Summary
Se presenta un protocolo para el spinning de microfluidos y caracterización de la microestructura de monofilamento de fibroína de seda regenerado.
Abstract
El protocolo muestra un método para imitar el proceso de hilado del gusano de seda. En el proceso de hilado nativo, el contratante conducto de spinning permite las proteínas seda compacto y ordenado por las fuerzas de cizallamiento y el alargamiento. Aquí, un canal de microfluidos biomiméticos fue diseñado para imitar la geometría específica del conducto giro del gusano de seda. Giro regenerado fibroína de seda (RSF) dopado con alta concentración, se saca a través de microcanales a las fibras del seco-centrifugado a temperatura ambiente y presión. En el proceso de los tratados, las fibras de hilado como fueron dibujadas y almacenadas en la solución acuosa de etanol. Tecnología de difracción de rayos x de gran angular (SR-WAXD) radiación del sincrotrón fue utilizada para investigar la microestructura de solo fibras RSF, que fueron fijados a un soporte de muestra con el eje de la fibra RSF el microhaz de la radiografía normal. La cristalinidad, tamaño del cristalito y orientación cristalina de la fibra se calculan a partir los datos WAXD. Los arcos de difracción cerca del Ecuador del patrón bidimensional WAXD indican que la fibra post tratada de RSF tiene un grado alto de orientación.
Introduction
Araña y el gusano de seda pueden producir fibra de seda pendiente de solución acuosa de proteína a temperatura y presión. Flujo extensional y corte puede inducir la formación de la textura de cristal líquido en la glándula de seda1. En los últimos años ha habido un gran interés en imitar el proceso de hilado de la araña para producir fibras artificiales de alta resistencia. Sin embargo, grandes cantidades de proteína de seda de araña pueden producir eficientemente y económicamente por agricultura arañas debido al canibalismo. Grandes cantidades de seda de gusano de seda pueden obtenerse fácilmente por cultivo. De lo contrario, el gusano de seda y la araña tienen una composición similar de proceso y del aminoácido de spinning. Por lo tanto, fibroína de seda de gusano de seda es seleccionada como un sustituto a hilar seda animal artificial por muchos investigadores.
Araña y el gusano de seda sacan solución proteica a través de su conducto de spinning en fibra en el aire. Las fuerzas de alta tensión generadas a lo largo del conducto de spinning más probable estiran las moléculas de fibroína de seda para una conformación más extendida de2. Seda artificial fibras han sido hiladas mediante hilatura convencional de húmedo y seco-spinning procesos3,4, que no toman en cuenta las fuerzas fluidas generadas en el conducto de spinning.
En primer lugar, se utilizaron enfoques de microfluidos para investigar el conjunto de proteínas de seda5,6. Entonces, microfluidos fabricación de RSF se estudió mediante el corte y extensional fuerzas7,8de modelado. Módulo de Young y diámetro de las fibras RSF pueden ajustarse por hilatura húmeda microfluídicos, pero resistencia a la tracción de la fibra dibujada era menos de 100 MPa7. Por último, fibras de alta resistencia RSF con éxito fueron preparadas utilizando el método de microfluidos seco-spinning, pero el diámetro de la fibra es sólo de 2 μm8. Recientemente, hilado húmedo microfluídicos fue utilizado con éxito en la producción de fibra de seda de araña recombinante de alta resistencia. El post-giro dibujo en el aire había mejorado los defectos superficiales e internos de fibra artificial9.
En este estudio, se introduce la microfluídica mejorada spinning proceso de fibra RSF. Su objetivo es imitar el proceso de hilado de seda de gusano de seda, como la droga de giro, fuerzas y proceso seco-que hace girar de la corte. Este método de spinning no sólo puede producir fibra de seda artificial de alta resistencia, pero también puede ajustar el diámetro de la fibra. En primer lugar, el RSF spinning droga fue cortado y alargado en un canal biomimic con un decaimiento exponencial de segundo orden. En segundo lugar, las influencias de la humedad relativa (HR) sobre la morfología de la fibra y propiedades fueron estudiadas en la microfluídica seco-spinning proceso10. En comparación con la hilera de hilatura convencional, nuestro sistema de microfluidos es altamente biomiméticos y puede ser utilizado para producir fibra de alta resistencia de las soluciones a temperatura ambiente por el seco o mojado método de giro.
Debido a la alta resolución, alto brillo y alta energía de la radiación del sincrotrón microfocus rayos x, puede ser utilizado para caracterizar la microestructura de una sola fibra con un diámetro de varios micrómetros4,11 , 12 , 13 , 14. aquí, SR WAXD técnica fue utilizada para calcular la cristalinidad, tamaño del cristalito y orientación cristalina de fibras RSF.
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Protocol
PRECAUCIÓN: consulte todas las hojas de datos seguridad del material pertinentes antes de su uso. Varios de los productos químicos utilizados en la preparación de la moldura están agudo tóxicos. Utilice equipo de protección personal (gafas, guantes, bata, pantalón largo y zapatos cerrados).
1. microfluídicos Spinning de RSF solución acuosa
- Preparación de RSF acuosa spinning droga 4 , 15 , 16
- Descrudado del gusano de seda capullo
- Degum capullos de Bombyx mori dos veces en Na 2 CO 3 acuosas (0,5% en peso en agua) a 100 ° C por 30 min y luego lavar la seda con agua desionizada para eliminar el sericina.
- Dissolving de capullo de gusano de seda degummed
- secar las sedas capullo desgomado en aire, disolver las sedas capullo desgomado en LiBr de 9,0 M solución acuosa con una proporción de 1:10 (p/v) a 40 ° C por 2 h. Por ejemplo, agregar 10 mL de LiBr por 1 gramo de seda ( Figura 1a).
- Centrifuging y filtrado
- diluir la solución de RSF 1.5 veces por agua desionizada. Centrífuga y filtro para quitar impurezas. Centrifugar la solución RSF en botellas de 250 mL a 4 ° C por 10 min a 1,234.8 x g. filtrar la solución RSF usando un filtro μm 20 y una bomba de vacío. Cama doble de papel de filtro es preferible considerar el efecto de la experimentación.
- Dialyzing
- dializarse la solución RSF en agua desionizada a 5 ° C por 3 días utilizando una membrana semipermeable de celulosa (MWCO: 14.000 ± 2.000). El volumen total de solución RSF es aproximadamente de 1 L, cargado en 4 bolsas de diálisis. Poner estas bolsas de diálisis en el cubo, que se llena con 10 L inversa ósmosis desionizada.
Nota: El valor de pH del agua desionizada debe ser superior a 6, para evitar la gelificación durante el proceso de concentración. El pH del agua desionizada no requieren ajuste de este protocolo.
- dializarse la solución RSF en agua desionizada a 5 ° C por 3 días utilizando una membrana semipermeable de celulosa (MWCO: 14.000 ± 2.000). El volumen total de solución RSF es aproximadamente de 1 L, cargado en 4 bolsas de diálisis. Poner estas bolsas de diálisis en el cubo, que se llena con 10 L inversa ósmosis desionizada.
- Concentración
- condensar la solución acuosa de RSF al 20% de peso por circulación de aire forzado en solución acuosa de 5 ° C. Añadir 3 M CaCl 2 en la solución RSF a 1,0 mmol/g concentración de Ca 2 + final; luego concentrado por aire forzado flujo a % en peso de 38-47.
- Pesar una gota de solución RSF sobre un portaobjetos de vidrio y luego secarla por 2 h en un horno a 105 ° C.
Nota: El peso por ciento de los restantes sólido en comparación con el peso de la gota antes de secado es la concentración total de proteína y CaCl 2. La concentración de RSF se deriva después de la deducción de la masa de CaCl 2. Por lo menos cuatro repitió las mediciones se realizaron. Nuestros estudios anteriores demostraron que la concentración de Ca 2 + afectado grandemente las propiedades reológicas y entallabilidad de las soluciones acuosas de RSF. Mientras tanto, la adición de Ca 2 + incitó la limitada formación de β-hoja y la agregación de RSF 17. En una droga nativa spinning, CaCl 2 se considera desempeñar un papel importante durante el almacenamiento de droga para evitar la congelación antes de giro de giro. 18
- Descrudado del gusano de seda capullo
- preparación de chip microfluídico 8 , 19
- preparación de fotomáscara
- diseñar el canal de micro en un Programa de CAD. Imprimir el archivo CAD para producir una alta resolución transparencia 19.
- Preparar el molde
- limpieza del portaobjetos de cristal
- en una campana química, hervir el portaobjetos de cristal en la solución mezclada de ácido sulfúrico concentrado y 30 vol % peróxido de hidrógeno solución (10:1) durante 20 min sobre una placa caliente.
PRECAUCIÓN: los vapores de ácido sulfúrico y peróxido de hidrógeno son extremadamente tóxicos.
- en una campana química, hervir el portaobjetos de cristal en la solución mezclada de ácido sulfúrico concentrado y 30 vol % peróxido de hidrógeno solución (10:1) durante 20 min sobre una placa caliente.
- Lavar el portaobjetos de cristal
- lavar el portaobjetos de vidrio con agua desionizada y secarlo con nitrógeno de alta pureza.
- Película de la capa
- el photoresist SU-8 en la diapositiva de cristal por un dispositivo de capa a la medida con una separación de 100 μm entre la superficie inferior de la barra de capa y la superficie superior del vidrio de la capa.
- Capa de la vuelta
- extender el fotoprotector en lo portaobjetos de vidrio para formar una película uniforme con un recubridor spin a 40,3 x g por 30 s. El espesor de la película uniforme es el μm cerca de 85.
- Solidificación
- solidificar la fotoresistencia en un horno con una temperatura de control de programa. Elevar la temperatura de la temperatura ambiente hasta 65 ° C a 2 ° C/min y mantener a 65 ° C por 2 min continuar al calor para arriba de 65 ° C a 95° C y presionado a 95 ° C por 15 min vuelta apagado del horno y enfriar naturalmente a sala de temperatura en el horno.
- ULTRAVIOLETA exposición de luz
- exponer al lado de vidrio Deslice con la fotoprotección a la luz ultravioleta de 12 s utilizando la transparencia como un photomask por Fotolitografía 19.
Nota: La proporción de la luz ultravioleta es 365 nm y la energía de exposición es 273.6 mJ/cm 2.
PRECAUCIÓN: Toma medida de seguridad apropiada mientras se trabaja con luz UV y el horno.
- exponer al lado de vidrio Deslice con la fotoprotección a la luz ultravioleta de 12 s utilizando la transparencia como un photomask por Fotolitografía 19.
- Solidificar la fotoresistencia como se describe en el paso 1.2.2.5.
- Desarrollo
- limpiar la fotoresistencia ultrasonidos en la solución de revelado para 30 s. lavar el portaobjeto por isopropanol y desarrollador, alternando entre los dos, hasta que no haya ninguna precipitación en el portaobjetos de cristal.
- Solidificar la fotoresistencia en un horno con una temperatura de control de programa. Elevar la temperatura de la temperatura a 170 ° C a 2 ° C/min y pulsado a 170 ° C durante 30 minutos a su vez fuera del horno y enfriar naturalmente a la temperatura en el horno.
- limpieza del portaobjetos de cristal
- Litografía blanda
- Pour polímero antes de 8,8 g líquido polydimethylsiloxane (PDMS) sobre el molde y curación durante 30 min a 65 ° C y 15 min al polímero antes de 80 ° C. PDMS líquido consta de PDMS y agente de curado (normalmente en 10:1 (w/w)).
- Perforación
- perforar un agujero a través de la réplica PDMS al principio del canal con un taladro. El diámetro de la broca es de 1,2 mm.
- Sellado
- sello de la réplica PDMS con el canal a una capa PDMS plana sin patrón por un tratamiento de plasma de oxígeno en las superficies de las dos capas PDMS.
Nota: El proceso general de preparación de la viruta tiene unos 72 h.
- sello de la réplica PDMS con el canal a una capa PDMS plana sin patrón por un tratamiento de plasma de oxígeno en las superficies de las dos capas PDMS.
- preparación de fotomáscara
- Fabricación de RSF fibra
- inyección de spinning droga
- inyectar la RSF spinning droga en los microcanales de 2 μl/min por una bomba de jeringa.
- Reglamento de medio ambiente
- ajustar la humedad relativa a 40 ± 5% RH o 50 ± 5% RH usando un humidificador. A 40 hr ± 5%, como hilado fibra solidificó más rápido que 50 ± 5% RH.
- Fibra producción de RSF
- toque la gota RSF por un puntito a la salida del canal microfluídico, extraer fibra RSF en el aire, y luego la carrete sobre un rodillo a través de un boquete de aire de 10 cm a una velocidad de 3 cm/s ( Figura 1b ).
- Tienda las fibras de la RSF en un desecador sellado por 24 h.
- Tratamiento de post de fibra
- dibuja las fibras como girar 4 veces a 0.9m m s -1 en 80 vol % ethanol la solución por una máquina a la medida y luego mantenga la fibra dibujada fijo y sumerja las fibras en la solución durante 1 h. Debido a este tratamiento, la longitud de la fibra cambiada de originalmente 15 mm a 60 mm.
- Preparación de la muestra para la caracterización
- fijar las fibras post-tratadas en un marco de papel con una longitud de 10mm de calibre. Al menos 20 fibras son necesidad de medida, incluidos en el ensayo de tracción, SEM, FTIR y WAXS. Los diámetros de la gama de fibras post-dibujado de 5 a 10 μm. figura 1 muestra el esquema de la producción de la fibra y WAXD caracterización. Las propiedades mecánicas de las fibras RSF fueron examinadas por un sistema de prueba material (25 ± 2) ° C y (45 ± 5) % de humedad relativa. La extensión de la tarifa y medidor de longitud fueron de 2 mm/min y 1 cm, respectivamente.
- inyección de spinning droga
2. Radiación de sincrotrón caracterización de cristalina estructura de RSF fibra
- caracterización de la radiación del sincrotrón 4 , 13 , 17
- ajuste de línea
- ajustar la longitud de onda de los rayos x y tamaño de punto a 0,07746 nm y 2 de 3 x 2 μm, respectivamente.
Nota: El protocolo se lleva a cabo mediante la línea de BL15U1 en las instalaciones de Radiación Sincrotrón Shanghai.
- ajustar la longitud de onda de los rayos x y tamaño de punto a 0,07746 nm y 2 de 3 x 2 μm, respectivamente.
- Ubicación del punto de rayos x
- encontrar la ubicación del punto de rayos x.
Nota: La ubicación del punto de rayos x es ajustada por el técnico de laboratorio en las instalaciones de radiación sincrotrón.
- encontrar la ubicación del punto de rayos x.
- Pruebas de muestra estándar: dióxido del cerio (CeO 2)
- prueba un muestra estándar CeO 2 en polvo. El CeO 2 polvo fue caracterizado para calcular el centro del círculo y la distancia entre la muestra y el detector de.
- Preparación de la muestra
- fijar los filamentos RSF en paralelo entre sí en el marco de papel con una longitud de 10 mm de calibre. Pegar el marco de papel en la etapa de pruebas.
Nota: Mantenga la fibra horizontal.
- fijar los filamentos RSF en paralelo entre sí en el marco de papel con una longitud de 10 mm de calibre. Pegar el marco de papel en la etapa de pruebas.
- SR WAXD pruebas
- Abra el obturador
- cerrar la puerta de la estación de la línea después de asegurarse de que no hay ninguna persona en la habitación. Abra el obturador de la fuente del haz de rayos x.
- Enfoque
- mover la fibra ligeramente hasta que en el enfoque. Ajuste la ubicación de la fibra a lo largo de la x, y, dirección de z remotamente a través de un software ( figura 1C).
- Exposición de la muestra
- mover la fibra arriba y abajo remotamente mediante un software, hasta que en el lugar de rayos x. Presione el botón start en el software para exponer la fibra a la línea de rayos x por 20 s ( figura 1C).
- Fondo difracción
- la difracción del fondo del aire con el tiempo de exposición de 20 s. mueve la fibra de la lugar de rayos x remotamente a través de un software de prueba. Prensa el " Inicio " botón en el software para exponer la línea de rayos x para " medio de aire " para 20 s.
- Abra el obturador
- ajuste de línea
- Procesamiento de datos SR-WAXD 13
- calibración del Software
- los datos WAXD usando FIT2D (V12.077). Calibrar el centro del círculo y la distancia de la muestra al detector utilizando los datos de la difracción del polvo CeO 2.
- Patrón de difracción 2-D
- restar el fondo de aire desde el patrón de difracción de fibra con FIT2D (V12.077).
- Tamaño de cristalinidad y cristalito
- integrar la intensidad de la difracción como una función de dispersión de ángulo 2θ. Realizar una deconvolución de la integración de la intensidad de pico automático separación software (versión 4.12) 12. Se estimó el grado de cristalinidad, x c, de la relación:
, donde yo c es la suma de las intensidades integradas de los picos de cristalinos y un es la intensidad integrada de los amorfos halo 4 , 11. La integración de los patrones WAXD demostró la anchura del pico de la [200], [020], [002] reflexiones. El FWHM de estos picos fueron utilizados para determinar el tamaño de cristalito a lo largo de la a, b y c ejes utilizando Scherrer ' fórmula s 4.
- integrar la intensidad de la difracción como una función de dispersión de ángulo 2θ. Realizar una deconvolución de la integración de la intensidad de pico automático separación software (versión 4.12) 12. Se estimó el grado de cristalinidad, x c, de la relación:
- Determinación de las orientaciones de cristalito
- calcular las orientaciones de los cristalitos y amorfa según azimuthal integraciones de (020) y (210) picos 11. La orientación cristalina puede calcularse cuantitativamente según Herman ' orientación s. Aquí, ambos (020) y picos (210) fueron equipados con dos funciones Gaussian. El más estrecho es de orientación cristalina y el otro más amplio es para el material amorfo orientada 13. Aquí, las orientaciones del cristalito de fibras RSF fueron comparadas usando todo el ancho en el medio máximo (FWHM) de los picos de integraciones azimutal (002).
- calibración del Software
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Representative Results
Fibras de alta resistencia RSF fueron producidas con éxito usando el método de giro de microfluidos. Las curvas tensión-deformación e imágenes de SEM de las fibras estiradas de RSF C44R40 se muestran en la figura 2. Por lo menos 10 fibras fueron medidos en el ensayo de tracción. Curvas tensión-deformación fueron escogidas según el valor promedio de la última hora tensión y la tensión de las fibras. Los datos WAXD de las fibras se muestran en la figura 3. La cristalinidad y orientación cristalina se calcularon según los datos WAXD. Para la designación de la muestra, usamos C y R para presentar la concentración de RSF en la droga de spinning y la humedad relativa, respectivamente. Por ejemplo, las fibras de spun de droga spinning RSF 44 wt de % 40 ± 5% RH fue señalado como C44R40, que después fue dibujado en una proporción de sorteo de 4. Otras fibras fueron retitulados como C44R50, C47R40 y C47R50 según la descripción del mismo.
Figura 1: Esquema de la caracterización de la producción y la estructura de la fibra. (una) solución preparación de RSF, (b) microfluídicos spinning proceso de fibras RSF, montaje experimental de la radiación del sincrotrón (c) de fibra única de RSF. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.
Figura 2: Curvas de tensión de las fibras posteriores tratadas de RSF. Insertar imagen de SEM de la muestra de C44R40. Barra de escala = 10 μm. Esta figura se ha modificado de10. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.
Figura 3: datos de SR WAXD de fibras posteriores tratados de RSF. (A) dos patrones WAXD dimensionales de RSF-tratado solo fibras: (un) C44R40, (b) C44R50, (c) C47R40, (d) C47R50, y (B) desgomado de la seda B. mori ; Datos WAXD dimensiones (C) uno de los trataron fibras RSF y había desgomado de la seda B. mori , que se realizó en pico deconvolución en (D). Esta figura se ha modificado de la referencia10. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.
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Discussion
Durante la diálisis de la solución RSF, el valor del pH es fundamental para el proceso de concentración. Si el valor del pH del agua desionizado es menor que 6, la solución RSF será más fácil durante el proceso de concentración del gel. Para evitar la gelificación, CaCl2 se agrega a la solución RSF. La concentración de CaCl2 es de 1 mmol por peso de RSF.
Nuestro trabajo previo demostró la posibilidad de microfluidos seco-spinning de una solución acuosa de RSF8. La geometría del canal microfluídico era una función exponencial simplificada de una etapa. Para la araña y el gusano de seda, giro drogas bajaron un sorteo por un conducto de spinning de regresión exponencial de dos fases antes de fibra formación1,20. Aquí, la geometría del canal microfluídico diseñó mímico la segunda función del decaimiento exponencial de orden del gusano hace girar conducto1. La anchura del canal microfluidic disminuye de un ancho inicial de 2.065 μm para el terminal ancho de 265 μm y la longitud de la canal de alargamiento es 21,5 mm. En el artículo anterior, el diámetro de la fibra RSF dibujado era 2 μm. Así, un haz de hilos RSF tuvo que ser utilizado para la prueba mecánica y de caracterización de estructura8.
El experimento muestra que concentración de RSF y la humedad relativa afectan el diámetro y la microestructura de las fibras de la RSF en el proceso de hilado seco. La fibra RSF hizo girar en el 40% de humedad relativa muestra un diámetro más grande y más estructuras cristalinas de la fibra rota a 50% HR. Sin embargo, la fibra hilada en el 50% de humedad relativa tiene una orientación cristalina superior que rota a 40% de humedad relativa. Los resultados se pudieran relacionar con tasas de evaporación de agua en diferentes humedades. Una mayor tasa de evaporación de agua en 40% de humedad relativa mejora las interacciones intramoleculares y facilita la transición de la fase rápida de fibroína de seda de sol-gel a sólido fibra de seda. Una menor tasa de evaporación de agua en 50% de humedad relativa conduce a un mayor contenido de agua en la fibra solidificada. Como un pequeño lubricante molecular, el agua facilita la orientación de la fibroína de seda y hace que la fibra parcialmente solidificada a estirar a las fibras más finas. Este proceso nos ayuda a entender cómo el agua influye la formación de fibras de seda durante el proceso de hilado nativo.
Las propiedades mecánicas de las fibras posteriores tratadas de RSF son mejores que las de sedas desgomado4. Después después del tratamiento, se incrementaron drásticamente cristalinidades de las fibras. El FWHM de la fibra RSF-tratada es más pequeño que el de fibra hilada como. Indica que después del tratamiento mejora la orientación de cristalitos a lo largo del eje de la fibra. Sin embargo, la complejidad del proceso después del tratamiento limita la producción masiva de fibras RSF con de alta resistencia.
Frente a una hilera convencional, el canal de microfluidos es idóneo para simular la geometría de una glándula de seda natural. Mientras tanto, el giro de la microfluídica fue utilizado para producir seda de araña recombinante con excepcionales propiedades mecánicas9. Secciones de corte y elongational fueron integradas en el chip de microfluidos spinning para inducir el ensamblaje y la orientación de las moléculas de proteínas y fibrillas. Por lo tanto, la microfluídica es prometedor en la producción de sedas animales de alto rendimiento, así como otras fibras sintéticas de la solución. Sin embargo, los microfluidos método de giro sólo pueden producir filamentos individuales y no puede permitirse alta producción de fibras artificiales.
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Disclosures
Los autores no tienen nada que revelar.
Acknowledgments
Este trabajo está patrocinado por la Fundación Nacional de Ciencias naturales de China (21674018), el nacional clave de investigación y programa de desarrollo de China (2016YFA0201702 /2016YFA0201700) y el "programa de Shuguang" apoyado por el desarrollo de la educación de Shangai Comisión de Educación Municipal Fundación y Shanghai (15SG30), DHU distinguido joven profesor programa (A201302), los fondos de investigación para las universidades Central y el proyecto 111 (No.111-2-04).
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| B. mori Cocoons | Farmer in Tongxiang, Zhejiang Province, China | ||
| Sodium carbonate, anhydrous, 99.8% | Shanghai Lingfeng Chemical Reagent Co., Ltd., China | Analytically Pure | |
| Lithium bromide, 99.1% | Shanghai China Lithium Industrial Co., Ltd., China | Analytically Pure | |
| Calcium chloride, anhydrous, 96.0% | Shanghai Lingfeng Chemical Reagent Co., Ltd., China | Analytically Pure | |
| Ethanol, anhydrous, 99.7% | Sinopharm Group Chemical Reagent Co.,Ltd., China | 10009218 | Analytically Pure |
| SU-8 photoresist | MicroChem Corp., USA | ||
| Developing solution | MicroChem Corp., USA | ||
| Sylgard 184 | Dow Corning, USA | ||
| Isopropanol | Shanghai Lingfeng Chemical Reagent Co., Ltd., China | Analytically Pure | |
| Concentrated sulfuric acid | Pinghu Chemical Reagent Factory, China | Analytically Pure | |
| 30 vol% hydrogen peroxide | Shanghai Jinlu Chemical reagent Co., Ltd., China | Analytically Pure | |
| Acetone | Shanghai Zhengxing Chemical Reagent Factory, China | Analytically Pure | |
| Oxygen plasma treatment | DT-01, Suzhou Omega Machinery Electronic Technology Co., Ltd., China | ||
| Syringe pump | KD Scientific, USA | KDS 200P | |
| Humidifier | SEN electric | ||
| Driller | Hangzhou Bo Yang Machinery Co., Ltd., China | bench drilling machine Z406c | |
| Material testing system | Instron, USA | Model: 5565 | |
| PeakFit | Systat Software, Inc., USA | Version 4.12 |
References
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