Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
JoVE Journal Bioengineering
Click here for the English version

Bioengineering

光学检测 Published: November 20, 2013 doi: 10.3791/50805
Automatic Translation
*1, *2, 1,3
1Department of Biotechnology and Food Engineering, Technion - Israel Institute of Technology, 2The Inter-Departmental Program of Biotechnology, Technion - Israel Institute of Technology, 3The Russell Berrie Nanotechnology Institute, Technion - Israel Institute of Technology
* These authors contributed equally

Summary

一个无标记光学生物传感器快速检测细菌的介绍。该生物传感器是基于纳米结构的多孔硅，被设计成直接捕获目标细菌的细胞在其表面上。我们使用的单克隆抗体，固定在所述多孔性换能器，作为捕获探针。我们的研究表明这些生物传感器用于与事先没有样品处理（如细胞裂​​解）分钟内低细菌浓度的检测的适用性。

Abstract

基于纳米结构的多孔Si一种不用标记的光学生物传感器被设计为大肠杆菌 K12细菌的快速捕获和检测，作为一个模型的微生物。在生物传感器依赖于直接结合的靶细菌细胞在其表面上，同时研究了样品的无预处理（ 例如，通过细胞裂解）是必需的。的中孔硅薄膜被用作生物传感器的光学换能器元件。在白光照明下，多孔层显示在它的反射率光谱很好分辨的法布里 - 珀罗干涉条纹图样。应用快速傅立叶变换（FFT），以在一个单一的峰值反射率数据的结果。变化的FFT峰的强度进行监测。因此，目标捕捉细菌到生物传感器表面，通过抗体 - 抗原相互作用，诱导的FFT峰的强度可测量的变化，允许一个“实时”观察细菌附着。

NT“>介孔硅薄膜，通过电化学阳极氧化工艺制造，缀合的单克隆抗体，特异于靶细菌的固定化，免疫活性和抗体的特异性是由荧光标记的实验证实，一旦生物传感器暴露于靶细菌，细胞被直接捕获到的抗体修饰的多孔硅表面。这些特定的捕获事件导致在生物传感器的薄膜光学干涉光谱强度的变化。我们表明，这些生物传感器可以检测到相对低的细菌浓度（检测限制在不到一个小时10 4个细胞/ ml）。

Introduction

早期准确鉴定致病菌的是食物和水安全，环境监测，并点护理诊断1极为重要。由于传统的微生物学技术是费时，费力，缺乏检测微生物的“实时”或在实验室环境之外的能力，生物传感器不断发展，以应对这些挑战2-5。

近年来，在多孔硅（PSI）已经成为一种很有前途的平台，用于传感器和生物传感器6-20的设计。在过去的十年里许多关于PSI为基础的光学传感器和生物传感器的研究发表21,22。纳米结构PSI层典型地制作由单晶Si晶片电化学阳极蚀刻。所得到的PSI纳米材料表现出许多有利的特性，例如大的表面和自由体积，孔径大小，可控制和可调谐OPTI校准性能10,16。 PSI的层，例如光致发光8,11和白光反射型干涉7,19的光学特性，强烈受到环境条件的影响。捕获在多孔层产生的薄膜，观察到的光致发光光谱的调制或者作为反射率光谱10的波长偏移的平均折射率的变化范围内的客体分子/靶分析物。

尽管在PSI光学生物传感器技术的巨大创新，也只有在PSI的平台为细菌检测6,8,20,23-29报道很少。此外，大多数证明概念的这些研究已证实“间接”细菌检测。因此，该细胞的一般现有的裂解是必需的，提取该目标蛋白质/ DNA片段，特征为研究细菌29。我们的做法是直接捕捉目标细菌细胞到PSI生物传感器。因此，单克隆抗体，其特定于针对细菌，被固定在所述多孔表面上。通过抗体-抗原相互作用的结合细菌细胞的，固定在生物传感器的表面上引起的变化的反射光谱24-26的振幅（强度）。

