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Artigo de método

Um de uma etapa simples protocolo de dissecação para Whole mount-Preparação do Adulto

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DOI:

10.3791/55128

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1 de dezembro de 2016

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Neste artigo

Resumo

O adulto de Drosophila cérebro é um sistema valioso para estudar circuitos neuronais, funções cerebrais superiores, e doenças complexas. Um método eficiente para dissecar tecido do cérebro inteiro do cabeça pequena mosca facilitará estudos baseados em cerebrais. Aqui nós descrevemos um de uma etapa simples protocolo, dissecação de cérebros adultos com morfologia bem preservada.

Resumo

Há um interesse crescente na utilização de Drosophila para modelar doenças degenerativas do cérebro humano, mapa circuitos neuronais em cérebros adultos, e estudar a base molecular e celular de funções cerebrais superiores. A preparação de toda a montagem dos cérebros adultos com morfologia bem preservado é fundamental para tais estudos baseadas no cérebro inteiro, mas pode ser tecnicamente desafiadora e demorada. Este protocolo descreve uma abordagem dissecção um passo fácil de aprender, de uma cabeça de mosca adulta em menos de 10 s, ao mesmo tempo manter o cérebro intacto ligado ao resto do corpo para facilitar os passos de processamento subsequentes. O procedimento ajuda a remover a maior parte dos tecidos do olho e da traqueia, normalmente associadas com o cérebro que pode interferir com a imagiologia passo posterior, e também reduz a procura da qualidade do fórceps de dissecação. Além disso, descreve-se um método simples que permite a inversão conveniente das amostras de cérebro montados sobre uma lamela, o que é importante para imagiologia de ambos os lados da bchuvas com intensidade de sinal semelhante e qualidade. Como um exemplo do protocolo, apresentamos uma análise de neurônios dopaminérgicos (DA) em cérebros adultos de WT (w 1118) voa. A elevada eficácia do método de dissecação torna-o particularmente útil para estudos baseados no cérebro adulto em larga escala em Drosophila.

Introdução

O organismo modelo Drosophila, vulgarmente conhecida como a mosca da fruta, tem sido valorizado por suas ferramentas genéticas elegantes, tempos reprodutivos curtos e altamente conservadas vias moleculares e celulares. A mosca da fruta tem sido empregue com sucesso para dissecar as vias de sinalização de base, os mecanismos de padronização de organismos multicelulares, bem como os mecanismos subjacentes ao desenvolvimento neuronal, funções e doenças 1,2. Com os recentes avanços em tecnologias de rotulagem de células e de imagem, o cérebro da mosca de fruta tornou-se especialmente poderosa in fine mapeamento dos circuitos neuronais e em dissecar a ....

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Protocolo

1. soluções utilizadas para Brain Dissecção e imunofluorescência Coloração

  1. Dissecar a mosca adulta cérebros em fluido cerebrospinal artificial (aCSF): NaCl 119 mM, 26,2 mM de NaHCO3, 2,5 mM de KCl, 1 mM de NaH 2 PO 4, 1,3 mM de MgCl 2, e 10 mM de glucose. Antes da utilização, o gás aCSF com 5% de CO 2/95% de O 2 por 10 - 15 min e pico com 2,5 mM de CaCl2. Esterilizar a solução por filtração através de aCSF de um filtro de membrana de 0,22 um.
    Nota: loja aCSF a 4 ° C para evitar a contaminação bacteriana. cérebros voo também pode ser dissecado em uma solução....

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Resultados

A Figura 1 ilustra os principais procedimentos de dissecação cérebro adulto, como descrito acima As Figuras 2 e 3 são imagens representativas de três dias de idade WT. (Genotipo: W 1118) mosca adulta cérebros que foram costained com um anticorpo contra a tirosina hidroxilase (TH , colorido a vermelho na Figura 2 e branco na Figura 3), um marcador comumente usado para rotular neurónios.......

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Discussão

Com um interesse crescente no uso adulto Drosophila cerebral para estudar doenças humanas cérebro, circuitos neuronais e as funções cerebrais superiores, é necessário o desenvolvimento de métodos simples e rápidos para obter cérebros da mosca intactas para as análises todo-mount, que é especialmente importante para grande- dimensionar telas baseadas no cérebro. Nosso método fornece uma maneira simples e fácil de aprender abordagem para dissecar uma cabeça mosca (muitas vezes em menos de 10 s com experiência) co.......

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Divulgações

Os autores não têm nada a divulgar.

Agradecimentos

Nós reconhecemos o Sr. Enes Mehmet, Ms. Kiara Andrade, Ms. Pilar Rodriguez, Chris Kwok, e Ms. Danna Ghafir por seu imenso apoio ao projeto.

....

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Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
w*;   parqueΔ 21/TM3,  P{GAL4-Kr.C}DC2,  P{UAS-GFP. S65T}DC10,  Sb1Bloomington Drosophila Stock Center51652O balanceador foi trocado para TM6B
PBac{WH}parkf01950Exelixis na Harvard Medical Schoolf01950O balanceador foi trocado para TM6C
NaClFisher ScientificS640-500
Bicarbonato de Sódio (NaHCO3) Fisher Scientific02-003-990
Cloreto de Potássio (KCl)Fisher ScientificBP366-500
Fosfato de sódio, monobásico monohidratado (NaHCO3)Fisher Scientific02-004-198
Cloreto de Magnésio (MgCl2)Fisher Scientific02-003-265
D-SorbitolSigma-AldrichS1876-500GSubstitui glicose
Cloreto de cálcio di-hidratado (CaCl2)Sigma-AldrichC5670-500G
EMD Millipore  Filtros de Membrana PVDF Durapore: Hidrofílico: 0.22 µ m Tamanho dos porosde formalina GVWP14250Fisher
Scientific, 10% (histológico)Fisher ScientificSF98-20
Fosfato de potássio, dibásico, pó, biorreagente ultrapuroFisher Scientific02-003-823
Tween-20Fisher ScientificBP337-500
Excelta Pinças de Precisão com Pontas Muito FinasFisher Scientific17-456-055O protocolo não requer pontos muito finos. 
Anticorpo anti-tirosina hidroxilasePel-Freez BiologicalsP40101
Rat-Elav-7E8A10 anti-elavOs estudos de desenvolvimento Hybridoma BankClone 7E8A10
Goat anti-Rat IgG (H + L) Anticorpo secundário, Alexa Fluor 647 conjugadoThermoFisher ScientificA-21247
Goat anti-Rabbit IgG (H + L) Anticorpo secundário, Alexa Fluor 594 conjugadoThermoFisher Solução ScientificA-11037
DAPI (1 mg/mL)ThermoFisher Scientific62248
Pó de galato de propilSigma-AldrichP3130-100G
Reagente de glicerol ACS, ≥ 99,5%Sigma-AldrichG7893-500ML
Zeiss Axioimager Z1ZeissCitação
Zeiss Apotome.2ZeissCitação
Zen lite softwareCitação
Solução

Referências

  1. Wangler, M. F., Yamamoto, S., Bellen, H. J. Fruit flies in biomedical research. Genetics. 199, 639-653 (2015).
  2. Bellen, H. J., Yamamoto, S. Morgan's legacy: fruit flies and the functional annotation of conserved genes. Cell. 163, 12-14 (2015).
  3. Aso, Y., et al.

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Reimpressões e permissões

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