Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Biology

Intubation endotrachéale de lapins à l’aide d’un cathéter Guide en polypropylène

Published: November 13, 2017 doi: 10.3791/56369

Summary

L’intubation endotrachéale chez le lapin est un défi en raison de leur anatomie inhabituelle. Nous présentons ici une technique pour l’intubation directe de la trachée, à l’aide d’un cathéter en polypropylène comme guide. Cette méthode utilise des fournitures relativement peu coûteux, nécessite une formation minimale et peut être facilement effectuée dans un contexte clinique.

Abstract

L’intubation endotrachéale chez le lapin peut être difficile en raison de leur anatomie inhabituelle. Réalisation d’une voie aérienne brevet pendant l’anesthésie est essentiel afin d’éviter l’obstruction des voies respiratoires, prévention de tympany gastrique et de permettre une assistance ventilatoire. En raison de la difficulté d’intubation, méthodes alternatives telles que l’utilisation de voies respiratoires masque laryngé ou larynx tubes ont été explorées. Cependant, ces méthodes n’entraînent pas un accès direct à la trachée et donc peuvent présenter un risque pour le développement de complications. En outre, manque de directe intubation de la trachée peut entraîner l’exposition du personnel aux déchets des gaz anesthésiques. De nombreuses méthodes pour l’intubation endotrachéale ont été décrits, y compris le placement aveugle, utilisation d’un placement de fibres optiques laryngoscope ou endoscope et cricoïde. Malgré ces nombreuses publications, beaucoup se battent encore atteindre le succès. Ici, nous fournissons une description détaillée d’une technique d’intubation qui peut s’enseigner avec une formation minimale avec un peu de temps à la compétence. En bref, après l’administration de l’anesthésie injectable et le positionnement du lapin, un cathéter en polypropylène est placé dans la trachée par visualisation directe à l’aide d’un laryngoscope. Le cathéter est ensuite utilisé comme guide pour diriger la sonde endotrachéale dans la trachée. Cette méthode permet d’intubation sans besoin de matériel coûteux et peut être effectuée par une seule personne sans avoir besoin d’un assistant. En conclusion, cette technique peut être facilement enseignée et effectuée à très faible coût dans une clinique ou paramètre de recherche.

Introduction

Lapins ont une cavité étroite et profonde orale qui limite la visibilité du larynx pour l’intubation endotrachéale. Ils ont aussi une très grande langue charnue et dents jugales qui, lorsqu’il est combiné avec l’étroite cavité buccale, peut provoquer des problèmes lors de l’insertion d’un laryngoscope et la visualisation de la glotte pour insérer un tube endotrachéal1. Il faut en grand pour éviter de causer un dommage à la cavité buccale et des voies respiratoires lors de la tentative d’intubation. Les tissus laryngés sont très friables et trauma excessif des tentatives répétées pour intuber le malade peut provoquer une inflammation importante, rendant l’intubation difficile plus2.

Pour ces raisons, une variété de techniques alternatives ont été décrites, notamment les dispositifs de voies respiratoires supra-glottiques dont le larynx tube3,4, le masque laryngé des voies aériennes (LMA)4,5, 6 et une supra-glottiques spécifique à l’espèce des voies respiratoires appareil7. Un tube laryngé est constitué d’un tube avec deux ballons qui dirigent le flux d’air dans la trachée : un plus grand ballon au milieu du tube forme un joint dans le pharynx supérieur et un ballon plus petit à l’extrémité distale scelle l' entrée oesophagien3. La CGL est constitué d’un tube avec un masque elliptique à l’extrémité distale qui est gonflée pour former un joint étanche et au-dessus de la glotte4,5,6. Le dispositif spécifique à l’espèce est le premier appareil vétérinaire supra-glottiques spécifiques à l’espèce des voies aériennes, actuellement disponible pour les chats et les lapins, conçus pour s’adapter à des structures anatomiques pour chaque espèce créer une pression sceller dans le pharynx7. Cependant, parce que ces dispositifs n’entrent pas directement dans la trachée, ils peuvent présenter des risques de complications telles que tympany gastrique. L’absence d’une bonne étanchéité au sein de la trachée présente une préoccupation au sujet de la pertinence de l’utilisation de ces dispositifs pour la ventilation à pression positive pour l’assistance respiratoire, urgences ou chirurgie thoracique3,8. En outre, manque de directe intubation de la trachée peut entraîner l’exposition du personnel aux déchets des gaz anesthésiques5.

Beaucoup de méthodes pour l’intubation endotrachéale directe ont été décrit9,10,11,12,13,14,15. Une méthode populaire est la technique aveugle, ce qui peut diminuer les risques de blessures à la cavité oropharyngée, puisque l’insertion d’un laryngoscope n’est pas nécessaire de16,17,18,19 , 20. comme une technique visuelle aveugle, cette méthode nécessite un suivi pour la circulation d’air dans le tube endotrachéal et manipulation attentive au guide placement. Bien que cette méthode est couramment utilisée dans la recherche et la pratique clinique vétérinaire, dans l’expérience des auteurs, cette technique peut être fastidieuse et pas toujours avec succès et donc est plus difficile à enseigner et peut-être nécessiter une dose supplémentaire d’agents anesthésiques 9 , 10. en outre, parce que la surveillance de la respiration est utilisée pour guider un placement correct du tube, cette méthode serait plus difficile et moins fiables au cours de l’arrêt respiratoire. Une autre méthode populaire est d’utiliser une technique de laryngoscope traditionnel pour intuber le malade comme cela se fait avec les espèces de grande taille. Cependant, la technique de laryngoscope traditionnel chez le lapin est difficile car la vue des cordes vocales est obstruée lorsque la sonde endotrachéale est insérée dans la bouche. Par conséquent, l’utilisation de cette méthode peut entraîner les tentatives répétées de l’intubation, dosage anesthésique accrue et de blessures à la cavité et des voies respiratoires orale10.

Il existe aussi des options plus chers et techniquement difficiles pour l’intubation. Laryngoscope fibre optique permet une insertion facile du tube endotrachéal en insérant laryngoscope dans le tube et la visualisation de l’insertion dans la trachée sur un écran. De même, endoscopes permet de visualiser la région laryngée et de guider la mise en place du tube. Toutefois, ces deux méthodes nécessitent l’utilisation de matériel coûteux qui ne sont peut-être pas disponible dans les milieux cliniques typiques9,11,12. Intubation de la cavité nasale est une méthode alternative qui a été décrite, bien que cela présente un risque d’introduction de pathogènes opportunistes de la cavité nasale dans les poumons, en particulier chez le lapin qui n’est pas exempts de pathogènes spécifiques à21. Enfin, des méthodes plus invasives d’intubation ont également été publiés, notamment rétrograde d’insertion d’un cathéter guide par une aiguille insérée par voie percutanée dans la trachée, ainsi que l’utilisation d’une aiguille de cricothyroïdotomie suivie de la mise en place d’un fil-guide, dilatateur de navire et gaine introducteur13,14. Comme les techniques invasives, ces méthodes présentent des complications potentielles telles que la douleur et l’infection. La technique que nous décrivons ici, à l’aide d’un cathéter guide et laryngoscope, peut s’enseigner avec une formation minimale avec un peu de temps à la compétence, est non invasif, peut être effectuée par une seule personne sans avoir besoin d’un assistant et ne nécessite pas l’utilisation de équipement spécialisé.

Protocol

la procédure d’intubation décrite ci-dessous a été approuvée par le Comité de l’utilisation et de la Mayo Clinic Institutional Animal Care.

1. préparation ( Figure 1)

  1. obtenir un cathéter de polypropylène 5 Français et coupez l’extrémité non arrondies, donc la longueur totale est de 8 à 10 pouces. Marquer l’extrémité coupée de la tubulure pour indiquer clairement quelle extrémité ne doit pas être inséré dans la trachée (flèche, Figure 1).
  2. Placer une lame de laryngoscope Miller taille 0 ou 1 sur laryngoscope et vérifier que le voyant fonctionne.
  3. Dessiner 0,25 mL de lidocaïne à 2 % dans une seringue de 1 mL.
  4. Appliquer le lubrifiant stérile à l’extrémité d’une taille appropriée avec sonde endotrachéale (généralement de 2,5 à 4,0 mm ID).
  5. Préparer les fournitures pour fixation du tube endotrachéal en place dès qu’elle est insérée (par exemple, la bande ombilicale).
  6. Obtenir un appareil pour détecter les flux d’air à la fin de la procédure pour confirmer l’intubation réussie (n ° 5, Figure 1). C’est en option.

2. Anesthésie

  1. administrer l’anesthésie injectable, comme xylazine kétamine et 5 mg/kg de 35 mg/kg par voie intramusculaire à l’aide d’une seringue de 3 mL avec une aiguille de 25 calibre dans le muscle quadriceps de la jambe de derrière un environ 4 mois, 3.0-3.5 kg, New Zealand White lapin.
    Remarque : Ce schéma anesthésique est une combinaison injectable couramment utilisée chez le lapin jeune et en bonne santé, spécifique recherche exempts de micro-organismes pathogènes, mais d’après l’état clinique ou expérimentales objectifs, un protocole différent peut être plus approprié.
  2. Après le lapin est anesthésié, appliquez lubrifiant ophtalmique stérile pour les yeux pour préserver le tissu cornéen.

3. L’Intubation endotrachéale

  1. mesure la sonde endotrachéale d’incisives à la thoracique entrée pour déterminer la bonne longueur pour l’insertion de la sonde endotrachéale. Positionnement de l’extrémité du tube au niveau de l’entrée thoracique assure que l’ouverture du tube est passé le larynx mais crânienne à la bifurcation trachéale.
  2. La position sternally le lapin sur la table de préparation avec sa tête légèrement étendu sur le bord de la table ( Figure 2). Le lapin doit être positionné de la place avec la tête et la colonne vertébrale en alignement droit.
  3. Levant la tête, utilisez un tampon de gaze pour tirer le lapin ' s langue latérale au lapin ' incisives inférieurs droit de s (dans le diastème), prenant soin d’éviter le traumatisme de l’incisive.
  4. Saisir le laryngoscope et la lame de la main droite et placez-le dans la bouche derrière les incisives, entrant du lapin ' s gauche.
  5. Suivez le toit de la bouche avec la pointe de la lame en direction caudale jusqu'à ce que le palais mou est visible.
  6. Avec la main droite, astuce laryngoscope vers l’avant (flexion du poignet, tenant le laryngoscope vers le bas) tout en étendant le lapin ' s tête dos et le cou vers l’avant pour maintenir une voie aérienne ouverte et Découvre le larynx ( Figure 3 A). comme obligatoires reniflards nasales, l’épiglotte est souvent au-dessus du voile du palais, et utilisation de cette méthode compresse la base de la langue pour déplacer l’épiglotte et exposer la glotte. Pour éviter de désaturation en oxygène, il est important de garder le cou étendu tel que décrit pour maintenir une voie aérienne ouverte pendant l’intubation.
  7. La langue de sortie et passer la lame du laryngoscope à la main gauche afin de libérer la main droite pour le placement du cathéter-guide.
  8. Tout en tenant le laryngoscope et conservant la vision de la glotte ( Figure 3 B), faire avancer la pointe arrondie du cathéter-guide à travers l’ouverture au-delà du larynx ( Figure 4 ). Le cathéter viendra à un arrêt naturel à la bifurcation trachéale.
  9. Tout en conservant le maintien du cathéter-guide, saisir le tube endotrachéal et vissez-la sur le cathéter, en prenant soin de ne pas pour employer la force contre le cathéter par son interception sur le connecteur de la sonde endotrachéale. Avancer le tube jusqu'à ce qu’il y a résistance des cordes vocales ( Figure 5).
  10. Inculquer 0,25 mL de lidocaïne à 2 % dans l’ouverture du tube endotrachéal. La lidocaïne voyagera vers le bas du tube endotrachéal pour anesthésier localement les cordes vocales, empêchant le laryngospasme 22 ( Figure 6).
  11. Laisser environ deux minutes pour que l’anesthésie topique de prendre effet et aller de l’avant en tournant doucement la sonde endotrachéale, avançant à travers les cordes vocales ( Figure 7). Une fois que le tube a passé les cordes vocales, retirer la lame de laryngoscope et le cathéter, en prenant soin de ne pas pour déloger le tube.
  12. Verify placement du tube endotrachéal en observant le flux d’air. Il y a plusieurs façons d’y parvenir, y compris le placement d’un tissu ou une fourrure à l’extrémité du tube pour détecter le flux d’air, à la recherche d’embuage du tube ou buée d’un verre/miroir à la fin du tube et l’écoute pour circulation d’air. Des dispositifs conçus pour détecter les flux d’air 23 ou respirations peuvent également être utilisés ( Figure 8) pour déterminer si l’intubation était réussi (voir la Table des matières pour les options). Fixer la sonde endotrachéale en utilisant une méthode de choix, comme une bande ombilicale nouée autour du tube et de la tête. Fixez le circuit d’anesthésie et auscult les deux côtés du thorax tout en donnant aux respirations pour assurer une ventilation pour les deux parties du poumon.

Representative Results

À l’établissement de l’auteur, cette technique est généralement enseignée au personnel de laboratoire et de police sanitaire au cours de séances de formation sur la manipulation de lapin et les techniques d’anesthésie. Séances d’enseignement sont réalisées avec des animaux de formation dédiée. Le formateur montre la technique une fois et puis les stagiaires effectuent la technique sous la houlette de l’entraîneur. Stagiaires en général atteindre le succès dans les tentatives de 1-3. Après que qu’ils ont avec succès intubé le lapin dès que les individus sont tenus d’accomplir l’intubation une seconde fois et sont généralement en mesure d’intuber correctement le lapin à nouveau à la première tentative supplémentaire. Vos commentaires au cours de ces sessions de formation, en particulier émanant de particuliers qui ont été précédemment formés avec des techniques alternatives, constamment inclut des commentaires sur combien cette technique est facile à apprendre et à réussir.

Figure 1
La figure 1. Fournitures pour l’intubation endotrachéale : 1) Laryngoscope avec taille 0 ou 1 Miller lame du laryngoscope, bande 2) cordon ombilical (ou autres fournitures pour fixer la sonde endotrachéale), 3) 0,25 mL de lidocaïne à 2 %, 4) 5-Français polypropylène cathéter coupé à 8-10 pouces la fin non arrondies marqué avec un marqueur permanent pour indiquer clairement à quelle extrémité ne doit pas être insérée dans la trachée (flèche), 5) appareil détection débit d’air, 6) lubrifiant stérile à appliquer à l’extrémité distale du tube, 7) ballonnet sonde endotrachéale. S’il vous plaît cliquez ici pour visionner une version agrandie de cette figure.

Figure 2
Figure 2 : Positionnement sternal pour l’intubation endotrachéale. Le lapin est positionné en sternally avec les membres antérieurs prolongées jusqu'à la fin de la table. Les membres postérieurs sont étendus de retour, et tête du lapin est alignée avec la colonne vertébrale. La main gauche sert à élever la tête en extension, en préparation pour l’insertion de laryngoscope. S’il vous plaît cliquez ici pour visionner une version agrandie de cette figure.

Figure 3
Figure 3 : Insertion de laryngoscope. A) laryngoscope est inséré dans le diastème gauche à l’aide de la main droite, en suivant le toit de la bouche avec la pointe de la lame jusqu'à ce que le palais mou est visible. Une fois que le palais mou est visible, le laryngoscope est basculé vers l’avant tout en prolongeant la tête en arrière du lapin et du cou vers l’avant pour visualiser le larynx. B) visualisation du larynx. S’il vous plaît cliquez ici pour visionner une version agrandie de cette figure.

Figure 4
Figure 4 : Promotion du cathéter-guide. A) après le passage de la lame de laryngoscope à la main gauche, la main droite avance l’extrémité arrondie du cathéter-guide à travers l’ouverture au-delà du larynx. B) cathéter-guide est passé à travers les cordes vocales avec visualisation directe. S’il vous plaît cliquez ici pour visionner une version agrandie de cette figure.

Figure 5
Figure 5 : Avancement du tube trachéal. Le tube endotrachéal est enfilé sur le cathéter guide et est avancé jusqu'à ce qu’il y a résistance des cordes vocales. S’il vous plaît cliquez ici pour visionner une version agrandie de cette figure.

Figure 6
Figure 6 : l’instillation lidocaïne. Lidocaïne (2 %, 0,25 mL) est instillée dans l’ouverture du tube endotrachéal. S’il vous plaît cliquez ici pour visionner une version agrandie de cette figure.

Figure 7
Figure 7 : Avancement du tube endotrachéal. Deux minutes après l’instillation de la lidocaïne, la sonde endotrachéale est avancée en le tournant doucement à passer à travers les cordes vocales. S’il vous plaît cliquez ici pour visionner une version agrandie de cette figure.

Figure 8
Figure 8 : Vérification du débit d’air dans le tube endotrachéal. Un dispositif de détection de flux d’air peut être utilisé pour vérifier la circulation d’air dans le tube endotrachéal ou un miroir dentaire peut également être utilisé pour détecter la condensation de respirations indiquant l’intubation réussie. S’il vous plaît cliquez ici pour visionner une version agrandie de cette figure.

Discussion

Ici, nous fournir une description détaillée d’un lapin, technique d’intubation qui peut être facilement maîtrisé dans n’importe quel contexte clinique. Cette technique est similaire à la visualisation directe publiées antérieurement techniques10,15,20,25 avec quelques raffinements supplémentaires, y compris l’utilisation d’un tube endotrachéal ballonnet de 3,5 mm et un 5 Français sonde urinaire comme guident de nos élus, qui a été coupée et a marqué avec un marqueur permanent à l’extrémité coupée. La trachée de lapin est facilement sujette aux blessures et donc l’utilisation d’un tube endotrachéal avec est généralement recommandée lors d’intubation lapins d’éviter d’endommager la muqueuse trachéale à la pression du brassard. 26 le cathéter urinaire Français 5, nous avons choisi comme un guide est assez petit pour traverser facilement les plis vocaux sans obstruaient la vue lors de la visualisation directe du larynx. Tout petit, ce cathéter est suffisamment rigide pour rester en place comme un guide pour la sonde endotrachéale. L’extrémité distale du cathéter est arrondi pour aider à réduire les traumatismes lorsque la bifurcation est atteinte. L’extrémité proximale de la sonde est coupée afin que le cathéter est à une longueur utilisable (pas trop longtemps) et de supprimer la fin qui s’étend de pièce jointe à une seringue. L’extrémité coupée est marquée avec le marqueur permanent comme un indicateur visuel pour ne pas insérer cette extrémité dans la trachée, ce qui peut causer des dommages à la muqueuse trachéale.

La principale limite de cette technique est que, car elle ne nécessite pas l’utilisation d’une lame de laryngoscope, il ne serait pas faisable pour des lapins très jeunes ou très petites races en raison de la taille de la bouche. En outre, certaines installations peuvent avoir pas cette taille de lame de laryngoscope facilement disponible. À l’établissement de l’auteur, cette méthode est utilisée pour New Zealand White (6 semaines) et des lapins adultes Belted néerlandais, mais nous n’avons pas essayé cette méthode chez les animaux jeunes ou petites races. Dans les situations où le patient de lapin est faible, ou si un laryngoscope avec une petite lame de Miller n’est pas disponible, une autre option est d’utiliser un otoscope de poche plutôt que le laryngoscope. 15 , 20 à l’aide d’un otoscope avec un spéculum oreille #5, le larynx est visualisé, cathéter-guide est placé par visualisation directe et le spéculum est retiré avant de procéder suivant les mêmes étapes décrites ci-dessus.

Il est important d’utiliser beaucoup de soin, lorsque le guide cathéter est placé pour éviter de causer un traumatisme ou bronchospasme comme l’extrémité de la sonde passe dans la trachée et touche la bifurcation trachéale. Le risque de ces complications peut être réduit ou évité par nourrir le cathéter avec des mouvements très douces, s’arrêtant dès qu’il y a résistance et éviter les mouvements de la tête et le cou une fois le cathéter en place. En outre, lors de l’avancement du tube endotrachéal sur le cathéter, il y a le potentiel pour le cathéter attraper sur le connecteur de la sonde endotrachéale. Ainsi, il est important de s’assurer que le cathéter glisse à travers le connecteur sans attraper ; Alternativement, le connecteur peut être enlevé et remplacé lorsque vous fixez l’endotrachéal tube ou y attacher au circuit anesthésique.

Avec n’importe quelle méthode d’intubation, il y a le risque de complications et effets indésirables. À l’aide de la méthode de visualisation directe avec un laryngoscope, une mauvaise insertion de la lame du laryngoscope ou agressive placement du tube endotrachéal peut entraîner dans le larynx, langue, ou lésions des dents. Un positionnement correct de l’animal est la première étape critique dans la réduction des traumatismes pendant la visualisation du larynx. La colonne vertébrale doit être droite, avec la tête dans l’alignement direct avec la colonne vertébrale ; Si l’animal n’est pas droit, ou si le cou est tordu à gauche ou à droite, cela sera plus difficile la visualisation du larynx et peut entraîner un traumatisme excessif avec la lame du laryngoscope. Une autre critique clé du succès lors de l’utilisation de cette technique est de suivre le toit de la bouche vers le larynx et une fois que le palais mou est visualisé, passer la lame dans une bonne position de flexion au niveau du poignet. Ceci maintient la tête en place, tout en déplaçant l’extrémité de la lame en position de visualisation optimale des cordes vocales, qui se trouvent tout à fait ventrale dans le lapin20,24.

Parce que la visualisation directe du larynx peut être délicate si les techniques précis, que nous exposons ci-dessus ne sont pas respectées, l’utilisation de stratégies alternatives d’intubation ne nécessitant pas de visualisation du larynx peut être attrayante. Par exemple, la technique en aveugle est une option possible ne nécessitant pas utiliser d’un laryngoscope16,17,18,19,20. Cependant, cette technique repose sur la capacité de détecter les flux d’air par le biais de la sonde endotrachéale pour diriger la mise en place du tube, et si les respirations de l’animal sont très peu profonds ou arrêtée, l’utilisation de cette méthode n’est pas fiable. Supra-glottiques dispositifs peuvent également être considérés, depuis la mise en place de ces dispositifs ne nécessite pas de visualisation du larynx et ils sont généralement très faciles à placer. Ces dispositifs n’entrent pas directement dans la trachée, cependant et ainsi il est possible par manque de débit direct aux voies respiratoires, incapacité de ventiler si laryngospasme développe, manque d’un sceau assez serré pour la ventilation au cours de procédures thorax ouvert ou d’urgence réanimation et développement de tympany gastrique3,4,8. Nouveaux appareils spécifiquement conçus pour les lapins peuvent offrir une alternative prometteuse, mais davantage d’études est nécessaires pour évaluer ces dispositifs, et restent des préoccupations au sujet de l’absence d’entrée dans la trachée. Tympany gastrique peut aussi être une complication possible chez un animal intubé si le tube endotrachéal est accidentellement placé dans le œsophage ; Cependant, l’utilisation d’une technique de visualisation directe minimise le risque de cette complication en vérifiant le bon positionnement du cathéter-guide dans le larynx.

Traumatisme du cartilage et/ou trachéale des muqueuses est un autre problème potentiel lors de l’insertion d’une sonde endotrachéale, surtout lorsqu’à l’aide de gonflable cuffed tubes26,27,28. La trachée chez les lapins peut-être être facilement blessée, qui peut conduire à des complications telles que l’emphysème sous-cutané, pneumothorax et même la mort10,27,28,29. Lors de l’exécution de la technique que nous décrivons ici, il faut pour prévenir toute blessure trachéale par utilisation d’avec tubes endotrachéaux, assurant que l’extrémité arrondie du cathéter est insérée dans la trachée et ne pas forcer le cathéter guide dans la glotte. En outre, une sonde endotrachéale taille appropriée est d’une importance cruciale. Taille de la sonde endotrachéale doit être considéré comme contre la taille de l’animal, ainsi que par rapport à l’ouverture de l’entrée du larynx, car il est plus petit en diamètre que la trachée. Une sonde endotrachéale trop grande diamètre peut entraîner un traumatisme à la muqueuse du cartilage ou du cartilage. En revanche, l’utilisation d’un plus petit tube endotrachéal se traduit par la résistance accrue des voies aériennes et augmente les risques d’obstruction en raison de mucus ou de la pliure. Pour cette raison, surveillance respiratoire est très important chez les lapins intubés. En plus de l’oxymétrie de pouls, mesure du débit d’air doit être monitored avec Capnographie ; Si un capnographe est indisponible, moniteurs des voies respiratoires sont une alternative qui peut être utilisée pour détecter l’écoulement de l’air (mais ne prévoient pas de mesures du dioxyde de carbone expiré). En outre, la fourniture de l’assistance ventilatoire peut être précieuse, en particulier dans les cas où les tubes de diamètre plus petits sont utilisés24,30.

En plus des avantages déjà mentionnés d’utiliser cette technique, un autre avantage majeur de cette méthode est qu’elle peut être réalisée par une seule personne sans la nécessité d’une autre personne, qui peut être importante dans un contexte clinique bien remplie. Dans ce cas, il est important de rassembler toutes les fournitures nécessaires et faites-les à proximité pendant l’intubation, en particulier lorsque le cathéter-guide est en place et le mouvement de la tête doit être évitée.

La technique que nous décrivons ici est utilisée par le personnel vétérinaire et de la recherche dans notre établissement pour tous les intubations de lapin, qui s’élève à environ 200-400 intubations par an. Il est très facilement enseigné dans une session de formation d’anesthésie lapin typique, qui dure environ 30 minutes. Nous avons trouvé qu’il est relativement facile à apprendre, avec les étudiants à apprendre au sein de leurs 3 premières tentatives et généralement capable de répéter le processus avec succès dans la prochaine tentative supplémentaire. Pour la future étude, il serait utile de comparer le temps de la compétence et la capacité de maintenir la compétence au fil du temps pour que cette méthode par rapport aux autres techniques d’intubation. Tandis que ceci a été étudié pour des variations de techniques à l’aveugle16, une évaluation complète de la courbe d’apprentissage pour une grande variété de techniques d’intubation n’a pas encore été effectuée. Une autre orientation future potentielle d’étude pourrait comprendre en comparant l’intubation endotrachéale directe aux périphériques plus récents supra-glottiques spécifiques à l’espèce des voies respiratoires, notamment en matière de fonction au cours de la ventilation à pression positive.

En conclusion, la technique d’intubation de lapins que nous décrivons ici est non invasive, fiable, ne nécessite pas l’utilisation d’équipement spécialisé, est facile à maîtriser et peut être effectuée par une seule personne sans avoir besoin d’un assistant. Toutes les techniques d’accès des voies aériennes présentent un niveau de risque, mais en utilisant une technique de visualisation directe et en suivant les étapes décrites que ci-dessus, nous décrivons pour minimiser les complications, les risques sont largement compensés par les avantages d’avoir une voie aérienne adéquate pendant l’anesthésie.

Disclosures

Les auteurs n’ont rien à divulguer.

Acknowledgments

Les auteurs tiennent à remercier les employés et le personnel de recherche qui ont participé à des sessions de lapin de manutention et de la formation de l’anesthésie pour leurs commentaires tout en apprenant cette technique d’intubation.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Ketalar
Ketamine HCl Inj.
JHP Pharmaceuticals NDC 42023-113-10 35mg/kg IM in epaxial muscles or quadriceps muscle (preferred)
Anased
Xylazine (100mg/ml)
Lloyd Labs NADA #139-236 5mg/kg IM in epaxial muscles or quadriceps muscle (preferred)
Welch Allyn Laryngoscope Handle Welch Allyn 60300 Requires 2 size C alkaline batteries
Size 0 or 1 Miller Laryngoscope Blade Welch Allyn 68040
2.5 – 4.0 mm ID uncuffed endotracheal tube Jorgenson J0149V Suitable for 2.5-5 kg rabbits
3.5 mm most commonly used
Sovereign polypropylene catheter, 5 Fr x 22” Medtronic 8890703310 Cut to 8-10 inches
Mark the cut end with permanent marker to indicate which end not to insert
Lidocaine 2% HCL Inj VetOne L-2000-04
4-Ply Nonsterile, Bulk Packed Versalon Sponges (Gauze pads) Covidien KC9024A
Tape, Twill, Bleached ½” x 72 yds Encompass Textiles 48210-025 Used for securing endotracheal tube
HR Lubricating Jelly HR Pharmaceuticals 201 For lubricating endotracheal tube tip
Great Plains Ballistics: BAAM (Beck Airway Airflow Monitor) 22 BoundTree Medical 21410 For confirmation of successful intubation
Ambu Pediatric Co2 Detector AMBU INC 172713 For confirmation of successful intubation

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Quesenberry, K. E., Carpenter, J. W. Ferrets, rabbits, and rodents : clinical medicine and surgery. 3rd edn . , Elsevier/Saunders. (2012).
  2. Dugdale, A. Veterinary Anaesthesia: Principles to Practice. , Wiley-Blackwell. (2010).
  3. Yamamoto, Y., Inoue, S., Abe, R., Kawaguchi, M., Furuya, H. Airway management with the laryngeal tube in rabbits. Lab animal. 36 (5), 33-35 (2007).
  4. Belena, J. M., et al. Laryngeal mask, laryngeal tube, and Frova introducer in simulated difficult airway. J Emerg Med. 48 (2), 254-259 (2015).
  5. Smith, J. C., et al. Endotracheal tubes versus laryngeal mask airways in rabbit inhalation anesthesia: ease of use and waste gas emissions. Contemp Top Lab Anim Sci. 43 (4), 22-25 (2004).
  6. Kazakos, G. M., et al. Use of the laryngeal mask airway in rabbits: placement and efficacy. Lab Anim (NY). 36 (4), 29-34 (2007).
  7. Crotaz, I. R. Initial feasibility investigation of the v-gel airway: an anatomically designed supraglottic airway device for use in companion animal veterinary anaesthesia. Vet Anaesth Analg. 37 (6), 579-580 (2010).
  8. Bateman, L., Ludders, J. W., Gleed, R. D., Erb, H. N. Comparison between facemask and laryngeal mask airway in rabbits during isoflurane anesthesia. Veterinary Anaesthesia and Analgesia. 32 (5), 280-288 (2005).
  9. Johnson, D. H. Endoscopic intubation of exotic companion mammals. The veterinary clinics of North America. Exotic animal practice. 13 (2), 273-289 (2010).
  10. Tranquilli, W. J., Thurmon, J. C., Grimm, K. A., Lumb, W. V. Lumb & Jones' veterinary anesthesia and analgesia. 4th edn. , Blackwell Pub. (2007).
  11. Worthley, S. G., et al. Rapid oral endotracheal intubation with a fibre-optic scope in rabbits: a simple and reliable technique. Laboratory Animals. 34 (2), 199-201 (2000).
  12. Miranda, A., Pego, J. M., Correia-Pinto, J. Animal facility videoendoscopic intubation station: tips and tricks from mice to rabbits. Laboratory animals. , (2016).
  13. Irazuzta, J., Hopkins, J., Gunnoe, P., Brittain, E. Simple method of multipurpose airway access through percutaneous tracheostomy in rabbits (Oryctolagus cuniculus). Lab Anim Sci. 47 (4), 411-413 (1997).
  14. Bertolet, R. D., Hughes, H. C. Endotracheal intubation: an easy way to establish a patent airway in rabbits. Lab Anim Sci. 30 (2), Pt 1 227-230 (1980).
  15. Gilroy, B. A. Endotracheal intubation of rabbits and rodents. J Am Vet Med Assoc. 179 (11), 1295 (1981).
  16. Morgan, T. J., Glowaski, M. M. Teaching a new method of rabbit intubation. J Am Assoc Lab Anim Sci. 46 (3), 32-36 (2007).
  17. Inglis, S., Strunk, A. Rabbit anesthesia. Lab Anim (NY). 38 (3), 84-85 (2009).
  18. Falcao, S. C., Pereira Junior, J. R., Coelho, A. R. Technique of blind tracheal intubation in rabbits (Oryctolagus cuniculi) supported by previous maneuver of esophageal cannulization. Acta Cir Bras. 26 (5), 352-356 (2011).
  19. Su, H. P., et al. A miniature lighted stylet for fast oral endotracheal intubation in rabbits. Vet J. 195 (2), 254-256 (2013).
  20. Weinstein, C. H., Fujimoto, J. L., Wishner, R. E., Newton, P. O. Anesthesia of six-week-old New Zealand White rabbits for thoracotomy. Contemp Top Lab Anim Sci. 39 (3), 19-22 (2000).
  21. Stephens DeValle, J. M. Successful Management of Rabbit Anesthesia Through the Use of Nasotracheal Intubation. Journal of the American Association for Laboratory Animal Science. 48, 166-170 (2009).
  22. A Guidance on the Use of Topical Anesthetics for Naso/Oropharyngeal and Laryngotracheal Procedures. , U.S. Department of Veterans Affairs. (2006).
  23. Cook, R. T., Stene, J. K., Marcolina, B. Use of a Beck Airway Airflow Monitor and controllable-tip endotracheal tube in two cases of nonlaryngoscopic oral intubation. Am J Emerg Med. 13 (2), 180-183 (1995).
  24. Fish, R. E., Brown, M. J., Danneman, P. J., Karas, A. Z. Anesthesia and Analgesia in Laboratory Animals. , Elsevier. (2008).
  25. Gografe, S. I., et al. Successful management of long-term general anesthesia in rabbits used as an animal model of human disease. Contemp Top Lab Anim Sci. 42 (2), 16-19 (2003).
  26. Nordin, U. The trachea and cuff-induced tracheal injury. An experimental study on causative factors and prevention. Acta Otolaryngol Suppl. 345, 1-71 (1977).
  27. Phaneuf, L. R., Barker, S., Groleau, M. A., Turner, P. V. Tracheal injury after endotracheal intubation and anesthesia in rabbits. J Am Assoc Lab Anim Sci. 45 (6), 67-72 (2006).
  28. Grint, N. J., Sayers, I. R., Cecchi, R., Harley, R., Day, M. J. Postanaesthetic tracheal strictures in three rabbits. Lab Anim. 40 (3), 301-308 (2006).
  29. Squire, R., Siddiqui, S. Q., DiNunizio, G., Brodsky, L. Quantitative study of the tracheotomy and endotracheal intubation on the rabbit tracheobronchial tree. Ann Otol Rhinol. , (1990).
  30. Kumar, R. A., Boyer, M. I., Bowen, C. V. A reliable method of anesthesia for extensive surgery in small rabbits. Lab Anim Sci. 43 (3), 265-266 (1993).

Tags

Médecine numéro 129 Rabbit l’intubation endotrachéale anesthésie ventilation formation complications de l’intubation anatomie des voies aériennes de lapin
Intubation endotrachéale de lapins à l’aide d’un cathéter Guide en polypropylène
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Thompson, K. L., Meier, T. R.,More

Thompson, K. L., Meier, T. R., Scholz, J. A. Endotracheal Intubation of Rabbits Using a Polypropylene Guide Catheter. J. Vis. Exp. (129), e56369, doi:10.3791/56369 (2017).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter