Tassi di mutazione nei giovani Saccharomyces cerevisiae cellule misurati mediante test di fluttuazione vengono utilizzati per prevedere le frequenze di mutazione di cellule madri di età diverse replicative. Ordinamento magnetico e citometria a flusso vengono poi utilizzati per misurare le frequenze di mutazione effettivi e l'età delle cellule madri per individuare eventuali scostamenti dalle frequenze di mutazione previste.
Saccharomyces cerevisiae è stato un ottimo sistema modello per l'esame dei meccanismi e delle conseguenze di instabilità del genoma. Le informazioni ottenute da questo modello di lievito è rilevante per molti organismi, compresi gli esseri umani, dal momento che i fattori di riparazione del DNA e di risposta danno al DNA sono ben conservati tra le specie diverse. Tuttavia, S. cerevisiae non è stata ancora utilizzata per affrontare pienamente se il tasso di accumulare mutazioni cambia con l'aumentare replicativa (mitosi) età a causa di vincoli tecnici. Ad esempio, le misure di lievito durata replicativa tramite micromanipolazione coinvolgono molto piccole popolazioni di cellule, che vietano la rilevazione di mutazioni rare. Sono stati sviluppati metodi genetici per arricchire di cellule madri nelle popolazioni inducendo la morte delle cellule figlie, ma le dimensioni della popolazione sono ancora limitati dalla frequenza con cui si verificano mutazioni casuali che compromettono i sistemi di selezione. Il protocollo attuale si avvale di Sorti magneticong di cellule madri lievito superficie marcato per ottenere abbastanza grandi popolazioni di invecchiamento cellule madri di quantificare mutazioni rare le selezioni fenotipiche. Tassi di mutazione, misurata attraverso test di fluttuazione, e le frequenze di mutazione sono in primo luogo stabilito per i giovani e le cellule utilizzati per predire la frequenza delle mutazioni in cellule madri di varie età replicative. Frequenze di mutazione sono poi determinati per cellule madri ordinati, e l'età delle cellule madri è determinata in citometria a flusso da colorazione con un reagente fluorescente che rileva cicatrici gemma formate sulla loro superficie delle cellule durante la divisione cellulare. Confronto delle frequenze di mutazione previste in base al numero di divisioni cellulari alle frequenze osservate sperimentalmente per le cellule madri di una determinata età replicativa può quindi identificare se ci sono cambiamenti legati all'età nel tasso di mutazioni si accumulano. Variazioni di questo protocollo di base forniscono i mezzi per studiare l'influenza delle alterazioni nelle funzioni geniche specifiche ocondizioni ambientali specifiche in materia di accumulo mutazione ad affrontare i meccanismi alla base del genoma instabilità durante l'invecchiamento replicativo.
I microrganismi, come il lievito Saccharomyces cerevisiae, sono ottimi modelli per indagare tassi di mutazione, ma questi modelli non sono stati pienamente utilizzati per studiare l'accumulo di mutazioni durante l'invecchiamento mitotica delle cellule. L'accumulo di mutazioni nel genoma nucleare è stato ipotizzato di contribuire all'invecchiamento dal conseguente progressiva perdita di (o variazione) funzioni geniche 1. La possibilità di utilizzare un sistema microbico per studiare i meccanismi e le conseguenze di accumulo di mutazioni durante l'invecchiamento potrebbe accelerare notevolmente l'identificazione di fattori genetici e ambientali che influenzano questo processo, a causa dei sistemi genetici facili e la facilità di quantificare rari cambiamenti fenotipici in microrganismi. Fattori di riparazione del DNA e le proteine di risposta di danno del DNA sono ben conservati tra le specie diverse 2, e similitudini fondamentali dell'invecchiamento organismal sono stati individuati per gli organismi diversi come S. cerevisiae und mammiferi 3, il che rende probabile che i risultati ottenuti da studi in lievito saranno rilevanti per l'invecchiamento in molti organismi.
Studi di affinamento in S. cerevisiae fare uso di due modelli di invecchiamento che misurano l'invecchiamento cronologico o invecchiamento replicativo delle cellule. Invecchiamento cronologico è caratterizzata dalla progressiva perdita di vitalità in popolazioni di cellule di lievito che si trovano in uno stato (fase stazionaria) non-dividendo a causa di esaurimento degli elementi nutritivi 3. Il modello di invecchiamento cronologico è stato utilizzato per dimostrare che le mutazioni si accumulano con l'aumentare di 4 anni, dal momento che le popolazioni di cellule di grandi dimensioni sono facilmente ottenuti in questo modello per eseguire le selezioni fenotipiche di cellule mutanti. In questo caso, l'accumulo di mutazione sembra essere influenzato da percorsi di crescita di segnalazione e di stress ossidativo 5, e ciascuno di questi fattori è rilevante per la comprensione dell'invecchiamento negli eucarioti multicellulari 3. Il modello di invecchiamento replicativo sfrutta l'divisi asimmetricaon tra S. madre e figlia cellule cerevisiae per indagare l'invecchiamento che si verifica con le generazioni di cellule successive 3. Lievito invecchiamento replicativo è stata spesso misurata attraverso la micromanipolazione di piccole popolazioni di madre e cellule figlie, o, più recentemente, attraverso il video microscopio di piccole popolazioni di cellule di lievito in dispositivi microfluidici 6,7. Dimensioni della popolazione limitati rendono questi approcci poco adatta per indagare l'accumulo di mutazioni durante l'invecchiamento mitotico a meno che le informazioni dell'intero genoma è ottenuto da cellule singole o cambiamenti genetici molto ad alta frequenza sono misurati 8. Whole-sequenziamento del genoma di singole cellule fornisce set di dati sostanziali per indagare l'accumulo di mutazione, ma sistemi di selezione fenotipica hanno l'importante vantaggio di fornire un mezzo per misurare i tassi di mutazione per studiare i meccanismi alla base di accumulo mutazione. Studi per esaminare le frequenze di mutazione e tariffe attraverso selezioni fenotipiche in haploinon sono ancora stati segnalati ceppi di lievito d durante l'invecchiamento replicativo.
Tassi di mutazione sono comunemente misurati mediante test di fluttuazione 9. Valori di frequenza di mutazione riflettono il numero totale di cellule che ospitano una mutazione in una sequenza genica in una popolazione. Questo include celle in cui si verificano mutazioni indipendenti e tutte le progenie di quelle cellule che semplicemente ereditano mutazioni preesistenti. Al contrario, i tassi di mutazione misurati mediante test di fluttuazione rappresentano il numero di mutazioni indipendenti che di recente si presentano con ogni generazione cellulare. Questi test coinvolgono tipicamente inoculando molte culture ripetute a densità cellulari bassa per ridurre la probabilità di aggiunta di cellule con preesistenti mutazioni in una sequenza bersaglio, in crescita le culture nei pressi di saturazione, e identificare le cellule mutanti dalla crescita su terreno selettivo. Il numero di cellule mutanti identificati nelle popolazioni replicati vengono poi utilizzati in uno dei diversi modelli matematici per stimare il numero di imutazioni INDIPENDENTI sorti durante la crescita 9. Confrontando il numero di mutazioni indipendenti per la dimensione media della popolazione fornisce una misura del tasso di mutazione. In S. cerevisiae, frequenze di mutazione e le tariffe sono spesso misurata utilizzando i geni URA3 e CAN1, poiché la perdita-di-funzione mutazioni in questi geni producono fenotipi selezionabili. La perdita della funzione URA3 rende le cellule resistenti a 5-fluoroorotic acido (5-FOA), poiché la proteina codificata da URA3 converte 5-FOA in una molecola tossica 10. La perdita della funzione di CAN1 permette alle cellule di diventare resistente ad canavanina, un analogo arginina tossico, dal momento che la proteina codificata da CAN1 trasporta arginina e canavanina in cellule 11.
Entrambe le strategie di ordinamento genetici e fisici sono stati impiegati con successo per ottenere più grandi popolazioni di S. cellule madri cerevisiae che facilitano le indagini di invecchiamento replicativo. Strategie genetici includono approcci intelligenti che selezionano contro la sopravvivenza cellula figlia in una popolazione. Il programma di arricchimento madre (MEP) comporta l'induzione beta-estradiolo di espressione ricombinasi Cre solo nelle cellule figlie, che porta alla rottura specifico-figlia di due geni essenziali che sono stati progettati per contenere siti loxP 12. Ceppi MEP possono essere coltivate normalmente in assenza dell'induttore, ma solo le cellule madri continueranno a dividersi dopo induzione, mentre cellule figlie arresteranno a M-fase tipicamente durante il primo progressione attraverso il ciclo cellulare 12. Anche se questo sistema non è stato utilizzato per studiare ampiamente accumulo mutazione durante l'invecchiamento, è stato utilizzato per studiare la perdita di eterozigosi, una forma relativamente frequente di instabilità del genoma in ceppi di lievito diploidi, così come i cambiamenti biochimici nelle cellule madri invecchiamento 13,14. Allo stesso modo, il sistema di figlia-scaricatore comporta-specifico espressione figlia del S. cerevisiae URA3 gene 15. Ceppi Figlia-scaricatore crescono normalmente fino a 5-FOA viene aggiunto al mezzo, in cui le cellule che esprimono URA3 punto figlie moriranno, mentre le cellule madri continuano a crescere 15. Sono sistemi utili per arricchire di cellule madri, ma dipendono mantenimento delle funzioni geniche che costituiscono il sistema di selezione. Mutazioni casuali in uno o più componenti del sistema di selezione potrebbe tradursi in cellule figlie che sfuggono la selezione e proliferano in maniera esponenziale. Durante lo sviluppo dei ceppi MEP, le dimensioni della popolazione appropriate erano determinati a evitare la comparsa di cellule figlie mutanti che potrebbero sfuggire la selezione 12. Tuttavia, questo limite di dimensione della popolazione compromette l'individuazione di forme rare di genoma instabilità durante l'invecchiamento replicativo. Questa restrizione sulla dimensione della popolazione potrebbe essere in parte superato utilizzando ceppi di lievito diploidi con due copie di ogni gene contribuisce al sistema di selezione, poiché la maggior partemutazioni sarebbero probabilmente recessivo 12. Tuttavia, l'uso di ceppi diploidi vincola i tipi di eventi mutazionali che possono essere facilmente rilevabili rispetto a quelli che possono essere facilmente individuati in cellule di lievito aploidi.
Strategie fisiche smistamento comprendono l'isolamento di cellule madri con una superficie cellulare etichettata cellule figlie senza etichetta per arricchire di grandi popolazioni di cellule madri. L'osservazione che le proteine della superficie cellulare (proteine di parete) di S. cellule figlie cerevisiae sono state recentemente sintetizzate durante germogliamento è stato sfruttato per etichettare le cellule madri senza etichettare le cellule figlie che producono 16. Per esempio, una popolazione iniziale di cellule di lievito etichettati sulla loro superficie con biotina può coltivare e poi isolata dal loro cellule figlie utilizzando microsfere anti-biotina e magnetico smistamento 16 perché le cellule figlie generate dalla popolazione iniziale non conterranno biotina sulla loro superficie . Crescita seriale eordinamento consente popolazioni progressivamente più vecchie di cellule madri di ottenere e analizzati. Questa procedura è stata utilizzata con successo per esaminare i cambiamenti nella fisiologia cellulare e l'espressione genica durante l'invecchiamento replicativo di lievito 13,14,17,18. Il metodo attuale si adatta questa etichettatura biotina e cernita magnetica per arricchire di cellule madri con lo scopo di misurare