在这项工作中，我们报告的光学PSI为基础的生物传感器的构造，并证明了其作为无标记生物传感平台， 大肠埃希氏菌的检测（ 大肠杆菌 ）K12菌（作为模型微生物），监控的应用光信号是从PSI纳米结构反映由于法布里-珀罗薄膜干涉（ 图1A）的光。改变光的振幅/强度是相关的，以在目标细菌细胞的特异性固定到生物传感器表面上，从而允许快速检测和细菌的定量。

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

1。氧化多孔SiO 2的制备

  1. 蚀刻Si晶片（单面抛光的<100>面与重掺杂的p型，0.0008Ω·cm的）在HF水溶液和无水乙醇中进行30秒的3:1（V / V）溶液在恒定电流密度为385毫安/厘米2。请注意，HF是高腐蚀性的液体，它应该格外小心。
  2. 冲洗所得的多孔Si（PSI）膜与无水乙醇的表面数次;干燥在干燥氮气气体的薄膜。
  3. 氧化在管式炉的新鲜蚀刻PSI的样品在800℃下1小时，在环境空气中（放置在炉中的样品在室温下，将炉子加热到800℃，在炉中离开1小时后，关掉炉，并从炉仅在室温下取出样品）。

2。的PSIO 2支架Biofunctionalization

  1. 孵育氧化PSI（防扩散安全倡议O 2）样品1小时的巯基（三甲氧基硅烷，3）95％（MPTS）溶液（108毫米的甲苯溶液）。
  2. 冲洗硅烷处理PSIO 2样品用甲苯，甲醇和丙酮;干燥在干燥氮气气体。
  3. 在1ml的100mM的PEO-碘代乙酰基生物素溶液孵育硅烷改性PSIO 2样品30分钟。
  4. 冲洗生物素-治疗PSIO 2样品用0.1M磷酸盐缓冲盐水（PBS）溶液数次。
  5. 在1ml的100微克/毫升链霉素（SA）溶液孵育生物素修饰的PSIO 2样品30分钟。
  6. 冲洗所述SA处理的PSIO 2样品用0.1M PBS溶液数次。
  7. 在1ml的100微克/毫升生物素化的大肠杆菌孵育所得的SA-改性PSIO 2样品30分钟大肠杆菌单克隆抗体（免疫球蛋白G，免疫球蛋白G）溶液或用100微克/毫升生物素化兔IgG（作为一种模式的单克隆抗体）。

3。荧光标记和荧光显微镜

  1. 孵育IgG的改性表面用15微克/毫升的荧光素（FITC）标记的抗兔IgG为40分钟，用15μg/ ml的荧光素（FITC）标记的抗小鼠IgG作为对照。
  2. 冲洗改性的样品用0.1M的PBS溶液数次。
  3. 检查在荧光显微镜下的样品。

4。细菌培养

  1. 培养大肠杆菌大肠杆菌 K12菌在一个10毫升管用5毫升的Luria BERTANI（LB）培养基中（在1升去离子水介质组合物5克氯化钠，5克酵母提取物的，和10克胰蛋白胨）中。孵育过夜细菌晃动在37°C
  2. 通过在600nm的波长的读取光密度（OD）监测细菌的浓度。在LB培养基中过夜生长后，使用分光光度计，以确定细菌浓度读取OD 600。细胞的数量是可怕CTLY成正比的OD 600测量结果（1 OD 600 = 10 8个细胞/ ml）。

5。细菌检测

  1. 将抗体修饰的PSIO 2利落PSIO 2（对照）在一个特制的有机玻璃流通池样品。固定流动池，以确保样品的反射率是在所有的测量测量是在同一地点。
  2. 孵育E.样本大肠杆菌 K12悬浮液（10 4细胞/毫升）处理30分钟，在室温下进行。然后通过冲洗的细胞用0.85％（重量）/ 30最小V生理盐水溶液中除去细菌悬浮液。
  3. 监测整个实验过程中的变化的反射率的数据。所有光学测量需要在周围的水性要进行。光谱应该使用CCD分光计收集并通过应用快速傅立叶变换（FFT），如前所述25,26进行分析。
  4. 确认细菌在存在生物传感器表面上，通过观察生物传感实验后，立即直立光学显微镜下的样本。

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

氧化PSI（PSIO 2）膜作为在协议文本部分中所述制备。 图1B示出的热氧化后得到的PSI膜的高分辨率扫描电子显微照片。该PSIO 2层的特征在于良好定义的圆柱形孔，其直径在30-80纳米的范围内。

的单克隆抗体（IgG）分子是通过使用一个完善的硅烷化技术，加上生物素-SA系统接枝到PSIO 2的表面。详细的合成方案在图2中所概述。首先，热氧化表面被硅烷化的MPTS，导致硫醇硅烷化的表面（ 图2c）。在下面的步骤中，活化的表面温育与SH反应性的生物素接头分子（ 图2d），然后连接该SA蛋白质的生物素修饰的表面通过生物 ​​素-SA桥图2e）。在生物传感器表面上的官能化的最后一个步骤涉及的生物素化的单克隆抗体的生物耦合到SA（ 图2F）。

该抗体对PSIO 2表面的附着是通过荧光标记随后在荧光显微镜下观察表面的证实。此外，荧光研究使我们能够通过结合的荧光标记的抗兔IgG和抗鼠IgG作为对照的表面固定化的抗体（兔IgG）的活性和抗原特异性进行表征。 图3总结了这些实验的结果。

为了证明细菌的生物传感，我们已经使用特定的大肠杆菌大肠杆菌抗体，而不是模型的IgG（兔IgG）。再次，该方法是监视光从PSIO 2 nanostr反映在振幅（强度）的变化ucture。在感测的实验中，生物传感器是固定在为了一个流动池，以确保该样品的反射率是在所有的测量测量是在同一地点。在整个实验是在潮湿的环境中和样品反射光谱是连续监测。的生物传感器暴露于大肠杆菌大肠杆菌 K12悬浮液（10 4个细胞/ ml）处理30分钟，在这之后的缓冲溶液用于洗涤该生物传感器表面（用于除去未附着的细菌）。生物传感器的之前和之后推出的E的FFT频谱杆菌细菌（10 4个细胞/ ml）示于图4a（上图）。因此，在暴露于E。杆菌细菌（以及随后的漂洗工序）的7±1％的强度降低被记录，同时不显着的改变（减少在FFT强度小于0.5％）被观察到的未改性PSIO 2面（ 图4B，上）。此外，在邻刻申确认捕获的细胞的存在到PSIO 2表面，所述生物传感器是立即完成的生物传感实验。 图4a（底部）显示固定化细菌细胞在生物传感器表面后在光学显微镜下观察到的，而没有细胞被观察到在未修改的表面（对照组）， 见图4B（底部）。

图1
图1（A）典型反射光谱典型的法布里-珀罗PSIO 2纳米结构（左）和相应的频谱下的快速傅里叶变换（右）。由此产生的单峰的位置和大小进行监控。 （B）横断面高分辨率的扫描电子显微照片（秒一个PSIO 2层（385毫安/厘米2蚀刻30秒）的次级电子）。

图2
的合成步骤如图2所示。示意图遵循biofunctionalize的PSIO 2表面的抗体（一 ）的阳极电化学蚀刻用于制备由单晶Si晶片的PSI层。 （二 ）将新鲜蚀刻样品进行热氧化，在800℃下（c）本PSIO 2面最初与MPTS反应，建立自由巯基面（激活PSIO 2片）。 （d）该活化膜具有PEO-碘代乙酰基的生物素，以产生生物素化的表面的孵化。生物素化的S（E）孵化urface与SA。 （ 六）培育与生物素化抗体的改性表面的。 点击这里查看大图 。

图3
图3的荧光标记实验的结果，以确认固定化抗体的活性和抗原特异性。的样品的荧光显微镜在一个恒定的曝光时间下观察。 （A） 的总生物标记，PSIO 2 + MPTS +生物素+ SA +生物素化的兔-IgG和FITC-抗兔IgG（B）对照实验用FITC-抗小鼠IgG，（C）对照实验中，没有IgG抗体，PSIO 2 + MPTS +生物素+ SA和FITC-抗兔IgG。

注：这些示意图是illustrat离子的目的只是作为抗体的结合也发生毛孔内。

图4
图4。E.大肠杆菌生物传感实验和实验后，立即生物传感器的相应的光学显微镜图像。该生物传感器孵育10 4个细胞/ ml的大肠杆菌菌悬液。说明：（ 一 ）IgG抗体修饰的PSIO 2，（B）整齐（未修改）PSIO 2。

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

一种不用标记的光学免疫传感器的基础上，PSIO 2纳米结构体（法布里-珀罗薄膜）的制造，并且其潜在适用性作为生物传感器用于细菌检测被确认。

修改和故障排除

一个设计免疫传感器时的主要关注是抗体的敏感性沉积和图案化期间经受不期望的构象变化到固体基板上，这可能导致在生物传感器灵敏度31,32下降。为了尽量减少这种问题，抗体的PSIO 2面共轭通过生物 ​​素-SA桥梁来完成。 SA以及生物素通常被用在许多生物技术应用中，由于其高结合亲和力（K d的〜10 -13 M）。生物素-SA链接的受体固定在实行生物传感器的发展10,32,33,34中最常见的化学1。固定化抗体的无障碍可通过生物 ​​素-SA反应，提供了固体表面与IgG的31,35之间的柔性连接来调节。因此，PSIO 2首先biofunctionalized用生物素/ SA，以允许生物素化的抗体的缀合到纳米结构。

该技术的局限性

这个生物传感方案的主要局限性是由于使用抗体作为细菌捕获元件。由于是与其他免疫传感器，我们被限制在具有可用的抗体，所用抗体的特异性和其稳定性36的检测指标。所用抗体的类型取决于特定的应用和尽可能的单克隆抗体是优选的。然而，尽管其特异性单克隆抗体提供的高度，低于1000个细胞/ ml的细菌全细胞的检测仍是一个挑战35。此外，涉及生产这些抗体的高费用，应予以考虑。

另一个限制是，在腐蚀/水环境中被氧化的PSI换能器的化学稳定性相关联。虽然，导通时长（数小时）的PSIO 2稳定性优于在比较PSI薄膜，仍流实验基线漂移可以观察14,15,21,24。此外，它是有利的，以变通的中性pH值（在6-8的范围内），以防止所述纳米结构的机械不稳定性。

当然，当与真正的食物或水的样品，其被细菌污染的处理，一个合适的预处理方法具有前向检测步骤加以考虑。预处理的设计应根据所研究的样品的具体特征。例如，编写程序，如分散，过滤，pH值巴枪等 ，可以考虑。然而，这些预处理技术超出了工作范围。

相对于现有方法的意义

迄今，检测和鉴定细菌污染的主要依靠传统微生物学培养技术或在微生物的快速技术，例如生化试剂盒，ELISA（酶联免疫吸附测定），和PCR（聚合酶链反应）测定2,3。这些方法费力，费时，并且需要数天才能获得的效果，因而''的水和食品安全实时''评估仍不可行2,4,5。在目前的工作中，我们展示的PSI为基础的生物传感器克服了这些技术的缺点的能力。本生物传感器允许简单和相对灵敏的检测细菌经由''直接细胞捕获''的方法，通过在其运算监测变化tical干扰频谱。我们的初步结果显示10 4个细胞/ ml的大肠杆菌检测下限大肠杆菌和几分钟的快速响应时间。为了进行比较，为国家的最先进的电流表面等离子体共振（SPR）生物传感器的检测限为10 2 -10 6细胞/毫升37-40的范围内。在响应时间方面，我们的生物传感器响应细菌曝光媲美的SPR技术。因此，这种生物传感方案的主要优势是检测和快速检测允许“实时”识别目标细菌的简单性。

未来的应用

几种方法目前正在探讨以提高检测限生物传感器的灵敏度和包括所述抗体浓度和取向的优化，而不是使用完整抗体的抗体片段。此外，我们正在研究贴切的潜力amers作为替代捕获探针。总之，这里提出的工作提供了一个通用的生物传感平台，它可以被转换为各种微生物的许多生物传感应用。

本协议中的关键步骤

为了实现生物传感器的最佳性能，这是非常重要的，以确认PSIO 2支架（见协议文本第3条，荧光标记和荧光显微镜）的biofunctionalization。荧光的研究使我们能够证实抗体的附着到换能器（PSIO 2）表面和荧光标记的抗兔IgG和抗鼠IgG来表征活性和所附的抗体的抗原特异性，通过结合作为控制。

此外，为了消除错误的结果中的光读出，有必要正确地冲洗生物传感器下面exposu的表面再对目标细菌（用于去除那些非特异性结合或驻留在表面上的细菌细胞），并有许多灵巧的PSIO 2进行对照实验。对照实验的重要性是针对非特异性细菌吸附消除在生物传感器表面（参见协议文本第5条，细菌检测）。

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

作者宣称没有竞争的财务权益。

Acknowledgments

这项工作是由以色列科学基金会（批准号：1118年至1108年，并批准号1146至1112年）和明娜克罗尔纪念研究基金的支持。 ES衷心感谢罗素贝里纳米技术研究所的资金支持。

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Si wafer Siltronix Corp. Highly-B-doped, p-type, 0.0008 Ω-cm resistivity, <100> oriented
Aqueous HF (48%) Merck 101513
Ethanol absolute Merck 818760
PBS buffer solution (pH 7.4) prepared by dissolving 50 mM Na2HPO4, 17 mM NaH2PO4, and 68 mM NaCl in Milli-Q water (18.2 MΩ)
Saline 0.85% w/v prepared by dissolving 0.85 g NaCl in 100 ml Milli-Q water (18.2 MΩ)
95% (3-Mercaptopropyl)trimethoxysilane (MPTS) Sigma Aldrich Chemicals 175617
PEO-iodoacetyl biotin Sigma Aldrich Chemicals B2059
Streptavidin (SA) Jackson ImmunoResearch Labs Inc. 016-000-114
Fluorescein (DTAF)-streptavidin Jackson ImmunoResearch Labs Inc. 016-010-084
Biotinylated-rabbit IgG Jackson ImmunoResearch Labs Inc. 011-060-003
Fluorescently tagged anti-rabbit IgG Jackson ImmunoResearch Labs Inc. 111-095-003
Fluorescently tagged anti-mouse IgG Jackson ImmunoResearch Labs Inc. 115-095-003
Biotinylated E. coli antibody Jackson ImmunoResearch Labs Inc. 1007
E. coli (K-12) was generously supplied by Prof. Sima Yaron, Technion

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Velusamy, V., et al. An overview of foodborne pathogen detection: In the perspective of biosensors. Biotechnol. Adv. 28 (2), 232-23 (2010).
  2. Food Microbiol.: Fundamentals and Front. Doyle, M. P., Beuchat, L. R., Montville, T. J. 2, ASM Press. Washington. (2001).
  3. Radke, S. M., Alocilja, E. C. A microfabricated biosensor for detecting foodborne bioterrorism agents. IEEE Sens. J. 5 (4), 744 (2005).
  4. Glynn, B., et al. Current and emerging molecular diagnostic technologies applicable to bacterial food safety. Int. J. of Dairy Technol. 59 (2), 126 (2006).
  5. Leonard, P., et al. Advances in biosensors for detection of pathogens in food and water. Enzyme Microb. Technol. 32 (1), 3 (2003).
  6. Alvarez, S. D., et al. Using a porous silicon photonic crystal for bacterial cell-based biosensing. Physica Status Solidi a-Applications and Materials Science. 204 (5), 1439 (2007).
  7. Archer, M., et al. Electrical porous silicon microarray for DNA hybridization detection. Micro- and Nanosystems. 782, 385 (2004).
  8. Chan, S., Horner, S. R., Fauchet, P. M., Miller, B. L. Identification of Gram Negative Bacteria Using Nanoscale Silicon Microcavities. J. Am. Chem. Soc. 123, 11797 (2001).
  9. Dancil, K. -P. S., Greiner, D. P., Sailor, M. J. Development of a Porous Silicon Based Biosensor. Canham, L. T., Sailor, M. J., Tanaka, K., Tsai, C. C. Proceedings of the Mat. Res. Soc. Symp, Boston, MA, 536, 557-562 (1999).
  10. D'Auria, S., et al. Nanostructured silicon-based biosensors for the selective identification of analytes of social interest. J Phys - Condens Matter. 18 (33), S2019 (2006).
  11. de Leon, S. B., et al. Neurons culturing and biophotonic sensing using porous silicon. Appl Phys Lett. 84 (22), 4361 (2004).
  12. Janshoff, A., et al. Macroporous p-type silicon Fabry-Perot layers. Fabrication, characterization, and applications in biosensing. J. Am. Chem. Soc. 120 (46), 12108 (1998).
  13. Orosco, M. M., Pacholski, C., Miskelly, G. M., Sailor, M. J. Protein-coated porous silicon photonic crystals for amplified optical detection of protease activity. Adv. Mater. 18, 1393 (2006).
  14. Pacholski, C., et al. Biosensing using porous silicon double-layer interferometers: reflective interferometric Fourier transform spectroscopy. J. Am. Chem. Soc. 127 (33), 11636 (2005).
  15. Pacholski, C., et al. Reflective Interferometric Fourier Transform Spectroscopy: A Self-Compensating Label-Free Immunosensor Using Double-layers of Porous SiO2. J. Am. Chem. Soc. 128, 4250 (2006).
  16. Sailor, M. J., Link, J. R. Smart Dust: nanostructured devices in a grain of sand. Chem. Comm. , 1375 (2005).
  17. Schwartz, M. P., Alvarez, S. D., Sailor, M. J. Porous SiO2 interferometric biosensor for quantitative determination of protein interactions: Binding of protein a to immunoglobulins derived from different species. Anal. Chem. 79 (1), 327 (2007).
  18. Schwartz, M. ichaelP., et al. The smart petri dish: A nanostructured photonic crystal for real-time monitoring of living cells. Langmuir. 22, 7084 (2006).
  19. Stewart, M. P., Buriak, J. M. Chemical and biological applications of porous silicon technology. Adv. Mater. 12 (12), 859 (2000).
  20. Zhang, D., Alocilja, E. C. Characterization of nanoporous silicon-based DNA biosensor for the detection of Salmonella enteritidis. IEEE Sens J. 8 (5-6), 775 (2008).
  21. Bonanno, L. M., Segal, E. Nanostructured porous silicon-polymer-based hybrids: from biosensing to drug delivery. Nanomedicine. 6 (10), 1755 (2011).
  22. Jane, A., Dronov, R., Hodges, A., Voelcker, N. H. Porous silicon biosensors on the advance. Trends Biotechnol. 27 (4), 230 (2009).
  23. Li, S., Huang, J., Cai, L. A porous silicon optical microcavity for sensitive bacteria detection. Nanotechnology. 22 (42), 425502 (2011).
  24. Massad-Ivanir, N., Shtenberg, G., Segal, E. Nano Bio-Technology for Biomedical and Diagnostics Research. Zahavy, E., Ordentlich, A., Yitzhaki, S., Shafferman, A. 733, Springer. Netherlands. (2012).
  25. Massad-Ivanir, N., et al. Engineering Nanostructured Porous SiO2 Surfaces for Bacteria Detection via "Direct Cell Capture". Anal. Chem. 83 (9), 3282-32 (2011).
  26. Massad-Ivanir, N., Shtenberg, G., Zeidman, T., Segal, E. Construction and characterization of porous SiO2/hydrogel hybrids as optical biosensors for rapid detection of bacteria. Adv Funct Mater. 20 (14), 2269-22 (2010).
  27. Mathew, F. P., Alocilja, E. C. Porous silicon-based biosensor for pathogen detection. Biosens. Bioelectron. 20 (8), 1656 (2005).
  28. Ouyang, H., Archer, M., Fauchet, P. M. Frontiers in Surface Nanophotonics. 133, 49 (2007).
  29. Ouyang, H., DeLouise, L. A., Miller, B. L., Fauchet, P. M. Label-free quantitative detection of protein using macroporous silicon photonic bandgap biosensors. Anal. Chem. 79 (4), 1502-15 (2007).
  30. Hermanson, G. T. Bioconjugate Techniques. , 1st, Academic Press. (1996).
  31. Piervincenzi, R. T., Reichert, W. M., Hellinga, H. W. Genetic engineering of a single-chain antibody fragment for surface immobilization in an optical biosensor. Biosensors and Bioelectronics. 13 (3-4), 305 (1998).
  32. Saerens, D., Huang, L., Bonroy, K., Muyldermans, S. Antibody Fragments as Probe in Biosensor Development. Sensors. 8 (8), 4669 (2008).
  33. Shtenberg, G., et al. Picking up the Pieces: A Generic Porous Si Biosensor for Probing the Proteolytic Products of Enzymes. Anal. Chem. 85 (3), 1951 (2013).
  34. Bonanno, L. M., DeLouise, L. A. Steric Crowding Effects on Target Detection in an Affinity Biosensor. Langmuir. 23 (10), 5817 (2007).
  35. Banada, P. P., Bhunia, A. K. Principles of Bacterial Detection: Biosensors, Recognition Receptors and Microsystems. Mohammed, E., Zourob, S., Turner, A. P. F. , Springer. 567 (2008).
  36. Poma, A., Whitcombe, M., Piletsky, S. Designing receptores for the next generation of biosensors. Whitcombe, M. J., Piletsky, S. A. , Springer. 105 (2013).
  37. Dudak, F. C., Boyaci, I. H. Development of an immunosensor based on surface plasmon resonance for enumeration of Escherichia coli in water samples. Food Res. Int. 40 (7), 803 (2007).
  38. Dudak, F. C., Boyaci, I. H. Rapid and label-free bacteria detection by surface plasmon resonance (SPR) biosensors. Biotechn J. 4 (7), 1003 (2009).
  39. Skottrup, P. D., Nicolaisen, M., Justesen, A. F. Towards on-site pathogen detection using antibody-based sensors. Biosens. Bioelectron. 24 (3), 339 (2008).
  40. Taylor, A. D., Ladd, J., Homola, J., Jiang, S. Principles of Bacterial Detection: Biosensors, Recognition Receptors and Microsystems. , Springer. 83 (2008).

Tags

生物工程，第81，分析化学，硅材料，微生物学，光学材料，多孔硅，光学生物传感器中，检测细菌，无标记生物传感器，纳米结构，
光学检测<em&gt; E。大肠杆菌</em&gt;由细菌介孔硅生物传感器
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Massad-Ivanir, N., Shtenberg, G.,… More

Massad-Ivanir, N., Shtenberg, G., Segal, E. Optical Detection of E. coli Bacteria by Mesoporous Silicon Biosensors. J. Vis. Exp. (81), e50805, doi:10.3791/50805 (2013).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter