Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Medicine

Внутрипросветный доставки лекарств к мыши артериовенозной фистулы эндотелия

Published: March 4, 2016 doi: 10.3791/53905

Abstract

Доставки терапевтических агентов для повышения артериовенозной фистулы (АВФ) Созревание можно вводить либо с помощью внутрипросветных или внешних маршрутов. Простой мышиной модели АВФ сочеталась с внутриполостного введения лекарственного раствора, в венозный эндотелий в то же самое время, что и создание свища. Технические аспекты этой модели обсуждаются. Под общим наркозом, брюшная надрез и аорта и нижняя полая вена (НПВ) подвергаются. Инфра-почечную аорта и IVC расчленены для зажима. После того, как проксимальный и дистальный зажим, место пункции подвергается и 25 G игла используется для прокола обе стенки аорты и в НПВ. Сразу же после того, как прокол, репортер ген-экспрессирующих вирусного вектора вливают в НПВ через ту же иглу, а затем 15 мин инкубации. Метод внутрипросветное администрирования позволили получить более надежную доставку генов вируса к венозным эндотелий по сравнению с введением по внешнему маршруту. Это новьел способ доставки будет содействовать проведению исследований, которые исследуют роль эндотелия в АВФ созревания и позволяют внутрипросветного доставки лекарств во время хирургической операции.

Introduction

Мышиный aortovenous свищ (AVF) прокол модель между аортой и нижней полой вены (НПВ) в настоящее время является отработанной технологией. 1 В этой модели, обе стенки инфра-почечные аорты проколотые с 25 G иглой, выход в прилегающая инфра-почечной полая вена; передняя аортального входное отверстие ремонтируется с простым сжатием, и не требует ремонта шовного. Последовательный последующий осмотр с высокой разрешающей способностью допплерографии и гистологический анализ показывает AVF иметь фазу созревания , а затем неудовлетворительную фазу, обобщал известную патофизиологии человека АВФ. 2

Для того, чтобы изучить механизмы, которые модулируют AVF созреванию, необходимы усовершенствованные способы доставки терапевтических агентов к созревающем АВФ эндотелий. Доставки терапевтических агентов для сосудов может быть либо путем эндоваскулярного доставки в полость, или с помощью внешнего доставки в адвентиции. Одним из примеров внешней доставки является комобычно используется адвентициальных применение Pluronic геля. Этот сополимер термообратимый и превращается из жидкого состояния в твердый гель при нагревании до температуры тела. Предшествующие исследования показали , длительной доставки лекарственного средства достигается , когда препарат смешивают в плуроника гель наносят местно в естественных условиях. 3,4 адвентициальных применение вирусных векторов или миРНК с Pluronic гель сообщалось , чтобы быть эффективным в качестве околососудистой системы доставки. 5,6 We также сообщили , что лечение эксплантированной подкожных вен человека с адвентиции стимуляции пептидами приводит к фосфорилированию эндотелиальных рецепторных белков. 7

С другой стороны, исследователи также использовали в просвете доставку обоих вирусных и невирусных векторов в собачьих 8-10 и кроличьи 11,12 моделей венозных шунтов. В этих докладах, перенос генов был проведен после того, как экс виво вены урожая. Ислами и др. Сообщили эндоваскулярная вирусный ген доставкиу каротидной вены на месте без создания обхода. 13 Gloverman и др. сообщает внутрипросветное и адвентиции доставки голой ДНК в бедренной артерии крысы-поверхностной эпигастральной вены свищей. 14 Группа Mayo сообщили адвентициальных доставки лекарств в сонную артерию мыши-яремной вены свищей. 15,16 Однако эти ранее сообщенные модели требовали ушивают анастомоз для создания АВФ. В этом докладе, внутрипросветное доставки лекарственных средств с одновременным созданием АВФ у мышей описано, с использованием шовного-менее модель создания АВФ. С помощью этого модифицированного мышиной модели AVF может быть выполнена простой способ для внутриполостной доставки лекарственных средств к венозной конечности свища.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

Об утверждении соответствующих институциональных животных по уходу и использованию Комитетом получается.

1. Обезболивание и Дооперационные процедуры

  1. Обезболить мужчина C57BL / 6 льда, в возрасте 8 недель, с испарившейся 3% изофлуран и 0,8 л / мин кислорода вводят в акриловой индукции камеры.
  2. Подтверждение адекватной анестезии из-за отсутствия реакции до ног крайнем случае. Поместите лежачем мыши на операционном столе и поместите силиконовую маску для доставки испаряются 2 - 3% изофлуран при непрерывном вдыхании.
  3. Удалить вентральной волосы от шеи до нижней части живота с использованием химической депиляции крем.
  4. Выполните доплеровский УЗИ до АВФ хирургии для записи базовых характеристик артериального и венозного кровотока и диаметра сосуда в областях , представляющих интерес. 1,2
  5. Приложить 1 мл шприц с иглой 25 G и загрузите шприц с желаемого лекарственного средства. Изгиб иглы под углом 60 градусов приблизительно 4 мм от необходимостиле наконечник. Возьмите 25 г иглу с изогнутым держателем иглы.

