Summary
وهدب الرئيسي هو أهمية أساسية في انتشار العصبية خلية سلفية، تمايز الخلايا العصبية، وظيفة الخلايا العصبية الكبار. هنا، نحن تصف طريقة لدراسة تكون الأهداب والاتجار يشير البروتينات إلى أهداب في الخلايا الجذعية / السلف العصبية والخلايا العصبية متباينة باستخدام الثقافات neurosphere الأولية.
Introduction
وهدب الأساسي هو مقصورة التحت خلوية الحيوية القائمة على أنيبيب أن يعمل بمثابة الهوائي الحسي في تنسيق مسارات الإشارات الخلوية، بما في ذلك المسار سونيك القنفذ (صه) خلال تطوير الخلايا العصبية الجنينية 1 و 2 و إشارات التحت خلوية مجزأة في وظيفة الخلايا العصبية الكبار 3 و 4 . يشير مكونات هذه الممرات، مثل مستقبلات صه مرقع 5؛ المنشط مسار مملس (SMO) 6؛ وGpr161 7، ومستقبلات البروتين يقترن الأيتام G (GPCR) الذي ينظم سلبا على مسار صه، توطين لأهداب بطريقة ديناميكية. وقد تم الإبلاغ عن GPCRs متعددة لتوطين للأهداب الخلايا العصبية في الدماغ في 7 و 8 و 9 و 10 سوب>، 11، 12، 13، 14، 15، 16. عيوب في أهداب ومسارات إشارات ولدت أهداب تؤثر على أنسجة متعددة ومعروفة جماعيا باسم ciliopathies 17 و 18 و 19. في كثير من الأحيان يشمل الطيف مرض ciliopathy عيوب النمو العصبي، مثل تشوهات القحفي 20 و 21 و 22. وبالإضافة إلى ذلك، أهداب الأساسي في الخلايا العصبية المهاد تنظيم مسارات الشبع المركزية، والعيوب يؤدي إلى السمنة المركزية 23، وهو ما يعكس السمنة في ciliopathies المتلازمات مثل متلازمة بارديه Biedel 24. وبالإضافة إلى ذلك، مستقبلات نيوروبيبتيدي يشير في أهداب ينظم الطرد المركزيآل الشبع مسارات 11 و 14. توطين الهدبية انزيمات سيكلاز III (ACIII) وGPCRs مثل السوماتوستاتين مستقبلات 3 في الخلايا العصبية الحصين يؤدي إلى عيوب الاعتراف جوه جديدة والعجز في الذاكرة 25 و 26 و يوازي غياب النزاهة الهدبية 27. ترتبط الجوانب التنموية للإشارات ولدت أهداب ارتباطا وثيقا توازن الأنسجة. على وجه الخصوص، أهداب هامة لتطور ورم أرومي نخاعي صه-فرعي الناتجة عن الأسلاف الحبيبية في المخيخ 28 و 29. وهكذا، أهداب الأولية تلعب أدوارا هامة خلال الجنينية، وبعد الولادة، والكبار تطوير الخلايا العصبية وظيفة.
الخلايا الجذعية العصبية (NSCs) يقيمون في منطقة subventricular (SVZ) من البطين الجانبي، والمنطقة جزئي التحبب من التلفيف المسنن من الحصين، ومنطقة البطين من البطين الثالث في منطقة ما تحت المهاد في الثدييات 30 و 31 و 32. NSCs هي متعددة القدرات، وتمتلك القدرة على التجديد الذاتي، وهي مهمة لنمو المخ والطب التجديدي 30. معظم NSCs في SVZ هي هادئة وتمتلك هدب الأساسي الانفرادي أنه في كثير من الحالات، ويمتد إلى البطين الجانبي 33. إشارات هدب الأولية عن طريق توطين مختلف المستقبلات، يحفز الاستجابات الخلوية المصب، وخصوصا فيما يتعلق صه، TGFβ، ومستقبلات التيروزين كيناز مسارات 2، 34، 35، 36. منذ أهداب الأولية تمتد إلى البطين الجانبي، والافتراض بأن أهداب الابتدائي كشف السيتوكينات في السائل النخاعي (CSF) لتنشيط NSCs 37 38 و 39 و 40 و 41. ومع ذلك، فإن الآليات التي CSF التواصل مع NSCs وما إذا أهداب الابتدائي تشارك ليست معروفة. ومهدبة NSCs ملتصقة في الثقافة؛ توطين مكونات مسار صه، مثل SMO وGpr161 في أهداب. وهي صه استجابة 42. وهكذا، يمكن NSCs بمثابة نظام المهم نموذج لدراسة مسار صه، والاتجار الهدبي، ومسارات التمايز العصبية. وبالإضافة إلى ذلك، الخلايا العصبية متباينة من NSCs يمكن أن تستخدم أيضا لفحوصات الاتجار الهدبية.
ويشكل Neurospheres من مجموعات من الخلايا التعويم الحر الناجمة عن انتشار neuraل الخلايا الجذعية / السلف التي تنمو في وجود عوامل نمو معينة والسطوح nonadhesive 43 و 44. Neurospheres بمثابة هاما في نماذج الثقافة المختبر لدراسة الخلايا الجذعية / السلف العصبية في التطور الطبيعي ومرض 31، 45، 46، 47. هنا، نحن تصف مقايسة على أساس neurosphere لزراعة الخلايا الجذعية العصبية / السلف والتمايز في الخلايا العصبية / الدبقية. ونحن نؤكد على وجه الخصوص الاتجار يشير إلى مكونات أهداب الجذعية العصبية / الخلايا الاولية والخلايا العصبية متباينة (الشكل 1). بدلا من زراعة الخلايا العصبية الأولية، neurospheres الأساسي من السهل نسبيا للثقافة، هي قابلة للفقرات متعددة ودورات ذوبان الجليد تجميد، ويمكن أن يخضع التمايز في الخلايا العصبية / الدبقية. الأهم من ذلك، توصلنا إلى أن العصبية المشتقة من neurosphereومهدبة الخلايا الجذعية / السلف والخلايا العصبية متباينة في الثقافة وتوطين الجزيئات مما يشير إلى وظيفة ذات الصلة الهدبية في هذه المقصورات. يمكن أن أساليب زراعة أساس Neurosphere-بمثابة نظام نموذجا مثاليا لدراسة تكون الأهداب والهدبية الاتجار NSCs والخلايا العصبية متباينة.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
1. عزل Neurospheres من الدماغ الكبار ماوس
- الموت ببطء الماوس الكبار (حوالي 2 أشهر من العمر) من خلال جرعة زائدة من الأيزوفلورين. انقر نقرا مزدوجا التحقق من أن الماوس توقف التنفس وتشريح فورا بعد الموت.
- باستخدام مقص، وجعل شق خط الوسط لفتح الجمجمة. إزالة الدماغ.
- وضع الدماغ في برنامج تلفزيوني الباردة في طبق 10 سم على الجليد. اتبع كامل جبل طريقة تشريح للحصول على SVZ من البطين الجانبي 48.
- وضع البطين الجانبي في أنبوب 1.5 مل، إضافة 500 ميكرولتر من 0.05٪ التربسين-EDTA في برنامج تلفزيوني، واحتضان الأنبوب لمدة 15 دقيقة عند 37 درجة مئوية في حمام مائي.
- بعد 15 دقيقة، إضافة 500 ميكرولتر من وقف المتوسطة والماصة بلطف 20-30 مرات مع مل طرف 1. تجنب تشكيل فقاعات الهواء خلال pipetting ل.
ملاحظة: هذه الخطوة هو أمر حاسم لبقاء الخلية. - تدور أسفل الخلايا في 500 x ج لمدة 8 دقائق. تجاهل طاف، إضافة 1 مل من برنامج تلفزيوني، و resuspend رانه الخلايا عن طريق pipetting بلطف 5X مع مل طرف 1.
- تدور باستمرار في 500 x ج لمدة 8 دقائق. تجاهل طاف باستخدام 1 مل طرف وإضافة 1 مل من المتوسط القاعدية.
- (اختياري) إذا لوحظ الحطام الخلوي، لتمرير الخلايا من خلال 70 ميكرون خلية مصفاة.
- حساب عدد الخلايا مع عدادة الكريات. بشكل عام، حوالي 30،000 - يتم الحصول على 60000 خلية / SVZ.
- لوحة الخلايا من SVZ واحدة في صحن 10 سم مع 10 مل من NSC المتوسطة والثقافة في 37 درجة مئوية مع 5٪ CO 2.
- (اختياري) لتجنب الانصهار بين المجالات 49، وطرح 1000 الخلايا في بئر واحدة من لوحة 6 جيدا منخفضة للغاية الملزم الذي مملوءة مسبقا مع 1.5 مل من NSC المتوسطة والثقافة في 37 درجة مئوية مع 5٪ CO 2.
ملاحظة: بعد 5-7 أيام، neurospheres يمكن ملاحظة (الشكل 2A). قد تختلف فترة زراعة مع سن الماوس أو الخلفية الوراثية. - إضافة 2 مل من NSC المتوسطة كل 3-4 أيام للحفاظ على الثقافة(لا تقم بإزالة المتوسطة القائمة).
2. تحليل القدرات تمايز Neurospheres وتكون الأهداب الاختبارات
- لتحليل القدرة التمايز، وتحليل neurospheres في ظل ظروف ملتصقة في متوسطة التمايز.
- تعقيم 12 ملم coverslips جولة قبل التعقيم أو مع التعرض للأشعة فوق البنفسجية قبل استخدامها. لزراعة الخلايا الملتصقة، ووضع تعقيم 12 مم غطاء جولة زجاج في بئر من 24 لوحة جيدا تحت ظروف معقمة.
- معطف غطاء زجاجي لمدة 10 ق مع 500 ميكرولتر من 0.002٪ بولي-L-ليسين (PLL). نضح الحل وجففها لمدة 10-15 دقيقة.
- إضافة 500 ميكرولتر من محلول laminin (5 ميكروغرام / ميكرولتر). احتضان الزجاج غطاء لمدة 1 ساعة عند 37 درجة مئوية.
- نضح في laminin وإضافة 500 ميكرولتر من التمايز المتوسطة أو NSC المتوسطة (مراقبة غير متمايزة).
- للمقايسة التمايز، والتقاط 100 - ميكرون المجال 200 مع طرف 200 ميكرولتر تحت المجهر. إضافة5-10 neurospheres إلى كل بئر من 24 لوحة جيدا والثقافة لمدة 7-10 أيام في المتوسط التمايز.
- لتحليل neurospheres غير متمايز، إضافة 5-10 neurospheres إلى كل بئر من 24 لوحة جيدا والثقافة لمدة 1-2 أيام في NSC المتوسطة. neurospheres المرفقة تنتشر وتنمو كما أحادي الطبقة (الشكل 2B).
- بعد إزالة بعناية متوسطة، إصلاح الخلايا مع بارافورمالدهيد 4٪ (PFA) في برنامج تلفزيوني لمدة 15 دقيقة في RT، ثم يغسل مع PBS مرتين لمدة 5 دقائق على RT. لوحة يمكن تخزينها في 4 درجة مئوية لمدة 1-2 أشهر.
ملاحظة: لتصور الخلايا الجذعية / السلف العصبية في NSC المتوسطة وخلايا متباينة في المتوسط التمايز، نفذ المناعية ضد Nestin (الجذعية العصبية / السلف علامة الخلية)، بيتا تويولين III (TUJ1 وحيدة النسيلة، علامة العصبية)، GFAP (الدبقية ييفي الحمضية البروتين ، علامة نجمية)، وO4 (دبقية قليلة التغصن علامة) (الشكل 2B-E). لتحليل أهداب، نفذ المناعية ضد Arl13b (CI الأساسيليا ماركر) وGpr161 (GPCR الهدبي) (الشكل 3). - تركيب غطاء زجاجي مع تصاعد الحل على الزجاج الشرائح. إمالة الشريحة الزجاجية لإزالة حل الزائد.
3. تحليل تكون الأهداب في Neurospheres
- لتحليل الخلايا في neurospheres سليمة من قبل المناعية، ونقل 1 مل من المتوسط زراعة تحتوي على neurospheres متعددة إلى أنبوب 1.5 مل وتدور باستمرار في 500 x ج لمدة 8 دقائق. إصلاح المجالات مع 4٪ (PFA) بعد إزالة متوسطة لمدة 15 دقيقة ويغسل مع برنامج تلفزيوني. تدور باستمرار المجالات في 500 x ج لمدة 8 دقائق، وإزالة طاف، واحتضان المجالات O / N مع 30٪ سكروز في 4 درجات مئوية.
- تجاهل طاف باستخدام 1 مل طرف وإضافة 500 ميكرولتر من محلول أكتوبر باستخدام قطع 1 مل طرف. قطع حافة الحافة لتوسيع الافتتاح، كما أكتوبر هو لزج.
- نقل الحل أكتوبر تحتوي على neurospheres إلى التخلص منها العفن تجميد البلاستيك (10 مم × 10 مم × 5 مم).
- تجميد مالعمر على الجليد الجاف لمدة 15 دقيقة على الأقل.
- (اختياري) وقف التجربة وتخزين القالب في الثلاجة -80 درجة مئوية لمدة تصل إلى 1 سنة.
- قطع المقاطع مع ناظم البرد. يجب أن يكون سمك أقسام 15-30 ميكرون.
- لتصور أهداب الابتدائي في neurosphere، نفذ المناعية ضد Arl13b (الشكل 4).
4. الثقافة ومرور Neurospheres وNSCs منتسب
- تمرير neurospheres في حين أن حجم المجال ما بين 100-200 ميكرون. عندما neurospheres هي كبيرة جدا (300 ميكرون أو أعلى)، فهي ليست مثالية لإجراء التجارب.
- نقل neurospheres في أنبوب 50 مل باستخدام 1 مل طرف وتدور باستمرار في 500 x ج لمدة 8 دقائق.
- تجاهل طاف باستخدام الشافطة، إضافة 500 ميكرولتر من 0.05٪ التربسين-EDTA في برنامج تلفزيوني، واحتضان لمدة 5 دقائق عند 37 درجة مئوية. كمية التربسين يختلف اعتمادا على عدد من المجالات.
- إضافة 500 ميليلتر من الدم المتوسطة وبلطف الأنابيبر 20 مرات مع مل طرف 1.
- تدور باستمرار في 500 x ج لمدة 8 دقائق. تجاهل طاف باستخدام 1 مل طرف وإضافة 1 مل من المتوسط القاعدية.
- (اختياري) إذا رأيت الحطام الخلوي أو undissociated neurospheres، لتمرير الخلايا من خلال 70 ميكرون خلية مصفاة.
- مرور خلايا في طبق 10 سم في مناطق ذات كثافة من 10000 خلية / سم 2 في NSC المتوسطة. الخلايا ستكون جاهزة للمرور القادم بعد أسبوع.
- (اختياري) لتجميد الخلايا، إضافة تجميد المتوسطة لتوليد 500،000 إلى 1،000،000 خلية / مل تعليق. تجميد الخلايا باستخدام حاويات تجميد البرد. ويمكن أيضا neurospheres undissociated أن تجمد.
- للثقافة ملتصقة، dillute الخلايا الى 50،000 خلية / سم 2 على PLL- وcoverslips مع NSC المتوسطة، والثقافة Laminin المغلفة لمدة 1-2 أيام.
5. المجاعة وتحليل سيليا
- إعداد المتوسطة الجوع (الجدول 1).
- بعد 1-2 أيام من رر الأوليating من الخلايا الملتصقة بعد التفكك، وتغير لNSC المتوسطة في بئر واحدة (السيطرة) ومتوسطة المجاعة في آخر أيضا (التجربة).
- ثقافة الخلايا الملتصقة لمدة 24 ساعة.
- إصلاح الخلايا مع 4٪ PFA في برنامج تلفزيوني لمدة 15 دقيقة في RT ويغسل مرتين مع برنامج تلفزيوني لمدة 5 دقائق كل في RT.
- (اختياري) وقف التجربة وتخزين 24 لوحات بشكل جيد مع coverslips في برنامج تلفزيوني في 4 درجات مئوية لمدة 1-2 أشهر.
- إجراء بروتوكول المناعي عن تلطيخ 7، 50.
- جبل لل coverslips باستخدام محلول المتزايدة. تجفيف O الشريحة الزجاجية / N في RT في الظلام.
- الحصول على صور في المجهر المركب في التكبير اللازم. استخدام المجهر، وكاميرا، والأهداف (40X / 1.3 النفط و63X / 1.4 النفط)، التي تسيطر عليها باستخدام برنامج يرافقه. خذ كافية ض أقسام في 0،5-0،8 ميكرون فترات (الشكل 5).
- لتحليل كمي لتوطين الهدبية فيالخلايا الملتصقة، الحصول على رزمة من الصور 3-8 المجالات متتالية مع خلايا متكدسة من خلال النظر في قناة دابي. تحديد عدد أهداب أساسي باستخدام يماغيج / فيجي. عادة، استخدام أداة "مكافحة خلية" في يماغيج الإضافات> مربع الحوار إلى عدد الخلايا مع أهداب GPCR إيجابية تحليل. توقعات القصوى من رزمة من الصور كما يمكن تصديرها من يماغيج / Fiji.Use كثافة صورة مماثلة والمعلمات المقابل لجميع الصور من نفس التجربة لمدة العد وأغراض التصدير.
6. ترنسفكأيشن من Neurospheres
- تلتزم فصل الخلايا لcoverslips لمدة 24 ساعة. استخدام كثافة الخلايا عادة بين 75،000 و 150،000 الخلايا في 500 ميكرولتر من NSC المتوسطة في بئر واحدة من 24 لوحة جيدا.
- مزيج 25 ميكرولتر من انخفاض سيرم و 1.5 ميكرولتر من كاشف ترنسفكأيشن في مل microtube 0.5 قبل vortexing لمدة 5 ق.
- إضافة 2.5 ميكروغرام من الذيفان الداخلي خالية DNA البلازميد إلى منفصلة 0.5 مل microtubالبريد التي تحتوي على 25 ميكرولتر من خفض وسائل الاعلام المصل وتخلط قبل vortexing لمدة 5 ق.
- إضافة 1 ميكرولتر من كاشف ترنسفكأيشن إلى microtube يحتوي الثاني على DNA وتخلط قبل vortexing لمدة 5 ق.
- يضاف خليط من الأنبوب التي تحتوي على الحمض النووي للmicrotube الأول ومزيج من قبل pipetting.
- احتضان الخليط لمدة 10-15 دقيقة في RT. بعد الحضانة، إضافة بلطف قطرة قطرة مزيج ترنسفكأيشن إلى الآبار على أعلى من المتوسط NSC (500 ميكرولتر / جيد).
- تغيير المتوسط 24 ساعة بعد ترنسفكأيشن للسيطرة المتوسطة (NSC المتوسطة) أو متوسطة المجاعة (500 ميكرولتر / جيد).
- إصلاح الخلايا عن طريق تغيير المتوسط إلى 4٪ PFA بعد 24 ساعة وأداء المناعية. عادة، تصل إلى كفاءة ترنسفكأيشن 10٪ يتم الحصول عليها باستخدام هذا البروتوكول.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
بعد طلاء الخلايا من SVZ في NSC متوسطة لمدة أسبوع، لوحظت neurospheres العائمة (الشكل 2A). أحجام مجالات تتراوح بين 50 و 200 ميكرون. لفحص إذا كانت تستمد المجالات من الخلايا الجذعية / السلف العصبية، كانت مطلية من neurospheres على PLL- وcoverslips في NSC المتوسطة Laminin المغلفة لمدة 2 أيام. ثم تم immunostained أنهم ضد العصبية علامة الجذعية / خلية سلفية، Nestin. وهناك حاجة إلى يومين للسماح المجالات إرفاق لل coverslips وتنمو كما أحادي الطبقة من الخلايا. وكانت أحادي الطبقة من الخلايا إيجابية لNestin (الشكل 2B). لفحص قدرة التفريق بين neurospheres، ونحن مطلي لهم اتباع الخطوات المبينة في المادة 2 على PLL- وcoverslips في متوسطة التمايز Laminin المغلفة دون تفكك لمدة 7-10 أيام. يستغرق على الأقل في الأسبوع للتمايز. وneurospheres تعلق لل coverslips وتوسيعإد أن تنمو كما أحادي الطبقة من الخلايا. نحن الثابتة الخلايا وimmunostained ضد الخلايا العصبية، نجمية، وعلامات دبقية قليلة التغصن. لاحظنا neurospheres ملتصقة التي متباينة في β-تويولين الخلايا العصبية الإيجابية III، النجمية GFAP إيجابية، و oligodendrocytes O4 إيجابية (الشكل 2C-E). وهكذا، neurospheres متعددة القدرات يمكن استخلاصها من SVZ الماوس الكبار.
لتحديد ما إذا neurospheres تمسكا والخلايا العصبية متباينة لها أهداب الابتدائي، ونحن immunostained ضد Arl13b (الابتدائية هدب علامة) 51 وGpr161 (مترجمة الهدبية GPCR) 7. في تجربتنا، في نماذج الماوس المتاحة معربا عن ARL13B-mCherry، والدراسات في تطوير القشرة الماوس، معظم (إن لم يكن كل) أهداب الخلايا العصبية في الدماغ التعبير عن Arl13b، في حين أن جميع الخلايا العصبية لا ACIII إيجابية 52 و 53 و 54. الخميس الصورة، ونحن نعتمد بشكل رئيسي على Arl13b للكشف عن أهداب الخلايا العصبية. اكتشفنا أهداب الابتدائي وتوطين Gpr161 إلى أهداب الخلايا الاصلية في neurospheres الالتزام (الشكل 3A) وفي الخلايا العصبية متباينة (الشكل 3B). وهكذا، ومهدبة neurospheres ملتصقة والأنساب المتباينة في الثقافة وتوطين جزيئات الإشارة.
لتحديد ما إذا كان لديها neurospheres العائمة أهداب الابتدائي، ونحن cryosectioned neurospheres العائمة بعد التثبيت، كما هو مبين في القسم 3. لاحظنا أهداب الأساسي في الخلايا الجذعية / السلف العصبية في neurospheres مقطوع (الشكل 4A-B). من المهم أن يكتسب ض المقاطع عبر neurospheres لتصور كامل أهداب الابتدائي، لأنه من الصعب لدراسة أهداب الابتدائي في زي طائرة واحدة. وباختصار، neurospheres غير متمايز يكون السكان غير متجانس من خلايا مهدبة وغير مهدبة.
: المحافظة على together.within الصفحات = "1"> لتحليل تكون الأهداب الخلايا الجذعية / السلف العصبية، ونحن فصلها neurospheres ومطلي الخلايا على PLL- وcoverslips المغلفة Laminin. بعد زرع لهم في وسط المجاعة، لاحظنا زيادة النسبة المئوية من أهداب، والكشف عنها بواسطة Arl13b، بالمقارنة مع تلك المثقف في المتوسط NSC (٪ ciliation) (الشكل 5A-B). وبالإضافة إلى ذلك، لاحظنا زيادة في عدد أهداب Gpr161 إيجابي على المجاعة (٪-Gpr161 إيجابية أهداب / أهداب Arl13b إيجابية) (الشكل 5A-B). ومن المثير للاهتمام، أظهرت دراسة سابقة باستخدام الجنينية خطوط الخلايا الجذعية البشرية غير متمايزة أن الخلايا الجذعية الجنينية البشرية في الثقافة تمتلك أيضا أهداب الأولية 55. عدد وطول الزيادة أهداب على الجوع مصل في هذه السطور الخلية، وهذه الأهداب تمتلك أيضا مكونات الآلات صه.
نحن أيضا transfected تمسكا العصبية الجذعية / progenitoخلايا ص، على النحو المبين في القسم 6. نحن عادة الكشف عن كفاءة ترنسفكأيشن تصل إلى 10٪، على غرار الثقافات الخلايا العصبية الابتدائية في المختبر (الشكل 6).
| حل | مكون |
| برنامج تلفزيوني 1X | تمييع 10X PBS مع الماء تعقيمها |
| NSC المتوسطة | 2 مل 50X B27 |
| 1 مل 100X N2 | |
| 1 مل 200 ملي L-الجلوتامين | |
| 1 مل 100X القلم / بكتيريا | |
| FGF-الأساسي (bFGF البشري) (محلول المخزون 25 نانوغرام / مل في Neurobasal المتوسطة): 20 نانوغرام / مل أو 2 مجموع ملغ لكل 100 مل سائل الإعلام | |
| EGF (محلول المخزون 25 نانوغرام / مل في Neurobasal المتوسطة): 20 نانوغرام / مل أو 2 مجموع ملغ لكل 100 مل سائل الإعلام | |
| 95 مل المتوسطة القاعدية | |
| FGF-الأساسي البشري (الإنسان bFGF) | 1 مل المتوسطة القاعدية لbFGF 25 زجاجة ميكروغرام الإنسان التجارية |
| تخزين في microtubes العقيمة في -20 درجة مئوية أو أقل. استخدام واحد قسامة 80 ميكرولتر أو 2 ميكروغرام / 100 مل وسائل الاعلام NSC. | |
| EGF | إضافة 8 مل المتوسطة القاعدية لالتجارية EGF 20 زجاجة ميكروغرام |
| تخزين microtubes كما العقيمة في -20 درجة مئوية أو أقل. استخدام 80 ميكروغرام قسامة / 100 وسائل الإعلام واحد مل. | |
| وقف المتوسطة | 1 مل FBS |
| 75 U الدناز I (75 U / UL في PBS) | |
| 9 مل PBS | |
| المتوسطة المصل | 1 مل FBS |
| 9 مل بصل متوسطة | |
| تجميد المتوسطة | 4 مل DMSO |
| 24 مل المتوسطة القاعدية | |
| 12 مل 30٪ FBS | |
| متوسطة التمايز | 90 مل المتوسطة القاعدية |
| 5 مل 5٪ FBS | |
| 1 مل 100X القلم / بكتيريا | |
| 1 مل 200 ملي L-الجلوتامين | |
| 1 مل 100X N2 | |
| 2 مل 50X B27 | |
| FGF-الأساسي (bFGF البشري) (محلول المخزون من 25 نانوغرام / مل في Neurobasal المتوسطة): 10 نانوغرام / مل أو 1 مجموع ملغ لكل 100 مل | |
| متوسطة المجاعة | 95 مل المتوسطة القاعدية |
| 1 مل 100X القلم / بكتيريا | |
| 1 مل 200 ملي L-الجلوتامين | |
| 1 مل 100X N2 | |
| 2 مل 50X B27 |
الجدول 1: وصفة من حلول.
ve_content "FO: المحافظة على together.within الصفحات =" 1 ">
الشكل 1: رسم تخطيطي من Neurosphere الثقافة والتمايز البروتوكولات. الرجاء انقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم.
الشكل 2: معرض Neurospheres التمايز القدرات. (A) وترد neurospheres الممثل. كانت مطلية (B) Neurospheres على coverslips PLL- و laminin المغلفة في NSC متوسطة لمدة 2 أيام وو immunostained ضد Nestin (العصبية الجذعية / السلف علامة الخلية). كانت مطلية (CE) Neurospheres باتباع الخطوات الواردة في المادة 2 على PLL- وcoverslips في متوسطة التمايز Laminin المغلفة لمدة 7 أيام withoالتحرير التفكك. ثابت؛ وimmunostained ضد β-III تويولين (علامة العصبية)، GFAP (نجمية علامة)، وO4 (دبقية قليلة التغصن علامة). كانت ملطخة نوى التي كتبها دابي. شريط مقياس = 100 ميكرون. الرجاء انقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم.
الشكل (3): Neurospheres والخلايا العصبية في تمسكا متباينة Neurospheres هي مهدبة. كانت مطلية (A) neurospheres Undissociated على coverslips المغلفة في NSC متوسطة لمدة 2 د. ثابت؛ وimmunostained ضد Gpr161 (الأخضر)، Arl13b (الحمراء)، والحمض النووي (الأزرق). و immunostained (B) الخلايا العصبية المتباينة ضد Gpr161 (الأخضر)، Arl13b (أحمر، A) أو β-III تويولين (أحمر، B)، والحمض النووي (الأزرق). وتشير السهام البيضاء توطين Gpr161 في أهداب.لوحات اليمين في (A) هي وجهات النظر موسعة من هدب الأساسي الذي يشير إليه السهم الأبيض. يظهر هدب-Gpr161 إيجابية في الخلايا العصبية محاصر البيضاء إلى اليمين في (B). مقياس = 10 ميكرومتر (A)؛ 50 ميكرون (B). الرجاء انقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم.
الشكل 4: العائمة، مشوه Neurospheres تمتلك خلايا مهدبة. كانت ثابتة neurospheres العائمة، جزءا لا يتجزأ من أكتوبر، cryosectioned، ومعالجتها لالمناعي ضد Arl13b (الحمراء) والحمض النووي. وترد أهداب الأولية إيجابية Arl13b في neurosphere. لوحة في (A) هو إسقاط الحد الأقصى للكثافة 14 ض المقاطع على 0.8 ميكرومتر فترات من neurosphere. لوحات في (B) تظهر وجهة نظر الموسع للجخلايا iliated في المنطقة محاصر البيضاء في (A). يتم عرض صورة الإسقاط القصوى من جميع أقسام ض كحزمة، بينما أعداد 1-14 تشير الفردية ض أقسام. وتشير السهام البيضاء أهداب الابتدائي. شريط مقياس = 50 ميكرومتر. الرجاء انقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم.
الشكل 5: المجاعة يقنع تكون الأهداب في فصل تمسكا العصبية الجذعية / خلايا السلف. كانت مطلية (A) تنفصل الخلايا على coverslips المغلفة في NSC المتوسطة أو المتوسطة الجوع لمدة 24 ساعة. ثابت؛ وimmunostained ضد Gpr161 (الأخضر)، Arl13b (الحمراء)، والحمض النووي (الأزرق). ويلاحظ أهداب-Gpr161 إيجابية في السيطرة (يسار) وجوعا (يمين) الخلايا. لوحات أقل وجهات النظر موسعة من المربعات البيضاء المشار إليها في فيما يخصهلوحات العليا. الأسهم البيضاء ورؤوس سهام تشير أهداب إيجابية Gpr161 و-سلبية، على التوالي. شريط مقياس = 100 ميكرون. (B) الكمي لخلايا Arl13b إيجابية مهدبة (الرسم البياني الأيسر) وGpr161 توطين في أهداب Arl13b بفيروس (يمين الرسم البياني) في السيطرة والخلايا جوعا. ارتفعت نسب كل من الخلايا المهدبة Arl13b إيجابية وGpr161 توطين في أهداب Arl13b إيجابية على الموت جوعا. تم إجراء تقدير من حقلين نظر كل من اثنين من مكررات التقنية من تجربة واحدة. يتم تمثيل البيانات في المتوسط من جميع الميادين 4 نظر ± الانحراف المعياري. *، P <0.05. **، P <0.01. الرجاء انقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم.
الشكل 6: ترنسفكأيشن فيفصل تمسكا العصبية الجذعية / خلايا السلف. و transfected خلايا نأت مطلي coverslips على المغلفة مع LAP-TULP3 N-محطة (1-183 أأ) mut12 بناء لا تربط حتى النخاع IFT-A معقد 56. تم تغيير على المديين المتوسط والتجويع المتوسطة 24 ساعة بعد ترنسفكأيشن. تم إصلاح الخلايا بعد 24 ساعة وimmunostained ضد GFP (الأخضر)، Gpr161 (الحمراء)، Arl13b (قرمزي)، والحمض النووي (الأزرق). وضعت خلية transfected مع Gpr161- وArl13b إيجابية هدب بواسطة سهم الأبيض، في حين يظهر خلية transfected دون أهداب مع رأس السهم الأبيض. الأسهم الصفراء ورؤوس سهام تشير إلى خلايا untransfected مع أو بدون Gpr161 / Arl13b، على التوالي. شريط مقياس = 10 ميكرومتر. الرجاء انقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
هنا، نحن تصف طريقة لتوليد والحفاظ على الثقافات neurosphere من SVZ الماوس الكبار. هناك بعض النقاط ذات الصلة فيما يتعلق الثقافات هي على النحو التالي. أولا، أحجام المجالات وعادة ما تكون بين 50-200 ميكرون. في تجربتنا، وعندما يحصل على neurosphere أكبر من 300 ميكرون في القطر، وقد غاب عن الوقت الأمثل لالركض. هذه المجالات أكبر تحتوي على الخلايا الميتة في القلب. ثانيا، كما تستخدم neurospheres عادة لدراسة الخلايا الجذعية / السلف العصبية، فمن المهم استخدام EGF وFGF الأساسي (bFGF) للحفاظ على stemness من هذه الخلايا. لذلك، والعوامل التي تحفز على التمايز، مثل FBS، ويجب تجنب خلال الحفاظ على neurospheres. وقد تبين أن 10٪ FBS يمكن أن تفرق neurospheres إلى الخلايا النجمية 47. ثالثا، درجة تمايز الخلايا العصبية قد يعتمد على عمر الماوس. إذا كان أحد يريد التمايز أكثر من الخلايا العصبية neurospheres والفئران الأصغر سنا (بعد الولادة داذ 0) يمكن استخدامها. رابعا، إذا بدءا ثقافات جديدة، فمن الجيد دائما أن دراسة قدرة التفريق بين neurospheres. خامسا، كما يسمح لدينا وسيلة تجميد والذوبان من الثقافات neurosphere أنشئت للاستخدام التجريبي في المستقبل. بعد ذوبان الجليد، والخلايا عادة تنمو الخلايا على شكل مغزل كما ملتصقة دون بولي-L-يسين أو laminin. قد يكون ذلك بسبب الضرر تجميد أذاب إلى الخلايا. فمن المهم للحفاظ على خلايا النمو حتى تصبح 60-80٪ متموجة قبل مرور. بعد مرور الخلايا تنمو عادة ما neurospheres وعموما يمكن passaged إلى 5 - 10 مرات.
طرق ثقافة تقوم Neurosphere-تسمح لنا لدراسة الاتجار الهدبية ومسارات الإشارات في الجذعية العصبية / الخلايا الاولية والخلايا العصبية متباينة. درسنا أهداب الابتدائي في عائم neurospheres / ملتصقة ومتباينة. ومن المهم للحصول على عدة أقسام ض لتصور أهداب في جميع أنحاء المدى الكامل للneurospheres. وعلاوة على ذلك، الخلفإيه توليد الثقافات ملتصقة هذه neurospheres، وتجويعه لمدة 24 ساعة، فإن معظم الخلايا مهدبة (الشكل 5) والمخصب في اليتيم النوع من الاختزال، Gpr161. ومع ذلك، تجويع الثقافات النتائج ملتصقة في هياكل فجوي التحت خلوية لفترات طويلة. وبالتالي، فمن المهم تحسين بعناية فترات المجاعة لأغراض معينة التجريبية.
حاليا، يتم تنفيذ دراسات حول تكون الأهداب في الغالب في عدد قليل من مهدب، خلد خطوط الخلايا 57. هذه خطوط الخلايا لا دائما بإخلاص ألخص الخلايا العصبية والخلايا الجذعية / السلف العصبية في التعبير عن مكونات الإشارة، مثل GPCRs أو صه الآلات ممر، مما يحتم على تطوير طرق جديدة لدراسة دور أهداب في العمليات البيولوجية. الأساليب القائمة على neurosphere الموصوفة هنا تسمح لنا لدراسة مسارات الخلوية التنظيم أهداب، بما في ذلك النوع من الاختزال وصه يشير في سياق الخلايا الجذعية العصبية / السلف وفرقالخلايا العصبية erentiated.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| 12 mm round cover glass | Fisherbrand | 12-545-80 | |
| 24-well plate | Falcon | 353047 | |
| 4% paraformaldehyde (PFA) | Affymetrix | 19943 | |
| 50 mL tube | Falcon | 352098 | |
| 95 mm x 15 mm petri dish, slippable lid | Fisherbrand | FB0875714G | 10 cm dish |
| 70 µm cell strainer | Falcon | 352350 | |
| Alexa Fluor 488 Affinipure Donkey Anti-Rabbit IgG (H+L) | Jackson Immunoresearch | 711-545-152 | Donkey anti Rabbit, Alexa 488 secondary antibody |
| Arl13B, Clone N295B/66 | Neuromab | AB_11000053 | |
| B-27 Supplement (50X), serum free | ThermoFisher Scientific | 17504001 | B27 |
| Centrifuge | Thermo scientific | ST 40R | |
| Cryogenic vial | Corning | 430488 | |
| DAPI | Sigma | D9542-10MG | |
| Deoxyribonuclease I from bovine pancrease | Sigma | D5025-15KU | Dnase I |
| Dimethyl sulfoxide | Sigma | D8418-100ML | DMSO |
| Disposable Vinyl Specimen Molds | Sakura Tissue-Tek Cryomold | 4565 | 10 mm x 10 mm x 5 mm |
| Dulbecco's Phosphate-buffered Saline 10X, Modified, without calcium chloride and magnesium chloride, liquid, sterile-filtered, suitable for cell culture | Sigma | D1408-500ML | DPBS |
| Dumont #5 Forceps | Fine science tools | 11254-20 | |
| Fetal Bovine Serum (FBS) | Sigma | F9026-500ML | |
| Fluoromount-G solution | Southern Biotech | 0100-01 | mounting solution |
| GFAP | DAKO | Z0334 | |
| Goat anti Mouse IgG1 Secondary Antibody, Alexa Fluor 555 conjugate | ThermoFisher Scientific | A-21127 | Goat anti Mouse IgG1, Alexa 555 secondary antibody |
| Goat anti Mouse IgG2a Secondary Antibody, Alexa Fluor 555 conjugate | ThermoFisher Scientific | A-21137 | Goat anti Mouse IgG2a, Alexa 555 secondary antibody |
| Gpr161 | home made | N/A | |
| human bFGF | Sigma | F0291 | FGF |
| hemocytometer | Hausser Scientific | 0.100 mm deep | improved neubauer |
| Isothesia | Henry Schein | NDC 11695-0500-2 | Isofluorane |
| Laminin from Engelbreth-Holm-Swarm Sarcoma basement membrane | Sigma | L2020 | Laminin |
| L-Glutamine (200 mM) | Sigma | G7513 | |
| Lipofectamine 3000 Transfection Reagent | ThermoFisher Scientific | L3000 | |
| Mr. Frosty | Nalgene | 5100-0036 | |
| N-2 supplement (100X) | ThermoFisher Scientific | 17502001 | N2 |
| Neurobasal medium | Gibco | 21103-049 | |
| Normal Donkey Serum | Jackson ImmunoResearch | 017-000-121 | |
| OCT compound | Sakura Tissue-Tek | 4583 | OCT |
| Penicillin-Streptomycin | Sigma | P4333-100ML | |
| Poly-L-Lysine (PLL) | Sigma | P4707 | |
| Recombinant human EGF protein, CF | R and D systems | 236-EG-200 | EGF |
| Scissor | Fine science tools | 14060-10 | |
| Superfrost plus microscope slide | Fisher scientific | 12-550-15 | slides |
| Triton X-100 | Bio-Rad | 161-0407 | |
| Trypsin-EDTA solution (10X) | Sigma | T4174-100 | Trypsin |
| COSTAR 6-Well Plate, With Lid Flat Bottom Ultra-Low Attachment Surface Polystyrene, Sterile | Corning | 3471 | ultra-low binding 6-well plate |
| β-tubulin III | Covance | MMS-435P | TUJ1 |
References
- Mukhopadhyay, S., Rohatgi, R. G-protein-coupled receptors, Hedgehog signaling and primary cilia. Semin Cell Dev Biol. 33, 63-72 (2014).
- Goetz, S. C., Anderson, K. V. The primary cilium: a signalling centre during vertebrate development. Nat Rev Genet. 11, 331-344 (2010).
- Guemez-Gamboa, A., Coufal, N. G., Gleeson, J. G. Primary cilia in the developing and mature brain. Neuron. 82, 511-521 (2014).
- Louvi, A., Grove, E. A. Cilia in the CNS: the quiet organelle claims center stage. Neuron. 69, 1046-1060 (2011).
- Rohatgi, R., Milenkovic, L., Scott, M. P. Patched1 regulates hedgehog signaling at the primary cilium. Science. 317, 372-376 (2007).
- Corbit, K. C., et al. Vertebrate Smoothened functions at the primary cilium. Nature. 437, 1018-1021 (2005).
- Mukhopadhyay, S., et al. The ciliary G-protein-coupled receptor Gpr161 negatively regulates the Sonic hedgehog pathway via cAMP signaling. Cell. 152, 210-223 (2013).
- Hilgendorf, K. I., Johnson, C. T., Jackson, P. K. The primary cilium as a cellular receiver: organizing ciliary GPCR signaling. Curr Opin Cell Biol. 39, 84-92 (2016).
- Berbari, N. F., Johnson, A. D., Lewis, J. S., Askwith, C. C., Mykytyn, K. Identification of ciliary localization sequences within the third intracellular loop of G protein-coupled receptors. Mol Biol Cell. 19, 1540-1547 (2008).
- Berbari, N. F., Lewis, J. S., Bishop, G. A., Askwith, C. C., Mykytyn, K. Bardet-Biedl syndrome proteins are required for the localization of G protein-coupled receptors to primary cilia. Proc Natl Acad Sci USA. 105, 4242-4246 (2008).
- Loktev, A. V., Jackson, P. K. Neuropeptide Y family receptors traffic via the Bardet-Biedl syndrome pathway to signal in neuronal primary cilia. Cell Rep. 5, 1316-1329 (2013).
- Marley, A., Choy, R. W., von Zastrow, M. GPR88 reveals a discrete function of primary cilia as selective insulators of GPCR cross-talk. PLoS One. 8, e70857 (2013).
- Marley, A., von Zastrow, M. DISC1 regulates primary cilia that display specific dopamine receptors. PLoS One. 5, e10902 (2010).
- Omori, Y., et al. Identification of G Protein-Coupled Receptors (GPCRs) in Primary Cilia and Their Possible Involvement in Body Weight Control. PLoS One. 10, e0128422 (2015).
- Koemeter-Cox, A. I., et al. Primary cilia enhance kisspeptin receptor signaling on gonadotropin-releasing hormone neurons. Proc Natl Acad Sci USA. 111, 10335-10340 (2014).
- Brailov, I., et al. Localization of 5-HT(6) receptors at the plasma membrane of neuronal cilia in the rat brain. Brain Res. 872, 271-275 (2000).
- Hildebrandt, F. .,,T. .,&K. atsanis,N. ., Benzing, T., Katsanis, N. Ciliopathies. N Engl J Med. 364, 1533-1543 (2011).
- Waters, A. M., Beales, P. L. Ciliopathies: an expanding disease spectrum. Pediatr Nephrol. 26, 1039-1056 (2011).
- Badano, J. L., Mitsuma, N., Beales, P. L., Katsanis, N. The ciliopathies: an emerging class of human genetic disorders. Annu Rev Genomics Hum Genet. 7, 125-148 (2006).
- Novarino, G., Akizu, N., Gleeson, J. G. Modeling human disease in humans: the ciliopathies. Cell. 147, 70-79 (2011).
- Brugmann, S. A., Cordero, D. R., Helms, J. A. Craniofacial ciliopathies: A new classification for craniofacial disorders. Am J Med Genet A. 152A (12), 2995-3006 (2010).
- Valente, E. M., Rosti, R. O., Gibbs, E., Gleeson, J. G. Primary cilia in neurodevelopmental disorders. Nat Rev Neurol. 10, 27-36 (2014).
- Davenport, J. R., et al. Disruption of intraflagellar transport in adult mice leads to obesity and slow-onset cystic kidney disease. Curr Biol. 17, 1586-1594 (2007).
- Zaghloul, N. A., Katsanis, N. Mechanistic insights into Bardet-Biedl syndrome, a model ciliopathy. J Clin Invest. 119, 428-437 (2009).
- Einstein, E. B., et al. Somatostatin signaling in neuronal cilia is critical for object recognition memory. J Neurosci. 30, 4306-4314 (2010).
- Wang, Z., Phan, T., Storm, D. R. The type 3 adenylyl cyclase is required for novel object learning and extinction of contextual memory: role of cAMP signaling in primary cilia. J Neurosci. 31, 5557-5561 (2011).
- Berbari, N. F., et al. Hippocampal and cortical primary cilia are required for aversive memory in mice. PLoS One. 9, e106576 (2014).
- Han, Y. G., Alvarez-Buylla, A. Role of primary cilia in brain development and cancer. Curr Opin Neurobiol. 20, 58-67 (2010).
- Han, Y. G., et al. Dual and opposing roles of primary cilia in medulloblastoma development. Nat Med. 15, 1062-1065 (2009).
- Lim, D. A., Alvarez-Buylla, A. The Adult Ventricular-Subventricular Zone (V-SVZ) and Olfactory Bulb (OB) Neurogenesis. Cold Spring Harbor perspectives in biology. 8, (2016).
- Shimada, I. S., LeComte, M. D., Granger, J. C., Quinlan, N. J., Spees, J. L. Self-renewal and differentiation of reactive astrocyte-derived neural stem/progenitor cells isolated from the cortical peri-infarct area after stroke. J Neurosci. 32, 7926-7940 (2012).
- Mich, J. K., et al. Prospective identification of functionally distinct stem cells and neurosphere-initiating cells in adult mouse forebrain. eLife. 3, e02669 (2014).
- Mirzadeh, Z., Merkle, F. T., Soriano-Navarro, M., Garcia-Verdugo, J. M., Alvarez-Buylla, A. Neural stem cells confer unique pinwheel architecture to the ventricular surface in neurogenic regions of the adult brain. Cell stem cell. 3, 265-278 (2008).
- Pedersen, L. B., Mogensen, J. B., Christensen, S. T. Endocytic Control of Cellular Signaling at the Primary Cilium. Trends Biochem Sci. , (2016).
- Christensen, S. T., Clement, C. A., Satir, P., Pedersen, L. B. Primary cilia and coordination of receptor tyrosine kinase (RTK) signalling. J Pathol. 226, 172-184 (2012).
- Clement, C. A., et al. TGF-beta signaling is associated with endocytosis at the pocket region of the primary cilium. Cell reports. 3, 1806-1814 (2013).
- Taverna, E., Gotz, M., Huttner, W. B. The cell biology of neurogenesis: toward an understanding of the development and evolution of the neocortex. Annu Rev Cell Dev Biol. 30, 465-502 (2014).
- Joiner, A. M., Green, W. W., McIntyre, J. C. Primary Cilia on Horizontal Basal Cells Regulate Regeneration of the Olfactory Epithelium. J Neurosci. 35, 13761-13772 (2015).
- Inaba, M., Buszczak, M., Yamashita, Y. M. Nanotubes mediate niche-stem-cell signalling in the Drosophila testis. Nature. 523, 329-332 (2015).
- Peng, T., et al. Hedgehog actively maintains adult lung quiescence and regulates repair and regeneration. Nature. 526, 578-582 (2015).
- Rauhauser, A. A., et al. Hedgehog signaling indirectly affects tubular cell survival after obstructive kidney injury. Am J Physiol: Renal Physiol. 309, F770-F778 (2015).
- Chavez, M., et al. Modulation of Ciliary Phosphoinositide Content Regulates Trafficking and Sonic Hedgehog Signaling Output. Dev Cell. 34, 338-350 (2015).
- Lobo, M. V., et al. Cellular characterization of epidermal growth factor-expanded free-floating neurospheres. J. Histochem. Cytochem. 51, 89-103 (2003).
- Reynolds, B. A., Weiss, S. Generation of neurons and astrocytes from isolated cells of the adult mammalian central nervous system. Science. 255, 1707-1710 (1992).
- Pastrana, E., Silva-Vargas, V., Doetsch, F. Eyes wide open: a critical review of sphere-formation as an assay for stem cells. Cell stem cell. 8, 486-498 (2011).
- Nishino, J., Kim, I., Chada, K., Morrison, S. J. Hmga2 promotes neural stem cell self-renewal in young but not old mice by reducing p16Ink4a and p19Arf Expression. Cell. 135, 227-239 (2008).
- Shimada, I. S., Peterson, B. M., Spees, J. L. Isolation of locally derived stem/progenitor cells from the peri-infarct area that do not migrate from the lateral ventricle after cortical stroke. Stroke. 41, e552-e560 (2010).
- Mirzadeh, Z., Doetsch, F., Sawamoto, K., Wichterle, H., Alvarez-Buylla, A. The subventricular zone en-face: wholemount staining and ependymal flow. J Vis Exp. , (2010).
- Coles-Takabe, B. L., et al. Don't look: growing clonal versus nonclonal neural stem cell colonies. Stem Cells. 26, 2938-2944 (2008).
- Pal, K., et al. Smoothened determines beta-arrestin-mediated removal of the G protein-coupled receptor Gpr161 from the primary cilium. J Cell Biol. 212, 861-875 (2016).
- Caspary, T., Larkins, C. E., Anderson, K. V. The graded response to Sonic Hedgehog depends on cilia architecture. Dev Cell. 12, 767-778 (2007).
- Bangs, F. K., Schrode, N., Hadjantonakis, A. K., Anderson, K. V. Lineage specificity of primary cilia in the mouse embryo. Nat Cell Biol. 17, 113-122 (2015).
- Berbari, N. F., Bishop, G. A., Askwith, C. C., Lewis, J. S., Mykytyn, K. Hippocampal neurons possess primary cilia in culture. J Neurosci Res. 85, 1095-1100 (2007).
- Paridaen, J. T., Wilsch-Brauninger, M., Huttner, W. B. Asymmetric inheritance of centrosome-associated primary cilium membrane directs ciliogenesis after cell division. Cell. 155, 333-344 (2013).
- Kiprilov, E. N., et al. Human embryonic stem cells in culture possess primary cilia with hedgehog signaling machinery. J Cell Biol. 180, 897-904 (2008).
- Mukhopadhyay, S., et al. TULP3 bridges the IFT-A complex and membrane phosphoinositides to promote trafficking of G protein-coupled receptors into primary cilia. Genes Dev. 24, 2180-2193 (2010).
- Ishikawa, H., Marshall, W. F. Efficient live fluorescence imaging of intraflagellar transport in mammalian primary cilia. Methods Cell Biol. 127, 189-201 (2015).
