / n'affecte pas STH, alternativement toutes les réponses dans le bloc I peut être simplement la moyenne pour chaque jour et être tracées. LTH peut être quantifiée par le calcul d'un score d'habituation lorsque les derniers jours "la valeur est divisée par les premiers jours« valeur et multiplié par 100, alors que le pourcentage du niveau de sursaut initial restant après LTH est affiché. L'accoutumance scores peuvent ensuite être moyennée sur les animaux (figure 8).

4. Les résultats représentatifs:

  1. i / o Fonction: Rongeurs commencent généralement à partir de sursaut d'un volume de 85-90 dB sur (avec 20 ms, un bruit blanc). La réaction de sursaut augmente avec le volume augmente et atteint normalement un maximum à 100-110 dB. Si les animaux s'écartent considérablement de ces valeurs, les animaux pourraient avoir perturbé les capacités auditives ou des capacités motrices. Typiques d'E / S des fonctions sont affichés dans la figure 5.
  2. À court terme accoutumance: les rats traités normalement bien s'habituer à environ 60% de leur réaction de sursaut initial, mais il ya d'énormes différences individuelles et aussi des différences de contrainte. L'effet le plus fort accoutumance survient normalement dans la première de plusieurs stimuli. Souris ne s'habituent généralement moins de rats (généralement à environ 80%), mais les différences de souches peuvent être très grandes. Un cours d'habituation typique est montré dans la figure 6.
  3. Préimpulsion inhibition: La plupart des rats montrent IPP de l'ordre de 90% avec une optimale préimpulsion (85dB, 4 ms, un bruit blanc). PPI est très robuste et les différences individuelles sont relativement petits avec ces paramètres expérimentaux. Préimpulsions faible volumerendement inférieur PPI et une plus grande variabilité (même au sein d'un animal), mais semble aussi être plus vulnérables aux manipulations pharmacologiques ou génétiques. Différents résultats IPP sont tracées dans la figure 7.
  4. Habituation à long terme: habituation à long terme peuvent être observés au cours des séances de tester plusieurs. LTH est très robuste chez les rats. Chez la souris, elle nécessite souvent la présentation d'un grand nombre de stimuli sursauter à chaque session, afin d'observer LTH. Les résultats typiques de LTH peut être vu dans la figure 8.

Figure 1
Figure 1. Protocole de stimulation pour la fonction i / o. Après une période d'acclimatation de 5-10 min. avec 65 dB le niveau de pression acoustique (SPL) et aucun bruit de fond des stimuli sursaut (non représenté), 20 ms stimuli bruit blanc sont présentées toutes les 20 secondes. L'intensité augmente progressivement de 75 à 130 dB par incréments de 5 dB (bruit de fond bg =).

Figure 2
Figure 2. Structure du protocole d'accoutumance et de la mesure combinée PPI. Au cours de l'ensemble du protocole, un bruit de fond constant de 65 dB est appliquée. Il ya une période d'acclimatation de 5-10 min. sans aucune stimulation supplémentaire. Immédiatement après, l'accoutumance est testé par des stimuli 30-100 sursaut (je bloquer, voir figure 3). Ceci est immédiatement suivie par IPP test (bloc II, voir figure 4).

Figure 3
Figure 3. Protocole de stimulation pour la mesure de l'accoutumance (bloc I). Un exemple typique d'un bloc I pour les essais à court terme accoutumance est montrée. Il se compose de 30 100 essais identiques où un 20 ms à 105 dB de bruit blanc avec un temps de montée 0 est présenté avec un intervalle inter-essai (IIT) de 20 sec. Les variations de ce protocole peuvent inclure des intensités plus élevées de relance sursaut ou ITI variables

Figure 4
Figure 4. Protocole de stimulation pour la mesure de PPI (bloc II). Un exemple pour une partie typique d'un bloc II pour le test PPI est montré. Bloc II se compose de 5-6 types d'essais différents qui sont présentés 10 fois, chacune dans un ordre pseudorandomized. Ici, deux différentes intensités préimpulsion (75 dB et 85 dB) et deux intervalles différents interstimulus (ISIS, 30 et 100 ms) sont testées. Relance sursaut seuls essais et préimpulsion seuls essais sont intercalés. Ce bloc aurait 6x10 = 60 essais. Préimpulsions ya 4 ms impulsions de bruit blanc avec 0 temps de montée. Les variations de ce protocole consisterait à ITI variable, des intensités plus élevées de relance de sursaut, différentes intensités préimpulsion et / ou des durées, et les différents ISI entre préimpulsion et le pouls.

