Abstract
Zika Virus (ZIKV) es un patógeno emergente que está vinculado a anomalías en el desarrollo del feto, como microcefalia, defectos oculares y problemas de crecimiento. ZIKV es un virus ARN de la familia Flaviviridae. ZIKV se transmite principalmente a través de los mosquitos, pero también puede ser transmitida por la madre a la transmisión vertical del feto, así como el contacto sexual. Hasta la fecha, no existen opciones de tratamiento o vacunas fiables disponibles para proteger a las personas infectadas por el virus. El desarrollo de un sistema reproducible y eficaz de virus Zika infecciosa cultivo celular es fundamental para el estudio de los mecanismos moleculares de la replicación ZIKV así como el desarrollo de medicamentos y vacunas. En este sentido, se informa aquí un protocolo que describe un sistema de mamífero basado en células in vitro Zika virus de cultivo para el análisis de la producción y el crecimiento viral. Se presentan detalles sobre la formación de placas por el virus Zika en una monocapa de células y la placa de ensayo para medir el título viral. la cinética de replicación del genoma viraly los intermedios replicatory de doble cadena de ARN del genoma se determinan. Esta plataforma de cultivo se utiliza para la pantalla contra una biblioteca de un pequeño conjunto de citoquinas que resultan en la identificación de interferón α (IFN-α), IFN-β y IFN-γ como inhibidores potentes de crecimiento viral Zika. En resumen, un sistema in vitro infecciosa viral Zika la cultura y diversos ensayos virológicos se ponen de manifiesto en este estudio, que tiene el potencial de beneficiar en gran medida la comunidad de investigación para dilucidar aún más los mecanismos de patogénesis viral y la evolución de la virulencia del virus. Antiviral de IFN-alfa más se puede evaluar como profiláctico posterior a la exposición, y la opción profiláctica, el tratamiento de las infecciones por virus Zika en poblaciones de alto riesgo, incluidas las mujeres embarazadas infectadas.
Introduction
Zika Virus (ZIKV) es un importante patógeno humano asociado con microcefalia y los pobres resultados del embarazo 1,4. ZIKV pertenece al conjunto de los flavivirus médicamente relevantes que pueden causar defectos neurológicos tales como el dengue, del Nilo Occidental, y virus de la encefalitis de San Luis. El principal modo de transmisión viral es por el mosquito vector Aedes aegypti, y, además, la transmisión sexual también se ha informado de 5,6. ZIKV se ha convertido en un problema de salud mundial importante debido a la expansión de la distribución geográfica del mosquito vector y su fuerte correlación con defectos de nacimiento. ZIKV primero fue aislado en 1947 a partir de un mono rhesus centinela en el bosque Zika, Uganda y el primer caso humano se informó en 1952 7,8. Los individuos que se infectan con ZIKV presentarse con síntomas leves como fiebre, erupción cutánea, dolor de cabeza, conjuntivitis, dolor muscular y / conjunta. Las mujeres embarazadas infectadas pueden transmitir ZIKV al feto en desarrollo 1. ZIKV infección también se ha relacionado con el síndrome de Guillain-Barre, un trastorno del nervio periférico desmielinización autoinmune 9.
El genoma viral Zika consiste en un sentido positivo, molécula de ARN de cadena simple que es de aproximadamente 10,8 kilobases de longitud. La estructura del genoma está organizado como 5'NCR-C-prM-E-NS1-NS2A-NS2B-NS3-NS4A-2K-NS4B-NS5-3'NCR, con las regiones no codificantes (NCR) que flanquean una región codificadora de proteínas 6. Una sola poliproteína (3419 aa) se traduce en que es co- y post-translacional escindido en 10 péptidos más pequeños. Tanto el 5'NCR y las estructuras de tallo-bucle de ARN 3'NCR juegan un papel crítico en el inicio de la traducción del genoma viral y la replicación. Los componentes estructurales del genoma se componen de las proteínas de la cápside, de membrana, y el sobre. Las proteínas no estructurales son críticos para la replicación del genoma.
En la actualidad, las cepas virales Zika se agrupan en tres genotipos principales: África Occidental, África Oriental y Asia 6,10-13. Se ha propuesto que el linaje de África Oriental extendido a África Occidental y Asia, donde más tarde se convirtió otros 12. El genotipo asiático es responsable de los brotes actuales en las Américas. virus Zika se puede cultivar tanto en mosquitos y células de mamíferos. Fibroblastos primarios dérmicas, células dendríticas inmaduras, células progenitoras neuronales corticales y células Vero son susceptibles a la infección viral Zika 10,14,15. Ambos tipo I y tipo II interferones han demostrado restringir el crecimiento ZIKV en fibroblastos de la piel 15. Los objetivos de este estudio son proporcionar un protocolo detallado paso a paso para la producción y ensayando del genotipo asiático ZIKA PRVABC59 cepa viral en un sistema de cultivo de células de mamíferos y para demostrar la utilidad de este sistema de cultivo infecciosa como una plataforma de desarrollo de fármacos. Este recurso tiene el potencial de beneficiar en gran medida la comunidad de investigación neurológica viral y Zika para esclarecer aún más its mecanismos de patogénesis viral y la evolución de la virulencia del virus.
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Protocol
Nota: Un plan esquemático del flujo de trabajo se presenta en la Figura 1.
1. Las células
- Utilizar células Vero para la producción de virus Zika y análisis de ciclo de replicación viral.
- Preparar medio completo de crecimiento que contiene 10% de suero bovino fetal (FBS), 2 mM L-glutamina, penicilina (100 unidades / ml), estreptomicina (100 unidades / ml), y HEPES 10 mM.
- Células Vero de cultivo con el medio de crecimiento completo especificado a 37 ° C con 5% de CO 2.
2. Zika Virus Producción
- Recoger las células Vero a una densidad celular del 80% utilizando tripsina al 0,25% en T-75 frasco y contar las células.
- Aspirar los medios de comunicación del matraz de cultivo T-75 y enjuagar las células con 2 ml de tampón fosfato salino (PBS).
- Añadir 2 ml de tripsina al 0,25% y se incuba el matraz a 37 ° C durante 5 min.
- Añadir 8 ml de suero que contienen medio de crecimiento para inactivar la tripsina. Pipetear hacia arriba y hacia abajo para el SUScélulas Pend y transfieren las células a un tubo de 15 ml.
- Retire 10 l de células y se mezcla con la misma cantidad de 0,4% de azul de tripano. Cargar la mezcla preparada a la diapositiva cámara de recuento celular y obtener recuentos de células viables utilizando un contador de células automatizado.
- Sembrar un total de 7 millones de células en un volumen de 30 ml en un matraz T-160.
- El día siguiente, preparar una multiplicidad adecuada de infección (MOI de 0,01 a 0,1) de Zika inóculo del virus en un medio de cultivo libre de suero de 10 ml por matraz.
- Retire el medio gastado del matraz T-160 y luego añadir el inóculo viral recién preparado (10 ml).
- Incubar los matraces inoculados en 37 ° C con 5% de CO2 durante 4-6 horas. Difundir el inóculo inclinando suavemente los frascos de lado en cada hora.
- A la finalización de la incubación, reemplazar el inóculo con el medio caliente suplementado con suero de crecimiento (30 ml) para cada matraz. Luego continuar con el cultivo viral para el próximo 96 h.
- Verificar la progresión de eninfección mediante la observación de la aparición de placas virales en la monocapa de células utilizando un microscopio de contraste de fase y tomar imágenes (Figura 2), según sea necesario a 40X y 200X aumentos.
Figura 2:. Las placas formadas por el virus Zika en una monocapa de células Vero imágenes de campo claro de diversas ampliaciones muestran zonas de virus Zika a las 48 hpi. Cabe destacar la presencia de focos de células redondeadas en la monocapa. (Barra de escala = 50 micras) Por favor, haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.
- Cosecha sobrenadantes de cultivo celular en el punto de tiempo de 96 hr y se centrifuga el sobrenadante a 300 xg durante 10 min a 4 ° C para eliminar los restos celulares.
- Retirar con cuidado el sobrenadante sin restos peletizado inquietante y transferencia de to tubos de 15 ml. Ultracentrifugación a 24.000 xg se puede realizar para concentrar las partículas virales (opcional).
- Almacenar los sobrenadantes de los cultivos virales en múltiples alícuotas a -80 ° C.
3. Medir Zika título del virus mediante ensayo en placa
- Las células Vero ingenuas de semillas a 1 x 10 5 células por pocillo en 2 ml de volumen utilizando una placa de 12 pocillos.
- Al día siguiente, se preparan 10 diluciones seriadas de sobrenadantes de cultivos virales obtenidos de los T-160 matraz utilizando un medio libre de suero. Retire el material usado de cada pocillo y añadir 400 l de inóculo preparado en células Vero por triplicado.
- Se incuban los matraces inoculados en 37 ° C con 5% de CO2 durante 4-6 horas. Difundir el inóculo inclinando suavemente la placa de lado en cada uno hr.
- Al final de la incubación, reemplazar el inóculo con medio de suero suplementado (2 ml por pocillo).
- A las 48 horas después de la inoculación, contar el focos virales usando una fase contrast microscopio. Calcular el título viral como unidades formadoras de placas (PFU) por ml. Vea la Figura 3 para el ensayo de placa.
- Fijar y teñir las células en 4% de formaldehído y solución de cristal violeta 0,1% preparados en 20% de etanol durante clara visualización de las placas.
Ensayo 4. Zika Viral Genome replicación
- Las células Vero ingenuas de semillas a 1 x 10 5 células por pocillo en volúmenes de 2 ml utilizando una placa de 12 pocillos. El día siguiente, se preparan inóculos viral (MOI de 0,01 y 0,1; 400 l / pocillo) de bajo y alto título usando medio libre de suero por triplicado. Para infección simulada, utilizar suero libre de los medios de comunicación (400 l / pocillo) solamente.
- Repita los pasos 3.2 a 3.4.
- En los 48 y 96 puntos de tiempo hr, recoger las muestras de ARN e inmunocitoquímica (CPI).
- Para la recolección de muestras de ARN, extraiga el soporte y luego añadir 400 l de solución de lisis directamente a cada pocillo y recoger los lisados.
- Para la CCI, retire los medios de comunicación y tgallina fijar las células mediante la adición de 1 ml de metanol a cada pocillo y se incuba la placa a 4 ° C durante 30 min.
- Desde el lisado de células, aislar el ARN total usando un kit de aislamiento de ARN según las instrucciones del fabricante. Cuantificar el ARN usando un espectrofotómetro.
- Realizar una transcripción inversa de dos pasos de PCR cuantitativa (RT-qPCR) para determinar el contenido genoma ZIKV a partir de ARN cosechado.
- Para invertir transcribir el ARN, establecer primero una mezcla de reacción de 13 l integrado por 5 g de ARN aislado, 1 l de dNTPs (10 mM) y 1 l de hexámero aleatorio (250 ng) en un tubo de 0,2 ml. Incubar el tubo a 65 ° C durante 5 min y luego se coloca en hielo durante un minuto. Posteriormente, añadir 1 l de la transcriptasa inversa, 4 l de tampón de síntesis de la cadena 5x, 1 l de 0,1 M de ditiotreitol y 1 l de inhibidor de RNasa a la mezcla de reacción. Incubar el tubo durante 5 minutos adicionales a 25 ° C, seguido de 60 min a 50 ° C y inactivcomió la reacción por calentamiento a 70 ° C durante 15 min.
- Realizar qPCR utilizando 1 l del cDNA resultante con 12,5 l de colorante verde 2x Super Mix contienen ADN polimerasa y 1 l de 10 mM cebadores individuales específicos para el virus Zika [virus cebadores pan-genotipo Zika (Para: 5'-AARTACACATACCARAACAAAGTGGT-3 ' ; Rev: 5'-TCCRCTCCCYCTYTGGTCTTG-3 '), virus Zika genotipo asiático cebadores de deformación PRVABC59 (5'-AAGTACACATACCAAAACAAAGTGGT-3'; Rev: 5'-TCCGCTCCCCCTTTGGTCTTG-3 ')], o virus de la hepatitis C (JFH RTQ F: 5 'CTGGGTCCTTTCTTGGATAA-3; JFH RTQ R: 5'CCTATCAGGCAGTACCACA-3'), o limpieza gen GAPDH celular (Por: 5'-CCACCTTTGACGCTGGG-3 '; Rev: 5'-CATACCAGGAAATGAGCTTGACA-3') en un volumen de reacción de 25 l.
- Realizar PCR utilizando la condición de ejecución 95 ° C durante 15 seg y 60 ° C durante 30 seg (40 ciclos) en un sistema de PCR en tiempo real.
- Use el nivel de expresión de GAPDH basado en el valor de ciclo umbral (Ct) para normalizar la Zika medición genoma viral. Calcular el valor de delta Ct (Ct) de Zika genoma en comparación con la de GAPDH y obtener el valor 2? Ct. A continuación, calcular el factor de cambio tomando la relación de contenidos normalizados genoma Zika entre las células infectadas y no infectadas en los puntos de tiempo indicados. Ver Figura 4 para los resultados de la replicación del genoma ZIKV.
- Realizar ICC utilizando las células de metanol fijo.
- Lavar las células fijadas tres veces con 1x PBS y bloquear con tampón de bloqueo ICC (suero de cabra al 3%, 3% de BSA, 0,1% de Triton x-100 en PBS).
- Utilice monoclonal de ratón J2 anticuerpo anti-dsRNA (1 mg / ml) a una dilución de 1: 100 en tampón de bloqueo y se incuba durante la noche a 4 ° C.
- Se lavan las células con PBS 1x y añadir anticuerpo secundario de cabra anti-IgG de ratón-594 (1 mg / ml) a una dilución 1: 1000 en tampón de bloqueo y se incuba durante una hora a temperatura ambiente.
- Lavar las células con PBS 1x y las manchas de núcleos utilizando colorante Hoechst yobservar las células utilizando un microscopio de fluorescencia con un aumento de 100X (Figura 4).
5. biblioteca de detección de citoquinas contra la infección por el virus Zika
- Sembrar las células Vero ingenuas en células de 1 x 10 5 por pocillo usando una placa de 12 pocillos. Una vez que las células están unidas (6 horas después de la siembra), agregue cada uno de citoquinas a las concentraciones indicadas en los duplicados biológicos (2 ml de volumen / pocillo). Incluir vehículo (PBS) de control solo.
- A las 12 horas post-tratamiento, lleve a cabo la infección viral Zika (MOI de 0,1 en 400 l por pocillo). Incluir pocillos de control negativo sin infección (simulacro).
- A las 4 horas después de la infección, sustituir el inóculo viral con los medios de comunicación tratado de citoquinas (2 ml). Se incuban las células a 37 ° C durante 44 h adicionales.
- En 48 horas después de la infección, contar las placas virales utilizando un microscopio de contraste de fases y adquirir imágenes representativas de las células infectadas a 40X de aumento (Figura 5).
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Representative Results
Una cepa viral Zika (PRVABC59; número de acceso GenBank KU501215) del genotipo asiático se utilizó en este estudio 12. Se utilizaron células Vero a 80% de confluencia para la investigación de novo infección viral Zika. Para la producción viral y caracterización virológica posterior, se empleó un paso precoz del virus (P3) Zika. Se observaron las placas virales en el segundo día de la infección. Zika progenie viral liberados de la célula infectada puede transmitir inicialmente a las células vecinas, que dan lugar a la formación de placas visibles en el cultivo en monocapa (Figura 2). El efecto citopático (CPE) de la infección viral Zika se caracteriza por cambios morfológicos, tales como el redondeo y el desprendimiento de células, así como la muerte celular lítico.
Para medir el título viral, el sobrenadante libre de células que contiene el virus cosechado de T-160 matraces se sometió a 10-fold dilución en serie y se añade a la monocapa de células Vero en un formato de placa de 12 pocillos (Figura 3). El punto de tiempo después de la inoculación 48 hr se utilizó como criterio de valoración para evitar contar las placas resultantes de la infección secundaria. Los pozos con 30-100 placas fueron elegidos para el recuento para obtener un título preciso.
ensayo de RT-qPCR se utilizó para estimar la replicación del genoma de virus Zika. Se incluyó un par de cebadores pan-genotipo específico para la región NS5 ZIKV altamente conservada 3,16. Zika primers específicos PRVABC59 cepa viral basados en la localización genómica de cebadores pan-genotípica (secuencias de cebadores se dan en la sección de protocolo 4.4.2) también fueron probados. Ambos de los pares de cebadores mostraron niveles similares de sensibilidad en la amplificación de genoma viral Zika partir de células infectadas (Figura 4). Como control negativo, los cebadores específicos del virus de la hepatitis C se ensayaron también 17. Una significativa incrfacilidad en el contenido genoma viral ZIKV se observó entre 48 y 96 puntos de tiempo hr tanto en el bajo y alto MOI células infectadas, lo que sugiere una infección viral robusta (Figura 4). Durante la replicación del genoma Flavivirus, (ds) de ARN de doble cadena intermedios replicatory se generan por la formación de apareamiento de bases entre el sentido y anti-sentido ARN genómico. Una sonda de anticuerpo específicamente para el reconocimiento de dsRNA detectaron células infectadas por virus (Figura 4). Viral dsRNA se localiza en el citoplasma que sugiere que los compartimentos de la replicación del genoma. tinción inmunocitoquímica reveló expansión de las células infectadas por el virus durante los 48 y 96 puntos de tiempo hr.
Usando el sistema de cultivo de virus infeccioso Zika, una pequeña biblioteca de citoquinas se proyectó para determinar la actividad antiviral (Figura 5). Las células fueron pre-tratadas con varias citoquinas durante 12 horas y luego se infectaron con el virus Zika. I i Tipo nterferon, IFN-α, exhibió fuerte actividad antiviral contra el virus Zika en una amplia gama de dosis probadas [10 unidades internacionales (UI), 100 UI y 1.000 UI]. IFN-β demostró un potente efecto inhibidor también. Tipo II IFN-γ también demostró anti-Zika actividad viral. Citocinas TNF-α, IL-1 e IL-6 no inhibió ZIKV en las concentraciones de fármaco indicadas.
Figura 1:. Esquema general de la producción de virus Zika y flujo de trabajo de ensayo para la producción de virus, ZIKV se inoculó en células Vero en T-160 frascos de cultivo de tejidos. A las 48 o 96 hpi, el sobrenadante de virus libre de células se recoge y se almacena a -80 ° C para el análisis de aguas abajo. título de virus se mide mediante un ensayo de dilución limitante. El inóculo de virus Zika se utiliza posteriormente para el estudio de la cinética de replicación del virus y la selección de compuestos de medicamentos.href = "https://www.jove.com/files/ftp_upload/54767/54767fig1large.jpg" target = "_ blank"> Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.
Figura 3:. Placa de ensayo para medir la producción de virus Zika células Vero Naive se utiliza para medir el título de virus. imágenes de campo claro representan la densidad de placas virales en diferentes diluciones (Barra de escala = 50 micras). Nota: El 1:. 100 muestra la imagen de dilución placas distintas que se pueden contar con precisión favor, haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.
Figura 4: Los ensayos para la evaluación de la replicación del virus Zika. (A) El gráfico muestra el virus Zika contenido genómico medido por RT-qPCR. Tanto pan-genotipo (ZIKV GEN) y PRVABC59-deformación (ZIKV UNI) cebadores mostraron la misma sensibilidad y especificidad. Como era de esperar, virales (HCV) cebadores de la hepatitis C no se amplifican cualquier producto. (B) Gráfico presenta la cinética de crecimiento viral Zika en los puntos de tiempo indicados en las células de baja y alta titulación infectados en comparación con la del control no infectado mock. Los valores medios y las desviaciones estándar se dan. (C) Ensayo de inmunocitoquímica para la investigación de la replicación viral. células infectadas por virus Zika se tiñeron específicamente con el anticuerpo dsRNA. A las 48 hpi, las células infectadas se encuentran en unos pocos grupos, mientras que a las 96 hpi la mayoría de las células están infectadas. Hoechst mancha fue utilizado para la visualización de núcleos (Escala bar = 50 micras). BF:. La imagen de campo claro Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.
Figura 5:. Los interferones demuestran actividad viral potente anti-Zika (A) Gráfico que muestra la modulación del crecimiento viral Zika por diversas citocinas en comparación con la de control del vehículo. Los valores medios y la desviación estándar se muestran en el gráfico de barras. Los interferones mostraron una inhibición estadísticamente significativa de la replicación del virus Zika (valor de p <0,05). (B y C) Imágenes de contraste de fase de células infectadas por virus Zika con o sin tratamiento de citoquinas. placas virales formados por las células infectadas pueden ser vistos como focos. Tenga en cuenta que los pozos tratados con interferón no tienen placas virales. falso control sin infección ZIKV incluyó como control negativo. (Barra de escala = 50 micras) Haga clic aquí para ver una más grandeversión de esta figura.
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Discussion
Aquí, se presenta un protocolo simplificado para el cultivo de virus Zika in vitro. Los pasos críticos incluyendo, identificando los puntos finales óptimas para la expansión del cultivo del virus, la medición de título, y se proporcionaron cuantificar la replicación del genoma. virus Zika es un patógeno humano, por lo que, durante la manipulación de agentes infecciosos, los procedimientos de bioseguridad deben ser seguidas estrictamente. Una línea de células de riñón de mono, Vero, se utilizó para la demostración de varios ensayos virológicos. Zika cinética de replicación viral pueden diferir en células de diversos tejidos y especies. Líneas celulares adicionales se pueden utilizar como se ha descrito previamente 15. Virus Zika se ha aislado de los tejidos del cerebro de fetos infectados 3 y se ha demostrado para infectar las células progenitoras neuronales corticales 14. Por lo tanto, la evaluación de la fisiopatología de la infección ZIKV en las células neuronales puede proporcionar información específica de células adicionales. Las diferencias en el fenotipo neurovirulent de genotipos africanos y asiáticos pueden ser investigadosel uso de este sistema de cultivo infeccioso. El procedimiento de la producción viral se describe aquí también será útil para la generación de virus de alta titulación hacia los estudios patógenos in vivo en primates o modelo de roedor sistemas no humanos.
Si bien, este estudio se limita a la utilización de células Vero, la producción de líneas de células de orígenes humanos y mosquitos alto título puede ser probado. Durante la producción viral, si se observa CPE en solamente 10 a 30% de las células en el día 3, las células infectadas se pueden dividir en 1: densidad de 4 y el cultivo puede continuarse durante 4-5 días adicionales. Al final de la 7ª días, se observa un CPE completo.
La eficiencia de ZIKV pan-genotipo y cebadores específicos de la cepa se compararon y se determinó que ambos son sensibles a la hora de cuantificar genoma viral Zika en las células infectadas por el virus de baja y alta titulación. Además, en este estudio, una sonda basada en anticuerpos se verifica para identificar las células infectadas. Este anticuerpo-dsRNA específico reco éxitogenomas virales citoplasmáticos gnized en las células infectadas por virus Zika. Estos reactivos optimizados ser un recurso útil para diseccionar diversas etapas de la replicación viral, como la traducción, la replicación del genoma, el montaje y la morfogénesis del virión.
Este sistema de cultivo celular infeccioso in vitro es aplicable a estudios futuros utilizando Zika replicones sub-genómico específicas del virus y el virus infeccioso generados a partir de clones de ADN complementario (ADNc). Desarrollo de Zika virales clones de cDNA infecciosos se acelerará el estudio funcional de genes virales incluyendo NS1, y NS4B mediante la combinación de técnicas biológicas moleculares y genéticos. Establecimiento de virus Zika etiquetado con un gen informador fluorescente o luminiscente basada sería una herramienta valiosa en la fabricación de más utilice el sistema de cultivo celular en ensayos de selección de alto contenido.
Tanto de tipo I y tipo II IFN demostrado actividad antiviral-Zika. IFN-α, IFN-β y IFN-γ puede ser más evaluated en entornos clínicos como un profiláctico, posterior a la exposición profiláctica y el tratamiento contra la infección por virus Zika y enfermedades asociadas. Los grupos de alto riesgo, incluyendo mujeres embarazadas positivas para el virus Zika, pueden ser tratados con interferones como una primera línea de tratamiento. El tratamiento con interferón-α se ha demostrado que es segura para las mujeres embarazadas 18,19.
En resumen, se describe y se describe un sistema de cultivo de células infecciosas que se puede utilizar para investigar diversos aspectos del crecimiento viral Zika. El protocolo y reactivos descritos aquí son recursos importantes para los que estudian el virus Zika y la comunidad de investigación neurológica.
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Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Dulbecco’s modified Eagle’s medium (DMEM) | Sigma Life Science | D5796 | |
| HEPES | Life Technologies | 15630080 | |
| Glutamax | Life Technologies | 35050061 | |
| 2.5% Trypsin, 10x [-] Phenol Red | Corning | 25-054-C1 | |
| Trypan Blue Stain 0.4% | Life Technologies | T10282 | |
| Countess – Automated Cell Counter | ThermoFisher Scientific | C10227 | |
| Countess-cell counting chamber slides | ThermoFisher Scientific | C10283 | |
| Rneasy Mini Kit | Qiagen | 74104 | |
| Nanodrop 2000 | Thermo Scientific | Nanodrop 2000 | |
| mouse monoclonal anti-dsRNA antibody J2 | English & Scientific Consulting Kft. | 10010200 | |
| Goat anti-rabbit IgG Alexa Fluor 594 | Life Technologies | A11020 | |
| SUPERSCRIPT III RT | Life Technologies | 18080085 | |
| SYBR QPCR SUPERMIX W/ROX | Life Technologies | 11744500 | |
| QuantStudio12K Flex Real-Time PCR System | Thermo Fischer | 4471088 | |
| RNase-Free DNase | Promega | M6101 | |
| Vero Cell Line | ATCC | CCL-81 | |
| Zika viral strain PRVABC59 | Centers for Disease Control and Prevention (CDC) | ||
| IL-6 | Peprotech | 200-06 | |
| IL-1 alpha | Peprotech | 200-01A | |
| TNF-alpha | Peprotech | 300-01A | |
| Interferon alpha A | R & D Systems | 11100-1 | |
| Interferon beta | Peprotech | 300-02BC | |
| Interferon gamma | Peprotech | 300-02 | |
| Centrifuge 5415R | Eppendorf | 5415R | |
| Centrifuge 5810R | Eppendorf | 5810R | |
| Nikon Eclipse Ti Immunofluorescence Microscope with Nikon Intenselight C-HGFI | Nikon | Visit Nikon for Request |
References
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