2. Оперативные процедуры

  1. Подготовьте место надреза с местным антисептиком и применять хирургические драпировка. Используйте стерильные перчатки и инструменты для поддержания асептики на протяжении операции.
  2. Делают разрез по средней линии живота скальпелем простирается от уровня нижнего края печени до чуть выше лобка.
  3. Вставьте втягивающим и потрошить все кишки из брюшной полости по направлению к правой стороне. Оберните кишечник в марлю, смоченным физиологическим раствором. Рассеките мембрану, соединяющую ретро-брюшины и нижней части толстой кишки, чтобы получить полное представление аорты и нижней полой вены.
  4. Рассеките инфра-почечные аорту и IVC от окружающих тканей, готовясь к проксимального и дистального зажима.
  5. Поместите одного клипа микрохирургии через оба проксимальной аорты и проксимальных IVC на уровне чуть ниже левой почечной вены. Поместите второй клип микрохирургии через как Distal аорта и дистальный НПВ.
  6. Возьмитесь соединительной ткани , окружающей аорту и вращать медиально так, чтобы дорсальной аорты приоткрыта для артериальной пункции, как было описано ранее. 1
  7. Быстро обнажить место прокола. Сайт прокол будет каудальной сосудов, примерно три четверти расстояния от левой почечной вены до бифуркации аорты. Сохраняя аорту в повернутом положении левой рукой, рассекают левую боковой край аорты, так что есть достаточно экспозиции, чтобы прокол правой рукой. Будьте осторожны, чтобы не рассечь между аортой и нижней полой вены.
  8. Поддерживать аорту в повернутом положении и проткнуть аорту через в НПВ с использованием 25 G иглы с прикрепленным 1 мл шприц, содержащий раствор лекарственного средства. (Рисунок 1А)
  9. Настаивать лекарственного раствора (100 - 200 мкл), используя левую руку. Игла можно увидеть через дилатационная и тонкийIVC стенки , когда прозрачный раствор лекарственного средства вытесняет венозной крови из нижней полой вены (рис 1B, C). Остаются еще и поддерживать иглу в заданном положении в течение 15 мин.
  10. Удалите дистального микрохирургии зажим для снятия зажима только дистального аорту и дистального IVC.
  11. Удалите иглу, а затем покрывают место прокола аорты путем подтягивания смежную ретро-перитонеального ткани.
  12. Удалите проксимальный микрохирургии зажим для снятия зажима проксимального аорту и проксимальных IVC. После де-зажима, артериальная кровь течет наблюдаемый в НПВ вместо темной венозного кровотока. Держите покрытие проколу отверстие в течение 1 мин.
  13. После подтверждения гемостаза наблюдением в течение 30 сек без сжатия, возвращают кишечники в их естественное положение и закройте живот с запущенным швом в соответствии с утвержденным протоколом вашего животного.

3. Послеоперационные процедуры

  1. После закрытия брюшной полости, прекратить ANESThesia. Применить послеоперационный уход, включая обезболивание и уход за раной в соответствии с инструкциями, рекомендованными по уходу и использованию комитета Institutional животных путем. Для анальгезии мы используем бупренорфин в дозе 0,1 мг / кг каждые 12 intrasmuscularly ч в течение 24 ч, следуя хирургическим процедурам.
  2. В первый день после операции, выполнять доплеровский УЗИ, чтобы подтвердить проходимость АВФ. Кроме того, измерения другой сосуд и последовательно характеристики потока , и сравнить изменения из дооперационными исходных значений. 1,2

Рисунок 1
Рисунок 1. (A) Оперативная фотография Отображение внутрипросветное во время доставки АВФ хирургии. Зажмите проксимальной и дистальной аорты, а также IVC путем применения микрохирургические клипов. Прокол аорту через в НПВ с помощью 25 G иглу с подсоединенным шприц , содержащий раствор лекарственного средства. (В) HigЕе сила изображения (4X увеличение) проколотой IVC перед инфузией. Кончик иглы затемняется темного цвета венозной крови. Желтые наконечники стрел обозначают диаметр от стены к стене НПВ. (C) Высшая Сила изображения (4X увеличение) проколотой IVC после инфузии. Кончик иглы (черная стрелка) можно увидеть через слегка раздутым и тонкой IVC стенки (желтые стрелки) в качестве прозрачного раствора лекарственного средства вытесняет венозной крови.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

В серии из 33 мышей, выживание на первый послеоперационный день был 97,0%; АВФ проходимость, как определено с помощью ультразвука, был 84,9%.

сравнивали Gene эффективность трансдукции этого эндоваскулярного маршрута доставки с традиционным внешним маршрутом. Для внутриполостного доставки (ILD), сразу же после того, как прокол, 200 мкл аденовируса-GFP (Ad-GFP) , решение вектора (1 × 10 9 БОЕ / мл) вводили в НПВ через прокалывания иглой, а затем 15 мин времени инкубации , Контрольные мыши получали адвентициальных доставку (AD) из Ad-GFP (1 × 10 9 БОЕ / мл) до НПВ с использованием Pluronic гель. Образцы были эксплантировали через 24 часа после воздействия аденовирусных векторов. Экспрессия GFP у стенки НПВ и свищей оценивали путем наблюдения ан-слойного из интимы с помощью флуоресцентной микроскопии, а также гистологического исследования в разделах с использованием анти-GFPантитело.

En наблюдение показало более сильное лицо экспрессию GFP в стенке IVC у мышей , получавших ИСД по сравнению с AD, с характерным увеличением вокруг свища через 24 часа (фиг.2А). выражение GFP был стойким в обеих группах через 72 ч после трансфекции (данные не показаны). Гистологический анализ с анти-GFP антител показали более надежную и сайт-специфической экспрессии GFP в интиме НПВ у мышей, получавших ИСД по сравнению с AD. (Фигура 2В). Для того, чтобы подтвердить эти результаты, инфра-почечная ВАХ, обработанные аденовирусом-GFP с помощью AD или ИСД были собраны для Вестерн-блоттинга. экспрессия GFP белка было достаточно для обнаружения только после того, как ИСД, предлагая превосходную вирусную доставки лекарств к стене IVC через внутриполостной маршрут через 24 часа после трансфекции.

фигура 2
Рисунок 2. Поставка аденовируса-GFP к АВФ Lumen Усиливает GFP Expression. (A) Представитель иммунофлюоресценции показ собственной точки зрения лица эндотелия АВФ (24 ч) у мышей , получавших аденовируса-GFP применяемой адвентиции доставки (вверху) или путем внутриполостного доставки (внизу). Бар показывает 25 мкм. (B) Представитель иммунофлюоресценции показывает разделы эндотелий АВФ (24 ч) у мышей , получавших аденовируса-GFP применяемой адвентиции доставки (вверху) или путем внутриполостного доставки (внизу). * Обозначает просвет НПВ; столбик показывает 25 мкм. (C) Представитель Вестерн - блот , показывающий обнаружение GFP в АВФ , обработанных аденовируса-GFP применяется через адвентиции или внутриполостной маршруту.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

Эта модификация мышиной модели АВФ включает внутрипросветного доставки лекарственного средства к венозным эндотелий в момент создания АВФ. АВФ была создана путем прокалывания инфра-почечный аорту с 25 G иглой и расширение пункции через противоположную стенку аорты в НПВ, а затем с помощью инъекции раствора лекарственного средства через ту же иглу. Раствор поддерживается внутри кавальной, то есть., В венозной конечности АВФ, пока де-зажима. Что отличает эту модель от других мышиных моделях AVF 17-19 является отсутствие швов или клеев , которые могут вызвать стеноз, острый тромбоз, а также возможное вмешательство молекулярного анализа. Возможность использовать ту же иглу, которая прокалывает аорту и IVC для создания АВФ также доставить наркотики в просвет AVF позволяет упростить доставку с минимальными манипуляциями судна.

Есть некоторые важные шаги и точки для повышения результативности и последовательности процедуры. Пиарoximal зажим аорты и нижней полой вены находится ниже левой почечной вены. Если имеются большие поясничные вены в верхней части инфра-почечные IVC, а затем модификацию участка зажимного ниже этих судов рекомендуется, чтобы обеспечить эффективную инкубацию препарата без разбавления путем ретроградного обратного кровотечения из поясничных вен. Дистальный зажим аорты и нижней полой вены находится на уровне подвздошной бифуркацией, чтобы он не может помешать игольного прокола дистальной аорты и нижней полой вены. Удерживая иглу 25 G с изогнутым держателем иглы обеспечивает оптимальное направление иглы при пункции сосуда. Гемостаз достигается за счет покрытия артериальную входное отверстие со смежным ретро-брюшины. Особое внимание уделяется , чтобы обеспечить тщательное сжатие, избегая при этом AVF окклюзия и тромбоз , как описано выше. 1

Развитие технологии переноса генов предлагает возможность модифицировать хирургические результаты на молекулярном уровне. Отчеты, описывающие вtraluminal доставки генов в вену в основном фокусировались на целенаправленного лечения недостаточности вен трансплантата. В отличие от этого, эта модель позволяет для доставки лекарственного средства для модуляции AVF созревания. Преимущества этой модели включают в себя использование мышиной модели, позволяющей изучение различной генетической линии мышей. Кроме того, в 15-ти мин внутрипросветное протокол экспозиции легко перенести в клинических интраоперационных условиях и может помочь оценить пригородных процедурный мероприятий по профилактике Juxta-анастомотических стеноз, что обычно усложняет человеческую операцию АВФ. Из этих первоначальных результатов, мы покажем, что этот метод дает больше экспрессии генов конкретного участка в эндотелий по сравнению с традиционным внешним маршрутом.

Потенциальным ограничением этого исследования является влияние переменного давления вздутие на НПВ. Выделение сегмента НПВ не является совершенным в этой модели мыши, то есть., Боковые ветви (поясничные вены) не были лигированы. Таким образом, трудно точно MAINTАйн постоянный уровень давления распирания во время инкубации. Хотя IVC осторожно растянут вручную инфузии, более высокие надувание давление может вызвать гиперплазию неоинтимы 20,21 и прямое повреждение клеток гладких мышц, что приводит к 11 интерференции в анализе. Кроме того, трудно полностью количественно оценить эффективность доставки лекарственного средства, так как некоторые лекарства может быть потеряно во время поставки через поясничные вены, а также после снятия зажима через проксимальный НПВ и потенциально через АВФ в аорту. И, наконец, этот метод позволяет некоторым из препарата будет выпущен системно после снятия зажима; эвакуация препарата и промывание сайта может предотвратить системное высвобождение, но количественной оценки степени вымывания препарата необходимо будет подтверждена.

В заключение, это техническое модификация мышиной модели АВФ является относительно простым и воспроизводимым и позволяет целевой эндотелиальную доставки лекарства в АВФ мыши. Внутрипросветный вв то проекция время создания АВФ технически осуществима и может успешно повысить вирусную экспрессию генов в эндотелии по сравнению с адвентиции доставкой. Эта модель доставки АВФ-лекарственное средство будет полезным модальность не только для рассечения механизмов, которые регулируют венозный AVF созреванию конечности, но и для терапевтической модуляции АВФ созревания.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Pluronic F-127 Sigma-Aldrich P2443-250G Used as 30% solution in d-water
GFP antibody NOVUS BIOLOGICALS INC NB100-1770
Ad-CMV-GFP VECTOR BIOLABS 1060
0.9% Sodium Chloride Irrigation, USP Baxter 2F7122
BD PrecisionGlide Needle 25 G x 5/8 BD 305122
BD 1 ml Syringe Tuberculin Slip Tip BD 309659
Scalpel Surgical Design Inc 22079707
6-0 ETHILON P-1 11 mm 3/8c Reverse Cutting ETHICON INC 697G
Vevo 770 ultrasound machine  Visualsonics  20 - 60 Mhz scan head; RMV-704
Vascular clamp  Roboz Surgical Instrument Co. RS-5424
Clamp applying forceps  Roboz Surgical Instrument Co. RS-5410

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Yamamoto, K., Li, X., Shu, C., Miyata, T., Dardik, A. Technical Aspects of the Mouse Aortocaval Fistula. J. Vis. Exp. (77), e50449 (2013).
  2. Yamamoto, K., et al. The mouse aortocaval fistula recapitulates human arteriovenous fistula maturation. Am. J. Physiol.: Heart Circ. Physiol. 305 (12), H1718-H1725 (2013).
  3. Escobar-Chávez, J. J., Lòpez-Cervantes, M., Naïk, A., Kalia, Y. N., Quintanar-Guerrero, D., Ganem-Quintanar, A. Applications of thermo-reversible pluronic F-127 gels in pharmaceutical formulations. J. Pharm. Pharm. Sci. 9 (3), 339-358 (2006).
  4. Almeida, H., Amaral, M. H., Lobão, P., Lobo, J. M. S. Pluronic® F-127 and Pluronic Lecithin Organogel (PLO): main features and their applications in topical and transdermal administration of drugs. J. Pharm. Pharm. Sci. 15 (4), 592-605 (2012).
  5. Karper, J. C., et al. Toll-like receptor 4 is involved in human and mouse vein graft remodeling, and local gene silencing reduces vein graft disease in hypercholesterolemic APOE*3Leiden mice. Arterioscler., Thromb., Vasc. Biol. 31 (5), 1033-1040 (2011).
  6. Redmond, E. M., Hamm, K., Cullen, J. P., Hatch, E., Cahill, P. A., Morrow, D. Inhibition of patched-1 prevents injury-induced neointimal hyperplasia. Arterioscler., Thromb., Vasc. Biol. 33 (8), 1960-1964 (2013).
  7. Wong, D. J., et al. Ephrin type-B receptor 4 activation reduces neointimal hyperplasia in human saphenous vein in vitro. J. Vasc. Surg. , (2014).
  8. Matsumoto, T., et al. Hemagglutinating virus of Japan-liposome-mediated gene transfer of endothelial cell nitric oxide synthase inhibits intimal hyperplasia of canine vein grafts under conditions of poor runoff. J. Vasc. Surg. 27 (1), 135-144 (1998).
  9. Petrofski, J. A., et al. Gene delivery to aortocoronary saphenous vein grafts in a large animal model of intimal hyperplasia. J. Thorac. Cardiovasc. Surg. 127 (1), 27-33 (2004).
  10. Hata, J. A., et al. Modulation of phosphatidylinositol 3-kinase signaling reduces intimal hyperplasia in aortocoronary saphenous vein grafts. J. Thorac. Cardiovasc. Surg. 129 (6), 1405-1413 (2005).
  11. Ohta, S., et al. Intraluminal gene transfer of endothelial cell-nitric oxide synthase suppresses intimal hyperplasia of vein grafts in cholesterol-fed rabbit: a limited biological effect as a result of the loss of medial smooth muscle cells. Surg. 131 (6), 644-653 (2002).
  12. Baldwin, Z. K., et al. Modulation of vascular remodeling induced by a brief intraluminal exposure to the recombinant R7020 strain of Herpes simplex-1. J. Vasc. Surg. 41 (1), 115-121 (2005).
  13. Eslami, M. H., et al. Gene delivery to in situ veins: differential effects of adenovirus and adeno-associated viral vectors. J. Vasc. Surg. 31 (6), 1149-1159 (2000).
  14. Globerman, A. S., et al. Efficient transgene expression from naked DNA delivered into an arterio-venous fistula model for kidney dialysis. J. Gene Med. 13 (11), 611-621 (2011).
  15. Yang, B., et al. Adventitial transduction of lentivirus-shRNA-VEGF-A in arteriovenous fistula reduces venous stenosis formation. Kidney Int. 85 (2), 289-306 (2014).
  16. Brahmbhatt, A., et al. The role of Iex-1 in the pathogenesis of venous neointimal hyperplasia associated with hemodialysis arteriovenous fistula. PLoS ONE. 9 (7), e102542 (2014).
  17. Karram, T., et al. Induction of cardiac hypertrophy by a controlled reproducible sutureless aortocaval shunt in the mouse. J. Investig. Surg. 18 (6), 325-334 (2005).
  18. Perry, G. J., et al. Genetic variation in angiotensin-converting enzyme does not prevent development of cardiac hypertrophy or upregulation of angiotensin II in response to aortocaval fistula. Circ. 103 (7), 1012-1016 (2001).
  19. Guzman, R. J., Krystkowiak, A., Zarins, C. K. Early and sustained medial cell activation after aortocaval fistula creation in mice. J. Surg. Res. 108 (1), 112-121 (2002).
  20. Alexander, J. H., et al. Efficacy and safety of edifoligide, an E2F transcription factor decoy, for prevention of vein graft failure following coronary artery bypass graft surgery: PREVENT IV: a randomized controlled trial. JAMA. 294 (19), 2446-2454 (2005).
  21. Khaleel, M. S., et al. High-pressure distention of the saphenous vein during preparation results in increased markers of inflammation: a potential mechanism for graft failure. Ann. thorac. surg. 93 (2), 552-558 (2012).

Tags

Медицина выпуск 109 сосудистой биологии медицине артериовенозная фистула аорта нижняя полая вена аорто-кавальной свищ мышь модель животного доставки лекарственного средства хирургические методы
Внутрипросветный доставки лекарств к мыши артериовенозной фистулы эндотелия
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Hashimoto, T., Yamamoto, K., Foster, More

Hashimoto, T., Yamamoto, K., Foster, T., Bai, H., Shigematsu, K., Dardik, A. Intraluminal Drug Delivery to the Mouse Arteriovenous Fistula Endothelium. J. Vis. Exp. (109), e53905, doi:10.3791/53905 (2016).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter