Summary
内臓の肺表面積（ISA）は、肺疾患および傷害誘発性肺胞再生における肺の形態学および生理学を評価するための決定的な基準である。ここでは、肺の肺切除術とプロテーゼ移植マウスモデルの両方でISAの測定バイアスを最小限に抑える標準化された方法について説明します。
Introduction
肺の基本的機能は、血管と大気との間の酸素と二酸化炭素の交換である。気管支肺胞形成異常（BPD）、慢性閉塞性肺疾患（COPD）、急性呼吸器感染症などの肺疾患は、ISA 2の減少をもたらす。肺疾患を研究研究者はMLI、ILV、ガス交換ユニットの数、ISA、および肺組織のコンプライアンス2、3などの肺の形態学的変化を評価するためにいくつかの定量的な方法を開発しました。 Weibel らによる先駆的研究4およびDuguid ら 5一緒にISAは、ヒト肺における肺のガス交換能力の直接の尺度として使用することができ、肺気腫の重症度を決定するための基準として使用することができることを確立しました。過去5年間に発表された多くの研究では、肺の形態学的パラメーター（ 例えば、 6中や傷害PNX 1、7から回復中のマウスの肺の形態学的および機能的変化を評価するために、M> ISAとMLI）。 ISAは、 式（1）8,9用いて計算されます。
ここで、ILVは、内部肺容積であり、MLIは、肺周辺空隙サイズ10を表す中間パラメータである。
PNX、一つ以上の肺葉の外科的切除は、広く人間11、マウス1、犬12、ラット13、およびウサギ14、15を含め、多くの種で、肺胞の再生を誘導することが報告されています。スタッドPNX後14日目にマウスの肺のyは、既存の肺胞の拡大と肺胞の新形成の両方が、残りの肺組織におけるISA、ILV、および肺胞の数の回復に寄与することを示した1 。我々と他の人は、スポンジ、ワックス、カスタム形状のプロテーゼなどの材料を空の胸腔にPNX（ すなわち人工器官の植え込み）後に挿入すると、肺胞の再生が損なわれることを示しています。今ではしっかりと肺胞の再生1、16、17を開始するための最も重要な要因の一つとして、その機械的な力の機能を確立しています。そのような研究は、肺胞再生を定量的に評価する基準として、PNX処置および人工器官埋め込み肺からのISA値を使用する有効性を強調している。
観察者バイアスは、測定されたvaに有意に影響を及ぼすことが知られている肺の形態学的パラメーター（ 例えば 、MILおよびILV）についてのルーツ。 ISAの計算に使用される2つのパラメータであるILVとMLIの両方を決定する際に、標準化されたプロトコルを使用してこのバイアスを回避することができます。ここでは、これらの肺パラメータを測定するための非常に詳細な、標準化されたプロトコルを提供します。重要なことに、ISAを正確に定量する能力は、損傷誘発性の肺胞再生モデルにおける肺機能の研究の信頼性および再現性を改善することを約束し、複数の肺疾患における機械的発見を促進するはずである。
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Protocol
このプロトコールで使用される全ての手順は、北京生物科学研究所の実験動物のケアおよび使用のためのガイドラインの推奨に従って行われた。実験が実施されるまで、8週齢のCD-1雄マウスを特定病原体不使用（SPF）施設に収容した。手術は、完全に麻酔したマウスを使用して行った（ すなわち 、つま先のつまみの反応なし）。手術後、マウスは、十分な食物および淡水を有する温かく湿った室内に置かれた。マウスを、腹腔内注射により送達された過剰の麻酔薬を用いて犠牲にした。
1.マウスPNX手術
- 腹腔内（IP）注射によりナトリウムフェノバルビタール（120mg / kg体重）およびブプレノルフィン（0.1mg / kg体重）でマウスを完全に麻酔する。マウスがつま先へのピンチに反応しなくなったときに手術を行います。
- ケミカルデポを用いてマウスの左胸部の毛を除去する（約3×3cm 2面積）の治療を必要とする。
- 各マウスを腹側を操作者に向けて挿管台に固定する（ 図1A ）。
- マウスの舌を引き出し、カテーテル18 （ 図1A ）を案内するノッチを含む小さな動物の喉頭鏡で声帯を照らす。
- 呼吸中に声帯の動きを観察して声帯を区別します。静かに20Gの静脈内挿管カニューレを前角19で気管に挿入する。
- マウスを右横臥位に置き、カニューレを機械的人工呼吸器（ 例えば、圧力制御; 表の表を参照）に接続する。マウスの胸部の呼吸運動を観察して、カニューレの気管への挿入を確認します（ 図1B ）。
- 吸息圧力を設定する換気装置を12 cmH 2 Oに設定し、呼吸速度を毎分120回の呼吸に設定します （ 図1B ）。
- ベタジンと70％エタノールで外科領域の皮膚を汚染除去する。
- Noyes Spring Scissors（刃先14 mm、先端直径0.275 mm）（ 図2B 、C ）を用いて、皮膚と筋肉を切断して、5 番目の肋間腔の空間に2〜3 cmの後外側開胸切開を行う。開胸手術に使用される手術器具は、使用前に滅菌される。
- 第 5肋間腔で1.5cmの切開を行い、左肺を露出させる（ 図2D 、E ）。操作中は、出血を止めるために高温焼灼器を使用してください。
- 左肺葉の3分の1を鈍い先端鉗子で胸から持ち上げ（ 図2F ）、次に綿棒を使用して左全体を引き出す肺（ 図2G ）。
- 左肺葉の肺動脈および気管支を特定する（ 図2G ）。
- hilumの気管支と血管を絹の外科用縫合糸でしっかりと結紮し、結紮から3〜4mmで左肺葉を切り取る（ 図2H 、I ）。
注：気胸（ すなわち 、胸部の空洞内の空気またはガス）を引き起こす可能性のある左丘の縫合結び目を切断しないように注意してください。 - 1つの縫合糸で胸壁を閉め、筋層と皮膚層を5〜6本の中断縫合糸を用いて縫い合わせる。各縫合糸の間に3〜4 mmの隙間を残す（ 図2M 、2N ）。
注：外科用縫合針を心臓から離してください。不慮の心臓穿刺は即座に死に至る。 - ポビドンヨードで手術部位を消毒する。
- アフト外科手術で38℃のサーマルパッドにマウスを置き、自発呼吸の動きが始まるまでマウスを人工呼吸器に接続します（ 図2O ）。
2.プロテーゼインプラント
- PNX処置のステップ1.1〜1.13を実行します（つまり、マウスの左肺葉を取り除いた時点まで）。
- 鈍い鉗子（ 図2J ）を使用して、シリコンプロテーゼの中心（顧客が作成した、長さ12mm、厚さ3mm、幅7mm、0.2g、楕円形）を締め付けます。シリコーンプロテーゼを挿入する前に滅菌する。
- 胸腔を露出させるために片手で鉗子でリブを保持し、もう一方の手で左の空の胸腔にプロテーゼを挿入します。
注：挿入角度は、プロテーゼの前面と胸郭面との間で約45度です（ 図2K 、L）。プロテーゼを挿入するときは非常に優しい。過度の力は胸膜破裂をもたらす。 - 鈍い鉗子でプロテーゼの向きを調整して、プロテーゼが左の空の胸腔を占めるようにします。
- マウスPNX手順のステップ1.14-1.16を実行します。
3.ILVの測定
- 使い捨ての血清学的ピペット（10 mL）から取り出したプランジャー、針アダプター、流量制御バルブ、および18 G針を備えた長さ40 cmのフレキシブルチューブからなるカスタムデバイス（「膨張チューブ」）を準備します。組み立て後、テープでボードにピペットを固定します （ 図3A ）。ピペットの上部と実験台との間の距離は、少なくとも30cmでなければならない。
- 55℃の水浴中で予め加熱した1×リン酸緩衝生理食塩水（PBS）500mLにPFA 20gを溶解し、手動で振とうして新鮮な4％パラホルムアルデヒド（PFA）固定液を調製する溶液が透明になるまで10分おきに静置する。室温に冷却した後、溶液を0.45μmフィルターで濾過する。
注意：PFAを取り扱うときは、適切な個人用保護具（PPE）を着用してください。 - マウスを麻酔薬の過剰投与（0.8％のフェノバルビタールナトリウム、1,000U / mLヘパリン）で犠牲にする。
- ポリスチレン解剖プレートに各マウスを固定し、70％アルコールを噴霧する。
- 注意深くマウスの胸を開き、はさみを使用して胸骨を切り開いて肺葉を完全に露出させます。
- はさみを使用して過剰な組織を除去し、気管を露出させる。食道から気管を離してください。
- 腹部大動脈を切断し、心臓の右心室に25ゲージの針を挿入する。この挿入の前に針を20 mLシリンジに接続してください。肺が白くなるまで、ゆっくりと1x PBSを心臓に押し込み、血球を除去します。典型的には、5~10mLのPBSが肺血管を浄化するために必要とされる。
- あなたを埋める4％の新鮮なPFAを含むカスタムビルドのインフレーションチューブを取り出し、インフレーションチューブからすべての泡を除去します。
- インフレーションチューブの18ゲージの針を気管に挿入し、液体漏れを防ぐために気管クリップで気管をクリップする。
- 25cmで一定経肺圧力/ H 2 O 2、20℃で4％PFAで肺を膨らませます。完全に拡張した肺を達成するために、肺を室温で2時間インキュベートする。この「予備固定」工程は、肺の形態を維持するために重要である。
- 膨張チューブを監視することにより、最初の4％PFA量の値を記録し、最終量を記録する。内部肺容積は、初期4％PFA容積から最終4％PFA容積を差し引いた容積に等しい。
- 気管をLigateし、はさみを使用して、周囲の結合組織から肺を静かに（肺をそのままに）解剖する。肺の損傷を避けるために、非常に穏やかにしてください。
- インコ4％PFAを満たした50 mLコニカルチューブで、4℃で12時間、シェーカー（50 rpm）で穏やかに振とうしながら肺を栓をする。組織の処理と染色に進む（セクション4を参照）。
組織埋め込み、切片化、およびヘマトキシリン＆エオシン（H＆E）染色
- 固定後、Noyes Spring Scissorsを使用して、肺から心臓や過剰な結合組織を整えます。肺葉を気管に接続する気管支を切断することによって、個々の肺葉を静かに分離する。
- オービタルシェーカー（50 rpm）で50 mL 1x PBS（30分/洗浄）で3〜4回肺葉を広範囲に洗浄します。
- 最後の洗浄後、組織が50mLコニカルチューブ（約12時間）の底に沈むまで4℃で30％ショ糖溶液（1×PBS）に浸すことによって肺葉を凍結保護する。
- 組織を包埋して凍結切除する前に、鉗子で肺葉試料を管から取り出し、アクセスを保持する約30分間、最適切断温度（OCT）化合物を含有するペトリ皿に試料を完全に浸漬する。
- クライオホルムを使用して液体窒素中でOCTに埋め込まれたアクセサリーローブサンプルを凍結させる。ローブの最大表面積をモールドの底面に平行にします。
- 組織学的分析のために凍結切片作製中に、各試料について合計3つの厚さ10μmの切片を調製する。最初の1mmの組織を捨て、10μmの厚さの部分を1枚集め、0.5mmの組織を捨て、別の部分を集め、0.5mmの組織を捨て、第3の（最終）部分を集める。
- H＆E染色を行う前に、セクションを1時間風乾します。
- H＆E染色を行う
- 水道水の3〜4回の切替えで切片を洗浄し、新鮮なヘマトキシリン中の切片を2分間染色する。;実行中の水道水の下でセクションをすすぎます。切片を1％HCl-70％エタノール溶液に2回浸して過剰のヘマトキシリンを除去する。
- 新鮮なエオシンの切片を3分間染色する。 95％エタノール中で2回連続して30秒洗浄し、100％エタノールで2回30秒洗浄することにより切片を脱水する;キシレン中の切片を30秒間透明にし、清澄化工程を新鮮なキシレン中で1回繰り返す;カバーガラスを使用してスライドをマウント媒体でマウントします。
MLIの定量化
- 明視野顕微鏡を用いて、H＆Eで染色されたアクセサリーローブ切片（20倍の倍率）のデジタル画像を取得する。
- MLIを定量化するには、3つのセクションからなる適切な領域（動脈および静脈、大気道および肺胞管なし）から無作為に合計15個の非重複ビュー（1,000μmx1,000μm）を選択します。
- 10個の均等に配分された垂直線と定義されたlenの均等に分布した水平線10個でグリッドを配置する選択された領域にルーラーツールを使用してgth（1,000μm）を表示します。したがって、各ラインは100μm離れて配置されている（ 図4B ）。
- 1つの切片の値を、2つの隣接する肺胞上皮の間の線形長さとして定義する。各1,000μmの長さのラインに沿ったすべての切片の値を測定する。
- 各グリッドについて、10本の水平な1,000μmの長さのラインと10本の垂直な1,000μmの長さのラインの間のすべての切片の値を定量化する。
注：MLIは、アクセサリーローブのそれぞれについて用意された3つのセクションの中から分析された合計15個のグリッドからの切片長の平均値である。
ISAの計算
- 式1を使ってISAを計算します（ はじめにを参照）。 ILVの測定についてはセクション3を参照し、MLIの定量化についてはセクション5を参照してください。
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Representative Results
ここでは、PNX治療群と人工器官埋め込み（義肢植込み）群の実験を行った。これらのグループ分けは、研究グループ14の以前に発表された研究で使用されたグループ分けと同じです。
マウスPNXおよびプロテーゼ移植手順を図2に示す。 8週齢のCD-1雄マウスを手術および定量のために使用する。 PNX処置群とプロテーゼ注入群では、左肺は、両方が（ - 2I 図2A）を切除したローブ。左肺葉は（ - 2L 図2J）を除去した後のプロテーゼ注入群、左肺葉の大きさと形状を模倣プロテーゼに胸部に挿入しました。
手術後14日目に、カスタムメイドのインフレーションチューブを使用して、残りの右肺のILVを決定した（ 図3A ）。残りの右のILVの平均ILVは、 5PNX処置マウスの肺は約1.4mLであり、5人の義足移植マウスの右肺の1.05mL ILV値より有意に高かった（ 図3B 、表1 ）。MLI測定のために、各マウスから調製した3つの切片の中から合計15個の視野を分析した。 図4Aは、MLIの定量化に使用される、選択された領域（ 例えば、ビュー1〜3）または選択されていない領域（ 例えば、ビュー4〜5）に対するアクセサリーローブセクションおよび形態学的基準からの併合画像を示す。ここでは、PNX処置群の付属肺葉切片からの視野3を、MLIの測定（ 図4B ）。図3の拡大図もまた例示のために表示されている（ 図5A ）。ライン3は、例として示されている：両頭の矢印線によって示される、傍受された肺胞空間の長さ。我々の分析は、PNX処置マウスの残りの右肺におけるMLI値が、義肢移植マウスの残りの右肺のMLI値よりも有意に大きいことを示した（ 図5B 、表1 ）。全てのデータは、平均±SEM （ 図5B ）。
式1を用いてISAを計算した。 表1は、すべての肺のILV値、MLI値、およびISAを示す。補綴移植されたマウスのISAは、PNX処置マウスのISAよりも有意に小さかった。これは、挿入プロテーゼのnがPNX誘導性再生を損なう。
図1：マウス気管内挿管および機械的換気。 （ A ）喉頭鏡検査による20Gの静脈内挿管カニューレによる気管内挿管。 （ B ）手術前に、完全に麻酔したマウスを圧力制御の機械的人工呼吸器に接続する。 この図の拡大版を見るには、ここをクリックしてください。
図2：マウス肺炎摘出（PNX）と義歯移植 （ A - C ）皮膚と筋層を切断します。ストップb外科手術中に高温焼灼器を用いて穿孔する。 （ D - E ）5 番目の肋間腔に1.5cmの切開を作る。 （ F - H ）鈍い鉗子で左肺葉を引き出し、肺動脈および気管支を同定し、肺門に結紮する。矢印は、左肺葉の肺動脈および気管支を表す。 （ I ）結紮から3〜4mmで左肺葉を切除した。 （ J - L ）左胸腔にプロテーゼを挿入します。 （ M、N ）胸部、筋肉層、皮膚層を縫合します。 （ O ）自発呼吸の動きが始まるまでマウスを監視する。 この図の拡大版を見るには、ここをクリックしてください。
図3：残りの右肺の内部肺容積（ILV）の測定。 （ A ）内部肺容量を測定するためのカスタムデバイス（「膨張チューブ」）。 （ B ）PNX処置群および補綴物移植群の残りの右肺のILV（平均±SEM）を、PNXの14日後に測定した。 **、 p <0.01、スチューデントt検定 。 この図の拡大版を見るには、ここをクリックしてください。
図4：残りの右肺におけるアクセサリーローブの平均線形迎え（MLI）の定量化。 （ A ）マージされたイムアクセサリーローブセクションの年齢が示されています。 MLIの定量化に使用される選択された領域（ 例：ビュー1〜3）と非選択領域（ 例：ビュー4〜5）の例 （ B ）所定の長さ（1000μm）の10本の等間隔の垂直線および10本の等間隔の水平線を、選択された領域に配置した。スケールバー= 1mm。 この図の拡大版を見るには、ここをクリックしてください。
図5：PNX処置肺および義肢移植肺におけるMLIの定量。 （ A ） 図4Bの拡大図3を示す。二重矢印のある赤色の線は、1つの線形切片の長さを表します。 （ B ）MLI値（平均±SEPNX処置マウスおよび義肢移植マウスの副葉のPNX（P。M.）を、PNXの14日後に測定した。 *、 p <0.05、スチューデントt検定 。スケールバー：100μm。 この図の拡大版を見るには、ここをクリックしてください。
| 手術14日後 | 内部肺容積（ml） | 平均線形切片（mm） | 内肺表面積= 4ILV / MLI（cm 2 ） |
| PNX処理 | 1.5 | 57.8 | 1038.06 |
| 1.35 | 49.6 | 1088.71 | |
| 1.42 | 48.5 | 1171.13 | |
| 1.4 | 51.5 1087.38 | ||
| 1.4 | 54.6 | 1025.64 | |
| 人工補綴物 | 1.1 | 49.6 | 887.10 |
| 1 | 50.5 | 792.08 | |
| 1.1 | 47.3 | 930.23 | |
| 1.15 | 44.8 | 1026.79 | |
| 0.86 | 46.3 | 742.98 |
表1：PNX処置マウスおよび義肢移植マウスのISA値の計算。 PNXの14日後のアクセサリーローブのILV、MLI、およびISAの値。
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Discussion
このプロトコールでは、マウス左肺PNXおよび人工器官移植後の肺パラメータの測定についての詳細な説明を提供する。 ISAは現在、多くの肺疾患および傷害誘発性肺胞再生における呼吸機能の評価のための重要なメトリックであると考えられている。しかし、肺研究の共同体はISAの有用性について有用な指標として合意されているが、ISAを計算するために使用されるILVとMLIの測定の標準化についてはほとんど考慮されていない。明らかに、測定と同様に、偏りのないデータを取得することが重要です。現在の研究努力の中心的な目標は、マウス肺研究共同体による使用のための標準化されたプロトコルを確立することである。
私たちは、このプロトコルを開発したときに、さまざまな方法で測定バイアスの原因を減らそうとしました。我々は、ILV測定値の変化が赤色であり得ることを見出した気管に挿入された針の寸法が寸法的に一致していることを保証することによって流体の漏れを防止することによって（18ゲージ針がマウス気管に密接に適合していることがわかった）また、PFAの膨張前にマウスの胸壁を完全に除去する必要があることも判明しました。これは、胸壁がILV測定に与える影響を最小限に抑えるためです。 MLI値は、肺胞形態に大きく依存する。したがって、年齢が一致した性マッチングしたマウスを使用することの重要性に加えて、肺固定処置中の肺胞形態の適切な維持が極めて重要である。肺組織を完全に拡張するために、新たに調製した4％PFAを用いて25cmH 2 Oの経肺圧で肺を膨らませた。私たちの経験では、圧迫の程度が低くなると、組織の収縮、異常な肺胞形態につながり、最終的にはMLI値が低くなります。
の観察私たちの以前の研究は、PNX再生の後、残りの肺の副葉が他の3つの肺葉と比較して最大容積膨張を示すことを示した。残りの肺のアクセサリーローブも形態学的パラメータの値の最大の増加（ 例えば 、MLI）21、22、23、24を示します。したがって、異なる肺葉からの変化を避けるために、付属葉の切片のみを分析した。 MLIの定量化に使用される様々なセクション間のばらつきを軽減するために、埋め込み時のローブの向きを制御しました。ローブの最大表面をクライオドールドの底面に平行に配置しました。我々はまた、切片の厚さ、切片サンプリングの順序、および切片化中の切断位置を注意深く制御した。サンプル処理に加えて、標準化の側面は、すべての動脈および静脈、胸膜、大気道、および肺胞管を、MLIの定量化の間に評価される組織領域から除外する必要があることである。動脈、静脈、および肺胞管はすべて肺胞よりも（4〜10倍）大きいため、これらの大きな構造物を除外することは信頼できる傍受測定を得る上で重要です。各群について、5匹のマウスが定量に適している。各マウスについて、副葉の3つの切片の適切な領域（動脈および静脈、主要な気道および肺胞管なし）から無作為に合計15個の重複しない視野（1,000μm×1,000μm）を選択した。サンプル包埋法およびMLI測定は、パラフィン処理した肺組織にも適用することができる。
他のものは、MLIを、総ライン長を横切った肺胞壁25のインターセプト数で割ったものとして定義したが、ここでは線形長さとして線形切片を使用したMLI計算における2つの隣接する肺胞上皮壁の間で、MLIデータから間葉の厚さを無視する。したがって、我々はILVを用いてISAを計算したが、総肺容積は計算しなかった。
PNXおよびプロテーゼ移植手順の場合、PNXを受けたマウスの生存率は85％〜90％の範囲であった。プロテーゼ移植を受けたマウスの生存率は約80％であった。すべての外科手術の間に、マウスの生存を改善するためにいくつかのステップを取る必要があります。 1）気管内へのカテーテルの適切な挿入は、PNX手術の成功の前提条件である。喉頭鏡のガイダンスでは、気管挿管を安全かつ効果的に行うために、気管を容易に観察することができる。 2）手術中に肺や心臓を穿刺しないでください。 5番目の左肋間腔の胸郭が広く開けられていること、および左葉の肺門が肺葉切除の前に明確に確認されていることを確認します。左肺葉再発を行う場合肺出血および/または肺葉破裂を避けるために、鈍い鉗子を使用して左葉が損なわれていないことを確認します。創傷閉鎖時には、手術針の先端を心臓や肺から離してください。 3）余分な力が胸膜の破裂を引き起こす可能性があるので、空の胸腔にプロテーゼを挿入するときは穏やかにしてください。 4）術後低体温がマウスの罹患率を増加させることが知られているので、マウスを38℃のサーマルパッドに置き、感覚が回復するまでモニターする。
左肺葉の除去後、肺呼吸器ユニットおよび肺内ガス交換領域の両方が有意に減少した。手術後14日目に、残りの肺組織中のILV、MLI、およびISAは、PNX処置群のマウスが義肢移植群よりも有意に大きく、補綴物の挿入がPNX誘発肺胞の閉塞を強く示唆した再生。したがって、PNXおよび人工器官移植マウスモード機械的な力によって引き起こされた再肺胞化の間に起こる細胞および分子事象の調査のための強力なツールとして使用することができる。さらに、 Yap AT2ヌル肺のISA値は、PNX後14 日目の対照肺のISA値よりも有意に小さく、このプロトコールは遺伝的突然変異マウスの再生障害の検出にも適していることが示された。この研究で提示された厳密で標準化された定量法は、発達研究における肺パラメータおよびISA、ならびに慢性閉塞性肺疾患の肺気腫、肺損傷後の肺胞再生および肺発生を含む、複数の疾患の遺伝的に改変された動物モデル欠陥。
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Disclosures
著者は何も開示することはない。
Acknowledgments
著者は北京生物科学研究所に支援を求めています。この研究は、北京市自然科学財団（No Z17110200040000）の支援を受けました。
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Low cost cautery kit | Fine Science Tools | 18010-00 | |
| Noyes scissors | Fine Science Tools | 15012-12 | |
| Standard pattern forceps | Fine Science Tools | 11000-12 | |
| Castroviejo Micro Needle Holders | Fine Science Tools | 12060-01 | |
| Vessel clips | Fine Science Tools | 18374-44 | |
| I. V. Cannula-20 gauge | Jinhuan Medical Product Co., LTD. | 29P0601 | |
| Surgical suture | Jinhuan Medical Product Co., LTD. | F602 | |
| Mouse intubation platform | Penn-Century, Inc | Model MIP | |
| Small Animal Laryngoscope | Penn-Century, Inc | Model LS-2-M | |
| TOPO Small Animal Ventilator | Kent Scientific | RSP1006-05L | |
| Thermal pad | Stuart equipment | SBH130D | |
| Pentobarbital sodium salt | Sigma | P3761 | |
| Heparin sodium salt | Sigma | H3393 | |
| Hematoxylin Solution | Sigma | GHS132 | |
| Eosin Y solution, alcoholic | Sigma | HT110116 | |
| 10 mL Pipette | Thermo Scientific | 170356 | |
| Paraformaldehyde | Sigma | P6148 | |
| O.C.T Compound | Tissue-Tek | 4583 | |
| cryosection machine | Leica | CM1950 | |
| Disposable Base Molds | Fisher HealthCare | 22-363-553 | |
| 18 gauge needle | Becton Dickinson | 305199 | |
| Povidone iodine | Fisher Scientific | 19-027132 | |
| 70% ethanol | Fisher Scientific | BP82011 | |
| Infusion sets for single use | Weigao | SFDA 2012 3661704 | |
| Phosphate buffered saline | Gibco | 10010023 | |
| Tapes | 3M Scotch | 8915 | |
| Cotton pad | Vinda | Dr.P | |
| Silicone prosthesis | Custom made | ||
| Brightfield microscope | Olympus | VS120 | |
| Ruler tool | Adobe Photoshop |
References
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