Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
JoVE Journal Neuroscience
Click here for the English version

Neuroscience

العزلة وثقافة فصل الخلايا العصبية الحسية من الفرخ الأجنة

Published: September 24, 2014 doi: 10.3791/51991
Automatic Translation
1, 1, 1
1Department of Natural Sciences, Assumption College

Summary

نماذج ثقافة الخلية توفر تحكم مفصلة على الظروف البيئية وبالتالي توفر منصة قوية لتوضيح جوانب عديدة من بيولوجيا الخلايا العصبية. نحن تصف طريقة سريعة وغير مكلفة، وموثوق بها لعزل وفصل، والثقافة الخلايا العصبية الحسية من الأجنة الفرخ. كما تقدم تفاصيل إعداد الطبقات التحتية ومناعية.

Abstract

الخلايا العصبية هي الخلايا متعددة الأوجه التي تحمل المعلومات الأساسية لمجموعة متنوعة من المهام بما في ذلك الإحساس، وحركة السيارات، والتعلم، والذاكرة. يمكن دراسة الخلايا العصبية في الجسم الحي يكون تحديا بسبب تعقيدها، بيئاتها المتنوعة والديناميكية، والقيود الفنية. لهذه الأسباب، ودراسة الخلايا العصبية في المختبر يمكن أن يكون مفيدا لكشف أسرار معقدة من الخلايا العصبية. طبيعة محددة جيدا من نماذج ثقافة الخلية يوفر تحكم مفصلة على الظروف البيئية والمتغيرات. نحن هنا تصف كيفية عزل، فصل، والخلايا العصبية الثقافة الابتدائية من الأجنة الفرخ. هذا الأسلوب هو سريعة وغير مكلفة، ويولد تنمو بقوة الخلايا العصبية الحسية. الإجراء ينتج باستمرار الثقافات التي يتم التخصيب لديها الخلايا العصبية وعدد قليل جدا من الخلايا غير العصبية (أقل من 5٪). الخلايا العصبية الأولية لا تلتزم بشكل جيد للزجاج غير المعالجة أو زراعة الأنسجة البلاستيك، وبالتالي الإجراءات التفصيلية لإنشاء اثنين ديستانط، موصوفة محددة جيدا الطبقات التحتية التي تحتوي على laminin لطلاء الخلايا العصبية. الخلايا العصبية مثقف قابلة للغاية لتقنيات الخلوية والجزيئية متعددة، بما في ذلك التعاون مناعي، تخيل خلية الحية، رني، ومناعية. وقد تم تحسين إجراءات مناعية المزدوج على هذه الخلايا العصبية مثقف وصفها هنا.

Introduction

الخلايا العصبية هي الخلايا المعقدة التي تحمل المعلومات الأساسية لمجموعة متنوعة من المهام بما في ذلك الإحساس، الرؤية، وحركة السيارات، والتعلم، والذاكرة. فريد من أنواع الخلايا الأخرى، تمتد عمليات الخلايا العصبية تشبه الذراع، ودعا محاور عصبية، لتشكيل العصبية الطرق الأساسية للاتصال. أثناء التطوير المتخصصة المقصورات الموجودة على نصائح من محاور النمو، دعا مخاريط النمو، انتقل من خلال الحفل من العظة خارج الخلية لقيادة محور عصبي إلى وجهتها المناسبة. ليست مفهومة تماما الآليات الجزيئية المعقدة التي تكمن وراء النمو مخروط الملاحة. إلى فهم أفضل لهذه الآليات، استخدمت محققين نماذج زراعة الخلايا لدراسة الخلايا العصبية في بيئة المختبر محددة ومبسطة في. وقد أدى دراسة الخلايا العصبية في الثقافة 1 إلى تقدم كبير في فهمنا لبيولوجيا الخلية العصبية بما في ذلك: تمايز الخلايا العصبية 2، وديناميات هيكل الخلية، الإلتقام والاتجار، التغصناتتنظيم 3،4، تجدد المحاور 5، والحالات السريرية مثل اعتلال الأعصاب 6. بالإضافة إلى ذلك، الخلايا العصبية مثقف قابلة للغاية لمجموعة واسعة من تقنيات البحث بما في ذلك مناعية، خلية السطح المشترك مناعي، لطخة غربية، ترنسفكأيشن، رني، والتصوير الحي مثل تحليل timelapse من مخروط نمو الحركة. وهكذا، زراعة الخلايا العصبية الأولية هو نهج قوي لتوضيح جوانب عديدة من بيولوجيا الخلايا من الخلايا العصبية.

ويوفر نموذج خلية ثقافة المحققين مع سيطرة مفصلة على الظروف البيئية والمتغيرات. على سبيل المثال، والطبقات التحتية التي ومطلي الخلايا العصبية (وتنمو عليها) يمكن التلاعب بها بسهولة. هنا، ونحن نقدم تعليمات مفصلة لتوليد اثنين من الطبقات التحتية المتميزة، واحدة مع انخفاض laminin-1 تركيز والآخر مع تشبع تركيزات laminin-1. والمثير للدهشة، أن تركيزات مختلفة من نفس الجزيء لها آثار دراماتيكيةعلى الحالة الداخلية من الخلايا العصبية فضلا عن تكوين سطح الخلية الخاصة بهم. على سبيل المثال، مستويات الخلايا من المخيم ومستويات سطح integrins تختلف اختلافا كبيرا في الخلايا العصبية مطلي على هذين 7،8 الطبقات التحتية. وقد أظهرت دراسات إضافية أن الجزيئات الأخرى، بما في ذلك فبرونيكتين وكبريتات شوندروتن البروتيوغليكان، تأثير التعبير عن جزيئات سطح الخلية والحركة العصبية 7-11. بالإضافة إلى ذلك، جزيئات قابلة للذوبان مثل neurotrophins وneurotropins تؤثر أيضا تكوين غشاء الخلية العصبية والحركة 12-16 ويمكن بسهولة وبدقة التلاعب في نموذج ثقافة الخلية.

هنا، نحن تصف طرق لعزل وفصلها الثقافة الخلايا العصبية الحسية من الأجنة الفرخ. وقد استخدم هذا الإجراء لتحقيق اختراقات كبيرة في بيولوجيا الأعصاب، بما في ذلك محور عصبي ثمرة 5،7،8،10،11،16-21 وتم تعديل من إجراء يهدف إلى عزل خلايا العقدة 22. هناكالعديد من المزايا لهذا النهج. أولا، العديد من الميزات من الفرخ عقدة الجذر الظهري (DRG) تطوير تتميز جيدا بما في ذلك الإطار الزمني للولادة، والإرشاد محور عصبي، وملامح تعبير البروتين 2،23-28، وبالتالي توفير أساس المفيد التي تبنى عليها بالمعلومات في تجارب المختبر. الثانية، فصل الثقافات العصبية تسمح المحقق لدراسة الخلايا العصبية أكثر مباشرة مقارنة النهج البديلة باستخدام إإكسبلنتس سليمة DRG (التي تحتوي على الخلايا العصبية والخلايا غير العصبية) و / أو الثقافات المختلطة التي تحتوي على كل من الخلايا العصبية وفصلها الخلايا غير العصبية. ثالثا، الإجراء الموضح هنا واضح ومباشر، وغير مكلفة وقابلة للطلاب الجامعيين. ولذلك، هذه التقنية يمكن استخدامها لأغراض البحث وكذلك لأغراض تعليمية. وعلاوة على ذلك، يجب أن اختلافات طفيفة من هذا البروتوكول يسمح تنقية سريع، عالية الغلة من الخلايا العصبية من مصادر أخرى غير DRGs. على سبيل المثال، يمكن تعديل هذا الإجراء لتوفير neuronally ENRالثقافات iched من الأنسجة الأخرى مثل الدماغ الأمامي الجنينية أو الحبل الشوكي.

وقد تم تحسين بروتوكولات مناعية لهذه الثقافات العصبية فصلها ويتم وصفها بالتفصيل هنا. يتم توفير إجراءات مناعية المزدوج ضد جزيء التصاق الخلايا العصبية (NCAM) وintegrins β1. وقد استخدمت البيانات الناتجة من هذه الأساليب immunocytochemical لدراسة الزخرفة المكانية وكثافة عدة الجزيئات في الخلايا العصبية مثقف 8،16.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

1. ساترة التحضير: تغسل حمض وتخبز

  1. 2 أيام على الأقل قبل تشريح (الخطوة 2)، وتبدأ الخطوات التالية لإعداد coverslips. تنفيذ الخطوة غسل الحمضية لإزالة الزيوت وcoverslips نظيفة تماما.
  2. coverslips الحمل في حامل الخزف أن المواقف عموديا coverslips ويمنعها من لمس بعضهم البعض. غمر حامل وcoverslips في إناء زجاجي الأنسجة مليئة 2 M حمض الهيدروكلوريك (حمض الهيدروكلوريك). بدلا من ذلك، إذا حامل الخزف غير متوفر، تنتشر ~ 20 coverslips أفقيا لتغطية الجزء السفلي من 100 ملم الزجاج طبق بتري وغمر coverslips في 2 M حمض الهيدروكلوريك.
  3. وضع إناء زجاجي (مع coverslips مغمورة في حامض) على جدول الروك في غطاء الدخان والسماح هزاز لطيف لمدة 5 على الأقل ساعة في درجة حرارة الغرفة. بدلا من ذلك، coverslips حامض يغسل بين عشية وضحاها في ظل نفس الظروف.
  4. غسل coverslips مع H 2 O (DH 2 O) المقطر عن طريق نقل حامل الخزف تحميلهامع coverslips من 2 M حمض الهيدروكلوريك إلى الحاويات الزجاجية الأنسجة نظيفة مليئة درهم 2 O. بدلا من ذلك، صب 2 M حمض الهيدروكلوريك من الزجاج طبق بتري مع coverslips وإعادة ملء مع DH 2 O.
  5. يغسل من قبل الصب DH 2 O مرة أخرى وإعادة تعبئة الوعاء الزجاجي مع DH الطازجة 2 O. تكرار لما مجموعه 3 يغسل سريعة.
  6. يبدأ أطول نظام الغسيل من خلال العودة عاء زجاجي (مع coverslips وDH 2 O) على الروك. تسمح الإثارة لطيف لمدة 10-30 دقيقة في درجة حرارة الغرفة. ثم، صب DH 2 O وإضافة جديدة DH 2 O. تكرار لما مجموعه عشرة على الأقل يغسل. بدلا من ذلك، تواصل غسل بين عشية وضحاها.
  7. وضع coverslips غسلها في فرن مسخن إلى 350 درجة مئوية. في حالة استخدام حامل الخزف، وإزالة حامل من DH 2 شغل-O إناء زجاجي ثم وضع حامل مع coverslips مباشرة في الفرن. في حالة استخدام طبق بتري الزجاج، صب DH 2 O ووضع صحن زجاجي مع coverslips في furnacه.
  8. خبز coverslips لمدة خمس ساعات على الأقل أو طوال الليل في 350 درجة مئوية.
  9. بعد الخبز الكامل، إزالة coverslips من حامل الخزف مع غرامة ملقط معقم ووضعه في 100 ملم الزجاج طبق بتري. ترك coverslips التي لم توضع أصلا في حامل الخزف في الزجاج طبق بتري.

2. الفرخ تشريح وعزل DRGs

  1. إزالة خصبة، نظموا الأبيض يفورنو فرخ البيض من الحاضنة (الذي عقد في 37 حتي 38،5 درجة مئوية مع هزاز لطيف).
    ملاحظة: استخدمت دراسات سابقة يوم الجنينية 7-10 لعزل DRGs 2،8،11-13،16.
  2. وضع البيض مختارة في غطاء تدفق الصفحي. إجراء كافة الإجراءات المدرجة أدناه تحت ظروف معقمة في غطاء تدفق الصفحي مع الحلول والأدوات المعقمة. قبل كل الحلول الدافئة في 37 ° C حمام الماء.
  3. كسر البيض ومكان محتويات البلاستيك إلى 100 ملم طبق بتري. استخدام ملقط القياسية لنقل الجنين إلى 100 ملم طبق بتري آخر.
  4. إضافة F12HS10 الحارة (F12 هام و10 ملي HEPES، 100 وحدة / مل البنسلين، 0.1 ملغ / مل الستربتوميسين و 10٪ مصل بقري جنيني) إلى الطبق مع ماصة باستير للحفاظ على النسيج الرطب. استخدام ملقط لوضع الجنين على الجانب الظهري لها (الشكل 1A).
  5. وضع 100 ملم البلاستيك طبق بتري تحتوي على الأنسجة الجنينية في الصعود إلى مجهر مجهر تشريح stereovision في غطاء تدفق الصفحي. استخدام ملقط غرامة لجعل شق خط الوسط الرأسي من ذيل إلى عنق بواسطة معسر الأدمة النامية لفضح القلب والرئة وغيرها من الأجهزة. بدلا من ذلك، وجعل سلسلة من الدموع صغيرة لكشف الأعضاء الداخلية.
  6. وتستخدم بلطف 2 مجموعات من ملقط غرامة معقمة ل: أ) فهم الرقبة وب) فهم الشريان الأورطي أو الأنسجة الأخرى متفوقة على الفور إلى القلب وسحب نحو الذيل،نزع احشاء الحيوان.
  7. تطبيق F12HS10 دافئة مع ماصة باستور إلى الأنسجة. استخدام ملقط لإزالة أي المتبقية القلب والأوعية الدموية، الجهاز التنفسي أو الجهاز الهضمي لفضح الأضلاع النامية، العمود الفقري وDRGs (أرقام 1B-1D).
  8. تحت المجهر تشريح، واستخدام ملقط غرامة لمواصلة إزالة الأجهزة وجمع DRGs على طول جانبي العمود الفقري القطني، أقل شأنا من أضلاعه. جمع DRGs من نتف DRGs سليمة من الجنين. قرصة وقطع الجذور التي تصل من DRG نحو النخاع الشوكي والعصب يمسك النامية التي تصل من DRG نحو المحيط أو العكس بالعكس.
  9. وضع DRGs سليمة في صحن الثقافة 35 مم مليئة F12HS10 دافئة. إزالة أي نوع من الأنسجة الزائدة، مثل الظهرية أو البطنية الجذور التي قد انضمت إلى DRGs، من DRGs سليمة في 35 ملم طبق من معسر مع ملقط غرامة.
  10. للحصول على DRGs متفوقة على منطقة أسفل الظهر، وإزالة النصف البطنية من الصدر والأيليةالعمود الفقري كال. يتم ذلك عن طريق تقديم قطع في العمود الفقري وضع عمودي على محور الحبل الشوكي في المنطقة العنقية العليا وقطع أخرى في منطقة أسفل الظهر العليا. ثم، إجراء تخفيضات موازية لمحور الحبل الشوكي على طول الجانبين الأيمن والأيسر من العمود الفقري. رفع نصف بطني من العمود الفقري من الجنين، الذي يعرض يعرض الحبل الشوكي (أرقام-1E 1F).
  11. للسماح سهولة الوصول إلى DRGs، وإزالة الحبل الشوكي العنقي والصدري من يمسك الحبل الشوكي مع ملقط غرامة. استخدام ملقط لرفع الحبل الشوكي من العمود الفقري. كتقريب، الحبل الشوكي الصدري هو على مستوى الأضلاع ومنطقة عنق الرحم متفوقة على الأضلاع.
  12. جمع الصدر سليمة وDRGs عنق الرحم بالملقط الجميلة ووضعها في F12HS10 دافئة مع DRGs الأخرى. إزالة الأنسجة الزائدة التي قد تلتزم DRGs.
  13. شطف الداخلية من الزجاج باستور ماصة جديدة مع F12HS10 للمساعدةمنع DRGs من التمسك جدران ماصة. استخدام ماصة تشطف لنقل جميع DRGs وF12HS10 من طبق بيتري صغير لالعقيمة 15 مل أنبوب مخروطي الشكل، والشروع فورا في الخطوة 3.
    يمكن تشريح أجنة إضافية لزيادة عدد DRGs: ملاحظة. يجب أن تبقى في DRGs F12HS10 عند 37 درجة مئوية لتصبح جاهزة للخطوة 3.

3. التفكك، وإثراء، والتثقيف DRG الخلايا العصبية - الجزء 1

  1. مكان أنبوب مخروطي مع DRGs سليمة في أجهزة الطرد المركزي وتدور بلطف (200 x ج) لمدة 2-3 دقيقة. تأكيد أن DRGs قد غرقت إلى أسفل الأنبوب. إن لم يكن، وتدور مرة أخرى.
  2. باستخدام ماصة، وإزالة بلطف F12HS10، وترك DRG بيليه دون عائق. إضافة 2 مل من 1X الكالسيوم والمغنيسيوم الحرة (CMF) PBS، طرد بيليه من DRGs. تدور مرة أخرى وإزالة CMF PBS مع ترك بيليه DRG سليمة. كرر هذه الخطوة لغسل ما مجموعه ثلاثة يغسل لإزالة مصل بقري جنيني في F12HS10، التي من شأنها أن تتداخل مع عملية الهضم التربسين في الخطوة التالية.
  3. إضافة 2 مل من التربسين تحسنت إلى أنبوب 15 مل تحتوي على 2 مل CMF PBS وDRGs. مكان أنبوب في 37 ° C حمام الماء لمدة 10-15 دقيقة لهضم DRGs في خلايا فصل.
  4. أثناء الحضانة، وجعل F12H + ملحق يحتوي على وسائل الإعلام (F12 هام و10 ملي HEPES 100 وحدة / البنسلين مل، 0.1 ملغ / مل الستربتومايسين، 10 نانوغرام / مل NT3، 10 نانوغرام / مل NGF، 200 مم L-الجلوتامين وN2) ودافئة في 37 ° C حمام الماء. عادة، و 10 مل من وسائل الإعلام الكلي كافية لمدة 4-5 35 مم أطباق من الخلايا العصبية الحسية الأولية. تبدأ أيضا ذوبان laminin-1 لطلاء coverslips (الخطوة 4).
  5. DRGs يسحن بلطف في محلول التربسين مع P1000 ماصة وتفقد البصر عن غياب DRGs سليمة. مواصلة سحن حتى لم يعد ينظر DRGs سليمة بالعين و / أو السماح لأطول الحضانة التربسين في 37 ° C حمام الماء حتى يتم فصلها DRGs سليمة. لحماية الخلايا العصبية DRG من التلف، وتجنب فقاعات الهواء خلال سحن والحد التربسين الهضم إلى <30 دقيقة.
  6. Centrifugالبريد أنبوب يحتوي DRGs فصل والتربسين في 200 x ج لمدة 3-5 دقيقة لتشكيل بيليه. تدور أطول إذا لزم الأمر حتى يتم تشكيل بيليه.
  7. نضح بعناية التربسين دون تعطيل بيليه. إضافة 2 مل من F12HS10 لتكوير. يسحن بلطف DRGs مع طرف P1000 ماصة.
  8. نقل جميع المحتويات من 15 مل أنبوب مخروطي إلى 100 ملم صحن الثقافة. شطف أنبوب مع 8 مل F12HS10 وتحويلها إلى الطبق الثقافة، 2 مل في وقت لما مجموعه 10 مل. هذه الخطوة تساعد الشطف جمع الخلايا التي قد بقيت انضمت إلى جدران الأنبوب.
  9. وضع 100 طبق الثقافة ملم (مع 10 مل F12HS10 وفصل الخلايا DRG) في ترطيب الحاضنة 37 درجة مئوية لمدة 3 ساعة.
    ملاحظة: CO 2 لا يشترط في الحاضنة لHEPES مخازن درجة الحموضة وسائل الإعلام في غياب CO 2. أثناء الحضانة، والخلايا الدبقية ربط إلى سطح الأنسجة والخلايا العصبية البلاستيك ثقافة تميل إلى التمسك فضفاضة إلى الفراش الدبقية.

4. حمض غسلها طلاءوCoverslips خبز مع Laminin-1

  1. ذوبان الجليد معقمة مأخوذة من المجمدة laminin-1 على الجليد.
  2. تحت ظروف معقمة، إضافة 1 مل من العقيمة برنامج تلفزيوني 1X إلى 50 قسامة ميكرولتر من laminin-1.
  3. استخدام مقياس الطيف الضوئي للحصول على قيمة الامتصاصية من laminin-1 عند 280 نانومتر. استخدام هذه القيمة في المعادلة التالية لتحديد تركيز laminin-1.

ABS 280 = (تركيز ملغ / مل) * (معامل الانقراض من البروتين)
معامل الانقراض لlaminin-1 هو 0.86.

  1. تحت ظروف معقمة، وتمييع laminin-1 مع 1X PBS للحصول على تركيز 1 ملغ / مل و 20 ملغ / مل. استخدام هذه التركيزات اثنين من تطبيق laminin-1 لتحقيق فارق عشرة أضعاف من laminin-1 منضمة إلى ساترة (30 نانوغرام / سم 2 و 300 نانوغرام / سم 2 على التوالي) بعد الحضانة 7،8،10.
  2. في غطاء تدفق الصفحي، استخدام ملقط غرامة لمكان واحد حمض غسلها والمخبوزات جoverslip في الجزء السفلي من واحد 35 مم طبق الثقافة. كرر حسب الضرورة للحصول على عدد من الأطباق الحاجة.
  3. تخضع لل coverslips للأشعة فوق البنفسجية لمدة 20-30 دقيقة لضمان مزيد من التعقيم. إبقاء غطاء طبق من خلال هذه الخطوة.
  4. إضافة 400 ميكرولتر من استعداد laminin-1 إلى كل ساترة الزجاج. استخدام ماصة لنشر laminin-1 لضمان التغطية الكاملة لساترة. التوتر السطحي سوف تسمح laminin-1 لتبقى على ساترة وليس تنتشر على قاع الطبق الثقافة، وهو مطلوب.
  5. وضع غطاء على طبق والسماح laminin-1 لاحتضان لمدة 2-3 ساعة في درجة حرارة الغرفة (3 ساعة هو الأمثل).
  6. بعد laminin-1 الحضانة، شطف coverslips باستخدام تقنية العقيم مع برنامج تلفزيوني العقيمة في غطاء تدفق الصفحي. إزالة الحل على ساترة وإضافة 400 ميكرولتر من برنامج تلفزيوني. الانتظار 5-10 دقيقة. تكرار لما مجموعه 3 يشطف.
  7. ترك برنامج تلفزيوني على ساترة بعد شطف الماضي. لا كسر التوتر السطحي أثناء الشطف وعدم السماح coverslips لتجف. لوغطاء افي على حتى على استعداد لوحة الخلايا العصبية نأت على coverlip.

5. التفكك، وإثراء، والتثقيف DRG الخلايا العصبية - الجزء 2

  1. بعد الحضانة، واستخدام 10 مل ماصة معقمة لشطف بلطف الجزء السفلي من 100 ملم صحن يحتوي على خلايا DRG فصلها. عقد الطبق في ~ 45 درجة زاوية، وسحب ~ 7 مل من F12HS10 مع مساعدات ماصة، ثم طرد بلطف 7 مل على ما يقرب من 1/3 من الطبق. تكرار 5X، طرد بلطف الخلايا العصبية.
  2. تدوير الطبق وتكرار الشطف الداخلي، لمدة ستة يشطف آخر، على 1/3 آخر من الطبق. كرر الإجراء مرة أخرى للبقاء 1/3 من الطبق. بهذه الطريقة، وشطف بلطف الجزء السفلي بأكمله من الطبق مع F12HS10 لإزالة الخلايا العصبية.
  3. باستخدام نفس ماصة، ونقل F12HS10 تحتوي على الخلايا العصبية من 100 ملم إلى 15 طبق أنبوب مخروطي. أجهزة الطرد المركزي لمدة 5-10 دقائق على 200 غرام لتكوير الخلايا.
  4. إزالة F12HS10، وترك بيليه دون عائق. بيليه resuspend مع 2 مل من F12H حرارة + ملاحق.
  5. تمييع الخلايا الضرورية كما هو الحال مع F12H + المكملات للحصول على التركيز المطلوب الطلاء (120،000 خلية / مل لcoverslips المغلفة مع / مل laminin-1 و 40،000 خلايا 1 ميكروغرام / مل لcoverslips المغلفة مع 20 ميكروغرام / مل laminin-1 8،16).
  6. إزالة برنامج تلفزيوني من coverslips المغلفة laminin ووضع على الفور 400 ميكرولتر من الخلايا على coverslips. نقل بعناية طبق لترطيب، 37 ° C ثقافة الخلية الحاضنة. السماح لاحتضان لمدة 1 ساعة على الأقل وحتى 3 ساعة للسماح الخلايا العصبية التمسك laminin-1.
  7. تحت ظروف معقمة، الفيضانات بلطف 35 ملم الأطباق التي تحتوي على الخلايا العصبية مع 1.6 مل من F12H + ملاحق.
    ملاحظة: في هذا الوقت، يمكن تقسيم السطح التوتر على ساترة. الخلايا العصبية انضمت كاف لlaminin-1 على ساترة.
  8. العودة الخلايا الحاضنة واحتضان بين عشية وضحاها. إجراء تجارب مثل مناعية في اليوم التالي.

6. أناmmunocytochemistry

  1. قبل مناعية، حل تثبيتي الدافئ (بارافورمالدهيد 4٪، 30٪ سكروز 2X PBS) في 37 ° C حمام الماء.
    ملاحظة: قبل تثبيت الخلايا، وعلاج مع مختلف الكواشف، مثل netrin-1، المنغنيز 2+، القنفذ سونيك، semaphorin، وephrin 16،29-31.
  2. إزالة ببطء 1 مل من مل 2 من F12H + ملاحق من صحن الثقافة. بلطف إضافة 1 مل من محلول تثبيتي تحسنت. السماح لاحتضان في درجة حرارة الغرفة لمدة 10-15 دقيقة.
  3. إزالة بعناية حل تثبيتي، وإضافة 2 مل PBS. تطبيق حل نحو حافة الطبق، وتجنب بإزاحة ممكن من خلايا ثابتة نتيجة لتطبيق برنامج تلفزيوني. يحضن في درجة حرارة الغرفة لمدة 5 دقائق.
  4. تكرار غسل PBS لما مجموعه 5 يغسل. لا تسمح للخلايا لتجف خلال أي خطوة من مناعية.
  5. إزالة برنامج تلفزيوني. تطبيق 1 مل من عرقلة الحل (0.1٪ تريتون-X، 1X PBS، 5٪ مصل الماعز العادي). احتضان لمدة 1 ساعة في درجة حرارة الغرفة. بدلا من ذلك، إلى وصمة عار الجزيئات السطحية، لا تستخدم تريتون-X في عرقلة الحل 8.
  6. تمييع الأجسام المضادة الأولية في عرقلة الحل لكل توصية للتصنيع. استخدام 1: 500 عن الأجسام المضادة ضد NCAM والمفعلين β1 integrins 16. الحل إزالة الحجب، إضافة 1 مل من محلول الأجسام المضادة الأولية واحتضان لمدة 1 ساعة في درجة حرارة الغرفة أو بين عشية وضحاها في 4 درجات مئوية.
  7. إزالة حل الأجسام المضادة الأولية وإضافة 2 مل من 1X PBS. احتضان لمدة 5-10 دقيقة في درجة حرارة الغرفة. تكرار لما مجموعه 4 يغسل PBS. يغسل ويمكن تمديد، إذا لزم الأمر.
  8. تمييع الضد الثانوية 1: 1،000 في عرقلة الحل. إزالة برنامج تلفزيوني، إضافة 1 مل من محلول الأجسام المضادة الثانوية واحتضان لمدة 1 ساعة في درجة حرارة الغرفة.
    ملاحظة: الأجسام المضادة الثانوية خفيفة حساسة. إبقاء حلول والخلايا في الظلام قدر الإمكان من هذه النقطة إلى الأمام.
  9. إزالة حل الضد الثانوية وشطف مع 5X 1X PBS، كما فعلت سابقا.
  10. تطبيق ~ 60-80 ميكرولتر من FluoromountG على شريحة المجهر. باستخدام ملقط غرامة، ورفع بلطف ساترة من الطبق وانخفاض ساترة في Fluoromount G على شريحة المجهر. تجنب فقاعات الهواء.
  11. متجر الشرائح أفقيا في 4 درجات مئوية في الظلام. بعد 12-24 ساعة، وFluormount G تتبلمر وسوف تعلق ساترة بحزم إلى شريحة المجهر. خلايا الصورة بعد هذه الخطوة البلمرة كاملة.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

بروتوكول الموصوفة هنا تمكن المحققون إلى ثقافة السكان المخصب من فصلها الخلايا العصبية الحسية الجنينية مع عدد قليل جدا من الخلايا (على سبيل المثال، <5٪) غير العصبية 7،8،10،16. ويمكن الحصول على العديد من DRGs القطنية العجزية، الصدر ومناطق عنق الرحم. تبعا للاحتياجات المحقق، DRGs من هذه المناطق التشريحية متميزة يمكن عزله بسهولة. على سبيل المثال، ويبين الشكل 1 صور للجنين الفرخ من خلال مراحل مختلفة من تشريح مع DRGs قطني أبرزت في أرقام 1C و1D وDRGs الصدرية في أرقام و1E 1F.

وصفت الخلايا المستزرعة بسهولة عن طريق مناعية. هنا، immunostained الخلايا المستزرعة مع الأجسام المضادة ضد إنتغرين β1 وNCAM (الشكل 2). والمثير للدهشة، كنا قادرين على تصور تلطيخ الفلورسنت لمدة تصل إلى عام بعد هذه إجراءات المحكمة الجنائية الدولية، إذا تم الاحتفاظ الشرائح أفقيا في 4 درجات مئوية وفي الظلام. ومع ذلك، فإن طول العمر من البقع المحكمة الجنائية الدولية يجب أن يحدده المستخدم ولكل الأجسام المضادة.

تبعا لكثافة الخلايا العصبية، والأقماع النمو على نصائح من neurites التي تمتد يمكن أيضا تصور (أرقام 2D-2F). الخلايا العصبية مطلي على 40،000 و120،000 خلية / مل coverslips على المغلفة مع 20 ميكروغرام / مل و 1 ميكروغرام / مل من laminin-1 على التوالي، لديهم العديد من neurites التي مجانية تصل إلى 26 ساعة آخر الطلاء. هذه الثقافات يمكن استخدامها لتحليل تحديدا مخاريط النمو بالإضافة إلى تحليل الخلايا العصبية بأكملها. سابقا، وقد استخدم هذا الإجراء لتقييم النمو مخروط السرعة والسلوكيات، مثل النمو مخروط انهيار 8،9،11،13،16. أقل كثافة الطلاء على هذه النتائج coverslips في الخلايا العصبية الميتة التي لم يتم الالتزام بها في الطبقات التحتية. كثافة مناسبة الدقيقة اللازمة لكل تجربة يجب أن يكون الأمثل لكل محقق.

ق = "jove_content" FO: المحافظة على together.within الصفحات = "دائما"> الشكل 1

الرقم 1. مراحل الجنينية الفرخ تشريح للحصول على DRGs. A) الفرخ الجنين ملقاة على الجانب الظهري لها. قلب (H)، وصفت أجنحة (W) والساقين (L). الجزء العلوي من الصورة هو نحو الرأس، أو أعلى (S). الجزء السفلي من الصورة هو نحو الذيل، أو أدنى (I). R = الجانب الأيمن من الحيوان، L = الجانب الأيسر من الحيوان. جميع الصور اللاحقة في نفس التوجه. B) تمت إزالة الأعضاء الداخلية من الجنين في العمود الفقري A.، ينظر الأضلاع وDRGs. للبساطة، هو المسمى ضلع واحد، يتم تحديد ثلاث DRGs تمثيلية من قبل الدوائر السوداء وصفت الصدر والعمود الفقري القطني. C) نفس الفرخ صورة الجنين وB مع مربع رمادي تحديد المنطقة يظهر في اثالتكبير لها في D. D) التكبير العالي للعمود الفقري القطني (VC) المنطقة. ثلاثة من DRGs عشر في طريقة العرض هذه يتم تحديدها من قبل الدوائر متقطع. DRGs هي المستديرة ومغلفة. هذه الميزات تجعل من السهل الحصول على DRGs سليمة بالملقط. E) والجنين الفرخ بعد إزالة الأحشاء الداخلية والنصف بطني من العمود الفقري الصدري. يشير مربع رمادي المنطقة يظهر في أعلى التكبير في F. F) الحبل الشوكي (SC) وينظر في المنطقة حيث تمت إزالة العمود الفقري. نحو الجزء السفلي من الصورة، العمود الفقري القطني (VC) لا تزال سليمة. تم تحديد 3 من 10 DRGs قبل الدوائر المتقطعة. تم العثور على DRGs بين كل مجموعة من الأضلاع.

الشكل 2
الشكل 2. مثقف الخلايا العصبية الحسية الأولية immunolabeled لNCوAM β1 integrins. الخلايا العصبية DRG الفرخ مثقف على تركيزات عالية من laminin-1 هي immunopositive لNCAM (A) وβ1 إنتغرين (B). C) الصورة المدمجة اثنين من البقع يكشف معظم الخلايا إيجابية لكلا NCAM وβ1 إنتغرين. هذه الخلايا العصبية الحسية الطيور هي immunopositive لكل من هذه العلامات. ومع ذلك، هناك خلية، تميزت النجمة التي هي NCAM إنتغرين سلبي وβ1 إيجابية، بما يتفق مع الخلايا غير العصبية. DF) التكبير العالي من الخلايا العصبية الحسية مثقف معارض neurites التي تمتد من جسم الخلية. D) أقحم في الأبيض يظهر مربع التكبير أعلى من مخروط النمو في غيض من محوار.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

هنا نقدم بروتوكولات مفصلة لعزل وزراعة الخلايا العصبية الحسية فصلها من جنين الفرخ. يولد هذا الإجراء السكان المخصب من الخلايا العصبية المتنامية بقوة في المختبر 7،8،10،16. العديد من التقنيات الخلوية والجزيئية يمكن تطبيقها على هذه الخلايا العصبية مثقف، بما في ذلك مناعية، الذي يوصف هنا. وقد استخدم هذا البروتوكول في الآونة الأخيرة إلى تقييم كمي لشدة immunolabeled integrins تفعيلها في مخاريط النمو الحسية 8،16. في هذه الدراسات السابقة، تم استخدام برنامج حاسوبي لخلق بدقة الخطوط العريضة للالبعيدة 20 ميكرون نهاية مخروط النمو. وقدم الخطوط العريضة بناء على NCAM تلطيخ. التعبير في كل مكان من NCAM الخلايا العصبية في تمكين برنامج حاسوبي لتحديد مخروط النمو بأكمله بدلا من نسبة محدودة من مخروط النمو. ثم تم تحديد هذا المخطط مخروط النمو كمنطقة من الاهتمام وشدة إنتغرين تلطيخ داخل تلك ريجيعلى الفائدة تم تقييم من قبل البرنامج. بهذه الطريقة، وشدة من البروتين من الفائدة يمكن قياسها بسهولة في منطقة معينة داخل الخلايا العصبية الحسية مثقف.

من أجل الحصول على نتائج موثوقة، وتقدم التوصيات التالية. أولا، تأكد من أن coverslips تغسل جيدا بالماء بعد حمض الهيدروكلوريك في حضانة الخطوات 1.4-1.6. وإلا فإن الجزيئات مثل laminin-1 لا تفريق جيدا على ساترة. الثانية، تأكد من DRGs وفصلها بشكل كاف (الخطوة 3.5) بعد التربسين الهضم، وإلا كتل من الخلايا ستشكل وهذا سيقلل النقاء الخلايا العصبية. الثالث، هو الأمثل لاحتضان خلايا DRG في الخطوة 3.9 ل3 ساعة كاملة للحصول على السكان أنقى من الخلايا العصبية. إذا تم تقصير هذه الخطوة الحضانة، ثم خفض الشطف الخطوات 5.1 و 5.2 لتحديد عدد الخلايا غير العصبية التي يتم فكها بعد فترة الحضانة أقصر. رابعا، ضمان الحفاظ على التوتر السطحي أثناء تطبيق laminin-1 وdissoالخلايا العصبية ciated للل coverslips. في حالة فقدان التوتر السطحي، فإن حل تتجاوز ساترة وجافة. هذا وسوف تقتل الخلايا العصبية. خامسا، يجب كثافة الخلية المثلى التي تحددها كل محقق. دراسات سابقة ومطلي الخلايا العصبية 120،00 / مل و 40،000 خلية عصبية / مل coverslips على مغلفة 1 ميكروغرام / مل laminin-1 و 20 ميكروغرام / مل laminin-1، على التوالي 8،16. كان هذا تركيز منخفض بما يكفي للسماح للمحققين لدراسة نهايات محوار مجانية (النهايات التي لم ترتبط بعد مع عصبون آخر). سادسا، خلال مناعية، تكون معينة لشطف بلطف الخلايا. إزالة أو تطبيق الحلول بسرعة كبيرة جدا يمكن طرد الخلايا العصبية من ساترة.

وتشمل القيود من هذا الإجراء نافذة الوقت محدودة نوعا ما من فرخ DRG تشريح. DRGs يمكن بسهولة الحصول عليها من اليوم الجنينية (E) 7-10 الأجنة الفرخ. في حين أنه من الممكن الحصول على DRGs في وقت سابق من E7، فمن صعبة إلى حد ما. بعد E11، عبر المزيد من الغضروفitions إلى العظام وهذا يجعل تشريح أكثر صعوبة. وبالتالي، فإن الدراسات التي تهدف إلى مقارنة الجنينية مقابل الخلايا العصبية الكبار لا يكون مثاليا لهذا النموذج كتكوت، ومع ذلك، استخدمت دراسات سابقة نموذج الفئران للمقارنة في سن DRGs 32. تجدر الإشارة إلى أن DRG تشريح الفئران هي أكثر تكلفة، وأقل قوة من الناحية التقنية أكثر صعوبة من الفرخ. نقطة أخرى للنظر هو قدرة مثقف الخلايا العصبية الجنينية DRG لتغيير مع مرور الوقت في الثقافة. على سبيل المثال، هذه الخلايا العصبية الحسية التعبير عن مستويات مختلفة من المستقبلات داخل 48 ساعة اعتمادا على وجود مختارة neurotrophins 2،30.

اثنين فرعية من الخلايا العصبية DRG يمكن أثرى استخدام neurotrophins انتقائية في وسائل الإعلام 2،12،30. على سبيل المثال، عامل نمو الأعصاب (NGF) وneurotrophin-3 (NT3) في المقام الأول دعم بقاء الخلايا العصبية الجلدية والتحفيز على التوالي 33. وسائل الإعلام المستخدمة في هذه التجربة على حد سواء وNGF NT3، ومع ذلك، يمكن تعديلها بسهولة لتحديد إما الخلايا العصبية الحسية الجلدية أو التحفيز.

فصل الخلايا العصبية قابلة للعديد من تقنيات التصوير الحية بما في ذلك timelapse تخيل من الحركة مخروط النمو والتصوير الكالسيوم. وسائل الإعلام المستخدمة هنا هو مفيد لتصوير الخلايا الحية لأنها لا تتطلب CO 2 لدرجة الحموضة التخزين المؤقت من وسائل الإعلام. وبالتالي، الحصول على البيانات من الخلايا الحية لا يمكن أن يؤديها على المجهر مع مرحلة تحسنت ولكن لا يتطلب الحفاظ على مستويات كافية CO 2. تم مستويات النمو مخروط السرعة، وانهيار 8،16،30، والكالسيوم 17 درس في فرخ الأساسي الخلايا العصبية الحسية الحية يعزلها تقنية الموضحة هنا. بالإضافة إلى ذلك، يمكن تقليل رني بنجاح مستويات البروتين في الخلايا العصبية DRG الفرخ مثقف 34.

الخبرات المكتسبة من محددة جيدا في نماذج المختبر يمكن استخدامها كأساس جوهري لتصميم التجاربفي نموذج أكثر تعقيدا في الجسم الحي، فعلى سبيل المثال، تم استخدام نهج مختلف في المختبر فضة 35 إلى تحفيز ثمرة محوار في نموذج في المختبر من ندبة الدبقية. من مجموعة متنوعة من الكواشف اختبارها في المختبر، يمكن أن اثنين فقط (تحريض الالتهاب وهضم البروتيوغليكان شوندروتن كبريتات) تعزيز محور عصبي التجدد. ومن المثير للاهتمام، وهو مزيج من هذه العلاجات اثنين في الجسم الحي تحفيز درامية وظيفية محوار تجديد في الحبل الشوكي 35. في هذه الحالة، قدمت التجارب في المختبر أداة مهمة لفحص سريع للمواد التي زادت محوار ثمرة. أثبت الكواشف التي تروج بنجاح النمو محوار في المختبر أيضا نجاحا في الجسم الحي، والتي تدعم كذلك قيمة تجارب زراعة الخلايا.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

الكتاب ليس لديهم ما يكشف.

Acknowledgments

نود أن نشكر أليسون Philbrook، بليندا Barbagallo ومايكل فرانسيس للتعليقات الثاقبة على هذه الورقة. وأيد البحث عنها في هذا المنشور من قبل جائزة R15 AREA 1R15NS070172-01A1 منحت لMLL.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Sterile small culture dishes (35 mm) Corning 430165
Sterile large culture dishes (100 mm) Falcon 353003
Sterile large Petri dishes (100 mm) VWR 89000-302
Glass Petri dish (100 mm) VWR D108962
Fine forceps Fine Science Tools 11251-10
Standard forceps Fine Science Tools 1100-12
Coverslips (22 x 22 mm) Fisher 12 518 105K 0.13-0.17 mm thickness is optimal for microscopy
Porcelin coverslip holder Thomas scientific 8542E40
Fetal Bovine serum Gibco 17502-048 use 50 ml aliquots per 500 ml of Ham's F12 media
HCl VWR VW3204-1 use at 2 M, can be used twice before discarding
NaCl Sigma S9888 use 5 M NaCl solution for laminin-1 stock solution
Laminin-1 Invitrogen 23017-015 Add 72 µl of sterile 5 M NaCl and aliquot into 50 µl
15 ml Conical tube cell treat 229411
PBS CMF 10x Gibco 14200 used at 1x, dilute with sterile Millipore filtered water
PBS 10x Gibco 14080 used at 1x, dilute with sterile Millipore filtered water
Ham's F12 Lonza 12-615F
Fetal Bovine Serum Albumin (BSA) Gibco 10438 use in F12HS20 at 10%
HEPES Sigma H3375 make sterile 1 M solution in distilled water, dilute in F12 media to obtain final concentration of 10 mM
Penicillin/streptomyocin Sigma P0781 use 5 ml in 500 ml of F12 media
NT3 Millipore GF031 Add 1 ml of sterile Millipore water, aliquot under sterile conditions, store at -20 °C, use at final concentration of 10 ng/ml in F12H media, keep in -20 °C non-defrosting freezer
NGF RnD systems 256-GF Add 1 ml of sterile 1x PBS with 0.1% BSA, aliquot under sterile conditions, store at -20 °C, used at final concentration of 10 ng/ml in F12H media
L-Glutamine Sigma G7513 aliquot under sterile conditions, store at -20 °C, use at final concentration of 200 mM in F12H media
Trypsin Sigma T4049 aliquot under sterile conditions, store at -20 °C
Bovine Serum Albumin (BSA) Gibco 15260
Other items needed: general dissection instruments, including glass Pasteur pipettes, fertile white leghorn chicken eggs, check egg incubator (humidified, 37 °C), cell incubation chamber (humidified, 37 °C), laminar flow hood, binocular stereovision dissecting scope
Immunocytochemistry Reagents Table
Sucrose Sigma S9378 used in fixative solution (4% paraformaldehye, 30% sucrose, 2x PBS)
Triton-X 100 Sigma T-8787
Paraformaldehyde Sigma P6148 used in fixative solution (4% paraformaldehye, 30% sucrose, 2x PBS)
Fluoromount G Southern Biotech 0100-01
Normal goat serum Life technologies PCN500
Microscope slides VWR 16004-430
Primary Antibody Table
Antibody against NCAM Millipore AB5032 polyclonal
Antibody against activated β1 ingegrin Millipore MAB19294 monoclonal
Secondary Antibody Table
Goat anti-mouse IgG Alexa 488 Life technologies A11001
Goat anti-rabbit IgG Alexa 548 Life technologies A11036

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Millet, L. J., Gillette, M. U. Over a century of neuron culture: from the hanging drop to microfluidic devices. The Yale journal of biology and medicine. 85, 501-521 (2012).
  2. Guan, W., Puthenveedu, M. A., Condic, M. L. Sensory neuron subtypes have unique substratum preference and receptor expression before target innervation. The Journal of neuroscience : the official journal of the Society for Neuroscience. 23, 1781-1791 (2003).
  3. Kapitein, L. C., Hoogenraad, C. C. Which way to go? Cytoskeletal organization and polarized transport in neurons. Molecular and cellular neurosciences. 46, 9-20 (2011).
  4. Kapitein, L. C., Yau, K. W., Hoogenraad, C. C. Microtubule dynamics in dendritic spines. Methods in cell biology. 97, 111-132 (2010).
  5. Snow, D. M. Pioneering studies on the mechanisms of axonal regeneration. Developmental neurobiology. 71, 785-789 (2011).
  6. Melli, G., Hoke, A. Dorsal Root Ganglia Sensory Neuronal Cultures: a tool for drug discovery for peripheral neuropathies. Expert opinion on drug discovery. 4, 1035-1045 (2009).
  7. Condic, M. L., Letourneau, P. C. Ligand-induced changes in integrin expression regulate neuronal adhesion and neurite outgrowth. Nature. 389, 852-856 (1997).
  8. Lemons, M. L., Condic, M. L. Combined integrin activation and intracellular cAMP cause Rho GTPase dependent growth cone collapse on laminin-1. Experimental neurology. 202, 324-335 (2006).
  9. Beller, J. A., et al. Comparison of sensory neuron growth cone and filopodial responses to structurally diverse aggrecan variants, in vitro. Experimental neurology. 247, 143-157 (2013).
  10. Condic, M. L., Snow, D. M., Letourneau, P. C. Embryonic neurons adapt to the inhibitory proteoglycan aggrecan by increasing integrin expression. The Journal of neuroscience : the official journal of the Society for Neuroscience. 19, 10036-10043 (1999).
  11. Lemons, M. L., Barua, S., Abanto, M. L., Halfter, W., Condic, M. L. Adaptation of sensory neurons to hyalectin and decorin proteoglycans. The Journal of neuroscience : the official journal of the Society for Neuroscience. 25, 4964-4973 (2005).
  12. Guan, W., Condic, M. L. Characterization of Netrin-1, Neogenin and cUNC-5H3 expression during chick dorsal root ganglia development. Gene Expr Patterns. 3, 369-373 (2003).
  13. Guan, W., Wang, G., Scott, S. A., Condic, M. L. Shh influences cell number and the distribution of neuronal subtypes in dorsal root ganglia. Developmental biology. 314, 317-328 (2008).
  14. Kolpak, A., Zhang, J., Bao, Z. Z. Sonic hedgehog has a dual effect on the growth of retinal ganglion axons depending on its concentration. The Journal of neuroscience : the official journal of the Society for Neuroscience. 25, 3432-3441 (2005).
  15. Kolpak, A. L., et al. Negative guidance factor-induced macropinocytosis in the growth cone plays a critical role in repulsive axon turning. The Journal of neuroscience : the official journal of the Society for Neuroscience. 29, 10488-10498 (2009).
  16. Lemons, M. L., et al. Integrins and cAMP mediate netrin-induced growth cone collapse. Brain research. 1537, 46-58 (2013).
  17. Snow, D. M., Atkinson, P. B., Hassinger, T. D., Letourneau, P. C., Kater, S. B. Chondroitin sulfate proteoglycan elevates cytoplasmic calcium in DRG neurons. Developmental biology. 166, 87-100 (1994).
  18. Snow, D. M., Brown, E. M., Letourneau, P. C. Growth cone behavior in the presence of soluble chondroitin sulfate proteoglycan (CSPG), compared to behavior on CSPG bound to laminin or fibronectin. Int J Dev Neurosci. 14, 331-349 (1996).
  19. Snow, D. M., Lemmon, V., Carrino, D. A., Caplan, A. I., Silver, J. Sulfated proteoglycans in astroglial barriers inhibit neurite outgrowth in vitro. Experimental neurology. 109, 111-130 (1990).
  20. Snow, D. M., Letourneau, P. C. Neurite outgrowth on a step gradient of chondroitin sulfate proteoglycan (CS-PG). Journal of neurobiology. 23, 322-336 (1992).
  21. Snow, D. M., Mullins, N., Hynds, D. L. Nervous system-derived chondroitin sulfate proteoglycans regulate growth cone morphology and inhibit neurite outgrowth: A light, epifluorescence, and electron microscopy study. Microsc Res Tech. 54, 273-286 (2001).
  22. Barres, B. A., Silverstein, B. E., Corey, D. P., Chun, L. L. Immunological, morphological, and electrophysiological variation among retinal ganglion cells purified by panning. Neuron. 1, 791-803 (1988).
  23. Firnhaber, C., Hammarlund, M. Neuron-specific feeding RNAi in C. elegans and its use in a screen for essential genes required for GABA neuron function. PLoS genetics. 9, e1003921 (2013).
  24. Hamburger, V., Hamilton, H. L. A series of normal stages in the development of the chick embryo. 1951. Developmental dynamics : an official publication of the American Association of Anatomists. 195, 231-272 (1992).
  25. Hollyday, M. Chick wing innervation. I. Time course of innervation and early differentiation of the peripheral nerve pattern. The Journal of comparative neurology. 357, 242-253 (1995).
  26. Hollyday, M., Morgan-Carr, M. Chick wing innervation. II. Morphology of motor and sensory axons and their growth cones during early development. The Journal of comparative neurology. 357, 254-271 (1995).
  27. Honig, M. G., Kueter, J. The expression of cell adhesion molecules on the growth cones of chick cutaneous and muscle sensory neurons. Developmental biology. 167, 563-583 (1995).
  28. Tosney, K. W., Landmesser, L. T. Development of the major pathways for neurite outgrowth in the chick hindlimb. Developmental biology. 109, 193-214 (1985).
  29. Dontchev, V. D., Letourneau, P. C. Nerve growth factor and semaphorin 3A signaling pathways interact in regulating sensory neuronal growth cone motility. The Journal of neuroscience : the official journal of the Society for Neuroscience. 22, 6659-6669 (2002).
  30. Munoz, L. M., et al. Ephrin-A5 inhibits growth of embryonic sensory neurons. Developmental biology. 283, 397-408 (2005).
  31. Roche, F. K., Marsick, B. M., Letourneau, P. C. Protein synthesis in distal axons is not required for growth cone responses to guidance cues. The Journal of neuroscience : the official journal of the Society for Neuroscience. 29, 638-652 (2009).
  32. Condic, M. Adult neuronal regeneration induced by transgenic integrin expression. Journal of Neuroscience. 21, 4782-4788 (2001).
  33. Hory-Lee, F., Russell, M., Lindsay, R. M., Frank, E. Neurotrophin 3 supports the survival of developing muscle sensory neurons in culture. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 90, 2613-2617 (1993).
  34. Toyofuku, T., et al. FARP2 triggers signals for Sema3A-mediated axonal repulsion. Nature neuroscience. 8, 1712-1719 (2005).
  35. Steinmetz, M. P., et al. Chronic enhancement of the intrinsic growth capacity of sensory neurons combined with the degradation of inhibitory proteoglycans allows functional regeneration of sensory axons through the dorsal root entry zone in the mammalian spinal cord. The Journal of neuroscience : the official journal of the Society for Neuroscience. 25, 8066-8076 (2005).

Tags

علم الأعصاب، العدد 91، gangia الجذرية الظهرية، DRG والدجاج و
العزلة وثقافة فصل الخلايا العصبية الحسية من الفرخ الأجنة
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Powell, S., Vinod, A., Lemons, M. L. … More

Powell, S., Vinod, A., Lemons, M. L. Isolation and Culture of Dissociated Sensory Neurons From Chick Embryos. J. Vis. Exp. (91), e51991, doi:10.3791/51991 (2014).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter