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Neuroscience

쥐 두뇌에 있는 Microinjections에 대 한 개인화 된 바늘

Published: January 24, 2018 doi: 10.3791/55751
* These authors contributed equally

Summary

우리는 여기 석 바늘을 사용 하 여 쥐 두뇌에 있는 microinjection에 대 한 프로토콜을 설명 합니다. 이 바늘 하지 감지 조직 손상을 생산 하 고 깊은 지역에도 안정적인 전달. 또한, 그들은 맞춤된 설계에 의해 연구의 필요에 적응 시킬 수 있다 하 고 다시 사용 될 수 있습니다.

Abstract

Microinjections 약물 또는 특정 뇌 영역 내에서 독 소의 배달에 대 한 오랜 시간 동안 사용 되었습니다 그리고 더 최근에, 그들은 유전자 또는 세포 치료 제품에 사용 되었습니다. 불행히도, 현재 microinjection 기술 사용 여러 이유로 차선은 강철 또는 유리 바늘: 특히, 철강 바늘 조직 손상이 발생할 수 있습니다 및 대상 지역 누락, 두뇌에 깊이 인하 유리 바늘 구 부 수 있습니다. 이 문서에서는, 우리가 준비 하 고 유용한 기능의 번호를 결합 하는 석 영 바늘을 사용 하 여 프로토콜을 설명 합니다. 이러한 바늘 감지 조직 손상 생성 하지 않는다 그리고, 깊은 좌표를 사용 하는 경우에 원하는 뇌 영역에서 신뢰할 수 있는 전달 되도록 매우 엄격한 되 고. 또한, 원하는 직경의 여러 구멍을 만들어서 바늘의 디자인 맞춤 가능 하다. 여러 구멍 큰 구멍 세포의 주입을 용이 하 게 하는 반면 더 큰 영역 내에서 솔루션의 대용량의 주입을 촉진 한다. 또한, 이러한 석 영 바늘 청소 하 고 절차 비용 효과적 되는 다시 사용 될 수 있습니다.

Introduction

Microinjections는 특정 뇌 영역에 신경 활동을 조절 하 약리학 활성 화합물의 배달에 대 한 오랜 동안 사용 되어 왔습니다. 그들은 또한, 신경 이벤트 특정 질병, 예를 들면 6-hydroxy-도파민 nigrostriatal 도파민 시스템을 모방 하는 파 킨 슨 병에서의 특성을 모방 하기 위해 특정 신경 인구 근처 독 소를 주입 하 사용 되었습니다. 1 , 2 또는 병 해 시스템3변 하 immunotoxin 192 IgG saporin. 더 최근에, microinjection 절차 실험적인 뇌 장애4,5의 유전자 또는 세포 치료에 대 한 바이러스 성 벡터 또는 세포 이식 제공 하 사용 되었습니다.

이러한 연구에 사용 하는 바늘의 고전적인 유형의 스테인레스 스틸로 이루어집니다. 비록 간단 하 고 실용적인 사용을, 강철 바늘 문제6의 번호가: 그들은 비교적 큰 하 고 손상을 줄 수 있습니다 조직의 혈액-뇌 장벽의 누설 및 이다;의 활성화 또한, 그들은 심지어 완전히 원하는 솔루션의 흐름을 피 하거나 장애물을 만드는 바늘에 되 면 뇌 조직의 유선을 생산할 수 있습니다. 더 최근에, 유리 바늘 준비 임시 모세 혈관에서에 도입 되었습니다7,8을 사용. 이러한 중요 한 조직 손상도 사이토 활성화를 발생 하지 않습니다 하지만 상대적으로 유연 하 고 깊은 구조, 지역화 (개인적인 관측)의 정확도 감소에서 소개 될 때 구 부 수 있습니다.

따라서 만큼 손상 (특히 손상을 치료 하는 실험을 수행할) 때 정확성과 재현성을 증가 하면서 줄일 필요가 있다 (, 모든 솔루션 전달 하 고 올바른 지역화를 확인). 또한, 다양 한 형상의 뇌 영역에 주입 된 솔루션의 최적의 배포를 보장 하기 위해 다른 바늘 디자인을 사용 하는 것이 좋습니다 것입니다. 이 문서에서는, 우리는 준비 하 고 설치류 두뇌에 있는 microinjections에 대 한 석 영 바늘을 사용 하는 프로토콜을 설명 합니다. 높은 융해 점 때문에 석 영 모 세관 기존의 끌어당기는 사람에 뽑아 수 없습니다와 따라서 사용 되지 않은 과거에 바늘을 생성 하. 그러나 석 영,, 유리, 특히 높은 강성 및 브레이크 저항9몇 가지 중요 한 이점을 제공합니다. 그들의 강성 때문에 석 영 바늘은 이상적으로 복 부 뇌 영역으로 주사에 적합 합니다. 파손을 그들의 높은 저항 때문에 그들은 여러 구멍, 복잡 한 형상의10뇌 영역을 대상으로 하는 경우에 가장 효과적인 증명할 수 있습니다. 있는 디자인을 얻기를 포함 하도록 모델링할 수 있습니다.

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Protocol

모든 실험 프로토콜은 동물 실험에 대 한 페라라 대학 윤리 위원회 및 건강의 이탈리아 정부에 의해 승인 되었다. 도착 (동물 연구: Vivo 실험에서 보고11) 지침에 따라 되었습니다.

1입니다. 석 영 바늘의 준비

  1. 깨끗 하 고 증류수에 5 분, 에탄올 99%, 5 분 및 5 분 diethyl-에테르에서 그들을 배치 하 여 석 영 모 세관 ( 재료의 표참조)을 소독.
  2. 그들이 말리 면 완전히에 적어도 1 시간에 대 한 후드 아래 모세 혈관을 남겨 주세요.
  3. 개인의 요구에 따라 충분히, 충분히 얇은 바늘의 생산을 허용 하는 매개 변수에 따라 레이저 끌어당기는 사람을 사용 하 여 바늘을 준비 합니다.
    참고: 우리가 사용 하는 레이저 끌어당기는 사람 ( 재료의 표참조). 당기기를 위한 두 줄 프로그램을 사용 합니다. 첫 번째 줄 (값에 해당 하 필 라 멘 트) 최대 스캔 길이 높은 전력과 아무 당기는 힘을 사용 합니다. 매개 변수이 조합의 내부/외부 대형으로 긴 바늘의 형성을 허용 가장 낮은 확장 속도와 모 세관의 큰 부분을의 용 해를 리드 하 고 정강이 감소. 이 방법에서는, 바늘 높은 기계적인 저항 및 막힘 없이 줄기 세포 또는 바이러스 성 입자의 통과 허용 하는 넓은 내부 직경을 유지 합니다. 팁 너무 작고 긴, 필요한 기계 및 모양 특성 누락 되기 전에 속도 및 지연이 프로그램 라인의 모 세관 확장을 중지 해야 합니다. 일단 석 영 식 당기 프로그램의 두 번째 줄 자동으로 실행 됩니다 (5 s). 전원, 필 라 멘 트 및 당기는 힘의 매개 변수는 가장 짧은 가능한 팁 길이와 두 바늘 팁 파열으로의 분리를 피하고 가파른 칼 팁을 잘라 작동. 정기적으로, 우리의 장비와 우리가 사용 하 여 다음과 같은: 1 (a) = 전력 990, 필 라 멘 트 5, 속도 130, 지연 110, 풀 0; (b) 선 2 전원 970, 필 라 멘 트 3, 속도 0, 70, 지연 = 0를 당겨.
  4. 이전에 70% 에탄올으로 청소 페 트리 접시에 바늘을 넣어.
    1. 커버 플라스틱 파라핀 영화와 요리.
  5. 마이크로-것에는 모세 혈관을 잘라.
    1. 시작, 레이저 파워를 확인 하는 autocalibration 프로세스 실행 및 에너지 전달 하자. 절삭 매개 변수를 설정 합니다.
      참고: 우리가 사용 하는 마이크로 것 ( 재료의 표참조) 및 다음 매개 변수: 레이저 펄스 에너지 (63 µJ), 최대 조리개의 20%의 레이저 빔 직경 (최대 조리개: 1.0 µ m), 및 최대 속도 (최대 10%의 절삭 속도 속도: 30 µ m/s).
    2. 단단히 현미경 테이블에 바늘을 해결 하 고 컴퓨터 스크린의 센터에서 그것의 팁의 위치.
    3. 메뉴 모음에서 연필 아이콘을 클릭 하 고 바늘의 레이저 절단에 대 한 마크를 그릴을 사용 합니다.
      참고: 컷 바늘 표면에 관하여 약 45 °의 각도에서 해야 합니다.
    4. 사이드 바 기능에 수 있도록 이전에 표시 된 자리를 잘라 레이저 "컷 시작" 버튼을 포함 하는 플래그를 선택 합니다.
    5. 필요한 경우, 1.5.2-3;에 설명 된 절차를 반복 하 여 측면 구멍을 잘라 있다 (그림 1) 바늘 위치를 변경할 필요가 없습니다.
  6. 청소 잘라 후.
    1. 플라스틱 튜브를 통해 무효 펌프에 바늘을 연결 합니다.
    2. 펌프를 켜고 수동으로 중간 속도 (3 µ L/min)에서 앞으로 흐름 속도 설정.
    3. 99% 에탄올을 발음 먼저 고 다음 증류수는 절단으로 불순물을 제거.
    4. 99% 에탄올을 다시 건조를 쉽게 발음
      참고: 각 단계 3 분 이상 지속 한다.
  7. 수술 날까지 제대로 커버 페 트리 접시에 바늘을 저장 합니다.
  8. 바늘을 다시 사용할 수 있습니다; 실험의 끝에, 표 백제 및 솔루션 및 가능한 조직 잔류물을 제거 하는 에탄올 청소. 더 완전 한 청소, 아래쪽을 가리키는 팁 micropipette 저장 항아리에 바늘을 넣어 팁 커버 때까지 증류수로 항아리를 작성, 어떤 남은 조직을 제거 후 에탄올으로 씻어 1.5 분 동안 끓여 야.

2입니다. 절차

  1. 펌프 사용 설명서에서 제공 하는 지침에 따라 직경/microinjection 주사기의 볼륨에 따라 펌프를 보정 하 여 0.3 µ L/min 흐름 속도 설정 설정 메뉴를 선택 합니다.
  2. 멸 균 물 10 mL 주사기 (무딘 바늘 (예를 들어, 해밀턴 바늘, 30 G)와 짧은 소계 튜브 장착)를 (후에 아주 조심 스럽게 피스톤을 제거 하는 데) microinjection 주사기와 주입을 채우기 위해 그것을 사용 하 여 수동 microinjection 펌프 (MMP)에 대 한 어셈블리 부품 키트.
    참고: MMP 키트 정위 적 프레임 (그림 2)에서 바늘을 안전 하 게 마운트 하는 데 사용 됩니다. 키트 포함: 소계 튜빙, 루어 대 튜브 커플러, 피 펫 홀더 및 다른 외부 직경을 가진 펫에 대 한 가스 켓.
  3. MMP 키트에 바늘을 연결 합니다.
    1. 10 mL 주사기를 통해 시스템에 걸쳐 더 많은 물을 플러시 고 물 바늘 나오는 여부를 확인 합니다.
      참고: 작성 단계를 반복 하 여 시스템 내부의 모든 기포를 제거 해야 합니다.
  4. Microinjection 주사기의 상단에 물 한 방울을 남겨두기 위하여 피스톤을 천천히 추진 하는 동안 microinjection 주사기에서 10 mL 주사기를 분리 합니다. Microinjection 주사기에서 피스톤을 삽입 합니다.
  5. Microinjection 주사기 펌프에 연결 하 고 0.3 µ L/분 유량을 설정 합니다.
    참고: 드롭 바늘의 팁에서 유출 될 때까지 대기 하 고 가자 또 다른 3 분.
  6. 0.1 µ L/min에서 흐름을 설정 하 고 수술 절차를 시작 합니다. 펌프는 수술을 수행 하는 동안 진행 해야 합니다.
    참고:이 문서에서 보고 하는 실험에 대 한 우리 300 g (3 개월의 나이)의 남성 Sprague Dawley 쥐 사용 합니다. 그러나, 절차는 특히 다른 종, 마우스에 적용 됩니다.
  7. 지역 규정에 의해 승인 하는 방법을 사용 하 여 전신 마 취를 유도.
    참고: 우리는 마 취의 20-50 분 85 mg/kg 케 타 민 및 8 mg/kg xylazine의 복 주사 (i.p.)의 혼합을 사용합니다. 그것은 중요 한 꼬리 및 발가락 pinches 동물 진정 완벽 하 게 보장 하기 위해 사용 됩니다. 수술 시작 하 고 수술을 수행 하는 동안 10 분 마다 모니터링 하기 전에 마 취와 기본적인 생체의 수준 평가 됩니다. 중 고 물 다시 순환가 열 패드를 사용 하 여 수술 후 동물 체온 전에 일정 유지 됩니다. 동물에 게는 완전히 복구 될 때까지 모니터링 (예: 그들은 직 립 보 행). 또한, 동물 받을 진통제 (tramadol, 5-7 mg/kg i.p.) post-operatively 모든 24 시간 3 일 동안.
    1. 동물의 머리를 면도 하 고 무 균 수술을 위한 외과 사이트를 적절 하 게 준비. 2 단계 스크럽 요오드 기반 솔루션 (Betadine) 70% 에탄올 다음을 수행 합니다. 또한, 무 균 상태를 유지 하려면 수술 드 레이프와 외과 사이트 랩 (비디오에서 생략 되었습니다 데모 목적을 위해).
  8. 다시 난방 담요를 순환 하는 물 위에 stereotaxic 프레임에 쥐를 놓습니다. 수술의 사이트에 제공 하기 위해 추가 통증 완화, 0.5 %lidocaine 솔루션을 적용 (7 mg/kg을 초과 하지 않는). 미리 모든 수술 기구를 소독 살 균 물 또는 식 염 수와 린스 다음 immerging 장비 중 2%도 플러스 7.05% 페 놀 (Sporodicin 또는 Cidex)에 의해 비드 소독 기 또는 액체 냉 소독을 사용 하 여. 소독 절차 사이 수행 되어야 합니다. 멸 균된 메스를 사용 하 여 두개골에 경도 커트를 만드십시오. 과도 한 출혈을 방지 하려면 부드러운 수 있습니다. 편평한 주걱을 사용 하 여 두 피를 열고 뜨고 피부의 플랩에 수술 클립을 적용 합니다. 아주 부드럽게는 bregma와 두개골을 통해 바늘을 삽입 됩니다 영역을과 분리 합니다.
  9. (동안 흐름은 지속적인) 팔 stereotaxic 프레임에 탑재 고 주목 하지 팁 휴식 bregma 위에 정확히 바늘의 팁을 이동 합니다. bregma의 antero 후부 및 평점 옆 좌표에 주석을 추가 하 고 원하는 좌표에 번역. stereomicroscope에 의해 유도, 낮은 끝 거의 지는 두개골 때까지 바늘 표시 드릴링 자리 stereotaxic 팔을 약간 올리는 후.
  10. 드릴 (드릴 팁 Ø: 0.8 m m, 드릴 속도: 1000 rpm) 표시 된 자리에서 두개골. 하지 드릴링 절차 동안 경질을 침투를 주의 해야 합니다. 드릴링, 하는 동안 뼈 손상과 괴 사를 방지 하려면 메 마른 염 분 드립.
  11. 플라스틱 파라핀 영화의 작은 조각을 삭감 하 고 두개골에 배치. 10 µ L 피펫으로 사용 하 여 플라스틱 파라핀 영화에 삽입 하는 솔루션의 드롭을 확인 합니다. 펌프를 중지, 약간 펌프의 미는 사람을 검색 하 고 microinjection 주사기의 피스톤을 부드럽게 당겨서 작은 공기 방울이 모 세관에서 만들.
  12. 낮은 정위 적 팔 때까지 바늘의 끝에 도달 하면 드롭. (아주 천천히) 어떤 거품 형성을 피하고 microinjection 주사기의 피스톤을 잡아 당겨 샘플을 그립니다. 피스톤 접촉 펌프 미 장착 하 고 단계로 진행 하기 전에 한 방울 (몇 분)의 형성까지 0.3 µ L/분 대기의 유량에 펌프를 켭니다.
    참고: 현재 예제 실험에서 인공 척수 (실제)은 주입는 (AP: 1.5, ML: ±2.7; DV:-5.0) 등 해 마에 (AP:-3.5, ML: ±2.1; DV:-3.5; mm dura)에서에서 2 µ L/사이트. 두 개의 사출 방법 간의 비교를 촉진 하기 위하여 각 뇌 영역 한 반구와 26 G 무뚝뚝한 끝에 석 영 바늘 이나 다른 30 G 베벨 팁 스테인리스 바늘을 사용 하 여 주입 했다.
  13. 낮은 0.1 µ L/min 흐름, 경질 스테인리스 스틸 경사 팁 바늘으로 닉 및 천천히 뇌 조직 입력 dorso 복 부 도끼에 정위 적 팔. 원하는 위치에 도달 하면 추가 0.1 m m 아래로 펌프, 0.1 m m 여 정위 적 팔을 인상 멈추고 0.3 µ L/min 흐름에 펌프 다시 시작 이동 합니다.
    참고: 바늘을 낮추고 있는 동안 느린 흐름을 유지 하는 이유는 바늘 자체에 직물의 작은 파편의 침투를 방지 하는 긍정적인 압력을 보장 하기 위해. 이러한 이벤트는 팁, 솔루션의 제공을 방해 방해 것 이라고. 이후 흐름 속도가 매우 느린 약 10 s/m m는 바늘과 저하의 속도 낮추는 동안,이 바늘 트랙을 따라 남아 있는 솔루션의 금액은 무시할 대상 사이트에 삽입 하는 그에 비해 의미 합니다. 측면 구멍으로 바늘을 사용 하 여이 경고를 피할 수 있습니다.
  14. 타이머를 시작 하 고 (예를 들어 6 분 40 s 2 µ L를 주입 하는 경우) 주입을 원하는 볼륨에 따라 필요한 시간 기다립니다. 주입 하는 동안 거품 움직임을 모니터링 합니다. 끝에, 펌프를 중지 하 고 천천히 바늘을 검색 하기 전에 5 분 기다립니다. 석 영 바늘 완전히 추출 펌프를 다시 시작 하 고 바늘의 끝에 한 방울의 형성에 대 한 확인.
  15. 뼈 왁 스로 두개골 표면에 개통을 밀봉, hemostatic 클립을 제거 하 고 두 피를 봉합, 항생제 크림 (예를 들어, neosporin) 상처 주변 코트 그리고 홈 케이지 동물 돌아갑니다.
    참고:이 문서에서 설명 하는 실험에 대 한 기관 윤리 위원회에 의해 승인 안락사 프로토콜에 따라 동물 깊이 43 mg/kg 케 타 민 및 7 mg/kg xylazine의 i.p. 주사와 마 취 고 참. 48 h를 포함 하는 파라핀 포 르 말린에 postfixed 두뇌 제거 되었다. 두뇌의 코로나 섹션 (8 µ m)는 톰을 사용 하 여 얇게 했다.

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Representative Results

우리 쥐 지 마에가 두 클래식, 26 G 무뚝뚝한 끝 및 30 G 베벨 가장자리와 비교 석 바늘 (60 µ M 외부 직경 팁; 한 20 µ M 직경 옆 구멍 유형 C, 그림 1)를 사용 하 여 직접 microinjection에 의해 유도 된 손상 비교 스테인레스 스틸의 바늘 이 목표를 우리는 오른쪽에 실제의 2 µ L를 주입 하 고 얼룩이 지는 Hematoxylin 오신 (그)를 사용 하 여 조직 손상 평가 했습니다 왼쪽 등 쪽 해 마가 각각 사용 하 여 석 영 강철 바늘과, 48 h 주입 후. 우리는 더 나은 주입 감사 다른 바늘에 의해 생산 하는 심각한 기계적 손상 후 초기 시간 포인트를 선택 (시간, 조직 복구 메커니즘 수 무명 초기 손상)7.

위에서 설명한 프로토콜에 따라 석 영 바늘 않았다와 생성 하지 감지 손상이 거의 감지 바늘 트랙 표시 손상 (그림 3)를 전시 하는 뇌 영역 26 G 철강 무뚝뚝한 끝 바늘을 통해 주입 하는 반면. 30 G 경사 각도 (30 °) 스테인리스 바늘 유도 더 제한, 아직 명확 하 게 감지 뇌 병 변 (그림 4B)가 지 마 (그림 5). 실제의 주입 실험의 별도 세트에서 두 바늘으로 동등 하 게 성공적 이었다 증명 하기 위해 우리 Trypan 파랑 (그림 4A)의 2 µ L를 주입. 중요 한 것은, 모든 검색된 석 영 바늘 했다 완벽 하 게 그대로, , 우리 결코 삽입 기동으로 인해 손해를 관찰.

Figure 1
그림 1: 석 영 바늘 팁, 팁 및 액체의 주입을 위해 고용 하는 구멍의 다른 직경을 보여주는의 현미경 이미지. 낮은 확대 그림 (A) 및 (B) 높은 확대 및 (C). 바늘에 다른 준비 될 수 있습니다 (다른 길이, 구멍 숫자와 구멍 크기)는 해부학에 따르면의 방법 두뇌 지역, 확산 목표 및 (B)에서 볼 수 있듯이 솔루션의 점도 및 (C). 구멍 및 저전력 레이저 기정을 사용 하 여 얻은 팁의 부드러운 컷을 확인 합니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.

Figure 2
그림 2: microinjections에 대 한 설정. 석 영 피 펫 (왼쪽)와 정위 적 micropositioner (오른쪽) 스테인리스 바늘을 확보 하는 데 사용 하는 키트를 보여주는 그림. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.

Figure 3
그림 3: 석 영 바늘을 사용 하 여 더 적은 손상을 보여주는 코로나 섹션. 그림 1C (왼쪽)와 26 G 무뚝뚝한 끝 스테인리스 바늘 (장비에 표시 된 것 처럼 석 바늘을 사용 하 여 2 µ L 실제의 주입에 의해 손상 생산 간의 비교를 보여주는 수준에서 쥐 두뇌의 코로나 섹션 (8 µ m 두께) ht 쪽)입니다. 일부 손상 석 영 바늘의 두개골을 시추 깊이 잘못 때문에 측면에 피에서 제작 되었다. 에서 가져온 두 개의 서로 다른 동물, 이러한 이미지는 실험에 포함 된 모든 5 동물의 대표 (눈금 막대 = 500 µ m). 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.

Figure 4
그림 4: 확산 및 조직 손상. (A) 배포의 Trypan 블루는 (왼쪽), 30 G 베벨 가장자리 스테인리스 바늘 (오른쪽)와 비교 하 여 석 영 바늘으로 주입. 가의 수준에서 쥐 뇌의 (B) 코로나 섹션 그가 석 영 바늘과 30 G 베벨 가장자리 스테인리스 바늘 간의 비교를 보여주는 물 (눈금 막대 = 500 µ m). (왼쪽과 오른쪽), 손상의 높은 배율 상자에 (눈금 막대 = 200 µ m, 10 배). 이러한 이미지는 실험에 포함 된 5 동물의 대표. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.

Figure 5
그림 5: 석 영 바늘과 지 마의 수준 26 G 베벨 가장자리 스테인리스 바늘에 의해 유도 된 손상. 여기는 대표 5 동물 실험에 포함 된 표시 된 두 가지 경우 (눈금 막대 = 400 µ m). 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.

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Discussion

이 문서에서 설명 하는 기술은 microinjections 다양 한 목적으로12수행 되는 최적화에 대 한 소개 에 설명 된 요구 사항을 충족. 여기에 설명 된 바늘 최소, 본질적으로 감지할 수 없는 수준; 손상을 감소합니다 (구 부 경향이 있는) 유리 바늘으로 분산, 석 바늘은 딱딱한 고 깊은 좌표에도 원하는 뇌 영역의 신뢰할 수 있는 히트를 보장. 또한, 측면 구멍 팁 구멍 뇌 조직에 삽입 하는 동안 차단 되는 경우에 솔루션의 납품을 보장 합니다.

한계와 대안입니다. 높은 융해 점 때문에 석 영 모세는 기존의 끌어당기는 사람, 에 뽑아 수 없습니다, 그리고 그들은 비용이 많이 드는 장비에 액세스 해야. 유리 모 세관은 피해 조직으로, 주사 깊은 구조에 대 한 신뢰할 수 있고 더 연약한 덜 (, 디자인 측면에서 덜 유연)을 피하고 측면에서 동등 하 게 좋다. 그러나, 경우 목표 표면 구조에 사출 같은 피 질 또는 지 마 필요는 없습니다 바늘 침입의 위험을 증가 시킬 것 이라고 하는 여러 개의 구멍, 유리 바늘은 확실히 유효 하 고 저렴 한 대안을 나타냅니다.

석 영과 유리 바늘의 한계는 그들은 다른 시간 지점에서 스테인리스 바늘 뉼 가이드 결합 처럼 여러 주사를 허용 하지 않습니다. 따라서, 철강 바늘 조언을 비교적 큰 (26 G) 또는 무딘 가장자리 바늘을 피하기 위해 이러한 응용 프로그램을 위한 최상의 옵션이 남아 있습니다.

중요 한 단계는 프로토콜. 전반적으로, 위에서 설명한 프로토콜은 매우 간단 하 고 microinjections에서 경험 하는 모든 연구원에 대 한 사용 하기 어려운 해서는 안됩니다. 바늘을 사용할 수 있습니다, 일단 일반 예방 마 취, 수술, 느린 삽입 하 고 바늘의 제거, 주입 한 minipump에 의해 규제의 지속적이 고 느린 속도 대 한 고용 좋은 재현성 결과 보장 합니다.

장점과 추가 개발입니다. 위에서 설명 했 듯이, 석 영 바늘의 주요 장점은 몇 바늘의 디자인을 개인화 가능성과 최소한의 기계적 손상입니다. 우리는 바늘 구멍 및 특정 실험적인 요구에 적응 될 수 있는 다른 직경을 준비. 예를 들어 다른 직경 필요가 있을 수 있습니다 바이러스 성 벡터와 약물 또는 독 소; 비교 셀 삽입 여러 구멍 솔루션 더 큰 영역에서 더 많은 양의의 주사를 위해 유용할 수 있습니다 하 고 어려운 형상 뇌 영역에 특히 유용 될 수 있습니다. 이 기술의 큰 다양성 또한 유전자 치료 또는 세포에 대 한 바이러스 성 벡터의 조직에 확산을 최적화 하기 위해 악용 될 수 있습니다. 사실, 이러한 바늘 사용 하 여 바이러스 성 벡터 또는 셀을 삽입 하.

다른 장점은 다시 바늘을 사용 하는 가능성을 포함 합니다. 이렇게 하려면 바늘 에탄올과 표 백제 솔루션 및 가능한 조직 잔류물 제거를 정리할 수 있습니다. 단 하나 바늘의 반복된 사용 절차 비용 효율적인 생산의 상대적으로 높은 비용에도 불구 하 고 만들 수 있습니다.

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Disclosures

저자는 공개 없다.

Acknowledgments

이 작품은 유럽 공동체 [FP7-사람-2011-IAPP 프로젝트 285827 (EPIXCHANGE)]에서 교부 금에 의해 지원 되었습니다.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Quartz capillaries Sutter Instruments, Novato, CA USA Q100-50-10 Without filament
Puller Sutter P2000
Micropipette storage jar World Precision Instruments (WPI), Sarasota, FL, USA E210
Laser microdissector Leica Microsystems, Wetzlar, Germany LMD6500
Hamilton syringe Hamilton ILS Innovative Labor Systeme GmbH, StŸtzerbach, Germany 19138-U
Microinfusion pump Univentor, Zejtun, Malta Model 864
Manual microinjection pump kit WPI Item#: MMP-KIT Kit allowing for micropipettes to be securely mounted to the stereotactic frame
Precision Drill Proxxon 28510 MicroMot 50/E Ball bearing drive shaft with variable speed
Artficial Cerebral Spinal Fluid Tocris 3525
Needles 26 G Blunt and 30 G Bevel Hamilton 26 G Blunt: 19138-U
30 G Bevel: 20757
Microtome Leica, Germany LEICA RM212RT

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

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신경 과학 문제 131 Microinjection 뇌 배달 레이저 것 석 영 바늘 뇌 손상.
쥐 두뇌에 있는 Microinjections에 대 한 개인화 된 바늘
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Paolone, G., Falcicchia, C.,More

Paolone, G., Falcicchia, C., Verlengia, G., Barbieri, M., Binaschi, A., Paliotto, F., Paradiso, B., Soukupova, M., Zucchini, S., Simonato, M. Personalized Needles for Microinjections in the Rodent Brain. J. Vis. Exp. (131), e55751, doi:10.3791/55751 (2018).

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