Summary
여기 선물이 비보에간 조직에 플라즈마 응고를 실험적으로 평가 하는 프로토콜. 돼지 모델에서 미세 레이저 도플러 검사, 응고 깊이 조직학 측정, 온도 적외선 온도계와 열감지 카메라와 덕트 씰링 효과 의해 응고 사이트에서 버스트 압력에 의해 문서화 실험입니다.
Abstract
플라즈마 응고 electrocautery의 형태로 나중 단계에서 출혈을 방지 하기 위해 주요 hepatectomy 후 큰 간 잘라 표면 밀봉 수십 년 간 수술에 사용 됩니다. 간 조직에 플라즈마 응고의 정확한 효과 가난 하 게 검사 합니다. 우리의 돼지 모델에서 응고 효과 임상 응용 프로그램에 가까운 시험 될 수 있다. 결합 된 레이저 도플러 유량 계 및 분 광 광도 계 문서 미세 변경 8 m m 조직 깊이에서 응고 하는 동안 noninvasively, 주관적인 임상 인상 넘어 hemostasis에 대 한 정량 정보를 제공 합니다. 응고 사이트에서 온도 응고 하는 동안 적외선 온도계 사전 및 사후 응고와 열감지 카메라 평가, 가스 빔 온도 측정 소자의 상한값 때문에 가능 하지 않습니다. 응고의 깊이 되며/오신 교정 후 개체 마이크로미터 섹션을 물 들일에 현미경으로 측정 되 고 전원 설정-응고 깊이 관계에 대 한 정확한 정보를 제공. 그것은 큰 혈관을 밀봉 하기 위하여 플라즈마 coagulator 불가능으로 씰링 효과 담 관에 시험 된다. 버스트 압력 실험 수행 됩니다 밖으로 배제 혈압 explanted 장기 효과 관련.
Introduction
아르곤 플라즈마 응고 (APC) 3 년간1,2보다 더 복 부 수술에서 널리 사용 되는 악기 이다. 그것은 이차 hemostasis의 성취에 대 한 표준 기술 간 씰링 하 여 주요 hepatectomy 잘라 나중 출혈3을 방지 하기 위해 표면. 플라즈마 응고는 이온화 가스의 아크를 통해 전기 에너지를 전달 하는 고주파 electrocautery의 특수 형태 이다. Monopolar electrothermal hemostasis, 제공이 비접촉 기술 조직4에 충실 하는 전극 방지의 이점이 있다. 이온화 가스 빔 자동으로 낮은 전기 저항 지역으로 이동 하 고 아직 포장해 다른 지역에 건조로 인해 저항 상승 때 멀리 설정 되어. 이 응고5,6의 균일 한 제한 된 깊이 생성합니다. 응고 효과 영향을 미치는 요소는 활성화 시간, 응고 장치 및 조직에는 프로브에서 거리의 전원 설정. 헬륨은 플라즈마 응고7사용할 수 있는 다른 캐리어 가스 이다. 최근 임상 연구에 집중된 임상 결과 보다는 조직학 및 기능적인 결과3,8,9, 체 외에서 조사10에 초점을 맞춘 실험 연구 하면서 또는 격리 끼얹는다 장기11에 실험.
기본 프로토콜 돼지에 인간 표준 장비를 사용 하 여 임상 응용에 가까운 큰 동물 모델에서 플라즈마 응고의 효과의 연구를 수 있습니다: 레이저 도플러 유량 계에 의해 미세 noninvasively 평가 및 분 광 광도 계,이 표시12,13표준 임상 도구입니다. 응고 하는 동안 온도 변화를 적외선 온도계와 열감지 카메라 모니터링 된다. 조직학 되며/오신의 조직 샘플의 수확 후 섹션 스테인드 응고의 깊이 측정 됩니다. 이차 hemostasis에 대 한 다른 방법 가진 비교에 대 한 파열 압력 실험 수행 됩니다. 앞에서 설명한 기법14, 달리 이러한 혈압 제외 explanted 장기에 실시 하는 효과 관련. 플라즈마 응고의 로컬 효과에 설명된 조사, 뿐만 아니라 돼지 모델에서 또한 표준 혈액 검사를 맡아 수 있다.
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Protocol
동물 연구로 원리의 실험실 동물 관리 (건강의 국가 학회 간행물 출간: 8, 2011 년) 독일 입법에 의해 경 세 하는 규칙을 따라 했다. 공식 허가 정부 동물 관리 사무실 (Landesamt 위한 Natur, Umwelt und Verbraucherschutz 노르 트 베스트 팔 렌, Recklinghausen, 독일)에서 부여 됩니다.
1입니다. 동물
- 열린 감 금 소에 여성 독일 landrace 돼지 (25-30 kg 무게)를 사용 합니다.
- 그룹 (아르곤과 헬륨) 당 5 동물을 사용 합니다.
- 실험 하기 전에 적어도 1 주일에 대 한 환경에 순응을 동물 허용. 물에 대 한 무료 액세스와 함께 수술 이전 24 시간에 대 한 빠른 동물.
2입니다. 마 취
- Premedicate 동물 마 취 제 (15 mg/kg 몸 무게 [BW]), xylazine (10 mg/kg BW), 및 아트로핀 (0.1 mg/kg BW) 근육 주사와 마 취의 유도 하기 전에 10 분.
- 주변 정 맥 접근 배치 22 게이지 정의 귀 정 맥에 의해 설정 됩니다.
- Propofol 2 mg/kg 체중의 i.v. 주입 하 여 전신 마 취를 유도.
- 부정사 위치에 동물을 놓고 2 cm. 피하 조직의 무딘 준비를 통해 정 맥 찾기의 길이 jugular 홈에 경도 피부 절 개를 수행 합니다. 정, 다음 Seldinger 와이어를 삽입 합니다.
- 정을 철회 하 고 가이드를 통해 14 백. 카 테 터를 삽입 합니다. 가이드 와이어를 철회. 카 테 터는 내선 번호로 연결 하 고 스트랩 또는 봉합 하 여 카 테 터를 흥분 시키는.
- 바로 후 두 경 삽입를 혀 밖으로 당기고. 풀 다운은 후두개는 후 두 경의 팁을 사용 합니다. 성 대를 통해 튜브를 삽입 합니다. Glottis 아래 갑을 놓고 팽창 합니다.
- 36와 42 mm Hg 사이 끝 갯벌 부분 탄소 이산화 긴장을 유지 하 20-26 호흡/min과 10 ml/kg의 해 일 볼륨에서 40% 산소로 환기.
- 1-1.5%의 농도에서 isoflurane와 3-4 µ g/k g/h의 농도에 펜타닐 마 취를 유지 합니다.
- 4 mL/kg의 초기 속도로 벨의 젖 산 솔루션 공급/h, 8 mL/kg의 일정 한 주입 속도에 개복 술 후 증가/h.
3. 수술 및 플라즈마 응고
- 표준 수술 테이블에 부정사 위치에 동물을 배치 합니다.
- 표준 외과 살 균 제를 적용 하 여 피부를 소독 (2-프로 판 올 45 g/100 g, 1-프로 판 올 10 g/100 g, 비페닐-2-ol 0.2 g/100 g) 3 번 수술 면봉으로.
- 메스와 액을 넓은 중간 선 개복 술 칼 프로세스에서 수행 하 고 외과 견인 기를 설치.
- 플라즈마 응고 장치에 스위치, 아르곤 또는 헬륨 가스 병 사용된 캐리어 가스에 따라 오픈. 원하는 대로 3 L/분 선택 응고 장치 출력 전력에 가스 흐름을 조정 합니다.
참고: 두 노블 가스, 아르곤 또는 헬륨, 플라즈마 응고에 대 한 사용할 수 있습니다. 응고 효과 비교할 수 있습니다. 자세한 내용은 참조7 를 참조 하십시오. - 앞에서 설명한7왼쪽된 간 엽에 플라즈마 응고를 수행 합니다. 티타늄 형 (사각 조리개 1 x 1 c m2)를 사용 하 여 응고 영역을 표준화. 5 응고 프로브 거리 1 cm의 s. 5 mm (그림 1)의 coagulations 사이의 짧은 거리와 다른 전원 설정을 coagulations는 수행할 수 있습니다.
- 간의 수확에 대 한 모든 인 대 연결 간을 나눕니다. 분리 하 고 문맥 및 일반적인 담 관의 긴 부분을 떠나 우수한 십이지 장 굴곡 위 간 작은 꽃 자루를 나눕니다. 위와 간 아래 caval 정 맥을 분할 하 고 기관 검색.
- 간, 수확 후 돼지 0.16 g/kg BW pentobarbital i.v. 관리에 의해 안락사 되었다.
- 버스트 압력 실험에 대 한 날카로운가 위 왼쪽된 중간 간 엽의 절반을 resect. 플라즈마 응고 컷 (100W 출력) 표면 또는 섬유 소 실 란 트 (그림 2)와 함께 잘라 표면 밀봉.
4. 미세 측정
참고: 레이저 도플러 분광학은 적혈구의 움직임으로 인 한 도플러 이동 측정을 통해 조직에 혈액 흐름을 확인할 수 있습니다. 레이저 신호 이동 적혈구의 수와 상관 한다. 레이저 도플러 분광학 임상 사용 (예: 이식 의학)과 여러 번15확인.
- 레이저 도플러 유량 계 및 분 광 광도 계에 전환 합니다. 플랫 프로브를 사용 합니다.
- 흐름 및 속도 대 한 기준 측정을 가져가 라. 저장 하거나 값을 확인 합니다.
- 3.5에서 설명 된 대로 응고를 수행 합니다.
- 응고 사이트 및 측정 흐름 및 속도에 플랫 프로브를 배치 합니다. 다시 저장 하거나 값을 참고 합니다.
- Coagulator 장치의 모든 전원 설정에 대 한 반복 합니다.
5. 온도 측정
- (열감지 카메라, 노트북, 및 적외선 온도계)에 시스템을 전환 하 고 측정을 수행 하기 전에 적어도 1 시간 동안 실행 하자.
- 초점을 조정 하 고 응고 사이트에 열감지 카메라에 프레임을 봅니다. 20 보다 더 큰 온도 해상도 1024 x 768 픽셀의 해상도와 적외선 시퀀스를 검출 될 수 있다 mK. 고려, 그 응고와 주변 조직의 지역-열 전달에 의해 영향을-보기 중간에 위치 하 고 있습니다.
참고: 그것은 가능한 최적 공간 해상도 대 한 프레임의 픽셀을 포함 해야 합니다. - 2 분 동안 열감지 카메라와 함께 간 표면에 플라즈마 coagulator과 응고 과정을 기록 합니다.
- 온도 기록 분석 소프트웨어와 함께 이미지 시퀀스 분석: 관심의 영역을 정의.
참고: 소프트웨어 시간 해당 평균 온도 과정을 계산합니다.
6. 응고 깊이 측정
- 날카로운가 위 왼쪽된 중간 간 엽 수확.
- 1 cm 두께가 응고 사이트를 삭제할. 추가 처리를 위해 3 m m 두꺼운 경도 세그먼트를 잘라.
- 밤새 중립 10%와 4 ° C에서 수정 조직 샘플 버퍼링 말린. 열 용융 점 이상 2 ° C 파라핀 하 고 분할 영역을 포함. 프로세스 하룻밤입니다.
- 되며/오신 얼룩을 수행 합니다.
- Deparaffinize 및 이후 2에 담거 서 조직을 수 화 x 크 실 렌, 100% 에탄올 (EtOH), 95 %EtOH, 70 %EtOH, 이온된 H2O 2 분.
- 3 분 위한 마이어의 되며 솔루션 조직 샘플을 얼룩.
- 이제 5 분 동안 수돗물에 씻어.
- 3 분 오신 솔루션 조직 얼룩.
- 3 분 2 x EtOH 95% 그리고 크 실 렌에 린스. 표준 설치 매체와 함께 탑재.
- (현미경 연결 된 카메라, 이미징 소프트웨어)에 시스템을 전환 합니다. 40 X 확대와 함께 모든 섹션을 보기.
- 40 X의 확대는 개체 마이크로미터의 이미지를 가져가 라. 재조정 목표 창에서 버튼을 누릅니다. 수동 보정을 선택 합니다. 100 µ m. 대화 상자에서 m m 입력 0, 1 마이크로미터 이미지에 라인을 그릴 하 고 확인을 누릅니다.
- 보기에서 길이 선택 > 분석 컨트롤 > 주석 및 측정 창. 마우스로 응고 여백에 간 표면에서 측정 합니다. 내보내기 또는 결과 참고. 같은 슬라이드에 다른 위치에 측정을 반복 합니다.
참고: 응고 깊이 쉽게 정상적인 hepatocyte 코드와 수축 된 세포질, pyknotic 핵 및 출혈 영역 괴의 영역 사이의 날카로운 차이로 정상적인 간 조직에서 분화 될 수 있다. - 두 측정의 평균을 계산 합니다.
7. 버스트 압력 측정
- (자동 펌프, 압력 미터)에 시스템을 전환 합니다. 3.7 단계에 따라 간 견본을 준비 합니다.
참고: 3-방법-자 지를 통해 연결 된 두 개의 병렬 펌프를 사용 합니다. 1500 mm Hg의 최대 압력은 단일 펌프와 함께 얻을 수 없습니다. - 햅 틱 작은 꽃 자루가 위 문맥, 일반적인 간 동맥 및 담 즙 덕트를 격리 합니다. 문맥 overholt 집게와 클램프와 monofil 봉합 4-0와 선. 일반적인 간 동맥 overholt 집게를 죄 십시오 그리고 monofil 봉합 4-0와 선.
- 일반적인 담 관으로 채널 16 카 테 터를 삽입 하 고 2-0 비단 봉합 사로 선. 자동 펌프 카 테 터를 연결, 압력 미터 (그림 3)와 함께 3 자 지를 설치 합니다.
- 식 염 수로 관류 주사기를 채우십시오.
- 99 mL/h의 배달 속도와 자동 펌프를 시작 합니다.
- 버스트 압력 누설 및 기록에 대 한 잘라 간 표면과 압력 미터를 모니터링 합니다.
참고: 누설의 더 쉬운 인식을 위해 특허 블루는 식 염 수 (2 mL 특허 블루 + 18 mL 식 염 수)을 추가할 수 있습니다. 버스트 압력 압력 미터에 압력의 손실의 시간을 주의 하 여 관찰 하는 것이 쉽습니다.
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Representative Results
미세: 플라즈마 응고 다음 hemostasis 위한 진단 장치를 활용 하 여 미세 혈관 변화에 의해 설명할 수 있습니다. 142.7 ± 76.08의 기준 값에서 모 세관 혈액 흐름 (임의의 단위 (AU)로 표시) 감소 57.78 ± 49.57 하는 누구나 48.5 ± 7.26에 25 W 장치 출력 전력, AU AU 50 W와 5.04 ± 1.31 AU 100 W (그림 4).
온도: 열감지 카메라 (그림 5)와 함께 응고 사이트에서 온도 측정 했다. 단지 사소한 온도 변화를 적외선 온도계로 문서화 되었다. 그것은 보여주었다 32.42 ±의 기준 온도 2.27 ° c. 25 W 응고, 후 온도 33.33 ± 1.81 ° c. 50 W 레이저로 응고 나왔고 31.17 ±의 온도 2.13 ° c. 100 W의 최대 전원 설정으로 응고, 후 온도가 아니었다 주로 30.17 ± 3.19 ° C (그림 6)으로 변경.
응고 깊이: 플라즈마 응고 수 괴의 표면 영역을 만듭니다 (그림 7) 정상적인 간 실질에서 쉽게 구분할 수. 괴의 깊이 여러 부분에서 측정 될 수 있다 하 고 플라즈마 coagulator의 상승 전력 레벨을 완전히 선형 증가 보여줍니다. 헬륨 플라즈마 응고, 응고 깊이 25W에서 230.2 ± 57.83µm, 50 W, 75W에서 292.2 ± 45.65 µ m와 100 W 장치 출력 전력 (그림 8)에서 412.9 ± 160.9 µ m에서 314.6 ± 87.39 µ m입니다. 출력 전력 소자의 자유롭게 선택 될 수 있다 그리고 응고 깊이7긍정적인 상관 관계를 선택 했다.
파열 압력: 버스트 압력 측정 실시 explanted 왼쪽된 중간 간 엽 쇼의 절단된 표면에 차이가 헬륨 (1254±578.7 mmHg) 또는 아르곤 (1003 ± 554.4 mmHg) 플라즈마 응고 (그림 9). 버스트 압력 섬유 소 밀봉7 에 비해 낮은 하지만 임상 사용에 대 한 적절 한 것.
그림 1: 아르곤 플라즈마 응고 후 왼쪽된 중간 간 엽. 왼쪽된 중간 간 엽에 8 개의 응고 사이트 (위에서 왼쪽 오른쪽 하단: 10 승, 15 승, 20 승, 25 승, 30 W, 50 W, 75 W, 100 W). 응고는 형 표준화의 범위입니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.
그림 2: 버스트 압력 측정을 위한 간 이식의 준비. 간 엽의 절반은 절제, 그리고 간 잘라 표면 섬유 소 실 란 트로 밀봉 된다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.
그림 3: 버스트 압력 측정을 위한 장비. 자동 펌프 (식 염 수로 채워진 주사기) 및 압력 미터 3-방법-자 지를 통해 연결 된. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.
그림 4: 미세 변화. 앞에 변화 혈액 흐름 (임의의 단위로 표시)과 25 W에서 아르곤 플라즈마 응고, 후 50 W와 100 W 장치 출력 전력 (n = 3-6). P를 = < 0.05, 1 방향 배치법. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.
그림 5: 열감지 카메라와 함께 응고 사이트에서 온도 측정. 40W 장치 출력 전력으로 헬륨 플라즈마 응고 동안 열감지 카메라와 함께 모범적인 그림. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.
그림 6: 응고 사이트에서 온도 적외선 온도계로 측정. 아르곤 플라즈마 응고 전후 응고 사이트에서 온도 적외선 온도계로 측정 (n = 3-6). 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.
그림 7: 헬륨 플라즈마 응고 다음과 같은 피상적인 괴의 영역. 되며/오신 스테인드 40 X 확대 간 섹션. 괴의 영역에서 수축 된 세포질과 출혈 영역 셀 hepatocyte 코드 아키텍처의 손실을 보여줍니다. 화살표는 두 개의 서로 다른 위치에 응고의 깊이 나타냅니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.
그림 8: 응고 깊이 헬륨 플라즈마 응고 다음. 다른 전력 레벨에서 응고 깊이 (25W, 50W, 75W, 100W, n = 6). P를 = < 0.05, * * * = P< 0.001, 1 방향 배치법. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.
그림 9: 파열 압력. 다음 중 아르곤 또는 헬륨 플라즈마 응고 간 잘라 표면에 압력 측정을 버스트. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.
그림 10: 혈액 검사 결과. 임상 생화학과 혈액 가스 결과 전에 표시 됩니다 및 다음 아르곤 플라즈마 응고 매개 변수를 선택 합니다. 플라즈마 응고 응고 사이트에서 로컬 변경 제한의 영향을 보여주는 중요 한 변경 발생 합니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.
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Discussion
설치류 모델 간 수술에 대 한 오랜 시간16에 대 한 설정 됩니다. 그럼에도 불구 하 고, 큰 동물 모델 특정 이점을 제공:로 적용할 수 있는 인 간에 대 한 표준 수술 장비, 수술 기법 비교 임상 사용 표준 임상 평가 방법 수 없음 microsurgical 장비 필요 전송 실험. 예를 들어 표준 임상 혈액 검사 특별 한 실험실 테스트 방법 (그림 10)에 대 한 필요 없이 수행할 수 있습니다.
돼지는 심폐 연구에 대 한 적절 한 실험실 동물 그들의 생리학에 대 한 유사 인간17. 크기, 단편 구조 및 조직학 유사성 때문에 돼지는 또한 실험적인 간 수술18에 대 한 표준 실험실 동물 중 하나. 플라즈마 응고는 혜택 (유사 인간 생리학 및 표준 임상 장비 평가)7때문에 돼지 모델에서 평가 되었습니다. 수술 기술, 달리 anesthesiologic 관리는 쉽게 추정 될 수 없습니다. 특히 기도 관리 어려운17일 수 있다. 앞 니의 거리는 glottis 매우 긴 이며 해부학 경험이 연구원에 대 한 orotracheal 삽 관 법을 어렵게 하는 인 간에 게 다르다. 또한, 마스크 환기 불가능 거의 돼지, 그래서 복구 전략 (예: tracheostomy) 존재 해야 합니다.
플라즈마 응고에 대 등 한 결과 얻기 위해 연구원 엄격 하 게 조사 거리 및 응고의 기간 표준화에 관심을 취해야 한다. 스톱 워치 5를 사용할 수 있습니다 조사 거리를 유지 하기 상대적으로 쉬운 반면 응고의 s. 간 표면에 플라즈마 응고의 설명된 기술 간 vivo에서7에 플라즈마 응고의 기본 효과 대 한 기본 연구에 사용 되었다. 돼지 마 취, 수술, 그리고 플라즈마 응고의 위 설명 된 기술은 사용할 수 있습니다 또한 주요 간 절제를 확인 하 고 잘라 표면 그 후 씰링의 서로 다른 기법을 비교를.
레이저 도플러 유량 계 및 분 광 광도 계 미세 측정을 위한 표준 임상 도구19 이며 기관 실질에 직접 순환의 평가 대 한 매우 유용한 것으로 판명. 혈 및 혈액 흐름 속도 대 한 값은 비 invasivity의 계산 됩니다. 미세 매개 변수가 되므로 응고 효과의 간접 측정 도플러 측정 응고에 대 한 객관적인 매개 변수 연관 되어야 한다. 우리의 실험에서 우리는 상관 관계에 대 한 조직학 응고 깊이 사용.
온도 측정의 단점 두 소자의 상한값 이상 플라즈마 빔의 온도 때문에 응고 하는 동안 플라즈마 빔의 온도 측정 하는 무 능력 이다. 온도계는 적외선 열감지 카메라 설치는 더 복잡 하지만 더 정확한 데이터를 제공 하는 반면에, 적용 하기 쉽습니다. 기준 온도 (돼지 몸 온도 ~38.5 ° C17), 예상 보다 낮은 응고 되기 전에 체온에 개복 술의 파괴적인 효과 시연. 응고, 간 우수한 관류를 보여주는 동안 전후 측정된 온도가 증가 하지 않습니다. 간이 열 훔쳐 효과 무선 주파수 제거20에서 알려져 있다. 버스트 압력 관리 보다 간 혈관 담 즙 덕트 시스템에 간단한 이유를 위한 실시 했다: 그것 불가능 하다 플라즈마 coagulators에 대 한 (그것은 섬유 소 밀봉) 큰 용기를 밀봉 하기 위하여. 이차 hemostasis의 두 수단 더 큰 배는 절제 하는 동안 출혈 하는 동안 절제 장기의 절단된 표면 인감. 우리의 버스트 압력 실험 약간 보고 기술14에 비해 수정 했다. 우리 조직의 이유로 explanted 장기 파열 압력 측정. 이러한 혈압으로 효과 관련 규칙과 끼얹는다 사용 또는 vivo에서 장기 보다 적용 하기는 매우 쉽다. 실험에서 따라서, 다 수, 압력의 값 끼얹는다/변경된 간 때문에 비보 측정 구조 (보통 더 높은 압력 explanted 기관에). 위에 설명 된 파열 압력 기술 수행된 비보를 수도 있습니다.
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Disclosures
저자는 공개 없다.
Acknowledgments
저자 아무 승인 있다.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Xylazine 20 mg/mL | Vetoquinol GmbH | Xylapan | |
| Ketamine 100 mg/mL | Ceva GmbH | Ceva Ketamine Injection | |
| Atropine 100 mg / 10 mL | Dr. Franz Köhler Chemie GmbH | Atropinsulfat Köhler 100mg Amp. | |
| Propofol | Fresenius Kabi GmbH | Propofol 1% MCT Fresenius | |
| Fentanyl | KG Rotexmedica GmbH | Fentanyl 0,5mg Rotexmedica | |
| Isoflurane | Abbot GmbH | Forene 100% (V/V) 250 mL | |
| Ringer's lactate solution | Baxter Deutschland GmbH | sodium 131mmol/l, potassium 5 mmol/l, calcium 2 mmol/l, cloride 111 mmol/l, lactate 29 mmol/l | |
| Surgical disinfactant | Schülke & Mayr GmbH | Kodan Tinktur forte gefärbt 1l 104804 | |
| Motorized microscope | Nikon Instruments Europe | Eclipse TE2000-E | |
| Microscope camera | Nikon Instruments Europe | Digitalsight DS-Qi1Mc | |
| Imaging software | Nikon Instruments Europe | NIS elements Vers. 4.40 | |
| Plasma coagulator | Söring GmbH | CPC-1000 | |
| Argon gas | Linde AG | Argon 4.8 | |
| Helium gas | Linde AG | Helium 4.8 | |
| O2C | LEA Medizintechnik GmbH | O2C Version 1212 | with LF-2 or LF-3 probe |
| Infrared thermometer | Voltcraft | VOLTCRAFT IR 260-8S | |
| Thermographic camera | InfraTec GmbH | VarioCAM HD head 820 | |
| Thermographic analysis software | InfraTec GmbH | IRBIS 3 | |
| Mayer's Hematoxylin solution | Merck 1.09249 | ||
| Eosin solution | VWR International GmbH | Merck 1.09844 | |
| Rollerpump Masterflex L/S easy Load | Cole-Parmer Instrument Company | model 7518-10 | |
| Perfusorpump | B. Braun Melsungen AG | Perfusor secura FT | |
| Digital pressure meter | Greisinger electronic | GMH 3161 | |
| Perfusorsyringe, 50 mL | B. Braun Melsungen AG | REF 8728810 F | |
| Perfusor line, Type IV Standard, PVC Luer lock | B. Braun Melsungen AG | REF 8722960 | |
| 3-Way stopcock, Dicofix C35C | B. Braun Melsungen AG | REF 16494 C | |
| Silk 2-0. 3 metric | Resorba | REF H5F | |
| Vicryl 4-0 Sutupak | Ethicon | V1224H | |
| NaCl 0.9 % | B. Braun Melsungen AG |
References
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