Figure 5
Figure 5. Exemple d'une fonction d'E / S. Les courbes d'entrée / sortie de 11 souris individuelles de la même souche sont affichés en gris. Dans ce cas, les amplitudes sursaut individuels varient considérablement (réactions effarouchées sont en unités arbitraires). La ligne noire indique les amplitudes moyennes de sursaut et erreurs standard à différentes intensités de stimulus sursaut. Ces souris ont atteint leur maximum de réaction de sursaut à environ 105 dB.

Figure 6
Figure 6. Exemple pour les données d'habituation à court terme. Typique courbe moyenne accoutumance à court terme de 20 souris est affiché. Amplitudes sursaut de chaque souris en réponse à des stimuli sursaut 30 ont été normalisées à la moyenne de ses deux premières réactions effarouchées dans les essais 1 et 2. Les données normalisées a ensuite été en moyenne sur les souris et l'erreur-type a été calculé.

Figure 7
Figure 7 Exemple de données PPI A:.. Données moyennes PPI de 8 souris est affiché. Les 10 essais sursaut seuls du bloc II ont été moyennées pour chaque souris et les moyennes des types d'essais d'autres exprimés en pourcentage du stimulus seuls amplitudes sursaut. La figure montre l'amplitude de sursaut sous différentes conditions préimpulsion. Deux différents Isis (30 et 100 ms) et deux différentes intensités préimpulsion (75 et 85 dB) ont été mesurés. B: Mêmes données que dans le A, mais tracées comme quantité d'IPP en pour cent du réflexe de sursaut de base. Les données présentées ci-dessus a été soustraite de 100. Ces souris ont montré un IPP maximum d'environ 50%. S'il vous plaît noter que le même protocole de rendement PPI dans la plupart des souches de rat d'environ 90%.

Figure 8
Figure 8 Exemple pour les données d'habituation à long terme A:.. Données moyennes LTH pour les 18 souris est affiché. Til a d'abord deux réponses sursaut dans le bloc I de chaque jour ont été en moyenne sur toutes les souris. Les barres de relativement grande erreur standard sont principalement causées par des différences dans l'amplitude de sursaut absolue entre chaque souris. B: normalisé amplitudes sursaut de 18 souris sur cinq jours. Afin de réduire le bruit, des groupes de 6 mois consécutifs réactions effarouchées dans le bloc I (30 stimuli) étaient toujours en moyenne par animal, résultant en cinq valeurs pour le bloc I, pour chaque animal et par jour. Ils ont été normalisées pour chaque animal à la première valeur de la première journée (100%). La moyenne sur l'ensemble des 18 animaux est affiché. Il montre STH au sein de chaque journée, ainsi que LTH à travers les cinq jours.

Discussion

Variations du protocole d'essai

Modulation des réactions effarouchées ont été étudiés depuis plusieurs décennies dans les humains et les animaux. Une grande variété de protocoles différents ont été utilisés dans le passé. Le protocole actuel est un test relativement court et facile à exécuter qui fonctionne bien chez les rongeurs, toutefois, selon le centre d'intérêt et les travaux antérieurs sur les questions respectives, il pourrait être utile de faire varier ce protocole en vue d'obtenir des données comparables aux précédentes études pertinentes. Une variation commune inclut l'ajout de plus préimpulsion intensités allant de 3 dB au-dessus du bruit de fond à 20 dB au-dessus du bruit. En outre, le bloc de l'accoutumance peut être divisé en un bloc court de stimuli 50-10 avant que le bloc IPP, plus un troisième bloc de stimuli 5-10 après le bloc PPI 18-20. Une étude approfondie de la littérature existante avant de concevoir un protocole de test est donc indispensable.

Les différences entre les espèces et les souches

Amplitudes réaction de sursaut et de la quantité d'accoutumance diffèrent considérablement entre les animaux unique de la même espèce et de la souche, alors que PPI semble être relativement stable. Souris ne se déplacent généralement plus (volontairement) pendant les essais, ce qui pourrait être l'une des raisons pour lesquelles leurs données ont généralement une plus grande variabilité que les données de rat. Souris ne s'habituent pas non plus ainsi que chez les rats. Différences entre la souris individuelles ou souches de rats peut être 21-24 énorme, et il pourrait être nécessaire d'adapter le paramètre de stimulation au comportement sursaut d'une souche spécifique afin d'obtenir des résultats optimaux. Il faut éviter d'utiliser le même équipement à tester les souris et les rats. Si elle est inévitable, le matériel devrait être nettoyé avec de l'éthanol.

Facteurs de gain

Parfois il ya des différences énormes dans les réponses individuelles sursaut dans un groupe. Afin de mesurer la PPI et l'accoutumance, la ligne de base ou de premier réactions effarouchées devrait être idéalement couvrant la majeure partie de la gamme dynamique du système de mesure. Dépassements sont nuisibles, car ils conduisent à une erreur systémique, généralement sous-estimer la quantité d'accoutumance ou IPP. Si réactions effarouchées sont trop petits, cependant, modulations peuvent être occultés par le bruit. Systèmes sursaut permettre l'ajustement d'un facteur de gain qui amplifie le signal plateforme. Facteurs de gain peut être ajusté en affichant deux ou trois stimuli sursaut pendant la session d'acclimatation dernière (gain = 1), cependant, il faut garder à l'esprit qu'ils modifier l'amplitude absolue sursaut de réponse et ne permettent donc pas d'une comparaison des amplitudes absolues sursaut plus. Afin d'éviter cet inconvénient, les trois réactions effarouchées qui sont utilisés pour les ajustements facteur de gain pourrait être utilisé pour déterminer l'ampleur sursaut de base. Alternativement, les facteurs de gain peut être réglée seulement après je bloque, alors que le bloc II réactions effarouchées couvrir la plupart de la gamme dynamique, tandis que le bloc I peuvent être utilisés pour déterminer la réaction de sursaut de base.

L'accoutumance de sensibilisation par rapport

L'accoutumance diminue les amplitudes réaction de sursaut. Ceci est contestée par une sensibilisation, ce qui conduit à une augmentation des réactions effarouchées sur présentation répétée 25. L'accoutumance et la sensibilisation sont deux processus indépendants qui affectent le même comportement 26. Afin de mesurer l'habituation, la sensibilisation doit être minimisée. Animaux de sensibiliser si un stimulus aversif est donc trop fort sursaut stimuli doivent être évités pour des mesures de l'habituation, pour revue, voir 27. Le stress, l'anxiété et la peur ne aussi augmenter réactions effarouchées 28, s'opposer à l'accoutumance et affecter PPI 18. Les animaux doivent donc être bien manipulés et acclimaté à l'appareil de test sursaut. En outre, les détenteurs d'animaux qui sont trop petites et restreindre physiquement les animaux sont contre-productives, car elles induisent un stress dans les 29 animaux.

Fixe par rapport randomisés IIT

Commune protocoles sursaut utiliser soit un fixe entre le procès d'intervalle (IIT) généralement de 20 ou 30 sec ou un intervalle variable qui pseudorandomizes sur des valeurs entre 15 et 30 sec. L'avantage d'un IIT randomisés réside dans le fait que l'animal ne peut pas prédire le point de temps de la stimulation suivante. Il a été démontré que l'attention, par exemple à l'préimpulsion augmente son efficacité dans la répression de réactions effarouchées 13, 30. Mesure PPI avec un ITI fixe peut donc aussi la sonde pour les processus d'attention. ITI-dessous de 15 secondes doit être évitée afin de prévenir les effets causés par la fatigue musculaire et les périodes réfractaires des réponses musculaires.

Intensité et durée de préimpulsion

Nous utilisons un préimpulsion très court de 4 ms dans ce protocole. De nombreuses autres études utilisent une 20 ms préimpulsion. Afin de pouvoir faire varier la InterVA interstimulusls (ISIS) et de mesurer aussi des intervalles très courts, ce court préimpulsion a été introduit. L'efficacité de l'préimpulsion semble être atténué par sa courte durée par rapport à une 20 ms préimpulsion du même volume. Nous utilisons donc préimpulsions relativement fort de 75 et 85 dB. Alors qu'un sursaut de relance de 85 dB (20 ms) peut être au-dessus du seuil, un 85 dB préimpulsion (4ms) n'a normalement pas d'obtenir des réponses sursaut. Cependant, il est important d'évaluer si il n'ya pas de réactions effarouchées suscité par le soi préimpulsion qui causerait une fatigue musculaire et les Etats réfractaires pendant la relance sursaut. Certains traitements qui perturbent PPI ont montré pour améliorer la sensibilité préimpulsion 31 (indiquant l'interruption PPI n'est pas due à une perte de sensibilité acoustique), cependant, cela ne pouvait pas être trouvé chez les patients schizophrènes 32 évaluations de la sensibilité préimpulsion peut se faire soit en analysant les données plate-forme dans la période entre préimpulsion ou sursaut d'impulsion ou en incluant des essais préimpulsion seuls dans le bloc II.

Différents ISI par rapport différentes intensités préimpulsion

IPP chez les humains était à l'origine mesurée à une ISI de 100 ms, où son effet est à son maximum de 7. Chez les rats et les souris PPI est à son maximum à 30-50 ms ISI, probablement en raison de la taille plus petite des 33 cerveaux. Ces dernières années il est devenu évident que les différents récepteurs émetteur et transmetteur sont engagés dans une manière de série afin d'exercer l'inhibition rapide mais durable du réflexe de sursaut 3, 34. Selon le système affecté, de drogues ou les manipulations génétiques pourraient donc affecter IPP qu'à spécifiques Isis. Nous recommandons donc varier l'ISI entre 30 et 100 ms. Cela permet aussi des études récentes pour être comparés à des études précédentes qui utilisaient seulement 100 ms ISI. Le 85dB préimpulsion conduit à une très robuste PPI maximum d'environ 90%. S'il vous plaît être conscient que ce PPI ne peut pas nécessairement être augmentée sans se heurter à un effet plafond. IPP induite de cette manière semble aussi être assez robuste, toutefois, il est fortement perturbée par exemple 1 mg / kg d'amphétamines. Nous vous recommandons d'utiliser un deuxième préimpulsion de 75 dB qui mène à 50-60% IPP seulement. Ce PPI peut être augmentée (par exemple 1 mg / kg de nicotine SC), et semble être plus vulnérables aux manipulations génétiques et pharmacologiques, en général, cependant, il semble aussi être plus variables et contradictoires au sein même d'un sujet. Des études antérieures ont utilisé une grande variété d'intensités et préimpulsion ont souvent montré des effets des traitements sur l'IPP avec des intensités et spécifiques préimpulsion aucune incidence sur l'IPP avec d'autres préimpulsion intensités. Des études approfondies de la littérature existante est donc indispensable avant de choisir préimpulsion intensités et intervalles interstimulus.

Combinaison avec des injections systémiques / stéréotaxique

L'accoutumance et PPI test est souvent réalisée en combinaison avec des injections systémiques ou stéréotaxique. Il est évident que dans ces expériences les animaux du groupe témoin reçoivent des injections de contrôle des véhicules. La procédure d'injection elle-même, cependant, pourrait être très stressant pour un animal, conduisant à un niveau élevé d'anxiété et une potentialisation et / ou la sensibilisation de la réaction de sursaut (voir ci-dessus). Il est donc recommandé de contrôler pour l'effet de la procédure d'injection elle-même aussi bien. Si l'accoutumance est étudié, injections avant pourrait être un obstacle majeur. Afin d'atténuer l'anxiété de l'animal, les animaux devraient être remis dans leur cage maison aussi longtemps que possible avant l'essai (sans la drogue se dissipe). Les injections doivent également être administré par une personne expérimentée, afin de minimiser l'impact de la procédure sur l'animal. Si les injections sont effectuées par stéréotaxie canules chroniquement implanté, le chirurgien qui implante les canules doivent éviter la rupture des tympans du rat avec les barres d'oreille pointue. Cela pourrait conduire à l'audition des déficits. Barres d'oreilles Blunt ou poignets oreille qui ne tympans rupture sont disponibles pour tous les dispositifs de stéréotaxie. Lorsque les rats sont traités après chirurgie, les capuchons ou des mannequins doit être manipulé à chaque fois, de sorte que les animaux s'habituent à elle.

Sursaut acoustique comme un test auditif

Enfin, il convient de noter que i / o des fonctions acoustiques sursaut et IPP peuvent servir de test auditif simple pour les rats et les souris 35-37. Déficits d'audition déplacement d'une fonction I / O à la droite. Une fois PPI est établi pour une souche de rats ou de souris, les animaux peuvent également être testés avec la variable préimpulsion intensités. Si un animal est sourd ou ne peut pas entendre la préimpulsion aussi fort comme un animal de contrôle, il affichera sans PPI ou moins que les animaux de contrôle. D'autre part, un déficit constaté PPI pourrait toujours être causée par une déficience auditive, donc un i / o test de surprendre ou de comparaisons des réactions effarouchées de base sont des contrôles essentiels.

Disclosures

La production de cet article a été partiellement financé par Med Associés, les fabricants de l'instrument utilisé dans cet article.

Acknowledgments

Ce travail a été financé par l'Ontario Mental Health Foundation, en sciences naturelles et en génie du Canada, and Associates Inc Med

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Startle box package Med Associates, Inc. MED-ASR-PRO1-ADD (http://www.med-associates.com/startle/startle.htm) Includes hardware & software
Animal Holder Med Associates, Inc. ENV-264A (http://www.med-associates.com/startle/startle.htm#animal) Other sizes and types also available
USB Sound Pressure Level Measurement Package Med Associates, Inc. ANL-929A-PC (http://www.med-associates.com/behavior/audio/generator.htm#anl929a) For calibration

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Davis, M. The mammalian startle response. Neural Mechanisms of startle. Eaton, R. C. , Plenum Press. New York. (1984).
  2. Koch, M. The neurobiology of startle. Prog Neurobiol. 59, 107-128 (1999).
  3. Fendt, M., Li, L., Yeomans, J. S. Brain stem circuits mediating prepulse inhibition of the startle reflex. Psychopharmacology (Berl). 156, 216-224 (2001).
  4. Davis, M., Wagner, A. R. Habituation of startle response under incremental sequence of stimulus intensities. J Comp Physiol Psychol. 67, 486-492 (1969).
  5. Pilz, P. K., Carl, T. D., Plappert, C. F. Habituation of the acoustic and the tactile startle responses in mice: two independent sensory processes. Behav Neurosci. 118, 975-983 (2004).
  6. Swerdlow, N. R., Geyer, M. A., Braff, D. L. Neural circuit regulation of prepulse inhibition of startle in the rat: current knowledge and future challenges. Psychopharmacology (Berl). 156, 194-215 (2001).
  7. Braff, D. L., Grillon, C., Geyer, M. A. Gating and habituation of the startle reflex in schizophrenic patients. Arch Gen Psychiatry. 49, 206-2015 (1992).
  8. van den Buuse, M. Modeling the positive symptoms of schizophrenia in genetically modified mice: pharmacology and methodology aspects. Schizophr Bull. 36, 246-270 (2010).
  9. Geyer, M. A. Are cross-species measures of sensorimotor gating useful for the discovery of procognitive cotreatments for schizophrenia? Dialogues Clin Neurosci. 8, 9-16 (2006).
  10. Fenton, W. S., Stover, E. L., Insel, T. R. Breaking the log-jam in treatment development for cognition in schizophrenia: NIMH perspective. Psychopharmacology (Berl). 169, 365-366 (2003).
  11. Braff, D. L., Geyer, M. A., Swerdlow, N. R. Human studies of prepulse inhibition of startle: normal subjects, patient groups, and pharmacological studies. Psychopharmacology (Berl). 156, 234-258 (2001).
  12. Kumari, V., Soni, W., Sharma, T. Normalization of information processing deficits in schizophrenia with clozapine. Am J Psychiatry. 156, 1046-1051 (1999).
  13. Weike, A. I., Bauer, U., Hamm, A. O. Effective neuroleptic medication removes prepulse inhibition deficits in schizophrenia patients. Biol Psychiatry. 47, 61-70 (2000).
  14. Swerdlow, N. R. Impaired prepulse inhibition of acoustic and tactile startle response in patients with Huntington's disease. J Neurol Neurosurg Psychiatry. 58, 192-200 (1995).
  15. Castellanos, F. X. Sensorimotor gating in boys with Tourette's syndrome and ADHD: preliminary results. Biol Psychiatry. 39, 33-41 (1996).
  16. Swerdlow, N. R. Forebrain D1 function and sensorimotor gating in rats: effects of D1 blockade, frontal lesions and dopamine denervation. Neurosci Lett. 402, 40-45 (2006).
  17. Cannizzaro, C. Prenatal exposure to diazepam and alprazolam, but not to zolpidem, affects behavioural stress reactivity in handling-naive and handling-habituated adult male rat progeny. Brain Res. 953, 170-180 (2002).
  18. Gururajan, A., Taylor, D. A., Malone, D. T. Effect of cannabidiol in a MK-801-rodent model of aspects of Schizophrenia. Behav Brain Res. 222, 299-308 (2011).
  19. Brosda, J. Pharmacological and parametrical investigation of prepulse inhibition of startle and prepulse elicited reactions in Wistar rats. Pharmacol Biochem Behav. 99, 22-28 (2011).
  20. Ballmaier, M. Cannabinoid receptor antagonists counteract sensorimotor gating deficits in the phencyclidine model of psychosis. Neuropsychopharmacology. 32, 2098-2107 (2007).
  21. Glowa, J. R., Hansen, C. T. Differences in response to an acoustic startle stimulus among forty-six rat strains. Behav Genet. 24, 79-84 (1994).
  22. Bullock, A. E. Inbred mouse strains differ in the regulation of startle and prepulse inhibition of the startle response. Behav Neurosci. 111, 1353-1360 (1997).
  23. Bast, T. Effects of MK801 and neuroleptics on prepulse inhibition: re-examination in two strains of rats. Pharmacol Biochem Behav. 67, 647-658 (2000).
  24. Buuse, M. vanden Deficient prepulse inhibition of acoustic startle in Hooded-Wistar rats compared with Sprague-Dawley rats. Clin Exp Pharmacol Physiol. 30, 254-261 (2003).
  25. Davis, M. Sensitization of the rat startle response by noise. J Comp Physiol Psychol. 87, 571-581 (1974).
  26. Groves, P. M., Thompson, R. F. Habituation: a dual-process theory. Psychol Rev. 77, 419-450 (1970).
  27. Grillon, C., Baas, J. A review of the modulation of the startle reflex by affective states and its application in psychiatry. Clin Neurophysiol. 114, 1557-1579 (2003).
  28. Davis, M., Walker, D. L., Myers, K. M. Role of the amygdala in fear extinction measured with potentiated startle. Ann N Y Acad Sci. 985, 218-232 (2003).
  29. Pare, W. P., Glavin, G. B. Restraint stress in biomedical research: a review. Neurosci Biobehav Rev. 10, 339-370 (1986).
  30. Li, L. Top-down modulation of prepulse inhibition of the startle reflex in humans and rats. Neurosci Biobehav Rev. 33, 1157-1167 (2009).
  31. Yee, B. K., Russig, H., Feldon, J. Apomorphine-induced prepulse inhibition disruption is associated with a paradoxical enhancement of prepulse stimulus reactivity. Neuropsychopharmacology. 29, 240-248 (2004).
  32. Csomor, P. A. Impaired prepulse inhibition and prepulse-elicited reactivity but intact reflex circuit excitability in unmedicated schizophrenia patients: a comparison with healthy subjects and medicated schizophrenia patients. Schizophr Bull. 35, 244-255 (2009).
  33. Yeomans, J. S. GABA receptors and prepulse inhibition of acoustic startle in mice and rats. Eur J Neurosci. 31, 2053-2061 (2010).
  34. Jones, C. K., Shannon, H. E. Effects of scopolamine in comparison with apomorphine and phencyclidine on prepulse inhibition in rats. Eur J Pharmacol. 391, 105-112 (2000).
  35. Clark, M. G. Impaired processing of complex auditory stimuli in rats with induced cerebrocortical microgyria: An animal model of developmental language disabilities. J Cogn Neurosci. 12, 828-839 (2000).
  36. McClure, M. M. Rapid auditory processing and learning deficits in rats with P1 versus P7 neonatal hypoxic-ischemic injury. Behav Brain Res. 172, 114-121 (2006).
  37. Fitch, R. H. Use of a modified prepulse inhibition paradigm to assess complex auditory discrimination in rodents. Brain Res Bull. 76, 1-7 (2008).

Tags

Neurosciences Numéro 55 réactions effarouchées rat souris filtrage sensoriel le filtrage sensorielle à court terme accoutumance habituation à long terme l'inhibition préimpulsion
Inhibition préimpulsion habituation et du réflexe de sursaut acoustique dans Rongeurs
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Valsamis, B., Schmid, S. Habituation More

Valsamis, B., Schmid, S. Habituation and Prepulse Inhibition of Acoustic Startle in Rodents. J. Vis. Exp. (55), e3446, doi:10.3791/3446 (2011).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter