Summary
توضح هذه المقالة في البروتوكول الموقع التهجين الأمثل للكشف colormetric التعبير الرنا الميكروي في الفورمالين أقسام الكلى ثابتة.
Abstract
في هذه المادة ونحن تصف طريقة للكشف اللونية من ميرنا في الكلى من خلال الموقع التهجين مع digoxigenin في المفتاحية تحقيقات الرنا الميكروي. هذا البروتوكول، وضعت أصلا من قبل Kloosterman وزملاؤه للاستخدام واسع النطاق مع تحقيقات Exiqon ميرنا 1، تم تعديل للتغلب على التحديات الكامنة في تحليل ميرنا في أنسجة الكلى. وتشمل هذه القضايا مثل تحديد هيكل والصعب إزالة التحقيق المتبقية والأجسام المضادة. استخدام رقيقة نسبيا، 5 مم، أقسام الأنسجة يسمح لتصور واضح لهياكل الكلى، في حين تم الإبقاء على إشارة قوية التحقيق في الخلايا. بالإضافة إلى ذلك، تم تحسين ظروف الاعتقال والتحقيق الحضانة لتسهيل التصور والتعبير microRNA مع انخفاض الخلفية وإشارة غير محددة. هنا، يتم وصف بروتوكول الأمثل، الذي يغطي مجموعة الأنسجة الأولية وإعداد من خلال تركيب الشرائح في نهاية الإجراء. وcompone الأساسيةاليلة من هذا البروتوكول يمكن تغييرها لتطبيقها على الأنسجة الأخرى ونماذج ثقافة الخلية.
Introduction
الرنا الميكروي صغيرة (حوالي 22 النيوكليوتيدات طويلة) غير المكودة الرنا التي يتم إنتاجها التطور الطبيعي. أنها تعمل عادة لقمع بروتين تعبير من خلال القمع متعدية أو تدهور مرنا. miRNAs ربط لأهداف مرنا مع التكامل غير مكتملة، مما يجعل من الممكن لميرنا واحدة لقمع أهداف متعددة.
فهم أي نوع من أنواع الخلايا والهياكل التعبير miRNAs هو جزء مهم من فهم الآليات التي من خلالها تغيرات في الخلية ميرنا التعبير وتأثير الظواهر الأنسجة. حين طرق مثل ميرنا التسلسل، QPCR والنشاف الشمالية يمكن استخدامها للكشف لل miRNAs في الأنسجة كله، لا يسمح هذا النهج واحد لتحديد أي نوع من الخلايا المحددة التي جاءت من داخل نسيج معين. تشريح المكونات الخلوية والهيكلية قبل التحليل باستخدام هذه الأساليب يمكن أن يكون صعبا للغاية والظروف اللازمة لتحقيق العزلة الكافية يمكن أن تؤدي إلى alterations في التعبير الجيني أو تدهور الرنا. الرنا الميكروي في الموقع التهجين هي الطريقة المستخدمة لتصور موقع الرنا الميكروي ومستويات التعبير في الأنسجة. هذا الأسلوب هو قيمة خاصة في الأنسجة تتكون من هياكل غير المتجانسة، مثل الكلى.
وقد ثبت MicroRNAs للعب دور تنظيمي في 2،3 التنمية الكلى ووظائف الأعضاء 4. كما تبين التعديلات التعبير microRNA أن تشارك مع أمراض الكلى مثل التليف 5-10، اعتلال الكلية السكري 7، سرطان الكلى 11،12، وإصابة الكلى الحاد 13. في بحثنا، وجدنا أن تحسين الرنا الميكروي الموقع التهجين للأنسجة الكلى في كان قيمة لتحديد المواقع الهيكلية الدقيق ميرنا التعبير في كل من الصحة والمرض 14. تحديد التعبير أنبوبي والخلوية من microRNAs مختلفة أمر مهم لأن تنظيمها من تاقد يكون rgets تعتمد على الوظائف الخلوية. في الدول المريضة من المهم أيضا لتحديد كيفية إحداث تغييرات في التعبير ميرنا قد تؤثر على وظيفة.
وكان الهدف من الطريقة الموصوفة هنا للبناء على منهجيات ISH القائمة التي وضعتها Kloosterman آخرون 15، 16،17 المحققين الآخرين، وتلك التي اقترحتها Exiqon 1 و تحسين طريقة لأنسجة الكلى الفورمالين الثابتة. وقد استخدمنا بنجاح هذا الأسلوب لتحديد الاختلافات الإقليمية المتميزة في الكلى التعبير الرنا الميكروي مير-382 مع جانب واحد انسداد الحالب 18. ويمكن استخدام هذا النهج مع الأنسجة الأخرى كذلك، مع التحسين إضافية.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
1. أقسام الكلى الأنسجة
- يتم قطع الثابتة الفورمالين (10٪) أقسام الكلى جزءا لا يتجزأ من البارافين على شرائح المجهر في سمك 5 ملم باستخدام ميكرومولار HM 355 S. ويمكن تخزين الشرائح لعدة أشهر قبل التحليل.
2. إعداد الحل
- تحضير 1 لتر من برنامج تلفزيوني 1X في DDH 2 O في أعلى زجاجة المسمار autoclavable. ملء زجاجة أخرى مع 1 لتر من DDH 2 O. إضافة 1 مل من DEPC إلى كل زجاجة، وغطاء ويهز بقوة. السماح للحلول الجلوس بين عشية وضحاها في درجة حرارة الغرفة لتدمير RNAses ثم الأوتوكلاف. إضافة 400 مل توين-L 20-1 من برنامج تلفزيوني 1X لجعل PBS-T.
- إعداد بروتين K العازلة (50 mMTris، حمض الهيدروكلوريك، ودرجة الحموضة 8.0 و 1 مم CaCl 2 في DEPC المياه المعالجة).
- تحضير محلول 0.2٪ الجلايسين في برنامج تلفزيوني-T.
3. إعداد الأنسجة
- إعداد كمية كبيرة من العازلة التهجين (50-100 مل) تتألف من 50٪ الفورماميد، 5X SSC، 0.1٪ توين، 9.2ملي حامض الستريك لتعديل درجة الحموضة إلى 6، 50 ميكروغرام / مل الهيبارين، و 500 ميكروغرام / مل الحمض النووي الريبي الخميرة في DEPC معاملة ده 2 O. تقسم إلى 1 مل مأخوذة وتخزينها في -80 درجة مئوية.
- إزالة البارافين من الأنسجة عن طريق غسل 3X في الزيلين الطازجة لمدة 5 دقائق لكل منهما.
- ترطيب أقسام الأنسجة بنسبة 5 دقيقة حضانات في خفض تركيزات الإيثانول (100٪، 75٪، 50٪، و 25٪) في DDH 2 O.
- علاج الشرائح مع ما يكفي من DEPC لتغطية كامل أقسام الأنسجة (حوالي 0.4-0.5 مل) لمدة 1 دقيقة. جعل متأكد من الأنسجة لا تجف.
- شطف الشرائح في DEPC معاملة PBS-T مرتين لمدة 5 دقائق، وجمع النفايات المحتوية DEPC للتخلص السليم. جميع الكواشف يجب DEPC المعالجة للقضاء على RNAses من هذه النقطة.
- Prewarm بروتين K العازلة وإضافة بروتين K إلى تركيز النهائي من 10 ميكروغرام / مل. تغطية أقسام الأنسجة مع الحل K بروتين واحتضان عند 37 درجة مئوية لمدة 5 دقائق.
- بسرعة إزالة proteinasه K الحل وإضافة 0.2٪ الجلايسين في برنامج تلفزيوني-T لمدة 30 ثانية.
- شطف الشرائح في DEPC معاملة PBS-T مرتين لمدة 30 ثانية لكل منهما.
- إصلاح المقاطع في تقدم طازجة بارافورمالدهيد 4٪ لمدة 10 دقيقة.
4. تهجين
- إضافة 50 ميكرولتر من العازلة التهجين (50٪ الفورماميد، 5X SSC، 0.1٪ توين، 9.2 ملي حمض الستريك لتعديل درجة الحموضة إلى 6، 50 ميكروغرام / مل الهيبارين، 500 ميكروغرام / مل الحمض النووي الريبي الخميرة) في قسم الأنسجة، وتغطي مع ريبونوكلياز HybriSlips مجانا مجرد قطع أكبر من أقسام الأنسجة.
- أقسام Prehybridize في الرطوبة تسيطر فرن التهجين لمدة 2 ساعة في درجة حرارة التهجين يحدد ل 'التحقيق 3 المسمى digoxigenin (عادة الحمض النووي تيم لجنة التحقيق -21 ° C، (أي 54 درجة مئوية لمدة مير 382، تحقيق DNA تيم = 75 ° C )، وذلك باستخدام مناديل مختبر الأنسجة غارقة في 50٪ formamide/50٪ 5X SSC للحفاظ على ترطيب الغرفة.
- تمييع التحقيق ميرنا، والسيطرة الايجابية (U6، RNA النووية الصغيرة) والسيطرة السلبية (تدافعتتسلسل) إلى 40 نانومتر في المنطقة العازلة التهجين (75 ميكرولتر من العازلة هو مطلوب في القسم).
- تسخين التحقيق في المخزن التهجين عند 65 درجة مئوية لمدة 5 دقائق.
- إزالة الشرائح من الفرن التهجين وإزالة coverslips والعازلة التهجين الزائدة من prehybridization.
- إضافة 75 ميكرولتر من العازلة التي تحتوي على التحقيق في قسم الأنسجة، مباشرة إلى الأنسجة. تغطية الأنسجة مع HybriSlips فقط كبيرة بما يكفي لتغطية أقسام الأنسجة.
- حفظ الشريحة مستوى حامل، والعودة إلى الفرن التهجين للحضانة بين عشية وضحاها في درجة حرارة من الخطوة 4.2 (حوالي 16 ساعة).
5. التشدد غسل
- إضافة 200 ميكرولتر 2X SSC، تسخينها إلى درجة حرارة التهجين، فقط تحت حافة واحدة لل coverslips للمساعدة في الافراج ساترة من الأنسجة. إزالة ساترة عن طريق إمالة الشريحة.
- تغسل الشرائح في 200 ميكرولتر من 50٪ الفورماميد، 50٪ 2X SSC في التهجين 3X درجة الحرارة لمدة 30 دقيقة لكل منهما.
- شطفالشرائح في برنامج تلفزيوني 5X-T في درجة حرارة الغرفة لمدة 5 دقائق كل يوم شاكر المداري على سرعة منخفضة.
6. كشف
- احتضان الشرائح في عرقلة العازلة (2٪ الماعز أو مصل الحصان، 2 ملغ / مل في برنامج تلفزيوني BSA-T) لمدة 1 ساعة في درجة حرارة الغرفة على شاكر المداري على سرعة منخفضة.
- تمييع شظايا مكافحة DIG-AP فاب في عرقلة العازلة في 1:100. إضافة 100 ميكرولتر في قسم الأنسجة، وتغطي مع HybriSlips مجرد قطع كبيرة بما يكفي لتغطية هذا الباب.
- احتضان الضد في غرفة ترطيب عند 4 درجات مئوية خلال الليل (حوالي 16 ساعة).
- تغسل الشرائح في برنامج تلفزيوني-T 7X، لمدة 5 دقائق كل يوم شاكر المداري على سرعة منخفضة.
- تغسل الشرائح العازلة في AP (100 ملي TrisHCl درجة الحموضة 9.5 و 50 ملي MgCl 2، 100MM كلوريد الصوديوم، 0.1٪ توين 20) 3X، لمدة 5 دقائق لكل منهما.
- إضافة الحل NBT / BCIP إلى عازلة AP (200 μl/10 العازلة مل)
- إضافة 400-500 مل من المخفف حل NBT / BCIP إلى كل شريحة لتغطية كامل جميع أقسام الأنسجة. تطوير في الظلام، ومستوى، humidifغرفة العبوات الناسفة لمدة 4-5 ساعة.
7. تصاعد الشرائح
- يذوى المقاطع في زيادة تركيزات الإيثانول (25٪، 50٪، 75٪، 100٪) لمدة 5 دقائق لكل منهما.
- احتضان في 5X الزيلين من أجل مسح المقاطع.
- جبل الشرائح في Permount تصاعد المتوسطة وبين عشية وضحاها الجافة.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
مجالات قسم الأنسجة التي تصبح جفت خلال التهجين، حضانات أو غسل الخطوات عموما في نهاية المطاف أكثر تلطيخ بحزن خلال تطوير NBT / BCIP. الشكل 1 يبين جزء من قسم الكلى الذي تراجع HybriSlip الخروج من حافة الأنسجة، والسماح لها لتصبح المجففة جزئيا. على الرغم الإماهة والتغطية في الخطوات المتبقية، إشارة في الجزء المجففة مرتفعة بشكل مصطنع.
ويتجلى على أهمية السيطرة على الوقت التنمية NBT-BCIP في أرقام 2A و 2B. فترات أطول من تطوير 4-5 نتيجة ساعة في تطوير وضوحا لون غير محدد في تدافعت مير السيطرة الأنسجة وبحث في جميع أنحاء (2A الشكل) الكلى. الكلى وبحث عن أهداف وفرة عالية، مثل الحمض النووي الريبي الصغيرة السيطرة U6 النووية، لا يحمل إشارات تحسن مع حضانات أطول من 4-5 ساعات (الشكل لدى عودتهم 2B).
ويتجلى مدى انطباق طريقة ISH الموصوفة هنا إلى الكشف عن ميرنا في أنسجة الكلى في الشكل 3، مستنسخة من شخصية Kriegel آخرون 18 في تلك الدراسة وجدنا أن من جانب واحد انسداد الحالب (UUO) الناجم عن زيادة ما يقرب من 3 أضعاف في QPCR الكشف عن مير 382 التعبير في نسيج الكلى المتجانس مقارنة صورية تعمل الحيوانات. تم حجب هذه الزيادة عن طريق الوريد تسليم المضادة للمير 382 (لا تظهر البيانات). وأشارت استخدام ISH على هذه الأنسجة الكلى التي كشف مير 382 المنصوص عليها في هذا التحقيق كان حساسا بما فيه الكفاية لتقديم نتائج قابلة للقياس الكمي، كان انعكاسا لتحليل التعبير QPCR القائمة. بالإضافة إلى ذلك، يسمح لنا ISH لقياس الاختلافات الإقليمية المتميزة في التعبير ميرنا داخل الكلى.
600px ل"/>
الشكل 1. تأثير الجفاف الجزئي لقسم الكلى الفئران خلال الخطوة التهجين. شريط المعايرة = 100 مم. اضغط هنا لمشاهدة صورة بشكل اكبر .
الشكل 2. الأمثل من مدة تطوير NBT / BCIP. السماح للتنمية NBT / BCIP أن يستمر لأكثر من ساعة 4-5 نتائج في تلوين الخلفية كبيرة في تدافعت مير سبر الأنسجة (الشكل 2A)، في الوقت الذي توفر أي تحسن إضافي في إشارة في مراقبة إيجابية، U6 عينات صغيرة الحمض النووي الريبي النووي بحثها (الشكل 2B). اضغط هنا لمشاهدةصورة أكبر.
الرقم 3. الصور ممثل مير 382 التعبير في أقسام الكلى الماوس التي حصلت عليها في الموقع التهجين. شريط المعايرة = 50 ميكرون. (B) مير 382 التعبير كنسبة مئوية من متوسط IOD الشام + المضادة للسارعت الفئران التي عولجت. تم تعديل هذا الرقم من Kriegel وآخرون، (الشكل 5)، الذي يصف تفاصيل مجموعات العلاج، والأساليب، والنتائج 18. مكافحة سارعت تعامل ن = 10/group؛ المضادة للمير 382 ن = 8/group؛ * تختلف كثيرا عن مكافحة سارعت الفئران التي عولجت مع نفس الجراحة (P <0.05)، # تختلف كثيرا عن صورية تعمل الحيوانات تلقي نفس المضادة مير العلاج. اضغط هنالمشاهدة صورة أكبر.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
كان الهدف من هذه المقالة لوصف بروتوكول لميرنا التهجين في الموقع الذي يعمل بشكل جيد في أنسجة الكلى الفورمالين الثابتة. بينما كان يعمل خارج هذا البروتوكول وقد تم تحديد العديد من المصادر المهمة للقطعة أثرية تلطيخ. يمكن الاهتمام الدقيق لهذه النقاط تساعد على تجنب تلطيخ قطعة أثرية وتزيد من احتمال تشغيل ISH ناجحة.
يمكن أن يحدث واحد من أكثر الأسباب التي يمكن تجنبها من القطع الأثرية تلطيخ عندما أقسام الأنسجة تصبح جفت خلال حضانات طويلة. عندما يحدث هذا الجزء من الأنسجة التي يصبح المجففة وصمة عار على نحو مظلم جدا خلال تطوير NBT / BCIP (الشكل 1). طوال هذا البروتوكول فمن الأهمية بمكان أن أقسام الأنسجة تبقى مغطاة بالكامل من قبل السائل في جميع حضانات والتي يتم الاحتفاظ الشرائح المستوى تماما. بالإضافة إلى ذلك، ينبغي للأقسام الأنسجة لا تزال مغطاة بالكامل من قبل HybriSlips خلال حضانات طويلة مثل الخطوات التهجين و حضانة الأجسام المضادة، للمساعدة في منع فقدان السوائل. إذا لوحظ التجفيف الجزئي أو الكامل للقسم الأنسجة فإنه من غير المحتمل أن العينات سوف تسفر تلطيخ الأمثل، والتي لن تسمح ميرنا التعبير يجب أن تفسر في تلك العينات.
خطوات أخرى في البروتوكول حيث التغطية السائل الأساسية هي خلال بروتين K الهضم وامتصاص العرق العلاج. هناك حاجة إلى هذا الهضم للسماح بوصول لجنة التحقيق ميرنا في الخلايا. إذا تغطية الأنسجة غير مكتملة خلال هذه الحضانة قصيرة، فإن المناطق التي لا تتعرض لعملية الهضم الانزيم لا تسمح بقدر التحقيق للدخول وربط، وصمة عار في نهاية المطاف لن كما بحزن عن غيرها من مناطق أخرى من الأنسجة. عند تطبيق هذا البروتوكول لأنواع الأنسجة الأخرى، قد تحتاج مدة K بروتين الهضم إلى أن يكون الأمثل. وبارافورمالدهيد التثبيت اللاحقة ضروري أيضا لمنع فقدان لل miRNAs التالية permeabilization.
الإقليم الشمالي "> مدة تطوير NBT / BCIP هو أيضا متغير مهم للسيطرة. وجدنا أن حضانات NBT / BCIP أطول من 4 أو 5 ساعة قطعة أثرية خلفية كبيرة تبدأ لتطوير في الأنسجة بحث مع تحقيقات السيطرة سارعت مير ( الشكل 2A). أربع ساعات التنمية NBT / BCIP كافية للكشف عن أهداف التحقيق أعرب في وفرة عالية نسبيا، مثل U6 صغيرة الحمض النووي الريبي السيطرة الايجابية (الشكل 2B). لا تظهر حضانات أطول للسماح إضافية التعبير مستوى منخفض ل يتم الكشف عن، بل هذا قد يؤدي ببساطة في زيادة القطع الأثرية الخلفية.هذا يؤدي إلى قضية هامة من الكشف لل miRNAs أعرب أقل. على الرغم من أننا قد وجدت تحقيقات مترافق digoxigenin 5 'لتزويدنا حساسية الكشف كافيا لطلباتنا في الكلى. يسمح للالفوسفاتيز القلوية التنمية القائمة على جزيئات اللون إشارة متعددة ليتم قياسها لمجموعة شرق افريقياح جزيء من التحقيق، ولكن بعض ميرنا مستوى منخفض لا يزال قد لا تكون قابلة للكشف. وقد وضعت Exiqon تحقيقات ميرنا التي وصفت على كل من 5 'و 3' ينتهي السماح لاحتمال ضعف التنمية في جزيء الرنا الميكروي اللونية. بينما مختبرنا لم تختبر هذه التحقيقات، وقد تم الإبلاغ عن استخدامها في أنسجة الكلى مع بروتوكول مماثل 8.
هذا البروتوكول الأساسية يمكن تكييفها لأنواع الأنسجة الأخرى وتحقيقات ميرنا عن طريق الاستفادة المثلى بروتين K الوقت الهضم، وتركيزات ميرنا التحقيق، ودرجات الحرارة التهجين، والأوقات التنمية NBT / BCIP. فمن الممكن أيضا استخدام الجزء الأول من البروتوكول بالاقتران مع الأجسام المضادة الفلورسنت في الأنسجة حيث تألق ذاتي منخفض بشكل مناسب.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
ليس هناك شيء في الكشف عنها.
Acknowledgments
وأيد هذا العمل من قبل المعاهد الوطنية الأميركية للصحة منح HL082798 HL111580 و.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Paraformaldehyde | Sigma | P6148 | |
| PBS | Gibco | 70011044 | |
| Diethyl Pyrocarbonate | Sigma | D5758 | |
| Tween-20 | Sigma | P1379 | |
| Xylenes | Sigma | 534056 | |
| Ethanol | Ultra Pure | 200CSPTP | |
| Tris-HCl | Life Technologies | 15506-017 | |
| CaCl2 | Sigma | C2536 | |
| Glycine | J.T. Baker | 4059-00 | |
| Citric Acid | Sigma | C2404 | |
| Formamide | Sigma | F9037 | |
| 20x SSC Buffer | Life Technologies | 15557-044 | |
| Heparin | SAGENT | 25021-400-30 | |
| Yeast RNA | Life Technologies | AM7118 | |
| MgCl2 | Sigma | M8266-1004 | |
| NaCl | J.T. Baker | 4058-01 | |
| Proteinase K | Fermentas | EO0491 | |
| 3’ DIG- miRNA probe | Exiqon | miR dependent-05 | |
| 3’ DIG- Scrambled miR probe | Exiqon | 99004-05 | |
| 3’ DIG- U6 miR probe | Exiqon | 99002-05 | |
| Anti-Digoxigenin-Ab Fab | Roche | 11093274910 | |
| NBT/BCIP | Roche | 11681451001 | |
| Permount | Fisher | SP15-500 | |
| Coverslips | Fisher | Fit to tissue size | |
| Microtom HM 355 S | Thermo Scientific | 23-900-672 | |
| In-slide Out Hybridization Oven | Boekel | 241000 | |
| Aluminum Tray Assembly | Boekel | C2403973 | |
| Stainless Steel Rack Insert | Boekel | C2403754 |
References
- Nagalakshmi, V. K., Ren, Q., Pugh, M. M., Valerius, M. T., McMahon, A. P., Yu, J. Dicer regulates thedevelopment of nephrogenic and ureteric compartments in the mammalian kidney. Kidney Int. 79 (3), 317-330 (2011).
- Ho, J., Pandey, P., Schatton, T., Sims-Lucas, S., Khalid, M., Frank, M. H., Hartwig, S., Kreidberg, J. A. The pro-apoptotic protein Bim is a MicroRNA target in kidney progenitors. J. Am. Soc. Neph. 22 (6), 1053-1063 (2011).
- Tian, Z., Greene, A. S., Pietrusz, J. L., Matus, I. R., Liang, M. MicroRNA-target pairs in the rat kidney identified by microRNA microarray, proteomic, and bioinformaticanalysis. Genome Res. 18 (3), 404-411 (2008).
- Mladinov, D., Liu, Y., Mattson, D. L., Liang, M. MicroRNAs contribute to the maintenance of cell-type-specific physiological characteristics: miR-192 targets Na+/K+-ATPase β1. Nucleic Acids Res. 41 (2), 1273-1283 (2013).
- Liu, Y., Taylor, N. E., Lu, L., Usa, K., Cowley, A. W., Ferreri, N. R., Yeo, N. C., Liang, M. Renal medullary microRNAs in Dahl salt-sensitive rats: miR-29b regulates several collagens and related genes. Hypertension. 55 (4), 974-982 (2010).
- Kato, M., Zhang, J., Wang, M., Lanting, L., Yuan, H., Rossi, J. J., Natarajan, R. MicroRNA-192 in diabetic kidney glomeruliand its function in TGF-b-induced collagen expression via inhibition of E-box repressors. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 104 (4), 3432-3437 (2007).
- Krupa, A., Jenkins, R., Luo, D. D., Lewis, A., Phillips, A., Fraser, D. Loss of microRNA-192 promotes fibrogenesis in diabetic nephropathy. J. Am. Soc. Neph. 21 (3), 438-447 (2010).
- Wang, B., Herman-Edelstein, M., Koh, P., Burns, W., Jandeleit-Dahm, K., Watson, A., Saleem, M., Goodall, G. J., Twigg, S. M., Cooper, M. E., Kantharidis, P. E-cadherin expression is regulated by miR-192/215 by a mechanism that is independent of the profibrotic effects of transforming growth factor-β. Diabetes. 59 (7), 1794-1802 (2010).
- Kato, M., Arce, L., Wang, M., Putta, S., Lanting, L., Natarajan, R. A microRNA circuit mediates transforming growth factor-β1 autoregulation in renal glomerular mesangial cells. Kidney Int. 80 (4), 358-368 (2011).
- Gottardo, F., Liu, C. G., Ferracin, M., Calin, G. A., Fassan, M., Bassi, P., Sevignani, C., Byrne, D., Negrini, M., Pagano, F., Gomella, L. G., Croce, C. M., Baffa, R. Micro-RNA profiling in kidney and bladder cancers. Urol. Oncol. 25 (5), 387-392 (2007).
- Juan, D., Alexe, G., Antes, T., Liu, H., Madabhushi, A., Delisi, C., Ganesan, S., Bhanot, G., Liou, L. S. Identification of a microRNA panel for clear-cell kidney cancer. Urol. 75 (4), 835-841 (2010).
- Xu, X., Kriegel, A. J., Liu, Y., Usa, K., Mladinov, D., Liu, H., Fang, Y., Ding, X., Liang, M. Delayed ischemic preconditioning contributes to renal protection by upregulation of miR-21. Kidney Int. 82 (11), 1167-1175 (2012).
- Kriegel, A. J., Mladinov, D., Liang, M. Translational study of microRNAs and its application in kidney disease and hypertension. 122 (10), 439-447 (2012).
- Kloosterman, W. P., Wienholds, E., de Bruijn, E., Kauppinen, S., Plasterk, R. H. In situ detection of miRNAs in animal embryos using LNA-moidified oligonucleotide probes. Nat. Methods. 3 (1), 27-29 (2006).
- Nelson, P. T., Baldwin, D. A., Kloosterman, W. P., Kauppinen, S., Plasterk, R. H., Mourelatos, Z. RAKE and LNA-ISH reveal microRNA expression and localization in archival human brain tissue. RNA. 12 (2), 187-191 (2006).
- Obernosterer, G., Martinez, J., Alenius, M. Locked nucleic acid-based in situ detection of microRNAs in mouse tissue sections. Nat. Protocols. 2 (6), 1508-1514 (2007).
- Kriegel, A. J., Liu, Y., Cohen, B., Usa, K., Liu, Y., Liang, M. MiR-382 targeting of kallikrein 5 contributes to renal inner medullary interstitial fibrosis. Physiol. Genomics. 44 (4), 259-267 (2012).