l'accumulo di mutazioni potenzialmente rare o di altre forme di instabilità del genoma analizzati attraverso selezioni fenotipiche. Crescita seriale e smistamento fisica consentono l'analisi di accumulo di mutazioni in cellule madri progressivamente più anziani, così come nelle loro popolazioni di cellule figlie. Determinazione dei tassi di mutazione per generazione consente una frequenza di mutazione previsto da calcolare per le cellule madri che hanno subito un particolare numero di divisioni cellulari. Poiché i valori di frequenza attesi sono basati sul previsto aumento a causa di turni aggiuntivi di divisione cellulare, scostamenti sostanziali nei mutati osservatisu frequenze rispetto ai valori previsti fornire la prova per le modifiche specifiche per età del tasso di mutazioni si accumulano. Usando questo protocollo, colorazione fluorescente di cicatrici gemma che corrispondono ai siti di divisioni cellulari in cellule madri accoppiate con l'analisi mediante citometria a flusso può essere utilizzato per determinare rapidamente la distribuzione per età delle popolazioni ordinati e non ordinati. Reagenti fluorescenti aggiuntivi, come ad esempio quelli utilizzati per il rilevamento di specie reattive dell'ossigeno, possono essere utilizzati anche durante questo protocollo. Nel complesso, questo protocollo consente l'analisi efficiente dei cambiamenti età-dipendenti genoma instabilità con il potenziale di correlazione legate all'età cellulari cambiamenti fisiologici in un organismo modello ben si adatta allo studio dei fattori genetici e ambientali che influenzano l'instabilità del genoma di invecchiamento legati.
Questo protocollo combina diversi metodi per attivare risorse e approcci disponibili in Saccharomyces cerevisiae sistema modello da applicare efficacemente allo studio del genoma instabilità durante l'invecchiamento cellulare mitotica. Una vasta gamma di test per quantificare le diverse forme di instabilità del genoma attraverso la selezione fenotipica può essere combinato con l'ordinamento magnetica per studiare i possibili cambiamenti età-specifici in accumulo di particolari forme di mutazioni o riarrangiamenti cromosomici. Mentre gli approcci di sequenziamento dell'intero genoma potrebbero fornire maggiori informazioni sui tipi generali di cambiamenti che si verificano in un genoma con l'età, la possibilità di utilizzare sistemi di selezione fenotipica di ottenere misurazioni dei tassi di mutazione e di isolare preferenzialmente specifici tipi di cambiamenti genetici sono importanti vantaggi per lo studio meccanicistico aspetti di legati all'invecchiamento genoma instabilità. Razionalizzazione della determinazione dell'età cellulare e la possibilità di effettuare misurazioni parallele di physiologimodifiche cal tramite citometria a flusso forniscono mezzi efficaci per correlare l'instabilità del genoma con altri cambiamenti cellulari durante fasce di età specifiche. Determinazione dei potenziali cambiamenti età-dipendenti dei tassi di mutazioni si accumulano richiede: 1) la determinazione accurata dei tassi in popolazioni di cellule giovani, 2) la determinazione precisa dell'età delle cellule, e 3) la capacità di arricchire in modo affidabile sufficientemente grandi popolazioni di cellule madri per misurare riproducibile instabilità del genoma in età avanzata. Questo approccio permette al sistema modello di lievito di contribuire a definire meccanismi alla base di responsabili dei cambiamenti età-dipendente dei tassi e / o frequenze di instabilità del genoma nelle cellule mitoticamente attive. Inoltre, fattori genetici e ambientali possono essere rapidamente valutati per contributi a età-dipendente genoma instabilità. In ultima analisi, queste caratterizzazioni potrebbero portare allo sviluppo di modelli che rappresentano il modo in cui le mutazioni si accumulano durante l'invecchiamento replicativo.
Questo metodo dipende dalla capacità di rilevare mutazioni o altri tipi di instabilità del genoma attraverso la comparsa di fenotipi selezionabili per misurare i tassi di tali eventi. Tuttavia, la creatività nella progettazione di test può permettere molti aspetti del genoma instabilità per essere esaminati. Ad esempio, il URA3 e geni CAN1 possono essere collocati in differenti siti genomici per verificare eventuali influenze della posizione genomica sui risultati. Reversion di specifici alleli del gene non-funzionali alleli di geni funzionali potuto testare particolari processi mutazionali. Inoltre, l'introduzione di molteplici alleli inattivi di un gene o di accompagnamento di un gene con sequenze ripetute potrebbe essere usato per esaminare gli eventi di ricombinazione attraverso il restauro o la perdita di funzione del gene, rispettivamente. Test di fluttuazione sono l'approccio standard per determinare i tassi di questi vari eventi genoma instabilità 9. Il protocollo è scritto usando lo stimatore mediana Lea-Coulson ben accettato e relativamente semplice per determinare mutatasso zione per renderlo più accessibile ai diversi ricercatori, anche se il metodo MSS-stimatore di massima verosimiglianza è considerato il metodo migliore per determinare i tassi di mutazione 9. Lo stimatore di massima verosimiglianza-MSS è stato già recensito in dettaglio 9, e può essere utilizzato come metodo alternativo, ma richiede calcoli più sofisticati. In alternativa, il software gratuito per calcolare i tassi di mutazione con questo metodo è stato messo a disposizione 22. Ottenere misure riproducibili su tassi di mutazione richiede attenzione ad alcuni aspetti del disegno sperimentale, compreso l'uso di colture replicate sufficienti, inoculando colture a bassa densità sufficiente di cellule iniziali che taglia la popolazione aumenta di adeguati volumi di coltura di 10.000 volte o più, e scegliendo in modo che l'intera popolazione di cellule può essere diffuso su terreno selettivo. Per quest'ultimo punto, una formula precedentemente descritta può essere utilizzata per regolare il tasso di mutazione basata sulla frazione di cultura tested 9. Variazione del tasso di crescita delle culture può complicare la determinazione di un tasso di mutazione riproducibile, e uno stimatore basato mediana-modificato che può produrre risultati più riproducibili in tali situazioni è stata recentemente descritta 23.
La possibilità di misurare con precisione l'età delle cellule è un altro fattore che è importante per stabilire se le frequenze genoma instabilità in vecchie cellule sono diversi dai valori attesi a causa del tasso di eventi nelle cellule giovani. Abbiamo trovato WGA colorazione sia preferibile calcofluor colorazione bianca, sia in termini di background e flessibilità, poiché WGA è disponibile coniugato con molecole fluorescenti differenti. Questa flessibilità può offrire maggiori opportunità per la misurazione simultanea di altre caratteristiche cellulari con i reagenti fluorescenti. Il lavoro iniziale per stabilire un rapporto tra l'intensità del segnale per la colorazione WGA e il corrispondente numero di cicatrici gemma su cellule possono poi portare ad una piùrapida determinazione dell'età cellulare attraverso citometria a flusso. Questo approccio consente anche l'uso delle dimensioni delle popolazioni più grandi di quanto sarebbe normalmente esaminati al microscopio per una migliore riproducibilità delle misurazioni. Mentre tutte le determinazioni età potrebbe essere fatto attraverso l'esame microscopico delle cellule, riteniamo che la citometria a flusso approccio facilita screening rapido di fattori che influenzano l'età-dipendente genoma instabilità.
