Summary
在这里, 我们提出了检测人胰岛抗体的方法, 使用电化学发光 (ECL) 测定。该协议, 用于预测1型糖尿病, 可以扩大, 以检测自身抗体的其他自身免疫性疾病。
Abstract
精确定位与1型糖尿病 (T1D) 相关的胰岛自身抗体, 在一般人群中导致该疾病的投射和阻吓作用。新的微量液相检测是胰岛自身抗体具有较高的灵敏度和特异性比目前的 "金" 标准无线电结合检测 (澳大利亚)。通过对 RBAs 中产生的低风险、低亲和性自身抗体和常规酶联免疫吸附测定 (ELISA 法) 鉴别高风险、高亲和力的自身抗体, presymptomatic T1D 的发生更精确地定义了其发病。).本试验中使用的抗原蛋白分别标记为磺标记和生物素。每个使用特定抗原蛋白的 ECL 自身抗体检测都需要一个优化步骤才能用于实验室应用。这一步骤对于确定磺标记和生物素两种不同抗原的血清酸处理、浓度和比值的要求尤为重要。在磷酸缓冲液 (PBS) 中, 血清样本与磺标记共轭和生物素化捕获抗原蛋白混合, 含有5% 牛血清白蛋白 (BSA)。之后, 样品在4摄氏度一夜之间孵化。同一天, 链亲和素涂层板准备与阻滞剂缓冲和孵化过夜4摄氏度。第二天, 冲洗链亲和素板, 将血清抗原混合物转移到板上。将盘子放在平板振动筛上, 在低速时设置, 并在室温下孵育1小时。随后, 板再次清洗, 并添加读卡器缓冲区。然后将该板材计入板读机上。结果通过一个指数来传达, 这是由内部标准阳性和阴性对照血清样本产生的。
Introduction
最近建立了一个分期分类系统, 以协助诊断患者 T1D 的初始阶段。准确检测人胰岛自身抗体在识别和分期 presymptomatic 1 型糖尿病中起着重要作用, 因为胰岛自身抗体的存在表明β细胞自身免疫的存在。糖尿病对患者的影响, 从最初发生β细胞自身免疫到症状性疾病, 与胰岛自身抗体的数量和类型有关, 是可变的2,3。
胰岛自身抗体血清、效价和亲和性的年龄会影响症状1型糖尿病的进展率4,5,6,7,8 ,9,10。最近, 已开发的 ECL 检测得到了广泛的验证, 显示了更高的灵敏度, 并有更多的疾病特定的10,11,12,13。这些方法通过早期检测胰岛自身抗体来增强糖尿病风险的预测和分期。它们更准确地标记了胰岛自身免疫的启动, 忽略了与糖尿病无关的低亲和力和低风险信号。
在 ECL 检测中, 血清中的自身抗体, 如果存在, 将磺标记共轭抗原与生物素化捕获抗原结合在液相中。在桥接后, 生物素链接器被捕获在固相中, 并通过 ECL 检测到链亲和素涂层板上的磺标记(图 1)。
本研究主要利用人胰岛抗体的单抗体 ECL 测定。简要地介绍了基于单 ECL 检测的复用抗体检测方法。利用15µL 血清, 多项分析可用于在单井中识别多种、多达10种自身抗体。这种简单的高通量检测方法可用于在一般人群中同时筛选多种相关自身免疫性疾病的多种自身抗体。
Protocol
1. 缓冲准备
- 标签缓冲 (2x pbs, pH 值 7.9): 在400毫升的蒸馏去离子 (DD) 水, 添加100毫升的 10x PBS, 调整 pH 值为7.9 与氢氧化钠。
- 3毫米生物素: 将1毫克的生物素溶于588µL 的标记缓冲液中。
- 3毫米的磺标签: 在50µL 标签缓冲器中溶解 150 nmol 的磺标记。
- 抗原缓冲 (5% BSA): 500 毫升 1x PBS, 添加25克牛血清白蛋白 (bsa)。
- 准备0.5 米醋酸溶液。
- 1.0 米的三盐酸缓冲液 pH 值 9.0: 准备1米三盐酸缓冲液, 并将 ph 值调整为9.0 与 hcl。
- 涂层缓冲器 (3% 阻挡剂 a): 在500毫升 1x PBS 中, 添加 15 g 的阻滞剂 a。
- 洗涤缓冲器 (0.05% 吐温 20, PBST): 在5000毫升 1x PBS, 增加2.5 毫升的补间20。
- 读取缓冲区 (2x 读取缓冲 t 与表面活性剂): 在 DD 水的500毫升, 添加500毫升4x 读取缓冲 t 与表面活性剂 (材料表)。
- 储存生物素和磺标签在一个-20 °c 冰箱。
注意: 生物素和磺标签的解决方案应该总是在标签程序前刚准备好。
2. 用生物素和磺标记人胰岛 Autoantigen
注: 高浓度的抗原, ≥0.5 毫克/毫升, 建议更有效的标签反应。
- 测定人胰岛 autoantigen 对生物素和磺标记的摩尔比。
- 通过分子量除以抗原重, 获得抗原摩尔数。
- 使用1:5 的摩尔比的抗原与较小的分子量 (≤10 kd), 和摩尔比率为1:20 的抗原与较大的分子量 (> 50 kd)。
- 通过将摩尔数除以浓度, 计算生物素或磺标记的体积。
- 将人胰岛 autoantigen 与生物素或磺标记混合, 摩尔比为1:5。
注: 三种或甘氨酸缓冲系统中的蛋白质应使用 "上浆自旋" 柱, 用 pH 值为7.9 交换到 2x PBS 缓冲器。 - 由于生物素和磺标记是轻的敏感, 用铝箔覆盖反应管。在室温下 (RT) 孵育1小时的反应。
- 在孵化过程中, 通过将 2x PBS 缓冲区分配到三次柱中, 将自旋柱放在最上方。每一次离心溶液在 1000 x g 2 分钟。
注: 目前的标签反应, 通过衔接, 仍在发生, 需要停止。 - 通过纯化标记的人胰岛 autoantigen, 停止标记反应。要净化, 通过 autoantigen 通过旋转柱和离心机的列在 1000 x g 2 分钟。
- 用抗原蛋白的数量和最终体积确定标记抗原浓度 (µg/µL)。
注: 大致上, 每一个自旋柱通过后, 将有 90-95% 的标记抗原保留。 - 整除标记抗原和存储标记抗原在-80 °c。
3. 定义检测的两个标记抗原的最佳浓度和比值 (检查板检测)
- 准备两个血清样本, 一个高阳性和一个阴性, 总容积为每µL 200。
- 整除4µL 的血清和添加 1x PBS, 直到最终体积是20µL 每井96井 PCR 板。对高阳性样本使用半盘, 另一半用于负样本, 如图 2A所示。
- 添加10µL 的生物素和10µL 的磺标记抗原, 并对两种不同标记的抗原进行串行稀释, 如图 2A所示。对一个标记抗原进行水平序列稀释, 并对其他标记抗原进行垂直序列稀释。
- 继续其余的化验步骤, 在5.3 至9.1 所述。
- 根据图 2B中显示的阴性样本中的每个对应信号, 计算高阳性样本的信号比。
- 通过选择最高或接近阳性率为阴性的点, 确定生物素和磺标记抗原的最佳浓度。考虑从阴性样品的低背景信号, 以确定比例。
注: 化验日1包括步骤4至步骤6。
4. 用正确浓度的生物素/磺标记抗原制备抗原缓冲器
- 选择每个抗原的合理浓度的基础上检查板化验。
- 用生物素/磺标记抗原的合理浓度对抗原缓冲器进行3毫升抗原溶液的制备。
5. 用标记抗原孵化血清标本
注: 本节有两种协议, 一是无血清酸治疗, 一是血清酸治疗。除 iaa 检测外, 所有胰岛自身抗体的测定均采用常规的无血清酸治疗方法, 从步骤5.1 到 5.5, 而 iaa 检测跳过这些步骤, 并使用从步骤5.6 到5.9 的血清酸治疗的协议。
- 整除4µL 的血清和添加 1x PBS, 直到最终体积是20µL 每井96井 PCR 板。
- 每井加20µL 标记抗原溶液。
- 用密封箔覆盖 PCR 板以避免光线。
- 把盘子放在2小时的 RT 上 (低速)。
- 把盘子放在4摄氏度的冰箱里, 一夜之间孵化 (18-24 小时)。
注: 以下步骤从5.6 到5.9 的协议仅为 IAA 检测和其他自身抗体化验而设计, 跳过这些步骤。 - 将15µL 的血清与18µL 0.5 米醋酸的血清样品混合在一起。在 RT 中孵化这种混合物45分钟。
- 采用抗原缓冲剂, 在检测板检测的基础上, 利用生物素和磺标记抗原的合理浓度, 制备抗原溶液。在每一个井中, 整除35µL 抗原缓冲, 含有生物素和磺标记抗原, 进入新的 PCR 板。
- 在45分钟孵化 (步骤 5.6) 步骤完成之前, 增加8.3 µL 1 M 三 pH 9.0 缓冲到每个井的边在抗原板材 (步 5.6)。限制三缓冲器与抗原的混合是很重要的。立即转移血清的25µL, 用酸治疗, 在步骤 5.6, 入每个井并且鼓动解答。用密封箔覆盖 PCR 板以避免光线。
- 把盘子放在2小时的 RT (低速) 上, 把盘子放在4摄氏度的冰箱里, 让盘子在一夜之间孵化 (18-24 小时)。
6. 准备链亲和素板
- 从4摄氏度冰箱中取出一个链亲和素板, 让盘子进入 RT。
- 一旦链亲和素板在 RT, 增加150µL 3% 阻滞剂 A 对每个井。
- 用密封箔覆盖 PCR 板。
- 一夜之间在4摄氏度冰箱里孵化盘子。
注意:化验日2包括步骤7至步骤9。
7. 将血清/抗原潜伏转移到链亲和素板上
- 第二天, 从冰箱取出链亲和素板, 从盘子里扔掉缓冲器。把一些干纸巾放在桌子上, 把盘子倒在上面, 直到井内没有缓冲。
- 用150µL 的 PBST 填充空链亲和素板, 并将 PBST 从盘子中抹去, 共三洗涤。
- 将血清/抗原潜伏的30µL 转移至链亲和素板。
- 用箔盖住盘子以避免光线。在一个低的设置, 在 RT 1 小时摇动板。
8. 洗盘子, 添加读缓冲器
- 把潜伏从盘子里扔掉。添加150µL 的 PBST 每井, 并丢弃的 PBST 从板块总共三洗涤。
- 洗涤后, 增加150µL 每井的读数缓冲区。
注意: 在溶液中防止气泡是很重要的, 因为这会影响板读机上的平板读取方式。
9. 阅读板和分析数据
- 数一下板读机上的盘子。抗体值每秒显示为计数 (CPS)。
- 将从板读机接收到的抗体水平作为相对指数传递。从以下等式计算索引:
索引值 = [cps (示例)-cps (负控制)]/[cps (正控制)-cps (负控制)]。 - 确定阳性和阴性抗体结果使用的截止为阳性, 定义基于第九十九分百分100健康控制对象 (非糖尿病人没有任何已知的自身免疫性疾病和谁没有家庭病史的糖尿病)。
Representative Results
图 2显示检查器板。结果表明, 250 毫升的生物素和250磺标记抗原是最合理的浓度, 使用的检测信号从高阳性对照样品, 阴性对照样品作为化验的背景, 和比例正向负信号.通过对这两种标记抗原的优化浓度, 对100例新确诊的 T1D 和100健康对照组的血清标本进行了检测。0.023 的指数值被定义为阳性的检测截止。使用图 3A中所示的接收器操作特征 (ROC) 曲线, 这表示患者的85% 敏感度和健康控制中的99% 特异性。用内部标准高阳性、低阳性和阴性对照样品进行了未知样品的检测。CPS 计数的结果显示在表2A 中.高和低正则控制的平均 CPS 突出显示为红色、17903 [(19940 + 15866)/2] 和 839 [(857 + 820)/2], 负控制项以绿色、168 [(170 + 165)/2] 突出显示。未知示例的索引由 "(CPS示例-168)/(17903-168) 计算。表 2B显示所有示例的计算索引值。大于0.023 的索引值用红色编写, 对应于表 2A中也以红色编写的 CPS 值。这些值将被定义为大于健康控制人口的 99th百分比的正结果。当使用不合理的抗原浓度时, 该化验将有较高的背景, 如表 2C所示。在表 2D中以灰色突出显示的值 A2、A5、D1 和 H4 时, 会忽略低电平的阳性抗体。
图 1:在单个 ECL-IAA 检测上的双价板块捕获的图示.血清中的胰岛自身抗体将磺标记共轭抗原与生物素化捕获抗原结合在一起, 在链亲和素涂层板上的固相中捕获。通过 ECL 对磺标记共轭抗原进行检测。此图已从 Yu ( et al) 中修改。11.请单击此处查看此图的更大版本.
图 2: 用于确定检测阳性截止度的 ROC 曲线.选择了与85% 灵敏度对应的 99th位数, 并将其表示为0.023 的索引值。这个上限的化验是从100健康的控制。请单击此处查看此图的较大版本.
图 3:正常人血清阻断 ECL-IAA 信号的图示.A: 用胰岛素单克隆抗体 (摩押) 检测的来自 ECL-IAA 检测的信号被添加正常的人血清严重阻断. 比较在 PBS 中的摩押时, 当人血清用酸治疗时, 信号部分恢复。B: 用酸性疗法显著提高4例血清中的 ECL-IAA 检测信号。此图已从 Yu ( et al) 中修改。11.请单击此处查看此图的更大版本.
图 4:多重 ECL 检测的说明.抗体-抗原复合物在液相与特定连接器形成。在同一井中, 特定的抗体-抗原-链接器复合物在每个特定的连结点上都受到限制。板读机能够区分不同源点的信号, 分别给出10种不同信道的 CPS 计数。请单击此处查看此图的较大版本.
表 1: 检查器板检测确定生物素和磺标记抗原的浓度和比值.A: 原始 CPS 计数为检查板板与高阳性血清在一半的板材和阴性血清在另一半。生物素化抗原浓度在级数上呈水平稀释, 磺标记抗原浓度呈垂直稀释。B: cps 的比值值从阴性血清中的每个对应 cps 计数的高阳性血清计数。在 B 面板中, 黄色突出的井代表最佳的阳性比率。这个比例对应于 250 ng/毫升生物素和250磺标记抗原浓度在面板 A 与可接受的低 CPS 计数阴性血清。请单击此处查看此表的较大版本.
表 2: 化验结果分析.A: 原始 CPS 计数从化验盘与标准高和低正面控制突出红色和标准阴性控制突出显示在绿色。每个样品在化验中重复。B: 计算指数值, 如化验协议所述。任何大于0.023 的索引值都被定义为正结果, 以红色突出显示。C: 在使用非理性抗原浓度时, 原始 CPS 从检测盘中计数。这导致了较高的背景和一些通常检测到的低阳性, 如面板 B 所示, 被转换为底片, 在面板 D 中以灰色突出显示.请单击此处查看此表的较大版本.
Discussion
胰岛自身抗体是目前1型糖尿病自身免疫的最可靠的生物标志物。它们标志着胰岛特异性自身免疫的发生, 并确定显性疾病风险。对胰岛自身抗体的 ECL 检测在多国和国际1型糖尿病临床试验中得到了广泛的验证。与目前的 "金" 标准 RBAs 相比, 该检测显示出灵敏度和特异性的提高。通过对高亲和性和高危胰岛自身抗体的鉴别, 通过对澳大利亚央行产生的低风险、低亲和力的信号进行判别, 该方法已显示出其优越的优越性。这在只有单胰岛抗体阳性且从未进展为1型糖尿病的学科中尤为引人注目。这些低亲和性自身抗体的大部分被发现在后续的检测过程中丢失了数月到数年, 表现为 "瞬态阳性"。正如先前假设的, 这些低亲和力 ' 单 ' 抗体可能是由免疫与交叉反应分子。而较高的亲和性, 更高的风险胰岛抗体导致免疫与胰岛抗原本身。此外, ECL 检测已经表明有能力提前的时间, 从目前标准的无线电结合检测 (澳大利亚) 的儿童与糖尿病前, 谁被跟踪到临床糖尿病从出生。一个正在进行的国际临床试验, 糖尿病的环境决定因素, 年轻 (泰迪), 取决于准确的检测, 以确定的时间和外观的第一个胰岛自身抗体 ' 血清 ', 标志着胰岛的开始自身免疫和识别环境诱因。在 ECL 检测中增加灵敏度的一个可能的原因是, 该检测捕获所有免疫球蛋白类: igg、IgM、IgA 或 IgE, 而不是仅依靠检测 igg 的传统的澳洲联储或 ELISA。
在 ECL 化验中, 对于某些特定的自身抗体, 如 IAA, 抗体对抗原的约束力似乎被某些成分在正常的人血清中抑制。为了去除或释放这种抑制, 血清标本的酸性处理是必要的, 在血清的孵化与抗原。如 [图 5] 所示, ECL-IAA 测定法, 对小鼠胰岛素单克隆抗体和患者血清自身抗体与抗原的结合活性有很大的提高。血清样品的酸化, 用于抗体检测, 通常用于解除先前存在的束缚物的分离。在人体血清样品中如何抑制 IAA 信号并通过血清酸化释放的机理尚不清楚, 但此方法已用于其他基于 ECL 的检测14,15。
在一些情况下, 当标记分子, 无论是生物素或磺标记, 抗原蛋白分子的标记 positionsinside 在, 或非常接近抗体结合的关键表位, 这可能会干扰对抗体的结合活动。这将减少化验灵敏度, 并可以彻底撕掉化验。对于常规的标记程序, 每种抗原蛋白分子都需要最大化或饱和度, 通过最大限度地提高每个可能标记位置的标记能力来生成每个标记分子的最大活动或信号。不饱和标记应通过降低标记分子 (生物素和磺标记) 对抗原蛋白的摩尔比, 如果抗原标记成为可能的原因, 抗体结合活动中断。大多数情况下, 主要表位可以更好地保留, 并且可以使用不饱和标记策略释放抗体结合活动的中断。
每种化验都应包括一个内部标准的高正和负控制的指数计算未知样本。在检测的正常控制上限附近的低阳性控制是重要的, 包括监测检测灵敏度。实验室应保持足够整除数的标准阳性和阴性对照, 长期使用, 所有整除数应储存在-20 摄氏度。对于化验质量保证, 化验必须以重复的每一个样本, 每一个阳性结果应确认通过重复样品在一个单独的化验。第三种检测是必要的, 当第二验证性化验不同意第一次化验和两个化验结果, 其中同意 (e. g, +, + 或-,-), 将最终确定一个积极或消极的结果。
通过对单 ECL 检测平台的设置, 可对其进行复用分析。它可以同时确定多达10种不同的自身抗体在一个单井和少量血清。目前, 四个胰岛抗体, 包括 IAA、GADA、IA-2A 和 ZnT8A, 对于 T1D 患者和一般人群的亲属 T1D 进展的风险预测是同等重要的。使用目前单一的自身抗体测量来筛选这4种抗体的方法是费力和低效的, 尤其是大规模的人群筛查。重要的是, 多达40% 的 T1D 患者有额外的自身免疫状况16,17,18。不幸的是, 没有简单和廉价的工具来筛选这些条件。多路 ECL 试验不仅能够将4种目前主要的胰岛抗体检测结合在一起, 而且能够进一步结合其他相关自身免疫性疾病的自身抗体测定。这使得在大规模人群中同时有效地进行多种自身免疫性疾病的高通量筛选成为可能。在多路 ECL 检测中, 如 [图 6] 所示, 在液相形成的每个抗体-抗原复合体将被限制在同一井中的特定链接器源点。车牌读取器上的信号接收器能够识别来自10种不同源点的信号。然而, 具有极高信号的斑点可以产生高的分析背景, 并通过交叉谈话对相邻点造成干扰。因此, 每个抗体检测的上限信号应限制在少于2万的计数。在我们的经验中, 较低背景的自身抗体应放置在相对较远的地方, 在设计现场地图时有较高的计数。对于长期的研究使用多用途的 ECL 检测, 建议使用相同的抗体测定, 以保持该检测一致。
Disclosures
作者没有什么可透露的。
Acknowledgments
这项工作得到了 NIH 赠款 DK32083, JDRF 赠款 2-2015-51 Q R 的支持。
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Human recombinant proinsulin protein(PINS) | AmideBio | Human Proinsulin, Rec | |
| Human recombinant GAD65 protein | Diamyd | rhGAD65 | |
| Human recombinant IA-2 protein | Creative BioMart | IA2 | |
| 1x Phosphate Buffered Saline (PBS), pH 7.4 | Thermo Fisher Scientific | 10010-023 | |
| 10x PBS, pH 7.4 | Thermo Fisher Scientific | 70011-044 | |
| Bovine Serum Albumin (BSA) | SIGMA-ALORICH | A7906-500G | |
| 96-well PCR plate | Fisher | 14230232 | |
| Streptavidin coated plate | MSD | L15SA | |
| Zeba sizing spin column | Thermo Fisher Scientific | 89890 | |
| Twen-20 | Fisher | BP337-500 | |
| HCl | Fisher | A144-500 | |
| NaOH | Fisher | SS255-1 | |
| Trizma Base | Fisher | BP152-5 | |
| EZ-Link Biotin | Thermo Fisher Scientific | PI21329 | |
| Sulfo-tag | MSD | R91AO-1 | |
| Blocker A | MSD | R93AA-1 | |
| 4x Read Buffer T with Surfactant | MSD | R92TC-1 | |
| EZ-Link NHS-PEG4-Biotin | ThermoScience | 21329 | |
| Sulfo-TAG | MSD | R91AO-1 | |
| 96-well polymerase chain reaction (PCR) plate | Fisher brand | 14230232 | |
| 96-Well Streptavidin plate | MSD GOLD | L 15SA-1 | |
| Zeba Spin Desalting Column | ThermoScience | PL208984 | |
| 96-well Plate Shaker | Perkin Elmer | 1296-003 | |
| Plate Reader | MSD | QuickPlex SQ120 | |
| Benchtop centrifuge with bucket rotary | Beckman | Allegra X-15R |
References
- Insel, A. I., et al. Staging presymptomatic type 1 diabetes: a scientific statement of JDRF, the Endocrine Society, and the American Diabetes Association. Diabetes Care. 38 (10), 1964-1974 (2015).
- Atkinson, M. A., Eisenbarth, G. S. Type 1 diabetes: new perspectives on disease pathogenesis and treatment. Lancet. 358 (9277), 221-229 (2001).
- Atkinson, M. A., Eisenbarth, G. S., Michels, A. W. Type 1 diabetes. Lancet. 383 (9911), 69-82 (2014).
- Steck, A. K., et al. TEDDY Study Group. Predictors of progression from the appearance of islet autoantibodies to early childhood diabetes: The Environmental Determinants of Diabetes in the Young (TEDDY). Diabetes Care. 38 (5), 808-813 (2015).
- Krischer, J. P., et al. TEDDY Study Group. The 6 year incidence of diabetesassociated autoantibodies in genetically at-risk children: the TEDDY study. Diabetologia. 58 (5), 980-987 (2015).
- Achenbach, P., et al. Stratification of type 1 diabetes risk on the basis of islet autoantibody characteristics. Diabetes. 53 (2), 384-392 (2004).
- Achenbach, P., Bonifacio, E., Koczwara, K., Ziegler, A. G. Natural history of type 1 diabetes. Diabetes. 54 (Suppl. 2), S25-S31 (2005).
- Steck, A. K., et al. Age of islet autoantibody appearance and mean levels of insulin, but not GAD or IA-2 autoantibodies, predict age of diagnosis of type 1 diabetes: diabetes autoimmunity study in the young. Diabetes Care. 34 (6), 1397-1399 (2011).
- Achenbach, P., Koczwara, K., Knopff, A., Naserke, H., Ziegler, A. G., Bonifacio, E. Mature high-affinity immune responses to (pro)insulin anticipate the autoimmune cascade that leads to type 1 diabetes. J Clin Invest. 114 (4), 589-597 (2004).
- Yu, L., Dong, F., Miao, D., Fouts, A. R., Wenzlau, J. M., Steck, A. K. Proinsulin/insulin autoantibodies measured with electrochemiluminescent assay are the earliest indicator of prediabetic islet autoimmunity. Diabetes Care. 36 (8), 2266-2270 (2013).
- Yu, L., Miao, D., Scrimgeour, L., Johnson, K., Rewers, M., Eisenbarth, G. S. Distinguishing persistent insulin autoantibodies with differential risk: nonradioactive bivalent proinsulin/insulin autoantibody assay. Diabetes. 61 (1), 179-186 (2012).
- Miao, D., et al. GAD65 autoantibodies detected by electrochemiluminescence assay identify high risk for type 1 diabetes. Diabetes. 62 (12), 4174-4178 (2013).
- Yu, L. Islet Autoantibody Detection by Electrochemiluminescence (ECL) Assay. Methods Mol Biol. 1433, 85-91 (2016).
- Myler, H. A., McVay, S., Kratzsch, J. Troubleshooting PEG-hGH detection supporting pharmacokinetic evaluation in growth hormone deficient patients. J Pharmacol Toxicol Methods. 61 (2), 92-97 (2010).
- Zhong, Z. D., Dinnogen, S., Hokom, M., et al. Identification and inhibition of drug target interference in immunogenicity assays. J Immunol Methods. 355 (1-2), 21-28 (2010).
- Barker, J. M., Yu, J., Yu, L., Wang, J., Miao, D., Bao, F., et al. Autoantibody "subspecificity" in type 1 diabetes: risk for organ-specific autoimmunity clusters in distinct groups. Diabetes Care. 28 (4), 850-855 (2005).
- Triolo, T. M., Armstrong, T. K., McFann, K., Yu, L., Rewers, M. J., Klingensmith, G. J., et al. Additional autoimmune disease found in 33% of patients at type 1 diabetes onset. Diabetes Care. 34 (5), 1211-1213 (2011).
- de Graaff, L. C., Smit, J. W., Radder, J. K. Prevalence and clinical significance of organ-specific autoantibodies in type 1 diabetes mellitus. Neth J Med. 65 (7), 235-247 (2007).
