Summary
腫瘍治療領域（TTFields）は、低強度、中周波、交番電界の連続非侵襲的適用によってもたらされる効果的な抗腫瘍治療法である。 TTFields in vitroアプリケーションシステムを使用して細胞株にTTFieldsアプリケーションを適用すると、細胞数が最も減少する最適な頻度を決定することができます。
Abstract
フィールド（TTFields）を治療する腫瘍は数百キロヘルツの周波数範囲の電界を交互に、低強度の連続的、非侵襲的なアプリケーション（1-3 V / cm）とを介して送達される有効な治療法です。組織培養におけるTTFieldsの研究は、高誘電率（ここでε> 5,000）を有するセラミックペトリ皿に変化する周波数と強度の電界の印加を可能にするTTFields インビトロのアプリケーションシステムを用いて行われます。セラミックペトリ皿の底部にカバーガラス上に播種癌細胞株は、細胞数およびクローン原性アッセイなどの治療結果試験を容易にするために、様々な周波数で二つの直交方向で送達TTFieldsに供されます。この報告書に示された結果は、細胞数およびクローン原性アッセイの両方に関してTTFieldsの最適な周波数は、両方の卵巣癌および神経膠腫細胞のための200 kHzであることを示しています。
Introduction
腫瘍を治療する腫瘍（TTFields）は、多形性グリア芽細胞腫および潜在的に他の種類の癌の治療のための抗有糸分裂様式である。これらのフィールドは、低強度（1-3V / cm）、中間周波数（100-500kHz）の交番電場を腫瘍領域1,2に連続的に印加することによって供給される。 インビトロおよびインビボでの TTFieldsの適用は 、様々な癌細胞株の増殖およびいくつかの動物腫瘍モデル1,2,3,4,5,6,7における腫瘍の進行の両方を阻害することが示された。グリア芽細胞腫および非小細胞肺癌を含む固形腫瘍患者のパイロット臨床試験およびより大きなランダム化研究では、連続TTFieldsアプリケーション8,9,10の安全性と有効性を評価しました。 TTFieldの有効性は、（1）周波数依存性であり、特定の最適な頻度で異なる起源1,2,4,5,6,7から細胞株の細胞数が最も減少すること; （2）電界強度に依存し、約1V / cmでの活動の最小閾値およびより強力なより高い強度1,2,7,11; （3）処置期間がより長くなると増強される; 5 。 （4）2方向TTFieldが各Othに垂直に適用された場合単一の方向から印加された電界と比較して、上記の知見に基づいて、患者の皮膚に局在する2セットのトランスデューサアレイを用いて腫瘍床12,13の電場強度を最大にするために、長期間にわたって患者にTTFieldを適用することができる。
インビトロで癌細胞に対するTTFieldの効果を研究することは、現在、特定の腫瘍型に適用する最適な頻度を決定する唯一の方法を提供する。最適な周波数を試験するには、細胞培養物に対して100〜500kHzの範囲および3V / cm 2の最大二乗（RMS）の強度で異なる周波数を印加することを可能にする装置が必要である。 TTFieldsアプリケーションでは熱が発生するため、アプリケーションシステムでは過度の熱を放散し、温度を厳密に制御する必要があります。
いくつかのデバイスEは、細胞培養1、2、5、14、15、16 TTFieldsアプリケーションを可能にするために、長年にわたって開発しました。これらの装置の全てにおいて、使用される電極は、電極表面でのそのような電子交換などの導電性電極の使用及び媒体1に有毒な金属イオンの放出に伴う注意事項を回避するために絶縁されました。試験した様々なTTFieldsアプリケーションシステムとの間の主な違いは、絶縁碍子2の薄膜、14、15、16又は高誘電率材料で絶縁金属ワイヤからなる電極（ 例えば、いずれかで、使用される電極の絶縁体の一種でありますニオブ酸鉛マグネシウム - titanatE（PMN-PT））6。絶縁ワイヤ電極がTTFieldsアプリケーションの比較的簡単でコスト効果の高いソリューションを提供するが、それらはしばしば、1 V / cmの閾値を超えると細胞播種のために利用可能な表面によって効果的な電界強度を達成するのに必要な高電圧によって制限されます電極間の距離が比較的小さいです。高誘電率材料を用いて絶縁電極に基づくシステムは、特別な設計と製造能力を必要とし、まだ彼らは、高電圧を必要とせず、電極間の細胞増殖のための大きな面積を提供することができます。
この研究で使用TTFields インビトロアプリケーションシステムは、コアユニットは、高誘電率セラミック（ すなわち、PMN-PT）からなるペトリ皿（TTFields皿、 図1を参照）であると、システムの後者のクラスに属します。 2つの電極対が外側WALに垂直に印刷されています2方向からの電界の印加を可能にするためのTTFields皿を使用した。電極は正弦波形発生器と増幅器に接続されており、50~500kHzの周波数範囲でTTFieldを印加することができます。過度の熱を消散させるために、TTFieldsディッシュは、ディッシュ温度の絶え間ない監視およびシステムによって印加される電圧の調整を使用して実行される中温制御が行われ、冷蔵インキュベーター内に保持される。実際には、ディッシュ内の目標温度が達成されるまで、システムが電圧を増加させるので、インキュベータをより低い温度に設定すると、より高い電界強度につながる。ディッシュ内の温度とインキュベーターの温度との差は、温度勾配に依存して、いくらかの蒸発を引き起こし得る。したがって、適切な増殖条件を維持するために、培養培地を24時間毎に交換する必要がある。
以下のプロトコル細胞数の最大の減少とコロニーを形成する生存細胞の電位の低下が達成されるように、癌細胞にTTFields周波数のアプリケーションを最適化するための実験手順を説明します。
Protocol
インビトロアプリケーション・システムにおいて TTFields -ベースプレート皿メンテナンス
- 水道水の下で料理や皿のカバーをすすぎます。次いで、脱イオン水及び空気乾燥フェイスダウンでリンス。
- 化学療法剤/薬剤は、実験前に皿に追加された場合、5％の光洗剤溶液を各皿に充填し、一晩残します。
- 皿の内側に洗剤の痕跡を避けるために、水道水の下で徹底的に料理をすすぎます。お皿をすすぎ、料理は、脱イオン水と空気乾燥フェイスダウンでカバーしています。
- 滅菌袋に彼らのカバーで清潔で乾燥したお料理を挿入します。料理は下向きで、オートクレーブ内袋を密封して配置します。 121°Cより高くないで30分間オートクレーブ。
- 乾燥プログラムにオートクレーブを設定し、一部はオートクレーブドアを開け、そして30分間食器を乾燥させます。
- 軽く70％エタノールで湿らせた布でベースプレートを拭きます。 </ ol>
- 清潔で滅菌したTTFieldの皿とカバーを第1節で説明したように準備します。ベースプレートを70％エタノールで軽く湿らせた布で拭きます。
- TTFieldsディッシュをベースプレートに取り付けます。ディッシュを静かに押し、ディッシュのリムがベースプレートの3つのピンに固定されるまで時計方向に約5 mm回転させます。各皿の底に滅菌22 mmのカバーガラス（処理プラスチックまたはガラス）を置きます。
- 完全増殖培地（U-87 MGおよびF98のダルベッコ変法イーグル培地; A2780およびOVCAR-3のRPMI; 材料リスト）。
注： ceLL濃度は80％-90％コンフルエントの細胞増殖を、実験の終了までに超えてはならない、細胞型および実験期間に依存します。
注意：ヒト細胞系は、生物学的ハザードを表すことができ、適切な安全対策で処理されなければなりません。 - 各カバースリップの中央に低下として（倍加時間に応じて、72時間の実験のために200μLで通常5,000〜20,000細胞）の細胞懸濁液200μLを配置し、皿の蓋で覆います。
- 細胞が接着するまでCO 2インキュベーター中で37℃でインキュベートします。一晩のインキュベーションは、この段階でも可能です。
- 200-または1000μLピペットを用いて滴から流体を吸引します。
- 穏やか各皿を充填する完全増殖培地2mlをピペット。ピペットに無菌チップを使用して、そっと時折スライドの下でキャッチ気泡を放出するためにカバースリップの端をタップ。
- 彼らのふたで料理を覆い、それらにインを置きますTTFields処理の開始まで37℃でCO 2インキュベーターでインキュベートする。
- 添付のTTFields皿を備えたベースプレートを冷蔵CO 2インキュベーターに移す。
注： インビトロ TTFieldsアプリケーションは熱を生成します。したがって、料理の温めを補うために、冷蔵インキュベーターが必要です。より高いTTField強度はより多くの熱を生成し、インキュベーター周囲温度をより低くする必要があります（ 表1参照）。臨床的に関連するTTFieldの強度は、TTFieldのインキュベータ温度が18〜30℃の範囲にあるときに達成されます。 - フラットケーブルのメスコネクタをベースプレートに接続します。 TTFieldsジェネレータをオンに切り替えます。
- TTFields in vitroアプリケーションシステムソフトウェアを起動し、実験設定を選択します。
- 新しい実験を定義する。 expの名前を入力してくださいerimentとコンピュータ画面上のソフトウェアのユーザーインターフェイスでの実験の所有者。各皿又はベースプレートのための周波数と目標温度を調整します。
- ソフトウェアを使用してTTFieldsアプリケーションを起動します。
- すべての料理が正しく接続されていることを確認してモニタに水色で表示されます。料理が赤枠で囲んだされた場合（それが正しく接続されていないことを意味する）、軽く下に押し、連絡先が復元されるまで、前後にゆっくりと回転させると料理が水色に表示されます。
- 最大24時間のために実行されている試験管内のアプリケーションシステムで TTFieldsを残します。
- 実験はそのエンドポイントに到達した場合は、ソフトウェアでのEND実験]ボタンをクリックして、実験を停止しない場合は手順5に進み、PAUSE実験をクリックしてください。
- ベースプレートからフラットケーブルコネクタを外し。クリーンベンチにインキュベーターから料理をベース板を外します。
- すべての皿にメディアを交換してください24時間毎にベースプレートを冷蔵インキュベーターに戻します。フラットケーブルを使用してベースプレートを発電機に接続します。 CONTINUEボタンをクリックして実験を続行します。
- TTFields処理したサンプルをプレーティングするために使用した同じ懸濁液および同様の表面上のプレートコントロールサンプル。
- コントロール皿を37℃のCO 2インキュベーターに入れます。
- TTFieldsで処理したディッシュの培地条件と一致するように、ディッシュ中の培地を24時間ごとに交換する。
- END EXPERIMENTをクリックした後、ソフトウェアがシステムからすべてのレコードを取得し、レコードをコンピュータに保存するのを待ちます。
- REPORTSボタンを使用して、温度、電流、および抵抗のログfすべての料理が実験計画に従って処理されたことを検証するために、各ベースプレートのilesを作成しました。
注：すべてのレポートとログは実験終了後にコンピュータに保存され、いつでも確認することができます。 - TTFieldsジェネレータをオフにします。
- フラットケーブルをベースプレートから外し、保育器から取り出します。
- セラミック製の皿を取り外すには、押し下げて皿を反時計回りに回してベースプレートからロックを解除します。
- 皿を層流キャビネットに入れ、カバースリップを無菌的に除去する。さらなる検査と評価のために新鮮な培地またはリン酸緩衝生理食塩水（PBS）を含む滅菌ペトリ皿に移す。
- 細胞数
- 各カバースリップ含有ディッシュから培地/ PBSを除去する。
- 各ディッシュに0.25％トリプシン/ EDTA 0.5 mLを添加し、CO2インキュベーター内で37℃で10分間（ すなわち、細胞がカバーガラス表面から剥がれ始めるまで）インキュベートする。
- 0.5mLの完全増殖培地を添加してトリプシンを中和し、上下に穏やかにピペッティングすることによって細胞を再懸濁する。
- 低細胞濃度（ すなわち、約20,000細胞/ mL）を計数することと適合する標準的な細胞計数技術を用いて細胞を数える。
- クローン化アッセイ
- 各ディッシュから同様の数の細胞（1皿あたり100-500細胞）を、新しい、無菌ペトリ皿または2mLの新鮮な完全増殖培地を含む6ウェルプレートにプレートする。
- 約50個の細胞からなるコロニーが形成されるまで、37℃のCO 2インキュベーターで1〜3週間インキュベートする（各細胞株の特性に応じて）。細胞を評価する光顕微鏡によるコロニーあたりの数。
- 培地を除去し、PBSですすいでください。
- PBSを除去し、氷冷メタノール（1 ml）を加えます。 10分以上のために-20°Cでインキュベートします。
- メタノールを除去します。
- クリスタルバイオレット溶液（水中25％v / vのメタノール中のw / vの0.1％）を添加し、20分間インキュベートします。
注意：クリスタルバイオレットは、潜在的な発がん性物質です。クリスタルバイオレットでの作業中に手袋を使用しています。 - 、クリスタルバイオレットを除去する脱イオン水で3回洗浄し、そして空気乾燥。
- 各皿に形成されたコロニーを数えます。
2.実験セットアップ
注記：このプロトコールで使用されるすべての機器および材料は、材料リストに記載されています。以下のすべてのステップは、無菌状態を維持しながら、層流キャビネット内で行う必要があります。
3. TTFieldsアプリケーション
4.コントロールサンプル
注： TTFieldsアプリケーションを除くTTFields処理細胞と同様の条件でコントロール細胞を増殖させる。
5.実験終了
6.TTFieldの効果の評価
注：TTFieldの効果は、いくつかの点で決定できます。以下の方法の1つ以上を使用して、処理細胞を未処理の対照細胞と比較する：
Representative Results
TTFields適用後の結果は、細胞数、比色アッセイ、クローン原性アッセイ、および特別なハイウォールTTFields内に配置されたBoydenチャンバーを用いた侵入細胞の数の変化に関する検査など、異なるアッセイに基づいて定量することができる細胞培養皿。所定の細胞倍加時間に基づく慎重な実験計画は、細胞が治療期間中に有糸分裂事象の最大数に達し、それにより治療結果を最大にすることを可能にする。
図2は、A2780（ すなわち、ヒト卵巣癌細胞; 図2A ）およびF-98（ すなわち、ラット神経膠腫細胞; 図2A ）の平均細胞数（ すなわち、細胞数）およびクローン原性アッセイの典型的な周波数スキャン結果を示す。「>図2B）1は、2つの方向TTFields（周波数範囲で処理：100〜500 kHzの、RMS：1.7 V / cmであり、インキュベータの温度：18°C）の結果は、全てで細胞数の有意な減少は、周波数を適用実証、（複数の比較で一方向ANOVA）試験した全ての細胞株について200 kHzで最大の減少と。クローン原性ポテンシャルの最も高い減少をもたらす最適な周波数は、A2780およびF98細胞（ 図2BおよびC）の両方で同じでした。細胞数および各周波数におけるクローン原性効果の間のピアソン相関係数は、それぞれ、A2780およびF98のために0.967（P = 0.002）および0.755（P = 0.083）でした。
（ すなわち、ヒト卵巣癌細胞; 図3A） 図3は、OVCAR-3の平均細胞数に対する周波数スキャン結果を示し、U-87 M異なる強度（RMS：それぞれ1.7,1.3,1.0V / cm、インキュベーター温度：18℃、24℃および28℃）で2方向のTTFieldで処理したG（ すなわち、ヒト神経膠腫細胞; 図3B ） C）。結果は、1.3-V / cmのTTField（インキュベーター温度：24℃）で処理した後のOVCAR-3細胞数の有意な減少はあるものの、細胞を処理したときに得られた結果1.7V / cm（インキュベーター温度：18℃）である。 1.0V / cmのTTField（インキュベーター温度：28℃）で処理したU-87 MG細胞も、1.7V / cmで処理した場合と同様に細胞数の減少において同様の傾向を示したが、その効果は低強度では有意ではなかった。
Figure 1 。 TTFieldsディッシュをベースプレートユニットに取り付け、フラットTTFieldsコントロールケーブルに接続しました。 この図の拡大版を見るには、ここをクリックしてください。
図2 （A）A2780および（B）F98細胞についての最適なTTFields阻害頻度の決定のための頻度スキャン。細胞を異なる周波数のTTField（1.7V / cmおよび100-500kHz）で72時間処理した。 TTFields処理の効果は、細胞数およびクローン化アッセイを用いて評価した。矢印は最適な周波数を示します。結果は、試験した各頻度について少なくとも6反復に基づく平均±SDを表す。 （ C ）クローン原性の代表的な画像様々な頻度でのTTField治療後のA2780細胞の寛解この図の拡大版を見るには、ここをクリックしてください。
図3 （A）OVCAR-3および（B）U-87MG細胞についての最適なTTFields阻害頻度の決定のための頻度スキャン。異なる周波数（100〜500kHz）および強度（OVCAR-3：1.3および1.7V / cm; U-87MG：1.0および1.7V / cm）のTTFieldで細胞を72時間処理した。細胞数を用いてTTFields処理の効果を推定した。矢印は最適な周波数を示します。結果は、試験した各頻度において少なくとも6反復に基づいて平均±SDを表す。pg "target =" _ blank ">この図の拡大版を見るには、ここをクリックしてください。
| インキュベータ周囲温度 | 期待されるTTField強度 |
| （℃） | （V / cm RMS） |
| 18 | 1.62 |
| 19 | 1.55 |
| 20 | 1.48 |
| 21 | 1.41 |
| 22 | 1.33 |
| 23 | 1.26 |
| 24 | 1.19 |
| 25 | 1.12 |
| 26 | 1.04 |
| 27 | 0.97 |
| 28 | 0.9 |
| 29 | 0.83 |
| 0.76 |
表1.インキュベーターの周囲温度と予想されるTTFields強度（TTFieldsディッシュ内）。
Discussion
TTFieldは、適切に調整された交番電界1,2,8,9,10,17の連続的な適用に基づく、新たな抗腫瘍モダリティである。抗腫瘍効果を最大にすることは、すべての治療様式にとって望ましい結果である。したがって、癌細胞増殖阻害の追加のパーセントごとに「戦う」ことは、患者の長期的な臨床結果に重要な影響を及ぼし得る。これは、TTFieldsアプリケーションの必要な連続性とその結果の累積効果のためです。 TTFieldアプリケーションの最大化は、（1）電界強度の増加、（2）治療期間の延長、（3）最も効果的な組み合わせの発見最適な周波数1,2,4,6,7を規定する他の治療様式18,19 、および（4）を使用している。腫瘍の部位での電場強度を最大にすることは、患者の皮膚上のアレイの位置を最適化することによって達成される。これは、患者20の個々の解剖学的構造に基づいて腫瘍への最大電界強度の送達を可能にする。治療期間の延長は、主に患者の治療遵守に依存している（少なくとも18時間/日）。他の治療法との適切な組み合わせを見出し、最適な頻度を決定することは、TTFields治療結果のための有効なマーカーが現在利用可能でないため、 インビトロの結果に大きく依存する。この作業では、実験的なproceduresはTTFields インビトロのアプリケーションシステムを使用して、癌細胞株に対する最適TTFields周波数を決定するために必要。ここに記載された方法は、潜在的にTTFieldsと他の癌治療法の組み合わせ（ 例えば、化学療法剤または放射線照射）をスクリーニングするために、各特定の併用治療のためのTTFields投与のための最適な周波数を決定するために用いることができます。
以前の刊行物に沿って、ここに示す結果は、両方の神経膠腫細胞および卵巣癌細胞の治療のための最適な周波数は、200 kHzの1、7であることを実証しています。本研究では、クローン原性の可能性を低減するための最適なTTFields周波数が最大の細胞毒性効果につながる頻度と関連していることを初めて実証しました。 TTFields（ すなわち、細胞傷害性およびクローン原性）の効果を定量化するために、この研究で使用される方法A治療成果を評価するための多くの可能な標準的エンドポイントアッセイのうちの2つだけである。さらなる治療成果検査には、（1）細胞内構造の可視化のために細胞を顕微鏡で覆うカバースリップを固定し、染色し、マウントすること、 （2）TTFields皿自体から、または新しい使い捨て皿にカバースリップを移した後に、タンパク質およびRNA抽出物のアッセイを行う; （3）フローサイトメトリー分析のために染色された細胞をトリプシン処理すること。
慎重な実験計画は、TTFieldの送達後の治療成果に影響を与える。重要なステップは、鋭敏な細胞株に適用すると高すぎる強度が必要なアッセイのために必要なアッセイのために少なすぎる結果になるため、実験を通して細胞増殖が過増殖に至らず適切な電場強度を使用することを保証することを含む最適な周波数。逆に、非常に低い強度で適用されたTTFieldより感受性の低い細胞株では、固有の変異によってマスクされ得る小さな効果が生じる。治療ログは、実験を通して、各皿ごとに温度安定性、電流、および抵抗に関する貴重な情報を調べるべきである。治療開始時に誤った皿を交換し、所望の治療パラメータを満たさない皿からのデータを除外することは、複製間の変動性を最小にする。
要約すると、TTFieldsは臨床現場ですでに有効性と安全性が証明されている新たな抗がん治療法である8,9,10。ここに記載されているプロトコルを使用してインビトロ設定でTTFieldを試験することは、臨床設定におけるTTFields処置パラメータの最適化を可能にし、基礎となる作用機序の理解を広げる可能性がある。
Disclosures
ポラットYaara、Giladiのモシェ、シュナイダーマンS.ローザ、BLATロニ、Shteingauzアンナ、Zeevi Einav、ミュンスターMijal、Voloshinタリ、ケイナン・ノア、タル・オーナ、およびKirson D.エイロンDはNovocure社、イスラエルの従業員を支払っています。ワインバーグウリはNovocure社、ルツェルンの有給従業員です。 Yoram PaltiはNovocure社、NYでの株主です。
Acknowledgments
著者には確認応答がありません。
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| inovitro system and software | Novocure | ITG1000 and IBP1000 | Each unit contains 1 TTFields generator, 1 base plate, 8 TTFields dishes with covers and 1 flat cable. |
| Sterilization bags | Westfield medical | 24882 | |
| Plastic cover slides | Thermo Scientific (NUNC) | 174977 | Pre treated and sterilized |
| Glass cover slides | Thermo Scientific (Menzel-Gläser) | CB00220RA1 | Sterilize if necessary |
| Dulbecco’s modified Eagle’s medium | Biological Industries (Israel) | 01-055-1A | Warm in 37 °C water bath before use |
| RPMI 1640 | Gibco | 21875-034 | Warm in 37 °C water bath before use |
| Fetal Bovine Serum (FBS) | Biological Industries (Israel) | 04-007-1A | Warm in 37 °C water bath before use |
| L-Glutamine 200 mM (100x) | Gibco | 25030-029 | |
| Pen/Strep (10,000 U/mL Penicillin, 10,000 µg/mL Streptomycin) | Gibco | 15140-122 | |
| Sodium Pyruvate solution 100 mM | Biological Industries (Israel) | 03-042-1B | |
| Hepes buffer 1 M | Biological Industries (Israel) | 03-025-1B | |
| Insuline solution from bovine pancreas | Sigma-Aldrich | 10516-5ML | |
| 0.25% Trypsin/EDTA | Biological Industries (Israel) | 03-050-1B | Warm in 37 °C water bath before use |
| Methanol | Merck | 1.06009.2511 | Cool to -20 °C in the freezer before use |
| Crystal violet | Sigma-Aldrich | 120M1445 | Harmful. Prepare 0.1% w/v crystal violet solution in 25% Methanol 75% water. |
| Light detergent | Alcononx | 242985 | Prepare 5% solution in water, or according to manufacurer's instrutions. |
| PBS | Biological Industries (Israel) | 02-023-1A | Without calcium and magnesium |
| A2780 | ECACC | 93112519 | Grow in RPMI 1640 supplemented with FBS (10%), pen/strep (100 U/mL / 100 µg/mL), sodium pyruvate (1 mM) and Hepes buffer (12 mM). |
| F98 | ATCC | CRL-2397 | Grow in Dulbecco’s modified Eagle’s medium supplemented with FBS (10%), pen/strep (100 U/mL / 100 µg/mL), sodium pyruvate (1 mM) and glutamine (2 mM). |
| Ovcar-3 | ATCC | HTB-161 | Grow in RPMI 1640 supplemented with FBS (20%), pen/strep (100 U/mL / 100 µg/mL), sodium pyruvate (1 mM), Hepes buffer (12 mM) and insulin (10 µg/mL). |
| U-87 MG | ATCC | HTB-14 | Grow in Dulbecco’s modified Eagle’s medium supplemented with FBS (10%), pen/strep (100 U/mL / 100 µg/mL), sodium pyruvate (1 mM) and glutamine (2 mM). |
| refrigirated CO2 incubator | CARON | 7404-10-3 | |
| Laminar flow cabinet | ADS Laminair | Bio12 and VSM12 |
References
- Kirson, E. D., et al. Alternating electric fields arrest cell proliferation in animal tumor models and human brain tumors. Proc Natl Acad Sci U S A. 104 (24), 10152-10157 (2007).
- Kirson, E. D., et al. Disruption of cancer cell replication by alternating electric fields. Cancer Res. 64 (9), 3288-3295 (2004).
- Gera, N., et al. Tumor treating fields perturb the localization of septins and cause aberrant mitotic exit. PLoS One. 10 (5), (2015).
- Giladi, M., et al. Mitotic disruption and reduced clonogenicity of pancreatic cancer cells in vitro and in vivo by tumor treating fields. Pancreatology. 14 (1), 54-63 (2014).
- Giladi, M., et al. Mitotic Spindle Disruption by Alternating Electric Fields Leads to Improper Chromosome Segregation and Mitotic Catastrophe in Cancer Cells. Sci Rep. 5, 18046 (2015).
- Giladi, M., et al. Alternating electric fields (tumor-treating fields therapy) can improve chemotherapy treatment efficacy in non-small cell lung cancer both in vitro and in vivo. Semin Oncol. 41, S35-S41 (2014).
- Voloshin, T., et al. Alternating electric fields (TTFields) in combination with paclitaxel are therapeutically effective against ovarian cancer cells in vitro and in vivo. Int J Cancer. 139 (12), 2850-2858 (2016).
- Pless, M., Droege, C., von Moos, R., Salzberg, M., Betticher &, D. A phase I/II trial of Tumor Treating Fields (TTFields) therapy in combination with pemetrexed for advanced non-small cell lung cancer. Lung Cancer. 81 (3), 445-450 (2013).
- Stupp, R., et al. Maintenance therapy with tumor-treating fields plus temozolomide vs temozolomide alone for glioblastoma: A randomized clinical trial. JAMA. 314 (23), 2535-2543 (2015).
- Stupp, R., et al. NovoTTF-100A versus physician's choice chemotherapy in recurrent glioblastoma: a randomised phase III trial of a novel treatment modality. Eur J Cancer. 48 (14), 2192-2202 (2012).
- Kanner, A. A., et al. Post Hoc analyses of intention-to-treat population in phase III comparison of NovoTTF-100A system versus best physician's choice chemotherapy. Semin Oncol. 41, S25-S34 (2014).
- Miranda, P. C., Mekonnen, A., Salvador, R., Basser &, J. P. Predicting the electric field distribution in the brain for the treatment of glioblastoma. Phys Med Biol. 59 (15), 4137-4147 (2014).
- Wong, E. T., Lok, E., Swanson &, D. K. An Evidence-Based Review of Alternating Electric Fields Therapy for Malignant Gliomas. Curr Treat Options Oncol. 16 (8), (2015).
- Kim, E. H., et al. Biological effect of an alternating electric field on cell proliferation and synergistic antimitotic effect in combination with ionizing radiation. Oncotarget. , (2016).
- Kim, E. H., Song, H. S., Yoo, S. H., Yoon &, M. Tumor treating fields inhibit glioblastoma cell migration, invasion and angiogenesis. Oncotarget. , (2016).
- Pavesi, A., et al. Engineering a 3D microfluidic culture platform for tumor-treating field application. Sci Rep. 6, 26584 (2016).
- Wong, E. T., Lok, E., Swanson &, D. K. Clinical benefit in recurrent glioblastoma from adjuvant NovoTTF-100A and TCCC after temozolomide and bevacizumab failure: a preliminary observation. Cancer Med. , (2015).
- Kirson, E. D., et al. Chemotherapeutic treatment efficacy and sensitivity are increased by adjuvant alternating electric fields (TTFields). BMC Med Phys. 9, (2009).
- Schneiderman, R. S., Shmueli, E., Kirson, E. D., Palti &, Y. TTFields alone and in combination with chemotherapeutic agents effectively reduce the viability of MDR cell sub-lines that over-express ABC transporters. BMC Cancer. 10, 229 (2010).
- Connelly, J., et al. Planning TTFields treatment using the NovoTAL system-clinical case series beyond the use of MRI contrast enhancement. BMC Cancer. 16 (1), (2016).