Oltre a misurare l'età delle cellule in modo affidabile, la considerazione deve essere data al numero di divisioni cellulari cellule madri sono autorizzati a sottoporsi con ogni successivo round di crescita e l'ordinamento delle cellule. Uso di un formato popolazione iniziale più piccola o un volume più grande cultura potrebbe consentire a cellule di sottoporsi più divisioni cellulari prima di raggiungere la densità cellulare desiderato. Ad esempio, altri ricercatori hanno usato solo due turni di smistamento per ottenere molto vecchie cellule di lievito 16, che ha l'ovvio vantaggio di ottenere cellule vecchie con meno experimepassi ntale. Nel valutare se aumentare il volume della cultura per permettere alle cellule di completare più divisioni cellulari prima di ordinare, tenere a mente il limite per il numero totale di cellule che possono essere elaborati in una singola colonna. Utilizzare un volume di grande cultura può richiedere l'uso di più colonne per ordinare una popolazione di cellule. Inoltre, se le cellule subiscono un minor numero di cicli di divisione cellulare tra i punti di tipi / raccolta, poi ci sono più opportunità per osservare le deviazioni dalla frequenze di mutazione attese in momenti distinti durante la durata della vita. Ad esempio, il campionamento solo in anticipo e momenti in ritardo durante la durata della vita può produrre dati che indicano un costante aumento della frequenza di mutazione, ma di campionamento nei momenti intermedi supplementari durante la durata della vita può dimostrare che la frequenza aumenta mutazione rapidamente e poi altipiani. Tuttavia, dal momento che questo protocollo di isolare cellule madri vecchie, vi è la possibilità di ottenere una misura più diretta della variazione dei tassi di mutazione con l'età. Test di fluttuazione potevano be effettuata utilizzando cellule madri di età diverse per determinare se il tasso di mutazione sarà diverso dal tasso ottenuto con cellule giovani. Mentre le culture di questi test di fluttuazione diventerà una miscela di cellule vecchie e giovani man mano che crescono, eventuali deviazioni da tassi ottenuti a partire da cellule giovani potrebbero essere attribuiti all'uso di una popolazione anziana di partenza.
La possibilità di ottenere riproducibile una grande popolazione abbastanza di cellule madri di età compresa tra di misurare con precisione l'instabilità del genoma è fondamentale per il successo di questo approccio. Mentre il protocollo descrive l'uso di un particolare sistema di smistamento magnetico per questo scopo, altri gruppi hanno filtrate cellule di lievito madre con sistemi alternativi 14,18 (vedi Tabella dei Materiali). Tali sistemi alternativi dovrebbero funzionare anche con questo metodo, anche se alcuni ottimizzazione dei protocolli dei produttori potrebbe essere richiesto. Indipendentemente dal sistema specifico utilizzato, la dimensione della popolazione richieded differisce a seconda della frequenza del tipo di mutazione o genoma riarrangiamento scelti per lo studio. Come minimo, ci deve essere un numero sufficiente di cellule madri per ottenere almeno una colonia mutante per ogni popolazione di calcolare una frequenza di mutazione. In pratica, i risultati possono essere molto variabili se solo zero a cinque colonie mutanti sono attesi dalla dimensione della popolazione, e anche un piccolo aumento della dimensione della popolazione, in modo che 5-10 colonie mutanti sono attesi, può notevolmente migliorare la riproducibilità. Quando biotina etichettare una popolazione di partenza, l'efficienza di recupero per ogni tipo deve essere presa in considerazione per identificare la dimensione della popolazione, necessarie per misurare la frequenza di mutazione in cellule madri vecchie. Con il 90% di recupero di cellule madri dopo ogni sorta, solo il 59% della popolazione originaria sarebbe stata recuperata dopo cinque cicli di crescita e di smistamento. Questo scende a ~ 33% di recupero della popolazione originaria dopo cinque turni di crescita e di smistamento, se solo l'80% delle cellule madri sono etichettati recuperarecato nel corso di ogni sorta. Misurazione e massimizzando il recupero è fondamentale quando si misura eventi a bassa frequenza, dal momento che un 2-3 volte diminuzione della dimensione della popolazione potrebbe facilmente portare a numeri inaffidabili di colonie mutanti per la popolazione.
Ci sono numerose opzioni per espandere o modificare questo protocollo per ottenere una più ampia comprensione del genoma instabilità durante l'invecchiamento cellulare mitotica. Semplici esempi includono analizzare come alterazioni delle funzioni del gene, i cambiamenti dei media, o altre variazioni delle condizioni ambientali alterano l'accumulo di mutazioni con l'età. Tassi di mutazione per i giovani cellule con funzione del gene alterato o nella condizione appropriata sarebbero misurati e utilizzati per determinare se le mutazioni si accumulano in modo diverso di quanto previsto dai valori di tasso e di diverso rispetto a popolazioni di cellule di controllo. Popolazioni cellulari in diversi punti durante l'invecchiamento replicativo potrebbero essere esposti a fattori di stress specifici, come le specie reattive dell'ossigeno o del DNA agenti dannosi. Laesposizione transitoria e mite allo stress ossidativo non ha modificato sostanzialmente la capacità di eseguire cell sorting (figura 3), ma le sollecitazioni più severe può complicare il recupero delle cellule. Esperimenti preliminari sarebbero necessarie per verificare che le cellule madri possono ancora essere recuperati in modo efficiente in seguito a sollecitazioni specifiche. Inoltre, le caratteristiche cellulari di cellule madri isolate potrebbero essere analizzati in dettaglio, compresi i livelli di specie reattive dell'ossigeno, la morfologia mitocondriale e vacuolare, e altre caratteristiche fisiologiche che sono associati con l'invecchiamento 3. Inoltre, le cellule madri potrebbero essere una popolazione iniziale per un ulteriore trattamento o manipolazione. Dato che le cellule madre e figlia sono fisicamente separati durante la procedura, le cellule figlie sono ancora disponibili per l'analisi. Ad esempio, cambiamenti nelle caratteristiche fisiologiche delle cellule figlie o l'eredità asimmetrica delle macromolecole danneggiate tra lievito madre e cellule figlie <sup> 24 potrebbe essere paragonato a la tempistica di eventuali cambiamenti interessanti in mutazione frequenze / tariffe. Frequenze di mutazione per le popolazioni di cellule figlia potrebbero essere ottenuti anche per cercare di modellare se vi sia eredità asimmetrica di mutazioni durante l'invecchiamento replicativo. In sintesi, combinando arricchimento delle cellule madri mediante cella magnetico classificare con test di fluttuazione consente i vantaggi della S. sistema modello cerevisiae da applicare in modo efficiente per indagare i meccanismi responsabili per l'accumulo di cambiamenti genetici durante l'invecchiamento cellulare mitotica.
The authors have nothing to disclose.
Questo lavoro è stato sostenuto in parte da sovvenzioni R00AG031911 dal National Institute on Aging dei National Institutes of Health per PHM Il contenuto di questo articolo non riflette necessariamente il punto di vista ufficiale del National Institutes of Health.
Name of Material/ Equipment | Company | Catalog Number | Comments/Description |
EZ-Link Sulfo-NHS-LC-Biotin | Thermo Scientific | 21335 | 100mg |
Anti-Biotin Microbeads | Miltenyi Biotec | 130-090-485 | 2ml MicroBeads conjugated to monoclonal mouse anti-biotin antibodies (isotype: mouse IgG1) |
MACS LS columns | Miltenyi Biotec | 130-042-401 | 25 columns suitable for QuadroMACS separator |
QuadroMACS separator | Miltenyi Biotec | 130-090-976 | Separator Only |
QuadroMACS Starting Kit | Miltenyi Biotec | 130-091-051 | Includes: QuadroMACS Separator (130-090-976), MACS MultiStand (130-042-303), LS Columns (130-042-401), MACS 15ml Tube Rack (130-091-052), One 2ml unit of MACS MicroBeads. Note: Alternative systems include Dynabeads Biotin Binder and MagnaBind Magnetic Beads |
BD Falcon Cell Strainer, 40 µm | BD Biosciences | 352340 | 40 µm for use with BD Falcon 50 ml Conical Tubes. 50 per pack |
Trypan Blue | Sigma-Aldrich | T6146 | Powder, filtering after dissolving important to remove particulates |
Wheat germ agglutinin Alexa Fluor488 | Life Technologies | W11261 | Conjugates with different excitation/emission spectra could also be used |
ProLong Gold antifade reagent | Life Technologies | P36930 | 10 ml, other antifade reagents could also be used |