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Engineering

監視環境でのプラズモニックトラッピングとナノ粒子の放出

Published: April 4, 2017 doi: 10.3791/55258

Summary

プラズモニックピンセットを組み込んだマイクロチップの製造プロセスは、ここで提示されます。マイクロチップは、最大トラッピング力を測定するためにトラップされた粒子の画像化を可能にします。

Abstract

プラズモニックピンセットは、分極性ナノスケール物体を閉じ込めるために、表面プラズモンポラリトンを使用します。プラズモニックピンセットの様々なデザインの中に、わずか数は、固定化粒子を観察することができます。また、研究の限られた数は、実験的に粒子にexertable力を測定しました。設計は、突出ナノディスク型又は抑制ナノホールのタイプに分類することができます。後者のために、顕微鏡観察は非常に困難です。この論文では、新たなプラズモンピンセットシステムは、プラズモニックナノホール構造体の対称軸に平行及び垂直方向の両方において、粒子を監視するために導入されます。この機能は、ナノホールの縁の近くに、各粒子の動きを観察することを可能にします。さらに、我々は定量的に新しい流体チャネルを使用して最大トラッピング力を推定することができます。

Introduction

マイクロスケールのオブジェクトを操作する能力は、多くのマイクロ/ナノ実験のために不可欠な機能です。直接接触操作は、操作対象物に損傷を与えることができます。以前に開催されたオブジェクトを解放するためにもスティクション問題の挑戦です。これらの問題を克服するために、流体1、電気2、磁気3、又はフォトニック力4、5、6、7使用して、いくつかの間接的な方法は、8提案されています。フォトニック力を使用プラズモンピンセットは、入射強度9より大きい臨時フィールド強化数桁の物理学に基づいています。この非常に強い電場増強が非常に小さいナノ粒子の捕獲を可能にします。例えば、ナノスケールを固定化して操作することが示されていますポリスチレン粒子7、10、11、12、13、14、ポリマー鎖15、タンパク質16、量子ドット17、及びDNA分子8、18などのオブジェクト、。彼らは、彼らが効果的に検討される前に素早く消えたりするので、彼らはレーザーの高強度のために破損しているため、プラズモニックピンセットがなければ、それはトラップナノ粒子することは困難です。

多くのプラズモンの研究では、様々なナノスケールの金の構造を使用していました。我々は、ナノディスクタイプ12、13、14、15、19突出として金構造を分類することができ、20、21又は抑制ナノホールタイプ7、8、10、11、22、23。後者のために、金基板は観察視野を妨げることができるので、撮像利便性の観点から、ナノディスクタイプがナノホールタイプよりも適しています。また、プラズモントラッピングは、プラズモニック構造の近くに発生し、観察がさらに困難となります。我々の知る限り、ナノホールタイプのプラズモニックトラッピングは間接的な散乱信号を使用して検証しました。しかし、そのような顕微鏡画像など何の成功の直接観察は、報告されていません。いくつかの研究では、捕捉された粒子の位置を記載しています。そのような結果は、Wang によって発表されました彼らは、金基板上の金柱を作成し、Pを観察しました蛍光顕微鏡24を用いて文書運動。しかしながら、これは、ビーム軸に平行な方向にない横方向の動きを監視するためにのみ有効です。

本稿では、新しい流体マイクロチップの設計および製造手順をご紹介します。このチップを使用して、我々は、プラズモンナノ構造に平行と直交する方向の両方において、plasmonically捕捉された粒子のモニタリングを示します。さらに、我々はマイクロチップで転換速度を見つけるために、流体の速度を増加させることにより、固定化された粒子の最大の力を測定します。プラズモニックピンセットで最も研究が定量的に彼らの実験装置で使用される最大トラッピング力を示すことができないので、この研究では、ユニークです。

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Protocol

注意:使用前にすべての関連材料の安全規制を参照してください。マイクロチップ製造に用いられる化学物質のいくつかは、急性毒性と発癌性です。工学的制御(ドラフト、ホットプレート、およびアライナー)と個人用保護具(安全眼鏡、手袋、実験室コート、全長パンツ、及び閉鎖の使用を含む、フォトリソグラフィ及びエッチング工程を行う場合、すべての適切な安全対策を使用してください-toe靴)。

PDMSマイクロチャンネルの1製作

  1. フォトリソグラフィプロセスによるマイクロチャネル型の作製
    1. 完全にピラニア洗浄( 図1a)と4インチSiウェハ表面上の異物を除去します。皿にピラニア溶液を作るために1:3の割合で硫酸(H 2 SO 4)と過酸化水素(H 2 O 2) 混合します。徐々に強い酸の少量(H 2 Oを加えることにより混合2 SO 4)であり;この順序を逆にしているため、反応性の高い強酸の爆発を引き起こす可能性があります。
    2. 10分間ピラニア溶液にウェーハを浸します。その後、残りのピラニア溶液を除去するために、3分間脱イオン(DI)水にウェーハを浸します。 10秒間DI水を流しながら、ウエハをすすぎます。残りのDIを除去するために洗浄手順を3回及びN 2ガスと乾燥を繰り返します。
    3. さらに、ウェハを脱水し、180℃で20分間ホットプレート上のウエハを置きます。
    4. 1,500rpmで( 図1b)で45秒間ウェハ5の上にネガ型フォトレジストmLのスピンコートを注ぎます。スピンコートした後、フォトレジストビードがあるため、フォトレジストの比較的高い粘度のウェハエッジで作成されます。
    5. 5時間レベリングスタンド上に平坦化することによって、フォトレジストで被覆されたウェハのバランスをとります。
    6. 65℃で12分間、ホットプレート上のフォトレジスト被覆ウェハを置き°C、95°Cで35分間、および65℃(ソフトベーク)で12分。
    7. マスクホルダと露光装置の基板ステージ上のソフトベークウェハ上の膜マスクを固定します。フォトレジストを固化するために650ミリジュール/ cm 2で43秒間紫外線(UV)光にさらします。
    8. 65°C、95°Cで15分間、および65℃(露光後ベーク)で5分で5分間、ホットプレート上のウエハを置きます。
    9. 未凝固フォトレジストを除去するために30分間フォトレジスト現像液中にウエハを浸します。
    10. 残りのIPAを除去するために、イソプロピルアルコール(IPA)とN 2ガスを用いたドライウエハをすすぎます。
  2. PDMSマイクロチャネルの製造
    1. ウェハの表面とフォトレジストの型は、大気圧プラズマ装置25を用いて、W 200のパワーで1分間処置します。 CH 4のガス流は、彼は、それぞれ、6および30 SCCMであるべきです。簡単にポリDを切り離すために、この疎水化処理を実行しimethylsiloxaneウェハおよびフォトレジスト型の表面から(PDMS)マイクロチャネル( 図1c)。
    2. PDMSベースを混合し、10の割合で硬化剤によってPDMS溶液を調製する:1。 2分間混合物を撹拌しました。
    3. ペトリ皿内のウェハ(150ミリメートル×15 mm)を置き、PDMS溶液100mlを加えます。デシケーターを使用して攪拌から作成された気泡を除去。
    4. PDMS溶液( 図1d及びh)を固化するために80℃で2時間オーブン中でペトリ皿を置き。
    5. カミソリの刃を用いてPDMSマイクロチャネルの輪郭に沿って切断し、ウェハからそれを取り外します。 13ミリメートル、長さ300μm、幅および150μmの高い( 1E、F、およびI):作製PDMSマイクロチャネルは、以下の寸法を有するべきです。
      注:穴の2種類のシングルモードファイバ(SMF)ケーブルおよびチューブを挿入するために、微小穿刺によって製造される(入口PDMSマイクロチャネル( 図1グラムにND出口))。 SMFケーブルは、金板に粉砕されたナノホールのレーザ光を出射するために使用されます。チューブは、挿入/ PDMSマイクロチャネルへの/からの粒子溶液を抽出するために使用されます。
    6. PDMSマイクロチャネルの各端部で1.5mmの入口及び出口穴を穿刺。 PDMSマイクロチャネルの中心に0.3mmのSMFケーブル穴を穿刺します。

ゴールドプレートの2エッチング工程

  1. 25×6.25ミリメートル2( 図2a)の寸法を有する市販の金プレートを準備します。
  2. 以下の清掃手順でゴールドプレート上の任意の異物を取り除きます。 5分ごとに、アセトン、メタノール、およびDI水に浸漬することにより、次の順序でクリーン。
  3. 10秒間金板をDI水で3回リンスし、残りのDI水を除去するためにN 2ガスを用いてプレートを乾燥。
  4. ホットプレートの上に金のプレートを置き完全に残っている水分を除去するために180℃で20分。
  5. 3000rpmで40秒間金板及びスピンコート上にヘキサメチルジシラザン(HMDS)の0.5mLのを注ぎます。
  6. 3,000rpmで40秒間スピンコートHMDSのトップスピンコート上にポジ型フォトレジストの0.5mLを注ぐ( 図2b)。
  7. 110°C(ソフトベーク)で90秒間ホットプレート上にフォトレジストでコーティングされた金板を置き。
  8. ガラスウェーハ上のフィルムマスクを固定し、基板ステージ上にソフトベーク金板を置き。フォトレジストを溶解するために64ミリジュール/ cm 2で4.5秒間UV光に公開します。
  9. 溶解したフォトレジスト( 図2c)を除去するために1分間のフォトレジスト現像液に金プレートを浸し。 DI水を用いて金プレートをリンスし、N 2ガスを用いたドライ。
  10. 露出したAu( 図2d)を除去するために、28オングストローム/秒のエッチング速度で45秒間のAuエッチング液に金プレートを浸し。 DIウォートに金プレートをすすぎますRとN 2ガスを用いたドライ。
  11. 露出したTi( 図2e)を除去するために、25オングストローム/秒のエッチング速度で5秒間のTiエッチング液に金プレートを浸し。 DI水を用いて金プレートをリンスし、N 2ガスを用いたドライ。
  12. 3分毎( 図2F)、アセトン、メタノール、および脱イオン水に浸漬することにより、金板上に残ったフォトレジストを除去します。書かれた順序でプレートを浸します。
  13. 10秒間金板をDI水で3回リンス。 DI水を除去するためにN 2つのガスを用いたドライ。
  14. 完全に水分を除去し、120℃で3分間、ホットプレート上で金板を置き、生成金ブロックは400×150μmの2( 図2H)であるべきです。
  15. ミル( 図2Gおよびi)をエッチングした後に作製した金ブロックの中心に集束イオンビーム(FIB)を用いて400 nmのナノホール。金BLに集中する370 nmの円形パターンを作成します。3秒間28 Paの30キロボルトの電圧を加速イオンとOCK。

マイクロチップの3組立

  1. 80 Wの電力でプラズマシステムおよび825ミリトール25の圧力と一緒にそれらを取り付けるためにO 2プラズマで1分間PDMSマイクロチャネル及び金プレートの2つの面を扱います。
    注:金ブロックとPDMSマイクロチャネルは、マイクロメートルレベルであるため、それは正確にそれらを添付すること、特に困難です。従って、カメラとマニュアルステージで露光を使用します。
  2. アライナー( 図3a)のマスクホルダにフィルムマスクを取り付けるために使用されたガラスウェハを固定します。
  3. ガラスウェーハにO 2 -プラズマ処理したPDMSマイクロチャネルを取り付けます。 PDMSは親水性であるので、それは簡単に任意の接着液ずにガラスウェハに付着します。アライナー( 図3a)の基板ステージ上に金プレートを固定します。
  4. 目の中心の位置を確認しますアライナのカメラを使用して、同一の軸上に整列されているE SMFケーブル穴と金ブロック、。二つの部分( 図3BおよびC)を組み合わせること手動ステージを持ち上げ。

PDMSコーティングすることにより、マイクロチップ側の表面粗さの改善4。

注:400×150μmの2の固定された寸法を有する金板は、PDMS材料よりも切り出すことは比較的困難です。したがって、ウェハからPDMSマイクロチャネルを分離するために、カミソリの刃は、金板より大きい片を切り出すために使用されます。チャネルの内部を顕微鏡( 図4a)を使用して側から観察できるように、2つの部品を結合した後、金プレートに対してPDMSの過剰部分は、その後、切断しなければなりません。しかし、窓として使用される切断面は、高い表面粗さを有し、その結果、チャネルに流れる粒子の濁った画像( 図を生成します図4b)。 PDMS溶液によるコーティングは、この問題を解決するために再度行われます。

  1. 10でエージェントをPDMSベースを混合し、硬化させることによりPDMS溶液を調製する:1比、2分間撹拌しました。
  2. ペトリ皿にPDMS溶液2mLを注ぎ、1,000rpmで( 図4c)で30秒間スピンコートを行います。
  3. ペトリ皿( 図4d)上の顕微鏡上に配置されようとしているマイクロチップの表面を置き。 PDMS溶液を固化するために80℃で1時間オーブン中でペトリ皿を置き。
  4. カミソリの刃を使用して、マイクロチップ及びPDMSの境界線を切断し、その後ペトリ皿( 図4E、F)からそれを取り外します。

5.レーザーカップリングマイクロチップにSMFケーブルを挿入します

注:プラズモニックピンセットシステムでは、1,064 nmの波長を有する光ファイバの入射レーザが使用されます。 SMFケーブルはINCIの直径ために使用され窪みレーザ(5mm)をマイクロチップ中の金のブロック(400×150μmの2)に粉砕ナノホールのレーザビームを放出するように、あまりにも巨大です。 SMFケーブルのクラッド径は125μmです。これにより、入射レーザとSMFケーブルが連結されなければなりません。

  1. SMFカプラにマウント顕微鏡対物レンズに40倍の対物レンズを接続します。 SMFカプラのファイバクランプにSMFケーブルを固定します。対物レンズの後方開口部に充填する入射レーザビームを整列させます。
  2. SMFカプラに備えた三軸手動ステージを調整することにより、SMFケーブルのコアにレーザビームの焦点を合わせます。
  3. マイクロチップのSMFケーブル穴にSMFケーブルの反対側の端部を挿入します。マイクロチップに固定された光ファイバケーブルを取り外すことができないので、光ファイバケーブルの端部に挿入前にレーザパワーを測定します。
  4. SMFキャブとの間の隙間から流れる粒子溶液の漏れを阻止するためにエポキシ接着剤を使用して、SMFケーブル穴をシールル穴(300ミクロン)とSMFケーブル(125ミクロン)のクラッディング。挿入された光ファイバケーブルの端部は、流体の流れを回避するために、マイクロチャネルに入るべきではありません。手動では、ナノホールをホスト金ブロックに対して垂直になるように視覚的なフィードバックを使用してファイバケーブルを整列させます。

マイクロチップでの単一の蛍光ポリスチレン粒子の6プラズモニックトラッピング

  1. シリンジマイクロポンプに、粒子溶液が充填されている注射器を取り付けます。蛍光顕微鏡の試料ステージ上にカバーガラスを置きます。マイクロチップの入口/出口穴にチューブを接続します。カバーガラスの上にPDMSコーティングされたマイクロチップの表面を置き。
  2. 蛍光顕微鏡上に設置されたカメラを用いてチャネルの内部を観察することによって60X水浸対物レンズに直交マイクロチップを位置決めします。所定の位置にマイクロチップを修正するために透明テープを使用してください。シリンジNEとマイクロチップのインレットチューブを接続edle。
  3. 20ミクロン/秒でマイクロポンプを制御することにより、マイクロチップに粒子溶液を挿入します。このとき、蛍光灯がオンされたときに蛍光体粒子がチャネルに良好に観察することができることを確認します。
  4. 粒子溶液は、マイクロチップの出口から出るまで待ってください。 3.4ミクロン/ sの速度を設定します。
  5. それはナノホールにレーザを出射するようにレーザ光源装置をオン。蛍光体粒子は、ナノホールの縁に捕捉されます。
  6. 捕捉された粒子エスケープまでマイクロポンプを制御することにより、0.4ミクロン/秒の増分で流体速度をランプ。捕捉された粒子が脱出する際に流体の速度を測定します。この測定流体の速度を使用して、各レーザ強度の最大トラッピング力を得ます。

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Representative Results

PDMSマイクロチャネルとナノホール金板の製造プロセスは、 図1及び 2に示されています。二つの部分を結合する方法と実際のマイクロチップは、 図3に示されています。 PDMSマイクロチップの側からチャネルの内部を明らかにするために切断しました。しかし、理由は切断面の表面粗さの流路内を流れる粒子を観察することは困難でした。そこで、 図4に示すように、この問題を解決するために、PDMSコーティング法を導入しました。

我々は、PDMSコーティングの効果を確認するために、マイクロチップ中のポリスチレン粒子を流れ、5μmのを観察しました。 図5は、顕微鏡を使用してマイクロチップに観察される実際の作製マイクロ粒子を示します。 5a、c 前後appearaありますマイクロチップのNCES。 図5bおよびdは、それぞれの拡大面です。 図5Fは、粒子の縁部は、特に明らかであり、動きを監視することができることを示し、一方図5Eは 、流れボケ粒子を示します。上記のように、マイクロチップの表面のPDMSコーティングは、捕捉された粒子のモニタリングに不可欠です。

図6は、プラズモニックピンセットシステムによってプラズモニック光トラッピングを受けて100 nmのポリスチレン粒子を示しています。 0.14の開口数(NA)を有するSMFケーブルが使用されました。チューブは、マイクロチップの流路の入口/出口孔に挿入しました。マイクロポンプを挿入して100nmの蛍光ポリスチレン粒子の溶液を収集するために使用しました。プラズモン現象により捕捉された粒子の内部外観を強調するために、 図6aの点線部分は、挿入図のように拡大されています、

図7は、マイクロチャネルに流入し100nmの蛍光ポリスチレン粒子が0.42ミリワット/μm2での強度でナノホールに捕捉され、放出された連続的な画像を示します。 図7aに示すように、粒子は、流体方向に3.4ミクロン/秒の一定速度で流し。レーザがオンになった後、粒子の一つが図7bに示されるように、ナノホールに捕獲しました。 図7cに示すように、逆に、他の粒子は、流れに流入しました。捕獲された粒子をエスケープするまで続いて、流速が増加しました。 図7dは、PAを示しますトラップから脱出rticle。この時点で、我々は粒子が脱出したときに流体の速度を測定することにより、直接観察してトラッピング力を推定することができます。我々はまた、逆方向に働いていました。代わりに、流体速度を増大させると、我々は徐々に1ミリワットのデクリメントのレーザパワーを減少し、粒子がエスケープ強度を記録しました。このレーザ強度は最小トラップレーザ強度として定義され、0.24ミリワット/μm2であると測定されました。

図1
PDMSマイクロチャネルの1製作図。 (a)は、Siウエハの製造。ウェハの(b)は、フォトレジストスピンコーティング。 (c)は 、フォトリソグラフィ工程によって製造マイクロチャネル型。 (d)はウェハ上にPDMS溶液を注入した後、オーブンを用いて凝固をPDMS。 (E)マイクロチャネル切断PDMS。 (f)はウェハからPDMSマイクロチャネル剥離。 (g)の入口/出口とSMFケーブル穴がPDMSマイクロチャンネルにパンクチャ。実際の(h)はウェハ上にPDMSを固化しました。 (I)実際取り外しPDMSマイクロチャネル。 この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。

図2
エッチング処理後の金板上ナノホールの2製作図。 (A)ガラス上のAuとTiの堆積。金メッキの(b)は 、フォトレジストスピンコーティング。 (c)は UV光露光後のフォトレジスト除去を溶解しました。 (D)のAuエッチング。 (E)のTiエッチング。 (F)残りのフォトレジストの再 MOVAL。 (G)ゴールドブロックの集束イオンビームによるナノホールフライス。 (H)実際には、金ブロックを作製しました。 (ⅰ)金ブロックの実際の粉砕したナノホール。 この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。

図3
マイクロチップの図3.組立工程。 (a)は、アライナーに備え、それぞれ、マスクホルダと基板ステージ上にPDMSマイクロチャネルと金プレートを修正します。 (b)は、PDMSマイクロチャネル部分とO 2プラズマによる表面処理後の金プレートの組み合わせであってもよいです。 (C、D)の組み合わせ組み立て後のマイクロチップ。 PDMSマイクロチャネルの過剰量の(e)の除去。ce.jove.com/files/ftp_upload/55258/55258fig3large.jpg」ターゲット= 『_空白』>この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。

図4
PDMSコーティングによる表面粗さの改善の4工程図。 (a)は、二つの部分を組み合わせた後にカミソリの刃を用いて過剰量を削除します。 (b)は、切断後のマイクロチップの表面粗さが大きいです。ペトリ皿中の(c)PDMS溶液をスピンコーティング。 (D)をスピンコートPDMS溶液にマイクロチップの窓面を浸漬します。ペトリ皿から(E)PDMSコーティングされたマイクロチップ着脱。 (F)PDMSコーティングによる表面粗さの改善。 この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。


図5は、PDMSコーティング前後のマイクロチャネル内5μmのポリスチレン粒子のマイクロチップと観察を集め。 PDMSコーティングと拡大前(a、b)はマイクロチップ。 PDMSコーティングと拡大後(C、D)マイクロチップ。 PDMSコーティング前後のマイクロチャネル中の粒子の(E、F)の観測。 この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。

図6
6.設計プラズモニックピンセットシステム図。 (a)は、プラズモニックピンセットシステムの概略図。 (B この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。

図7
図7.トラップとマイクロチャネルにおける100nmの蛍光ポリスチレン粒子の放出。 (a)は、粒子が流れ内に流入すると、マイクロチャネル。別の粒子に比べてナノホールにおける(B、C)捕捉粒子。 (d)の増加による流体力にトラップから脱出粒子。 この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。

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Discussion

図6aの矩形ドットに示すようにSMFケーブルは、マイクロチップ上のSMFケーブル穴に挿入しました。 SMFケーブル穴は、ケーブル径よりも大きいので、エポキシ接着剤は、流動粒子溶液の漏れを阻止するためにギャップをシールするために使用しました。エポキシ接着剤の適用前に、金ブロックとケーブル端が同軸顕微鏡を用いて手で整列されるべきです。それが挿入されたケーブル端と同軸に整列されるナノホールのために理想的であるが、それは0.14 NA SMFケーブル端の端から出射された後、レーザビームが発散し、ビームは、はるかに大きな影響を与えるので、わずかなずれを許容することができます領域。マイクロチップは、顕微鏡の光軸に対して垂直になるように構成したので、我々は直接ナノホールの位置を観察することができませんでした。ナノホールの位置を間接的にしかナノホールでplasmonically捕捉された粒子の位置を観察することによって決定することができます。 A溶液は、ファイバケーブルでカメラを設置し、金のブロックを監視するためにそれを使用することによって提供することができます。

マイクロチップの特徴は、リアルタイムでプラズモニックナノホールの近くに粒子の運動を監視する能力です。粒子の動きは、以下に説明するシナリオを以下。流体が前方の粒子をストリームする場合、いくつかの粒子が金ブロックに向かって移動します。いくつかの場合において、粒子は、ナノホールに起因引力にナノホールのリムに特に接近し、最終的に固定化となります。このとき、光学力は、粒子の流体力を上回るに加わります。続いて、固定化された粒子は、ナノホールリム流体速度が増加するから脱出します。従って、流体力、光学力よりも強くなります。最大トラッピング力は、この端末流体の速度から測定することができます。粒子がGと物理的に接触しているのでしかし、従来抗力方程式を使用することができませんナノホールの古い壁。金の壁の表面効果を検討するために、我々は、表面近くの流体の動きを考慮した有限要素法を、使用、および流体力を得ました。

私たちは、レーザ光軸に沿って粒子ダイナミクスのモニタリングを可能にする新しいプラズモンピンセット設定を導入しました。対照的に、以前の研究は、そのようなナノブロック12、ナノディスク13、14、19、21、nanostick 20、及びナノピラミッド18と同様に、レーザビーム軸に垂直な面における粒子の動きを導入しています。また、ナノホールタイプの場合、捕獲は、視覚モニタリング10、11、23により散乱信号を監視し、しないことによって目撃することができます。しかしながら、私たちは、からこそ、現在のイメージング技術の限られた能力の粒子の位置を計測することができませんでした。結像品質は、さらに正確な転位の測定値を確認するために、改善されるべきです。この技術は、単一分子の特性及びバイオセンシングに適用することができます。

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Disclosures

著者は、開示することは何もありません。

Acknowledgments

この作業は、MSIP / IITP(コンテンツ構成管理システムおよびスマート材料を使用して3Dプリント用シミュレータのR0190-15-2040、開発)のICT R&Dプログラムによってサポートされていました。

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Negative photoresist  MicroChem SU-8 2075
Developer MicroChem SU-8 Developer
Positive photoresist  Merck Ltd. AZ GXR-601
AZ Photoresist Developers Merck Ltd. AZ 300 MIF
HMDS Merck Ltd. AZ Adhesion Promoter
Aligner Midas System MDA 400M
Atmospheric plasma machine  Atmospheric Process
Plasma Co.
IDP-1000
Polydimethylsiloxane (PDMS) Dow Corning Sylgard 184 A/B
Gold coated test slides EMF Co. TA124(Ti/Au)
Au etchant  Transene Inc. TFA
Ti etchant  Transene Inc. TFT
40X objective lens  Edmund Optics 40X DIN
60X water immersion
objective lens 
Olympus LUMPLFLN 60XW
Optical fiber incident laser  IPG Photonic YLR 10
SMF coupler Thorlabs MBT612D/M
Syringe micropump Harvard PC2 70-4501
Fluorescent microscope  Olympus IX-51
Plasma system Femto Science Inc CUTE-MPR

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References

  1. Crane, N. B., Onen, O., Carballo, J., Ni, Q., Guldiken, R. Fluidic assembly at the microscale: progress and prospects. Microfluid. Nanofluid. 14 (3), 383-419 (2013).
  2. Yao, B., Luo, G. A., Feng, X., Wang, W., Chen, L. X., Wang, Y. M. A microfluidic device based on gravity and electric force driving for flow cytometry and fluorescence activated cell sorting. Lab Chip. 4 (6), 603-607 (2004).
  3. Zhang, K., et al. On-chip manipulation of continuous picoliter-volume superparamagnetic droplets using a magnetic force. Lab Chip. 9 (20), 2992-2999 (2009).
  4. Park, I. Y., Sung, S. Y., Lee, J. H., Lee, Y. G. Manufacturing micro-scale structures by an optical tweezers system controlled by five finger tips. J. Micromech. Microeng. 17, N82-N89 (2007).
  5. Kim, J. D., Hwang, S. U., Lee, Y. G. Traceable assembly of microparts using optical tweezers. J. Micromech. Microeng. 22, 105003 (2012).
  6. Kim, J. D., Lee, Y. G. Construction and actuation of a microscopic gear assembly formed using optical tweezers. J. Micromech. Microeng. 23, 065010 (2013).
  7. Kim, J. D., Choi, J. H., Lee, Y. G. A measurement of the maximal forces in plasmonic tweezers. Nanotechnology. 26 (42), 425203 (2015).
  8. Kim, J. D., Lee, Y. G. Trapping of a single DNA molecule using nanoplasmonic structures for biosensor applications. Biomed. Opt. Express. 5 (8), 2471-2480 (2014).
  9. Quidant, R. Plasmonic tweezers - the strength of surface plasmons. MRS Bull. 37 (8), 739-744 (2012).
  10. Juan, M. L., Gordon, R., Pang, Y., Eftekhari, F., Quidant, R. Self-induced back-action optical trapping of dielectric nanoparticles. Nat. Phys. 5, 915-919 (2009).
  11. Pang, Y., Gordon, R. Optical trapping of 12 nm dielectric spheres using double-nanoholes in a gold film. Nano Lett. 11 (9), 3763-3767 (2011).
  12. Tanaka, Y., Kaneda, S., Sasaki, K. Nanostructured potential of optical trapping using a plasmonic nanoblock pair. Nano Lett. 13 (5), 2146-2150 (2013).
  13. Kang, J. H., et al. Low-power nano-optical vortex trapping via plasmonic diabolo nanoantennas. Nat. Commun. 2, 582 (2011).
  14. Roxworthy, B. J., et al. Application of plasmonic bowtie nanoantenna arrays for optical trapping, stacking, and sorting. Nano Lett. 12 (2), 796-801 (2012).
  15. Shoji, T., Tsuboi, Y. Plasmonic optical tweezers toward molecular manipulation: tailoring plasmonic nanostructure, light source, and resonant trapping. J. Phys. Chem. Lett. 5 (17), 2957-2967 (2014).
  16. Pang, Y., Gordon, R. Optical trapping of a single protein. Nano Lett. 12 (1), 402-406 (2012).
  17. Tsuboi, Y., et al. Optical trapping of quantum dots based on gap-mode-excitation of localized surface plasmon. J. Phys. Chem. Lett. 1, 2327-2333 (2010).
  18. Shoji, T., et al. Permanent fixing or reversible trapping and release of DNA micropatterns on a gold nanostructure using continuous-wave or femtosecond-pulsed near-infrared laser light. J. Am. Chem. Soc. 135 (17), 6643-6648 (2013).
  19. Grigrenko, A. N., Roberts, N. W., Dickson, M. R., Zhang, Y. Nanometric optical tweezers based on nanostructured substrates. Nat. Photonics. 2, 365-370 (2008).
  20. Righini, M., et al. Nano-optical trapping of rayleigh particles and escherichia coli bacteria with resonant optical antennas. Nano Lett. 9 (10), 3387-3391 (2009).
  21. Chen, K. Y., Lee, A. T., Hung, C. C., Huang, J. S., Yang, Y. T. Transport and trapping in two-dimensional nanoscale plasmonic optical lattice. Nano Lett. 13 (9), 4118-4122 (2013).
  22. Berthelot, J., et al. Three-dimensional manipulation with scanning near-field optical nanotweezers. Nat. Nanotechnol. 9 (4), 295-299 (2014).
  23. Chen, C., et al. Enhanced optical trapping and arrangement of nano-objects in a plasmonic nanocavity. Nano Lett. 12 (1), 125-132 (2011).
  24. Wang, K., Schonbrun, E., Steinvurzel, P., Crozier, K. B. Trapping and rotating nanoparticles using a plasmonic nano-tweezer with an integrated heat sink. Nat. Commun. 2, 469 (2011).
  25. Byun, D., Cho, S. J., Kim, S. Fabrication of a flexible penetrating microelectrode array for use on curved surfaces of neural tissues. J. Micromech. Microeng. 23, 125010 (2013).

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エンジニアリング、問題122、プラズモニクス、プラズモニックピンセット、光トラッピング、光学力、マイクロフルイディクス、ナノホール、ナノ粒子の固定化
監視環境でのプラズモニックトラッピングとナノ粒子の放出
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Kim, J. D., Lee, Y. G. PlasmonicMore

Kim, J. D., Lee, Y. G. Plasmonic Trapping and Release of Nanoparticles in a Monitoring Environment. J. Vis. Exp. (122), e55258, doi:10.3791/55258 (2017).

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