Summary
Här presenterar vi ett protokoll för att experimentellt bedöma plasma koagulering i levervävnad i vivo. I en svin modell, mikrocirkulationen undersöks av laser Doppler, koagulation djup mäts histologiskt, temperaturen vid koagulation platsen med infraröd termometer och Termografiskt kamera och kanalen tätning effekt dokumenteras av bristningstryck experiment.
Abstract
Plasma koagulation som en form av diatermi används i levern kirurgi i årtionden för att försegla stora levern snittytan efter stora hepatectomy att förhindra blödningar i ett senare skede. De exakta effekterna av plasma koagulation på levervävnad undersöks endast dåligt. I vår svin modell, kan koagulation effekterna undersökas nära den kliniska tillämpningen. En kombinerad laser Doppler flödesmätare och spektrofotometer dokument mikrocirkulationen ändras under koagulering på 8 mm vävnad djup noninvasivt, kvantifierbara informera om hemostas bortom subjektiv kliniska intrycket. Temperaturen vid koagulation webbplatsen bedöms med en infraröd termometer före och efter koagulering och med en Termografiskt kamera under koagulering, en mätning av gas beam temperaturen är inte möjligt på grund av övre tröskelvärdet på enheterna. Djupet av koagulering mäts mikroskopiskt på hematoxylin/eosin färgade sektioner efter kalibrering med ett objekt mikrometer och ger en exakt information om power inställning-koagulering djup-relationen. Försegla effekten undersöks på gallgångarna eftersom det inte är möjligt för en plasma coagulator att täta större blodkärl. Burst trycket experiment bärs ut på explanterad organ att utesluta blodtryck relaterade effekter.
Introduction
Argon plasma coagulation (APC) är en allmänt använd instrumentet i bukkirurgi för mer än tre decennier1,2. Det är en standardiserad teknik för prestationen av sekundär hemostas efter stora hepatectomy av tätning levern skära yta för att förhindra senare blödningar3. Plasma koagulation är en specialiserad form av radiofrekvent diatermi, som ger elektrisk energi genom en båge av joniserad gas. Att ge monopolär elektrotermiska hemostas, har denna beröringsfri teknik fördelen av att förhindra elektroden att hålla sig till den vävnad4. Joniserad gas strålen riktas automatiskt till området för lägsta elpatron och vänds bort när motstånd stiger på grund av uttorkning till andra områden som ännu inte uttorkad. Detta ger en enhetlig begränsat djup koagulering5,6. Faktorer som påverkar effekten koagulation är aktiveringen tid, energiinställningen koagulering och avståndet från sonden till vävnaden. Helium är en annan bärgas, som kan användas för plasma koagulering7. Senaste kliniska studier koncentrerat på kliniska resultat i stället för histologiska och funktionella resultat3,8,9, medan experimentella studier fokuserat på in vitro- undersökningar10 eller experiment på isolerade perfunderade organ11.
Underliggande protokoll tillåter studier av effekterna av plasma koagulation i en stor djurmodell nära kliniska programmet med hjälp av mänskliga standardutrustning på svin: mikrocirkulationen bedöms noninvasivt av en laser Doppler flödesmätare och spektrofotometer, som är en standard kliniska verktyg för denna uppgift12,13. Temperaturförändringar under koagulering övervakas med en infraröd termometer och en Termografiskt kamera. Djupet av koagulering mäts på histologiska hematoxylin/eosin färgade sektioner efter skörd av vävnadsprover. För jämförelse med andra medel för sekundär hemostas utförs sprack trycket experiment. I motsats till tidigare beskrivna tekniker14, genomförs dessa explanterad organ att utesluta blodtryck relaterade effekter. Utöver de beskrivna undersökningarna om de lokala effekterna av plasma koagulering, kan standard blodprover också ske i svin-modellen.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
Regler regleras av tysk lagstiftning för djurstudier liksom principerna av laboratorium djur vård (National Institutes of Health publikation ed. 8, 2011) följdes. Officiellt tillstånd beviljas från statliga djurvård kontoret (Landesamt für Natur, Umwelt und Verbraucherschutz Nordrhein-Westfalen, Recklinghausen, Tyskland).
1. djur
- Använd kvinnlig tysk lantras svin (väger 25-30 kg) inrymt i öppna burar.
- Använd 5 djur per grupp (argon och helium).
- Att djuren acklimatisera sig till omgivningen för minst en vecka innan experimenten. Snabb djur för 24 h före operation med fri tillgång till vatten.
2. anestesi
- Premedicate djuren med en intramuskulär injektion av ketamin (15 mg/kg kroppsvikt [BW]), xylazin (10 mg/kg BW) och atropin (0,1 mg/kg BW) 10 min före induktion av anestesi.
- Perifer venkateter etableras genom placering av en 22 gauge kanyl i ett öra ven.
- Framkalla narkos som i.v. injektion av propofol 2 mg/kg kroppsvikt.
- Placera djuret i ryggläge och utföra en längsgående huden snitt i jugular spåret över en längd av 2 cm. Leta upp ven genom trubbiga utarbetandet av den subkutana vävnaden. Infoga kanyl, sedan Seldinger tråd.
- Tillbaka kanylen och infoga 14 Fr. katetern över ledaren. Dra tillbaka ledaren. Anslut katetern till förlängningen och fixera katetern med en rem eller en sutur.
- Dra ut tungan och infoga raka laryngoskop. Använd spetsen på laryngoskopet dra ner struplocket. För in röret genom stämbanden. Placera manschetten under glottis och blåsa.
- Ventilera med 40% syre vid 20-26 andetag/min och en tidal volym på 10 ml/kg för att hålla end-tidal partiell carbon dioxide spänningen mellan 36 och 42 mm Hg.
- Underhålla anestesi med isofluran vid en koncentration på 1-1,5% och fentanyl vid en koncentration på 3-4 µg/kg/h.
- Leverera Ringer laktat lösning med en initial hastighet på 4 mL/kg/h, och öka efter laparotomi till en konstant infusionshastighet på 8 mL/kg/h.
3. kirurgi och Plasma koagulation
- Placera djuret i ryggläge på ett standard operationsbord.
- Desinficera huden genom att tillämpa en standard kirurgiska desinfektionsmedel (2-Propanol 45 g/100 g, 1-Propanol 10 g / 100g, bifenyl-2-ol 0,2 g/100 g) med en kirurgiska kompress för 3 gånger.
- Utföra ett brett mittlinjen laparotomi från xiphoid process till pubis med en skalpell och installera kirurgiska upprullningsdon.
- Slå på plasma koagulering enheten, öppna argon eller helium gas flaska, beroende på den använda bärgas. Justera gasflödet till 3 L/min. Välj koagulering enhet uteffekt som önskas.
Obs: Båda ädelgaserna Argon eller Helium, kan användas för plasma koagulation. Koagulering effekterna är jämförbara. Se referens7 för detaljer. - Utföra plasma koagulation på den vänstra lever loben som tidigare beskrivna7. Använda en Titan mögel (fyrkantig bländare 1 x 1 cm2) för att standardisera zonen koagulering. Koagulerar för 5 s med en sond avstånd på 1 cm. Koaguleringar med olika inställningar kan utföras sida vid sida med kort avstånd mellan koaguleringar 5 mm (figur 1).
- För skörd av levern, dela alla ligamentskador anslutningar till levern. Isolera och dividera den nedsatt BLOMSTJÄLK ovanför den överlägsna duodenal fotled lämnar långa delar av portalen ven och gallgången. Dela den Vena ven ovanför och nedanför levern och hämta orgeln.
- Efter skörden levern var svinen euthanized vid i.v. administrering av 0.16 g/kg BW pentobarbital.
- För burst trycket experiment, resect hälften av den vänstra mediala lever LOB med vass sax. Plasma-koagulerar snittet yta (100W uteffekt) eller försegla den skurna ytan med fibrinlim (figur 2).
4. mikrocirkulationen mätning
Obs: Laser Doppler spektroskopi kan avgöra blodflöde i vävnaden genom att mäta Doppler shift orsakas av rörelsen av erytrocyter. Lasersignal korrelerar med antalet rörliga erytrocyter. Doppler Laserspektroskopi är i klinisk användning (t.ex. läkemedel som transplantation) och har varit validerade flera gånger15.
- Slå på laser Doppler flödesmätare och spektrofotometer. Använd en platt sond.
- Ta baseline mått för flöde och hastighet. Spara eller värdena.
- Utför koagulation som beskrivs under 3.5.
- Placera den platta sonden på koagulering platser och åtgärd flöde och hastighet. Igen, Spara eller Observera värdena.
- Upprepa för alla energiinställningar enhetens coagulator.
5. temperaturmätning
- Stäng av systemet på (Termografiskt kamera, anteckningsbok och infraröd termometer) och låta det gå för minst 1 h innan du utför mätningar.
- Justera fokus och Visa bildruta på Termografiskt kameran på webbplatsen koagulering. Infraröd sekvenser kan upptäckas med den rumsliga upplösningen på 1024 x 768 pixlar med en temperatur upplösning större än 20 mK. Ta hänsyn till att regionen för koagulation och den omgivande vävnaden — påverkas av värmeöverföring — ligger mitt i vyn.
Obs: Den bör omfatta så många pixlar på ramen som möjligt för en optimal rumslig upplösning. - Spela in Koaguleringsprocessen med den plasma coagulator på leverns yta med Termografiskt kameran under en 2-minuters period.
- Analysera bildsekvenser med Termografi analys programvara: Definiera områden av intresse.
Obs: Beräknar programvaran loppet av motsvarande medeltemperaturen över tid.
6. koagulationsfaktor djupmåttet
- Skörda den vänstra mediala lever LOB med vass sax.
- Punktskatt på koagulering webbplatser med 1 cm tjocklek. Skuren i 3 mm tjock längsgående segment för vidare bearbetning.
- Fix vävnadsprover vid 4 ° C över natten med neutrala 10% buffrad formalin. Värm paraffin 2 ° C över smältpunkten och bädda in skivor. Process över natten.
- Utföra Hematoxylin/Eosin färgning.
- Deparaffinize och återfukta vävnaden genom att därefter doppa i 2 x xylen, 100% etanol (EtOH), 95% EtOH, 70% EtOH, avjoniserat H2O 2 min varje.
- Fläcken på vävnadsprov med Meyers Hematoxylin lösning för 3 min.
- Nu skölj i vatten i 5 min.
- Fläcken vävnaden med Eosin lösning för 3 min.
- Skölj i 2 x EtOH 95% och sedan xylen i 3 min varje. Montera med standard monteringsmedium.
- Slå systemet (Mikroskop ansluten kamera, tänkbar mjukvaran). Visa alla sektioner med 40 X förstoring.
- Ta en bild av ett objekt mikrometer vid 40 X förstoring. Tryck på Kalibrera om knappen i fönstret mål. Välj manuell kalibrering. Rita en linje på Mikrometern bilden av 100 µm. Retur 0,1 mm i dialogrutan och tryck på OK.
- Välj längd i vyn > analys kontroller > Anteckningar och mätningar fönster. Mät från levern ytan till koagulering marginalen med musen. Exportera eller notera resultatet. Upprepa mätningen på en annan plats på samma bild.
Obs: Koagulation djup kan lätt skiljas från den normala levervävnad av skarpa marginalen mellan normal hepatocyte sladdar och zonen av nekros med krympta cytoplasman, pyknotiska kärnor och blödning zoner. - Beräkna medelvärdet av två mätningar.
7. burst mätning
- Slå systemet (automatiska pumpar, tryck mätare). Förbereda de lever proverna enligt steg 3,7.
Obs: Använd två parallella pumpar ansluten via en 3-sätt-Avstängningskranen. Det maximala trycket 1.500 mm Hg inte kan uppnås med en enda pump. - Isolera portvenen, gemensamma levern artär och gallgången med sax i den haptiska BLOMSTJÄLK. Klämma portalen ven med en overholt pincett och ligera med en monofil sutur 4-0. Klämma gemensamma levern artär en overholt pincett och ligera med en monofil sutur 4-0.
- Infoga Ch-16 katetern i gallgången och ligera med en 2-0 silk sutur. Anslut katetern till automatiska pumpar, installera 3-vägs Avstängningskranen med tryck mätare (figur 3).
- Fyll sprutan perfusion med saltlösning.
- Starta automatisk pumpar med en fraktkostnad på 99 mL/h.
- Övervaka lever skuren yta och tryck mätare för läckage och posten bristningstryck.
Obs: För enklare erkännande av läckage, patent blå kan läggas till saltlösning (2 mL patent blå + 18 mL koksaltlösning). Det är lättare att observera bristningstryck av märker tidpunkten för förlust av trycket på mätaren tryck.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
Mikrocirkulationen: Utnyttja den diagnostiska enheten för hemostas efter plasma koagulering kan bevisas av mikrocirkulationen förändringar. Capillary blod flöde (visas som godtyckliga enheter (AU)) minskar från ett utgångsvärde på 142,7 ± 76.08 AU 57.78 ± 49.57 AU på 25 W enheten uteffekt, 48,5 ± 7,26 AU på 50 W och till 5,04 ± 1,31 AU på 100 W (figur 4).
Temperatur: Temperatur på koagulering platser mättes med en Termografiskt kamera (figur 5). De endast obetydlig temperaturförändringar dokumenterades med en infraröd termometer. Det visade en baslinje temperatur på 32.42 ± 2,27 ° C. Efter koagulering med 25 W, temperaturen var 33.33 ± 1,81 ° C. Koagulering med en 50 W laser gav en temperatur av 31.17 ± 2.13 ° C. Efter koagulering med inställningen maximal effekt av 100 W var temperaturen mestadels oförändrad med 30,17 ± 3.19 ° C (figur 6).
Koagulation djup: Plasma koagulering skapar en ytlig zon av nekros med kan lätt skiljas från den normala levern parenkymet (figur 7). Djupet av nekros kan mätas på flera avsnitt och visar en inte helt linjär ökning med ökande makt i plasma coagulator. Efter helium plasma koagulation är koagulation djupet 230,2 ± 57.83µm på 25W, 314.6 ± 87.39 µm 50 W, 292,2 ± 45,65 µm på 75W och 412.9 ± 160,9 µm på 100 W enheten uteffekt (figur 8). Uteffekten från enheten kan väljas fritt och valde en positiv korrelation med koagulering djup7.
Sprack trycket: Burst pressa mätningar utfördes på den skurna ytan av explanterad vänster mediala lever LOB visar ingen skillnad efter helium (1254±578.7 mmHg) eller argon (1003 ± 554.4 mmHg) plasma koagulering (figur 9). Burst trycket är lägre jämfört med fibrin tätningsmedel7 men verkar lämpliga för klinisk användning.
Figur 1: vänster mediala lever LOB efter argon plasma coagulation. Åtta koagulering platser på den vänstra mediala lever lob (uppifrån vänster till längst ner till höger: 10 W, 15 W, 20 W, 25 W, 30 W, 50 W, 75 W, 100 W). Omfattningen av koagulering standardiserade med mögel. Klicka här för att se en större version av denna siffra.
Figur 2: beredning av levern transplantat för burst tryckmätningarna. Hälften av levern LOB är resected och lever skurna ytan förseglas med fibrinlim. Klicka här för att se en större version av denna siffra.
Figur 3: utrustning för burst tryckmätningarna. Automatisk pump (spruta fylld med koksaltlösning) och tryck mätaren ansluten via en 3-sätt-Avstängningskranen. Klicka här för att se en större version av denna siffra.
Figur 4: mikrocirkulationen förändringar. Förändringar i blodflöde (visas som godtyckliga enheter) före och efter argon plasma coagulation 25 W, 50 W och 100 W enheten uteffekt (n = 3-6). * = P< 0,05, 1-vägs ANOVA. Klicka här för att se en större version av denna siffra.
Figur 5: temperatur vid koagulation platser mäts med en Termografiskt kamera. Föredömliga bilden med en Termografiskt kamera under helium plasma koagulering med uteffekt 40W enhet. Klicka här för att se en större version av denna siffra.
Figur 6: temperatur vid koagulation platser mäts med en infraröd termometer. Temperaturen på koagulering platser mäts med en infraröd termometer före och efter argon plasma coagulation (n = 3-6). Klicka här för att se en större version av denna siffra.
Figur 7: zonplanera av ytliga nekroser helium plasma koagulationsfaktor. Hematoxylin/Eosin målat lever avsnitt på 40 X förstoring. Zonplanera av nekros visar en förlust av hepatocyte sladd arkitektur, celler med krympta cytoplasman och blödning zoner. Pilarna visar djupet av koagulation på två olika platser. Klicka här för att se en större version av denna siffra.
Figur 8: koagulation djup efter helium plasma koagulationsfaktor. Koagulering djup på olika effektnivåer (25W, 50W, 75W och 100W, n = 6). * = P< 0,05, *** = P< 0,001, 1-vägs ANOVA. Klicka här för att se en större version av denna siffra.
Figur 9: sprack trycket. Brast tryckmätningarna i levern snittytan efter antingen argon eller helium plasma koagulering. Klicka här för att se en större version av denna siffra.
Figur 10: blodprovsresultat. Valda parametrarna för klinisk biokemi och blod gas resultaten redovisas innan och följande argon plasma coagulation. Inga betydande förändringar sker, visar effekterna av plasma koagulering begränsat till lokala ändringar på webbplatsen koagulering. Klicka här för att se en större version av denna siffra.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
Gnagare modeller för levern kirurgi är etablerade för en lång tid16. Dock stora djurmodeller erbjuda vissa fördelar: ingen mikrokirurgisk utrustning behövs som operativa standardutrustning för människor kan tillämpas, kirurgiska tekniker är jämförbara med klinisk användning och standard kliniska utvärderingsmetoder kan vara överföras till experimenten. Vanliga kliniska blodprover kan exempelvis utföras utan behov av speciella laboratoriemetoder test (figur 10).
Svin är lämpligt laboratoriedjur för kardiorespiratorisk forskning som deras fysiologi liknar den mänskliga17. På grund av likheten i storlek, segmentell struktur och histologi är grisar också en av de vanliga försöksdjur för experimentell nedsatt kirurgi18. Plasma koagulering utvärderades i svin modellen på grund av fördelar (likhet till människans fysiologi och utvärdering av kliniska standardutrustning)7. I motsats till kirurgiska tekniker, kan anesthesiologic förvaltning inte lätt extrapoleras. Särskilt den airway management kan vara svårt17. Avståndet från på framtänderna till glottisen är mycket lång och anatomi skiljer sig människor gör orotracheal intubering svårt för den oerfarna forskaren. Masken ventilation är dessutom nästan omöjligt hos svin, så bärgningen strategier (t.ex. trakeostomi) bör vara närvarande.
För att uppnå jämförbara resultat i plasma koagulation, bör forskaren strängt ta uppmärksamhet att standardisera sond avstånd och tid för koagulering. Det är relativt lätt att underhålla sond avstånd, ett stoppur kan användas för att räkna 5 s av koagulering. Beskrivna tekniken med plasma koagulation på leverns yta användes i grundforskning om underliggande effekterna av plasma koagulation på levern i vivo7. De ovan beskrivna metoderna för svin anestesi, kirurgi och plasma koagulering kan också användas att undersöka stora nedsatt resektion och jämföra olika tekniker av snittytan tätning därefter.
Den laser Doppler flödesmätaren och spektrofotometern för mikrocirkulation mätningar är en standard kliniska verktyg19 och visat sig vara mycket användbara för bedömning av cirkulation direkt på orgel parenkymet. Värden för blodflödet och blodet flödeshastighet beräknas med fördelen av icke-invasivity. Mikrocirkulationen parametrar är endast indirekta åtgärder koagulering effekt, så Doppler mätningar bör vara korrelerade med en objektiv parameter för koagulation. I vårt experiment använde vi histologiska koagulering djup för korrelation.
En brist i temperaturmätningen är oförmågan att mäta temperaturen i plasma balken under koagulation eftersom temperaturen i plasma balken är över övre tröskeln på båda enheterna. Infraröda termometern är enkel att applicera, medan den Termografiskt Kamerainstallationen är mer komplex, men ger mer exakta data. Baslinjen temperaturen innan koaguleringen är lägre än väntat (svin kropp temperatur ~38.5 ° C17), visar de störande effekterna av laparotomi på kroppstemperatur. Den uppmätta temperaturen ökar inte under och efter koagulering, visar utmärkt perfusionen i levern. Denna termiska stjäla effekt av levern är känd från radiofrekvens ablation20. Burst trycket ledningarna genomfördes på gallgången systemet snarare än på nedsatt fartyg av en enkel anledning: det är omöjligt för plasma defibrillatorer (som det är för fibrinvävnadslim) att täta större fartyg. Båda de metoder för sekundär hemostas försegla den skurna ytan av opererande organ, medan större fartyg är sammanskrivna under resektion. Våra sprack trycket experiment var något modifierad jämfört med den rapportera teknik14. Vi mätte bristningstryck på explanterad organ av organisatoriska skäl. Dessa regler ut blodtryck relaterade effekter och är mycket lättare att applicera än att använda perfusion eller in vivo - organ. Värden av trycket experiment kan därför skilja sig från perfusion /in vivo - mätningar på grund av förändrad levern struktur (vanligtvis högre tryck på explanterad organ). Den ovan beskrivna burst tryckteknik kan också vara utförda in vivo.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
Författarna har något att avslöja.
Acknowledgments
Författarna har inga bekräftelser.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Xylazine 20 mg/mL | Vetoquinol GmbH | Xylapan | |
| Ketamine 100 mg/mL | Ceva GmbH | Ceva Ketamine Injection | |
| Atropine 100 mg / 10 mL | Dr. Franz Köhler Chemie GmbH | Atropinsulfat Köhler 100mg Amp. | |
| Propofol | Fresenius Kabi GmbH | Propofol 1% MCT Fresenius | |
| Fentanyl | KG Rotexmedica GmbH | Fentanyl 0,5mg Rotexmedica | |
| Isoflurane | Abbot GmbH | Forene 100% (V/V) 250 mL | |
| Ringer's lactate solution | Baxter Deutschland GmbH | sodium 131mmol/l, potassium 5 mmol/l, calcium 2 mmol/l, cloride 111 mmol/l, lactate 29 mmol/l | |
| Surgical disinfactant | Schülke & Mayr GmbH | Kodan Tinktur forte gefärbt 1l 104804 | |
| Motorized microscope | Nikon Instruments Europe | Eclipse TE2000-E | |
| Microscope camera | Nikon Instruments Europe | Digitalsight DS-Qi1Mc | |
| Imaging software | Nikon Instruments Europe | NIS elements Vers. 4.40 | |
| Plasma coagulator | Söring GmbH | CPC-1000 | |
| Argon gas | Linde AG | Argon 4.8 | |
| Helium gas | Linde AG | Helium 4.8 | |
| O2C | LEA Medizintechnik GmbH | O2C Version 1212 | with LF-2 or LF-3 probe |
| Infrared thermometer | Voltcraft | VOLTCRAFT IR 260-8S | |
| Thermographic camera | InfraTec GmbH | VarioCAM HD head 820 | |
| Thermographic analysis software | InfraTec GmbH | IRBIS 3 | |
| Mayer's Hematoxylin solution | Merck 1.09249 | ||
| Eosin solution | VWR International GmbH | Merck 1.09844 | |
| Rollerpump Masterflex L/S easy Load | Cole-Parmer Instrument Company | model 7518-10 | |
| Perfusorpump | B. Braun Melsungen AG | Perfusor secura FT | |
| Digital pressure meter | Greisinger electronic | GMH 3161 | |
| Perfusorsyringe, 50 mL | B. Braun Melsungen AG | REF 8728810 F | |
| Perfusor line, Type IV Standard, PVC Luer lock | B. Braun Melsungen AG | REF 8722960 | |
| 3-Way stopcock, Dicofix C35C | B. Braun Melsungen AG | REF 16494 C | |
| Silk 2-0. 3 metric | Resorba | REF H5F | |
| Vicryl 4-0 Sutupak | Ethicon | V1224H | |
| NaCl 0.9 % | B. Braun Melsungen AG |
References
- Link, W. J., Incropera, F. P., Glover, J. L. A plasma scalpel: comparison of tissue damage and wound healing with electrosurgical and steel scalpels. ArchSurg. 111, 392-397 (1976).
- Kwon, A. H., Inui, H., Kamiyama, Y. Successful laparoscopic haemostasis using an argon beam coagulator for blunt traumatic splenic injury. EurJSurg. 167, 316-318 (2001).
- Frilling, A., et al. Effectiveness of a new carrier-bound fibrin sealant versus argon beamer as haemostatic agent during liver resection: a randomised prospective trial. Langenbecks ArchSurg. 390, 114-120 (2005).
- Raiser, J., Zenker, M. Argon plasma coagulation for open surgical and endoscopic applications: state of the art. J Phys Appl Phys. 39 (16), 3520-3523 (2006).
- Farin, G., Grund, K. E. Technology of argon plasma coagulation with particular regard to endoscopic applications. EndoscSurgAllied Technol. 2, 71-77 (1994).
- Grund, K. E. Argon plasma coagulation (APC): ballyhoo or breakthrough? Endoscopy. 29, 196-198 (1997).
- Glowka, T. R., Standop, J., Paschenda, P., Czaplik, M., Kalff, J. C., Tolba, R. H. Argon and helium plasma coagulation of porcine liver tissue. J Int Med Res. , (2017).
- Dowling, R. D., Ochoa, J., Yousem, S. A., Peitzman, A., Udekwu, A. O. Argon beam coagulation is superior to conventional techniques in repair of experimental splenic injury. JTrauma. 31, 717-720 (1991).
- Go, P. M., Goodman, G. R., Bruhn, E. W., Hunter, J. G. The argon beam coagulator provides rapid hemostasis of experimental hepatic and splenic hemorrhage in anticoagulated dogs. JTrauma. 31, 1294-1300 (1991).
- Brand, C. U., Blum, A., Schlegel, A., Farin, G., Garbe, C. Application of argon plasma coagulation in skin surgery. Dermatology. 197, 152-157 (1998).
- Carus, T., Rackebrandt, K. Collateral tissue damage by several types of coagulation (monopolar, bipolar, cold plasma and ultrasonic) in a minimally invasive, perfused liver model. ISRNSurg. , 518924 (2011).
- Bludau, M., Vallbohmer, D., Gutschow, C., Holscher, A. H., Schroder, W. Quantitative measurement of gastric mucosal microcirculation using a combined laser Doppler flowmeter and spectrophotometer. DisEsophagus. , (2008).
- Beckert, S., Witte, M. B., Konigsrainer, A., Coerper, S. The impact of the Micro-Lightguide O2C for the quantification of tissue ischemia in diabetic foot ulcers. Diabetes Care. 27, 2863-2867 (2004).
- Erdogan, D., de Graaf, W., van Gulik, T. M. Adhesive strength of fibrinogen-coated collagen patch or liquid fibrin sealant in an experimental liver resection model in pigs. Eur Surg Res Eur Chir Forsch Rech Chir Eur. 41 (3), 298-302 (2008).
- Knobloch, K., et al. Microcirculation of the sternum following harvesting of the left internal mammary artery. ThoracCardiovascSurg. 51, 255-259 (2003).
- Kanzler, S., et al. Recommendation for severity assessment following liver resection and liver transplantation in rats: Part I. Lab Anim. 50 (6), 459-467 (2016).
- Pehböck, D., Dietrich, H., Klima, G., Paal, P., Lindner, K. H., Wenzel, V. Anesthesia in swine optimizing a laboratory model to optimize translational research. Anaesthesist. 64 (1), 65-70 (2015).
- Nykonenko, A., Vávra, P., Zonča, P. Anatomic Peculiarities of Pig and Human Liver. Exp Clin Transplant Off J Middle East Soc Organ Transplant. 15 (1), 21-26 (2017).
- Fechner, G., von Pezold, J., Luzar, O., Hauser, S., Tolba, R. H., Müller, S. C. Modified spectrometry (O2C device) of intraoperative microperfusion predicts organ function after kidney transplantation: a pilot study. Transplant Proc. 41 (9), 3575-3579 (2009).
- Patterson, E. J., Scudamore, C. H., Owen, D. A., Nagy, A. G., Buczkowski, A. K. Radiofrequency ablation of porcine liver in vivo: effects of blood flow and treatment time on lesion size. AnnSurg. 227, 559-565 (1998).
