Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Biology

Endotracheal intubasjon kaniner ved hjelp av en polypropylen Guide kateter

Published: November 13, 2017 doi: 10.3791/56369

Summary

Endotracheal intubasjon i kaniner er utfordrende på grunn av sin uvanlige anatomi. Her presenterer vi en teknikk for direkte intubasjon av trachea bruker en polypropylen kateter som en guide. Denne metoden bruker relativt billig forsyninger, krever minimal opplæring og lett kan utføres i en klinisk setting.

Abstract

Endotracheal intubasjon i kaniner kan være utfordrende på grunn av sin uvanlige anatomi. Oppnå en patent airway under anestesi er avgjørende for å unngå luftveisobstruksjon, forebygging av gastrisk tympany og for pustestøtte. På grunn av hvor vanskelig intubasjon utforsket alternative metoder som bruk av recurrens maske luftveiene eller recurrens rør. Men disse metodene resultere ikke i en direkte tilgang til luftrøret og dermed kan utgjøre en risiko for utvikling av komplikasjoner. I tillegg kan mangelen på direkte intubasjon av trachea medføre eksponering av personell til avfall bedøvende gasser. Mange metoder for endotracheal intubasjon har blitt beskrevet, inkludert blind plassering, bruk av en fiberoptiske laryngoskop eller endoskop og cartilago plassering. Til tross for disse mange publikasjoner sliter mange fortsatt med å oppnå suksess. Her gir vi en detaljert beskrivelse av en intubasjon teknikk som kan læres med minimal trening med kort tid til kompetanse. Kort, etter administrasjon av injiserbare anestesi og riktig plassering av kaninen, en polypropylen kateter settes inn i luftrøret ved direkte visualisering ved hjelp av et laryngoskop. Kateter brukes deretter som en guide til direkte endotracheal tube inn i luftrøret. Denne metoden gir intubasjon uten behov for dyrt utstyr og kan utføres av en enkeltperson uten behov for en assistent. Konklusjon, denne teknikken kan lett lært og utført på svært lite kostnader i noen klinisk eller forskning innstillingen.

Introduction

Kanin har en smal, dypt muntlige hulrom som begrenser synligheten av strupehode for endotracheal intubasjon. De har også et stort kjøttfulle tungen og kinnet tenner som, kombinert med smale munnhulen, kan forårsake problemer når du setter inn et laryngoskop og visualisere glottis sette en Villena1. Stor forsiktighet må tas å unngå skade i munnhulen og luftveier når intubasjon. Laryngeal vev er svært basert og overdreven traumer fra gjentatte forsøk på å intubate kan forårsake betydelig betennelse, gjør intubasjon vanskeligere2.

For disse grunner, en rekke alternative teknikker har blitt beskrevet, særlig supraglottisk airway enheter inkludert i strupe rør3,4, recurrens maske airway (LMA)4,5, 6 og en artsspesifikke supraglottisk airway enheten7. En recurrens tube består av et rør med to ballonger som direkte luft inn i luftrøret: en større ballong i røret danner et segl i øvre pharynx og en mindre ballong på den klubbeformede enden sel esophageal innløp3. LMA består av et rør med en elliptisk maske på den klubbeformede enden som er oppblåste for å danne en lufttett forsegling over glottis4,5,6. Artsspesifikke enheten er veterinær artsspesifikke supraglottisk airway enheten tilgjengelig for kattene og kanin, designet for å passe anatomiske strukturer for hver art å skape et trykk forsegle i svelg7. Men fordi disse enhetene ikke direkte angir luftrøret, kan de innebærer risiko for komplikasjoner som mage tympany. Mangel på en ordentlig tetning i luftrøret presenterer en bekymring angående egnethet for bruk av disse enhetene for positivt trykk ventilasjon for åndedretts støtte, nødhjelp eller thorax kirurgi3,8. I tillegg kan mangelen på direkte intubasjon av trachea medføre eksponering av personell til avfall bedøvende gasser5.

Mange metoder for direkte endotracheal intubasjon har vært beskrevet9,10,11,12,13,14,15. En populær metode er blind teknikken, som kan redusere sjansen for skader orofaryngeal hulrommet siden innsetting av et laryngoskop er ikke nødvendig16,17,18,19 , 20. som et visuelt blind teknikk, denne metoden krever overvåking for luftstrømmen gjennom Villena og forsiktig manipulasjon guide plasseringen. Selv om denne metoden brukes vanligvis i forskning og klinisk veterinær praksis, i forfatternes erfaring, denne teknikken kan være tidkrevende og ikke alltid heldig, og dermed er vanskeligere å lære og kan kreve ekstra dosering av bedøvende agenter 9 , 10. I tillegg fordi overvåking for åndedrett brukes til å lede riktig plassering av røret, denne metoden ville være mer vanskelig og mindre pålitelige under respirasjonsstans. En annen populær metode er å bruke en tradisjonell laryngoskop teknikk til intubate som er gjort med større arter. Det tradisjonelle laryngoskop teknikken i kaniner er imidlertid vanskelig i at visningen av stemmebåndene blokkeres når endotracheal tube settes inn i munnen. Derfor kan bruk av denne metoden resultere i gjentatte intubasjon forsøk, økt bedøvende dosering og skader i muntlige hulrom og luftveier10.

Dyrere og teknisk utfordrende alternativer for intubasjon finnes også. Den fiberoptiske laryngoskop gir enkel innsetting av endotracheal tube ved å sette laryngoskop inn i røret og visualisere innsettingspunktet inn i luftrøret på en skjerm. Tilsvarende kan endoskop brukes å visualisere recurrens området og guide plassering av røret. Men krever begge disse metodene bruk av dyrt utstyr som ikke kanskje er tilgjengelige i typiske kliniske innstillinger9,11,12. Intubasjon via nesehulen er en alternativ metode som har blitt beskrevet, men dette utgjør en risiko for introdusere opportunistiske patogener fra nesehulen i lungene, spesielt i kaniner som ikke er spesifikke-patogen-fri21. Endelig, mer invasive metoder av intubasjon har også blitt publisert, inkludert retrograd innsetting av en guide kateter gjennom en nål plassert percutaneously inn i luftrøret, samt bruk av en p cricothyroidotomy etterfulgt av plasseringen av en guidekabel, fartøyet dilator, og skjede introducer13,14. Som invasiv teknikker har disse metodene mulige komplikasjoner som post fremgangsmåter for smerte og smitte. Teknikken som beskrives her, ved hjelp av en laryngoskop og guide kateter, kan bli undervist med minimal trening med kort tid til kompetanse, er ikke-invasiv, kan utføres av en enkeltperson uten behov for en assistent og krever ikke bruk av spesialisert utstyr.

Protocol

intubasjon prosedyren beskrevet nedenfor ble godkjent av Mayo Clinic institusjonelle Animal Care og bruk komiteen.

1. forberedelse ( figur 1)

  1. få et 5 franske polypropylen kateter og kutte ikke-avrundet slutten så den totale lengden er 8-10 inches. Merke det kutte slutten av slangen å klart angi hvilken ende bør ikke settes inn i luftrøret (pil, figur 1).
  2. Plasserer en størrelse 0 eller 1 Miller laryngoskop blad i laryngoskop og kontroller at lyset fungerer.
  3. Trekke 0,25 mL 2% lidocaine 1 mL sprøyter til.
  4. Bruke sterilt smøremiddel på slutten av en passende stor uncuffed endotracheal tube (vanligvis 2.5-4.0 mm ID).
  5. Forberede forsyninger for å sikre endotracheal røret på plass når den er satt inn (f.eks umbilical bånd).
  6. Få en enhet for å oppdage luftstrøm på slutten av fremgangsmåten for å bekrefte vellykket intubasjon (#5, figur 1). Dette er valgfritt.

2. Anestesi

  1. administrere injiserbare anestesi, som 35 mg/kg ketamin og 5 mg/kg xylazine intramuskulært bruker en 3 mL sprøyte med en 25 gauge nål i quadriceps muskel av bakben etappe av en ca 4 måneder gamle, 3.0-3,5 kg, New Zealand hvit kanin.
    Merk: Denne bedøvende diett er en brukte injiserbare kombinasjon i unge, sunn, bestemte patogen-fri forskning kaniner, men basert på klinisk tilstand og/eller eksperimentelle mål, en annen protokoll kan være aktuelt.
  2. Når kaninen er anesthetized, bruke sterilt ophthalmica smøremiddel på øynene for å bevare det hornhinnen tissue.

3. Endotracheal intubasjon

  1. mål endotracheal tube fra fortenner til den thorax innløpet til avgjøre riktig for innsetting av endotracheal tube. Plassering på slutten av røret på nivå med thorax innløp forsikrer at rør åpningen er forbi strupehode men skallen til tracheal bifurkasjonen.
  2. Posisjon kaninen sternally i tabellen forberedelse med hodet litt utvidet over kanten av tabellen ( figur 2). Kaninen skal plasseres firkant med hodet og ryggraden i rett justering.
  3. Løfte hodet opp, bruk en gauze pute for å trekke kaninen ' s tungen lateral til kaninen ' s høyre nedre fortenner (i diastema), ta vare for å unngå traumer fra fortenner.
  4. Trykk på laryngoskop og blad med høyre hånd og sett den inn i munnen bak fortenner, inn fra kaninen ' s igjen.
  5. Følg taket av munnen med spissen av bladet caudal retning til ganeseilet vises.
  6. Med høyre hånd, spissen laryngoskop frem (bøye håndleddet, holder laryngoskop nedover) utvide kaninen ' s hodet tilbake og halsen frem for å opprettholde åpne luftveier og vise strupehode ( Figur 3 A). som forplikte nasal breathers, at epiglottis er ofte over det bløt ganen, og bruk av denne metoden komprimerer undersiden av tungen fortrenge at epiglottis og avsløre glottis. For å hindre oksygen desaturation, er det viktig å holde nakken utvidet som beskrevet for å opprettholde åpne luftveier under intubasjon.
  7. Slipper tungen og bytte laryngoskop blad til venstre hånd for å frigjøre høyre for plassering av guide kateter.
  8. Mens holder laryngoskop og vedlikeholde visning av glottis ( Figur 3 B), fremme avrundet spissen av guide kateter gjennom åpningen forbi strupehode ( Figur 4 ). Kateter kommer til et naturlig stopp på tracheal bifurkasjonen.
  9. Samtidig opprettholde tak i guide kateter, forstå endotracheal røret og tråden det over kateter, ta vare ikke for å bruk makt på kateter av fanger det Villena koblingen. Fremme røret til det er motstand fra stemmebåndene ( figur 5).
  10. Innpode 0,25 mL 2% lidocaine inn i åpningen av endotracheal tube. Lidocaine vil reise ned endotracheal røret for å lokalt bedøve stemmebåndene, forebygge laryngospasm 22 ( figur 6).
  11. Tillat omtrent to minutter for den aktuelle anestesi kraft og videre ved forsiktig vri den endotracheal tuben, fremme den gjennom stemmebåndene ( figur 7). Når røret har gått stemmebåndene, fjerne laryngoskop blad og kateter, ta vare ikke for å dislodge røret.
  12. Bekreft plassering av endotracheal tube ved å observere luftstrøm. Det er flere måter å oppnå dette, inkludert plassering av vev eller pels på slutten av røret for å oppdage luftstrøm, leter tåkete av rør eller tåkete av et glass/speil på slutten av røret, og lytte for luftstrøm. Enheter som er utviklet for å oppdage luftstrømmen 23 eller respirations også kan brukes ( Figur 8) til å fastslå om intubasjon var vellykket (se Materialer tabell for alternativer). Sikre endotracheal røret med en foretrukket metode, for eksempel umbilical bånd knyttet rundt rør og hodet. Koble anestesi krets og auscult begge sider av thorax samtidig gi åndedrag å sikre ventilasjon til begge sider av lunge.

Representative Results

På forfatternes institusjonen, er denne teknikken vanligvis undervist laboratorium og veterinary personell under treningsøkter på kanin håndtering og anestesi teknikker. Undervisning økter utføres med dedikert opplæring dyr. Trener viser teknikken en gang og deretter traineer utføre teknikken under ledelse av trener. Traineer vanligvis oppnå suksess innen 1-3 forsøk. Etter at de har fullført intubated kaninen når enkeltpersoner må oppgis intubasjon en gang, og kan vanligvis klarer intubate kaninen igjen på første flere forsøk. Tilbakemelding under disse treningsøkter, spesielt fra personer som har vært tidligere trent med alternative teknikker, inkluderer konsekvent kommentarer på hvor enkelt denne teknikken er å lære og fullført.

Figure 1
Figur 1. Leverer for endotracheal intubasjon: 1) laryngoskop med størrelse 0 eller 1 Miller laryngoskop blad, 2) navle tape (eller andre forsyninger for å sikre Villena), 3) 0,25 mL 2% lidokain, 4) 5-fransk polypropylen kateter kuttet til 8-10 inches med ikke-avrundet slutten merket med en permanent markør å klart angi hvilken ende skal ikke settes inn i luftrøret (pil), 5) luft flyt gjenkjenning enhet, 6) sterilt smøremiddel på distale røret, 7) uncuffed Villena. Klikk her for å se en større versjon av dette tallet.

Figure 2
Figur 2 : Sternal posisjonering for endotracheal intubasjon. Kaninen plasseres sternally med forelimbs til slutten av tabellen. Bakbeina er utvidet tilbake, og det kanin hode er justert med ryggraden. Venstre brukes til å heve hodet inn filtypen i forberedelse for innsetting av laryngoskop. Klikk her for å se en større versjon av dette tallet.

Figure 3
Figur 3 : Innsetting av laryngoskop. A) laryngoskop settes inn i den venstre diastema med høyre hånd, etter taket av munnen med spissen av bladet til ganeseilet er synlig. Når ganeseilet er synlig, er laryngoskop tippet frem utvide kaninens hodet tilbake og halsen frem å visualisere strupehodet. B) visualisering av strupehodet. Klikk her for å se en større versjon av dette tallet.

Figure 4
Figur 4 : Fremme av guide kateter. A) etter bytte laryngoskop blad til venstre hånd, fremskritt høyre hånd avrundet spissen av guide kateter gjennom åpningen forbi strupehodet. B) den guide kateter sendes gjennom stemmebåndene med direkte visualisering. Klikk her for å se en større versjon av dette tallet.

Figure 5
Figur 5 : Fremming av tracheal røret. Den cuffed endotracheal tuben er koblet over guide kateter og er avansert inntil det er motstand fra stemmebåndene. Klikk her for å se en større versjon av dette tallet.

Figure 6
Figur 6 : lidocaine instillasjon. Lidocaine (2%, 0,25 mL) er innpodet i åpningen av endotracheal tube. Klikk her for å se en større versjon av dette tallet.

Figure 7
Figur 7 : Villena avansement. To minutter etter instillasjon av lidocaine, er endotracheal røret avansert ved forsiktig vri den gjennom stemmebåndene. Klikk her for å se en større versjon av dette tallet.

Figure 8
Figur 8 : Verifisering av luftstrømmen gjennom den endotracheal tuben]. En luftstrøm enheten kan brukes til å kontrollere luftstrømmen gjennom endotracheal tube, eller en dental speil kan også brukes til å oppdage kondens fra åndedrag indikerer vellykket intubasjon. Klikk her for å se en større versjon av dette tallet.

Discussion

Her gir vi en detaljert beskrivelse av kanin intubasjon teknikk som kan være lett mestrer i en klinisk setting. Denne teknikken ligner på tidligere utgitt direkte visualisering teknikker10,15,20,25 med noen ytterligere avgrensninger, inkludert bruk av en 3,5 mm uncuffed endotracheal tube, og 5 fransk urin kateter som vår valgt guide, som er kuttet og merket med en permanent penn på cut slutten. Kanin luftrøret er lett utsatt for skade og dermed bruk av uncuffed endotracheal rør anbefales generelt når intubere kanin å hindre skade tracheal mucosa fra trykket av mansjetten. 26 til 5 franske urin kateter vi valgte en guide er liten nok til å lett passere gjennom de vokale foldene uten hindrer visningen under direkte visualisering av strupehodet. Mens små er dette kateter stiv nok å forbli på plass som en guide for den endotracheal tuben]. Den distale tuppen på kateter avrundes for å redusere traumer når bifurkasjonen er nådd. Den proksimale enden av kateter er kuttet slik at kateter er en gjennomførbar lengde (ikke overdrevent lang) og fjerne slutten som utvider for å feste til en sprøyte. Cut slutten er markert med permanent markør som visuelt ikke sette dette inn i luftrøret, som kan forårsake skade tracheal mucosa.

Den største begrensningen av denne teknikken er at, fordi den krever bruk av et laryngoskop blad, ikke kan det være mulig for svært ung kanin eller svært liten arter på grunn av mindre munnen størrelse. I tillegg kan enkelte fasiliteter ikke ha denne størrelsen på laryngoskop blad tilgjengelig. Denne metoden brukes for New Zealand White (≥6 uker) og voksne nederlandske belte kaniner på forfatterens institusjonen, men vi har ikke forsøkt denne metoden i yngre dyr eller mindre arter. I situasjoner er der kanin pasienten er liten, eller hvis et laryngoskop med små Miller blad er tilgjengelig, et alternativ å bruke en håndholdt otoscope i stedet for laryngoskop. 15 , 20 bruker en otoscope med en #5 øre spekulum, strupehode er visualisert, guide kateter plasseres av direkte visualisering og spekulum fjernes før du fortsetter å følge de samme trinnene som beskrevet ovenfor.

Det er viktig å bruke stor forsiktighet når guide kateter plasseres for å unngå muligheten for forårsaker traumer eller bronkospasme som slutten av kateter går inn i luftrøret og berører tracheal bifurkasjonen. Risikoen for disse komplikasjoner kan reduseres eller unngås ved fôring kateter med meget myk bevegelser, stoppe så snart det er motstand og unngå bevegelse av hodet når kateter er på plass. I tillegg når fremme endotracheal røret over kateter, er mulig for kateter å fange på Villena kontakten. Det er derfor viktig å sørge for at kateter lysbilder via connector uten oppsiktsvekkende; Alternativt kontakten kan fjernes og erstattes når den endotracheal tube eller vedlegges bedøvende krets.

Noen metode for intubasjon er mulig for komplikasjoner og bivirkninger. Med metoden direkte visualisering med et laryngoskop feil innsetting laryngoskop eller aggressiv plassering av endotracheal tube kan gi recurrens, tunge eller tann skader. Riktig posisjonering av dyret er kritisk steg minimere traumer under visualisering av strupehodet. Ryggen skal være rett, med hodet på linje med ryggraden; Hvis dyret ikke er rett, eller hvis halsen er vridd til venstre eller høyre, dette vil gjøre visualisering av strupehode vanskeligere og kan føre til overdreven traumer med laryngoskop blad. En annen viktig nøkkel til suksess når benytter denne teknikk er å følge taket av munnen mot strupehodet, og når ganeseilet er visualisert, skifte bladet i riktig posisjon ved å bøye på håndleddet. Dette holder hodet på plass, mens flytte tuppen av bladet inn optimale visningsstilling av stemmebåndene, som ligger helt ventrale i kanin20,24.

Direkte visualisering av strupehode kan være vanskelig hvis de nøyaktige teknikkene vi skissere ovenfor ikke følger, kan bruk av alternativ intubasjon strategier som ikke krever visualisering av strupehode tiltalende. For eksempel er blinde teknikken en mulig alternativ som ikke krever bruk av en laryngoskop16,17,18,19,20. Men bruk av denne teknikken er avhengig av muligheten til å oppdage luftstrømmen gjennom endotracheal røret for å direkte plassering av røret, og hvis dyrets åndedrag er svært grunt eller arrestert, bruk av denne metoden er ikke pålitelig. Supraglottisk enheter kan også bli vurdert, siden plasseringen av disse enhetene krever ikke visualisering av strupehode og de er vanligvis svært enkelt å plassere. Disse enhetene direkte inn ikke i luftrøret, men og det er dermed potensielle manglende direkte flyt airway, manglende evne til å ventilere hvis laryngospasm utvikler, mangel på en forsegling stramt nok for ventilasjon under åpen-brystet prosedyrer eller nødsituasjon Resuscitation, og utvikling av mage tympany3,4,8. Nyere enheter spesielt beregnet på kanin kan tilby en lovende alternativ, men flere studier er nødvendig for å evaluere disse enhetene, og bekymringer om manglende inn i luftrøret fortsatt. Mage tympany kan også være en mulig komplikasjon i et intubated dyr hvis endotracheal røret er tilfeldigvis plassert i spiserøret; men reduserer bruk av en direkte visualisering teknikken risikoen for denne komplikasjonen ved å bekrefte riktig plassering av guide kateter i strupehodet.

Traume til arytenoid og/eller tracheal mucosa er en annen potensiell bekymring når du setter inn en endotracheal tube, særlig når benytter oppblåsbare håndjern rør26,27,28. Luftrøret i kaniner kan lett bli skadet, noe som kan føre til komplikasjoner som subkutan emfysem, pneumotoraks og død10,27,28,29. Mens du utfører teknikken som beskrives her, bør utvises å hindre tracheal skade ved bruk av uncuffed endotracheal rør, sikre avrundet spissen av guide kateter settes inn i luftrøret og ikke tvinge guide kateter inn i glottis. I tillegg er utvalg av en passende størrelse Villena av avgjørende betydning. Villena størrelse bør være vurderes mot størrelsen på dyret, samt forhold til åpningen av recurrens innløp siden det er mindre i diameter enn luftrøret. En endotracheal tube for stor diameter kan medføre traumer til arytenoid mucosa eller brusk. På den annen side, bruk av en mindre endotracheal tube resulterer i økt airway motstand og øker sjansene for hindringer på grunn av slim eller knekk. Derfor er åndedretts overvåking svært viktig i intubated kanin. I tillegg til puls oximetry skal måling av luftstrømmen monitored med capnography; Hvis en capnograph er tilgjengelig, er airway skjermer et alternativ som kan brukes til å oppdage strømmen av luft (men ikke gi målinger av utåndet karbondioksid). I tillegg kan av assistert ventilasjon være verdifulle, spesielt i tilfeller der mindre diameter rør er brukt24,30.

I tillegg til de allerede nevnte fordelene ved å bruke denne teknikken, er en annen stor fordel med denne metoden at det kan utføres av en enkeltperson uten behov for en assistent, som kan være viktig i en travel klinisk setting. I denne situasjonen er det viktig å samle alle nødvendige forsyninger og ha dem innen rekkevidde under intubasjon prosessen, spesielt når guide kateter er på plass og bevegelser av hodet bør unngås.

Teknikken som beskrives her brukes av veterinær og forskning personalet i våre institusjon for alle kanin intubations, som beløper seg til cirka 200-400 intubations i året. Det er veldig lett lært i en typisk kanin anestesi treningsøkt, noe som tar ca 30 minutter. Vi har funnet at det er relativt lett å lære, med studenter læring i sine 3 første forsøk og kan vanligvis gjenta prosessen vellykket i neste flere forsøk. For fremtidige studien, ville det være verdifullt å sammenligne tid ferdigheter og evnen til å opprettholde kompetanse over tid for denne metoden sammenlignet med andre intubasjon teknikker. Mens dette har vært studert for varianter av blind teknikker16, er en omfattende vurdering av læringskurven for en rekke intubasjon teknikker ikke enda utført. En annen potensielle fremtidige retning av studien kan omfatte sammenligne direkte endotracheal intubasjon til nyere artsspesifikke supraglottisk airway enheter, spesielt angående funksjonen under positivt trykk ventilasjon.

Avslutningsvis teknikken for intubasjon kaniner som beskrives her er ikke-invasiv, pålitelig, krever ikke bruk av spesialisert utstyr, er lett å mestre, og kan utføres av en enkeltperson uten behov for en assistent. Alle airway tilgang teknikker utgjør noen risiko, men ved hjelp av en direkte visualisering teknikk og følge trinnene vi beskriver ovenfor for å minimere komplikasjoner, risikoen er oppveier fordelene ved å ha en tilstrekkelig airway under anestesi.

Disclosures

Forfatterne ikke avsløre.

Acknowledgments

Forfatterne ønsker å erkjenne de ansatte og forskning personell som har deltatt i deres tilbakemeldinger kanin håndtering og anestesi trening økter mens du lærer denne intubasjon teknikken.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Ketalar
Ketamine HCl Inj.
JHP Pharmaceuticals NDC 42023-113-10 35mg/kg IM in epaxial muscles or quadriceps muscle (preferred)
Anased
Xylazine (100mg/ml)
Lloyd Labs NADA #139-236 5mg/kg IM in epaxial muscles or quadriceps muscle (preferred)
Welch Allyn Laryngoscope Handle Welch Allyn 60300 Requires 2 size C alkaline batteries
Size 0 or 1 Miller Laryngoscope Blade Welch Allyn 68040
2.5 – 4.0 mm ID uncuffed endotracheal tube Jorgenson J0149V Suitable for 2.5-5 kg rabbits
3.5 mm most commonly used
Sovereign polypropylene catheter, 5 Fr x 22” Medtronic 8890703310 Cut to 8-10 inches
Mark the cut end with permanent marker to indicate which end not to insert
Lidocaine 2% HCL Inj VetOne L-2000-04
4-Ply Nonsterile, Bulk Packed Versalon Sponges (Gauze pads) Covidien KC9024A
Tape, Twill, Bleached ½” x 72 yds Encompass Textiles 48210-025 Used for securing endotracheal tube
HR Lubricating Jelly HR Pharmaceuticals 201 For lubricating endotracheal tube tip
Great Plains Ballistics: BAAM (Beck Airway Airflow Monitor) 22 BoundTree Medical 21410 For confirmation of successful intubation
Ambu Pediatric Co2 Detector AMBU INC 172713 For confirmation of successful intubation

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Quesenberry, K. E., Carpenter, J. W. Ferrets, rabbits, and rodents : clinical medicine and surgery. 3rd edn . , Elsevier/Saunders. (2012).
  2. Dugdale, A. Veterinary Anaesthesia: Principles to Practice. , Wiley-Blackwell. (2010).
  3. Yamamoto, Y., Inoue, S., Abe, R., Kawaguchi, M., Furuya, H. Airway management with the laryngeal tube in rabbits. Lab animal. 36 (5), 33-35 (2007).
  4. Belena, J. M., et al. Laryngeal mask, laryngeal tube, and Frova introducer in simulated difficult airway. J Emerg Med. 48 (2), 254-259 (2015).
  5. Smith, J. C., et al. Endotracheal tubes versus laryngeal mask airways in rabbit inhalation anesthesia: ease of use and waste gas emissions. Contemp Top Lab Anim Sci. 43 (4), 22-25 (2004).
  6. Kazakos, G. M., et al. Use of the laryngeal mask airway in rabbits: placement and efficacy. Lab Anim (NY). 36 (4), 29-34 (2007).
  7. Crotaz, I. R. Initial feasibility investigation of the v-gel airway: an anatomically designed supraglottic airway device for use in companion animal veterinary anaesthesia. Vet Anaesth Analg. 37 (6), 579-580 (2010).
  8. Bateman, L., Ludders, J. W., Gleed, R. D., Erb, H. N. Comparison between facemask and laryngeal mask airway in rabbits during isoflurane anesthesia. Veterinary Anaesthesia and Analgesia. 32 (5), 280-288 (2005).
  9. Johnson, D. H. Endoscopic intubation of exotic companion mammals. The veterinary clinics of North America. Exotic animal practice. 13 (2), 273-289 (2010).
  10. Tranquilli, W. J., Thurmon, J. C., Grimm, K. A., Lumb, W. V. Lumb & Jones' veterinary anesthesia and analgesia. 4th edn. , Blackwell Pub. (2007).
  11. Worthley, S. G., et al. Rapid oral endotracheal intubation with a fibre-optic scope in rabbits: a simple and reliable technique. Laboratory Animals. 34 (2), 199-201 (2000).
  12. Miranda, A., Pego, J. M., Correia-Pinto, J. Animal facility videoendoscopic intubation station: tips and tricks from mice to rabbits. Laboratory animals. , (2016).
  13. Irazuzta, J., Hopkins, J., Gunnoe, P., Brittain, E. Simple method of multipurpose airway access through percutaneous tracheostomy in rabbits (Oryctolagus cuniculus). Lab Anim Sci. 47 (4), 411-413 (1997).
  14. Bertolet, R. D., Hughes, H. C. Endotracheal intubation: an easy way to establish a patent airway in rabbits. Lab Anim Sci. 30 (2), Pt 1 227-230 (1980).
  15. Gilroy, B. A. Endotracheal intubation of rabbits and rodents. J Am Vet Med Assoc. 179 (11), 1295 (1981).
  16. Morgan, T. J., Glowaski, M. M. Teaching a new method of rabbit intubation. J Am Assoc Lab Anim Sci. 46 (3), 32-36 (2007).
  17. Inglis, S., Strunk, A. Rabbit anesthesia. Lab Anim (NY). 38 (3), 84-85 (2009).
  18. Falcao, S. C., Pereira Junior, J. R., Coelho, A. R. Technique of blind tracheal intubation in rabbits (Oryctolagus cuniculi) supported by previous maneuver of esophageal cannulization. Acta Cir Bras. 26 (5), 352-356 (2011).
  19. Su, H. P., et al. A miniature lighted stylet for fast oral endotracheal intubation in rabbits. Vet J. 195 (2), 254-256 (2013).
  20. Weinstein, C. H., Fujimoto, J. L., Wishner, R. E., Newton, P. O. Anesthesia of six-week-old New Zealand White rabbits for thoracotomy. Contemp Top Lab Anim Sci. 39 (3), 19-22 (2000).
  21. Stephens DeValle, J. M. Successful Management of Rabbit Anesthesia Through the Use of Nasotracheal Intubation. Journal of the American Association for Laboratory Animal Science. 48, 166-170 (2009).
  22. A Guidance on the Use of Topical Anesthetics for Naso/Oropharyngeal and Laryngotracheal Procedures. , U.S. Department of Veterans Affairs. (2006).
  23. Cook, R. T., Stene, J. K., Marcolina, B. Use of a Beck Airway Airflow Monitor and controllable-tip endotracheal tube in two cases of nonlaryngoscopic oral intubation. Am J Emerg Med. 13 (2), 180-183 (1995).
  24. Fish, R. E., Brown, M. J., Danneman, P. J., Karas, A. Z. Anesthesia and Analgesia in Laboratory Animals. , Elsevier. (2008).
  25. Gografe, S. I., et al. Successful management of long-term general anesthesia in rabbits used as an animal model of human disease. Contemp Top Lab Anim Sci. 42 (2), 16-19 (2003).
  26. Nordin, U. The trachea and cuff-induced tracheal injury. An experimental study on causative factors and prevention. Acta Otolaryngol Suppl. 345, 1-71 (1977).
  27. Phaneuf, L. R., Barker, S., Groleau, M. A., Turner, P. V. Tracheal injury after endotracheal intubation and anesthesia in rabbits. J Am Assoc Lab Anim Sci. 45 (6), 67-72 (2006).
  28. Grint, N. J., Sayers, I. R., Cecchi, R., Harley, R., Day, M. J. Postanaesthetic tracheal strictures in three rabbits. Lab Anim. 40 (3), 301-308 (2006).
  29. Squire, R., Siddiqui, S. Q., DiNunizio, G., Brodsky, L. Quantitative study of the tracheotomy and endotracheal intubation on the rabbit tracheobronchial tree. Ann Otol Rhinol. , (1990).
  30. Kumar, R. A., Boyer, M. I., Bowen, C. V. A reliable method of anesthesia for extensive surgery in small rabbits. Lab Anim Sci. 43 (3), 265-266 (1993).

Tags

Medisin problemet 129 kanin intubasjon endotracheal anestesi ventilasjon opplæring intubasjon komplikasjoner kanin airway anatomi
Endotracheal intubasjon kaniner ved hjelp av en polypropylen Guide kateter
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Thompson, K. L., Meier, T. R.,More

Thompson, K. L., Meier, T. R., Scholz, J. A. Endotracheal Intubation of Rabbits Using a Polypropylene Guide Catheter. J. Vis. Exp. (129), e56369, doi:10.3791/56369 (2017).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter