Summary
Her præsenterer vi en protokol for at vurdere eksperimentelt plasma Koagulering i levervævet i vivo. I et svin model, mikrocirkulationen er undersøgt ved hjælp af laser Doppler, koagulation dybde måles Histologisk, temperatur ved Koagulering site af infrarøde termometer og termografisk kamera og kanalen forsegling effekt er dokumenteret af burst pres eksperimenter.
Abstract
Plasma koagulation som en form for Elektrokauterisation bruges i leveren kirurgi i årtier til at forsegle den store lever snitfladen efter stor hepatectomy at forhindre hemorrhages på et senere tidspunkt. De nøjagtige virkningerne af plasma koagulation på levervæv er kun dårligt undersøgt. I vores svin model, kan effekterne koagulation undersøges tæt på den kliniske anvendelse. En kombineret laser Doppler flowmeter og Spektrofotometer dokumenter mikrocirkulationen ændres under Koagulering i 8 mm væv dybde noninvasively, leverer kvantificerede oplysninger om hæmostase ud over det subjektive kliniske indtryk. Temperaturen ved Koagulering site er vurderet med et infrarødt termometer forudgående og post koagulation og med et termografisk kamera under koagulation, en måling af gas beam temperatur er ikke mulig på grund af den øverste tærsklen af enhederne. Dybden af koagulation er målt mikroskopisk på hæmatoxylin/eosin farves sektioner efter kalibrering med en objekt mikrometer og giver en nøjagtig information om magt indstilling-koagulation dybde-relation. Forsegling effekten er undersøgt på galdegangene, da det ikke er muligt for en plasma coagulator at forsegle større blodkar. Burst pres eksperimenter transporteres ud på eksplanterede organer at udelukke blodtryk relaterede effekter.
Introduction
Argon plasma koagulation (APC) er et meget udbredt instrument i abdominal kirurgi for mere end tre årtier1,2. Det er en standard teknik til opnåelse af sekundær hæmostase efter større hepatectomy ved forsegling leveren skåret overflade for at forhindre senere hemorrhages3. Plasma koagulation er en specialiseret form af radiofrekvens Elektrokauterisation, der leverer elektrisk energi gennem en bue af ioniseret gas. At give monopolære elektrotermiske hæmostase, har denne noncontact teknik fordelen at forhindre elektrode at holde sig til væv4. Ioniseret gas strålen er automatisk dirigeret til området af den laveste elektrisk modstand og er vendt væk når modstand stiger på grund af udtørring til andre områder, endnu ikke udtørret. Dette giver en ensartet begrænset dybde af koagulation5,6. Faktorer, der påvirker effekten koagulation er aktivisering gang, strømstyringsindstilling koagulation og afstanden fra sonden til væv. Helium er en anden bæregas, som kan bruges til plasma koagulation7. Nylige kliniske undersøgelser koncentreret på kliniske resultater snarere end resultaterne af histologiske og funktionel3,8,9, mens eksperimentelle undersøgelser fokuseret på in vitro- undersøgelser10 eller forsøg på isolerede perfunderet organer11.
Den underliggende protokol giver mulighed for undersøgelse af virkningerne af plasma Koagulering i en stor dyremodel tæt på den kliniske anvendelse ved hjælp af menneskelige standardudstyr på svin: mikrocirkulationen vurderes noninvasively af en laser Doppler flowmeter og Spektrofotometer, som er en standard kliniske værktøj til denne indikation12,13. Temperaturændringer i løbet af koagulation er overvåget med et infrarødt termometer og et termografisk kamera. Dybden af koagulation er målt på histologiske hæmatoxylin/eosin farves sektioner efter høst af vævsprøver. Til sammenligning med andre midler til sekundær hæmostase, er brast pres eksperimenter udført. I modsætning til tidligere beskrevne teknikker14, disse udføres på eksplanterede organer at udelukke blodtryk relaterede effekter. Ud over de beskrevne undersøgelser på de lokale virkninger af plasma koagulation gennemføres standard blodprøver også i modellen svin.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
Regler underlagt tysk lovgivning for dyreforsøg samt principper for Laboratory Animal Care (National Institutes of Health publikation ed. 8, 2011) blev fulgt. Officielle tilladelse fra det statslige dyrs pleje kontor (Landesamt für Natur, Umwelt und Verbraucherschutz Nordrhein-Westfalen, Recklinghausen, Tyskland).
1. dyr
- Bruge kvindelige tyske landrace svin (på 25-30 kg) har til huse i åbne bure.
- Brug 5 dyr pr. gruppe (argon og helium).
- Tillad dyr at akklimatisere til omgivelserne for mindst en uge før eksperimenterne. Hurtige dyr i 24 timer forud for operationen med fri adgang til vand.
2. anæstesi
- Premedicate dyr med en intramuskulær injektion af ketamin (15 mg/kg kropsvægt [BW]), xylazin (10 mg/kg BW) og atropin (0,1 mg/kg BW) 10 min før induktion af anæstesi.
- Perifer venøs adgang er etableret af placeringen af en 22-gauge kanyle i en øre vene.
- Fremkalde narkose ved i.v. injektion af propofol 2 mg/kg kropsvægt.
- Placere dyret i den liggende stilling og udføre en langsgående hud indsnit i jugularis rillen over en længde på 2 cm. Find vene gennem den stump forberedelse af det subkutane væv. Indsæt kanyle, derefter Seldinger wire.
- Trække kanyle og indsætte 14 Fr. kateter over guidewire. Trække guidewire. Tilslut kateter til udvidelsen og fiksere kateter af en strop eller en sutur.
- Træk tungen og indsætte lige laryngoscope. Brug spidsen af en laryngoscope til at trække ned strubelåget. Indsæt rør gennem stemmebånd. Læg manchetten under glottis og puste.
- Ventilere med 40% ilt på 20-26 vejrtrækninger/min og en tidalvolumen 10 ml/kg for at holde end-tidal delvis CO2 kuldioxid spændinger mellem 36 og 42 mm Hg.
- Vedligeholde anæstesi med isofluran ved en koncentration på 1-1,5% og fentanyl i en koncentration på 3-4 µg/kg/h.
- Levere Ringers laktat løsning på en basissats på 4 mL/kg/h, og øge efter laparotomi til en konstant infusion sats på 8 mL/kg/h.
3. kirurgi og Plasma koagulation
- Placere dyret i en liggende stilling på et standard kirurgisk bord.
- Desinficere huden ved at anvende en standard kirurgisk desinfektionsmiddel (2-Propanol 45 g/100 g, 1-Propanol 10 g / 100g, Biphenyl-2-ol 0,2 g/100 g) med en kirurgisk vatpind for 3 gange.
- Udføre en bred midterlinjen laparotomi fra formet som et sværd proces til pubis med en skalpel og installere kirurgisk retraktorer.
- Tænd enheden plasma koagulation, åbne argon eller helium gasflaske, afhængigt af den anvendte bæregas. Justere gasstrømmen til 3 L/min. Vælg koagulation enhed udgangseffekt som ønsket.
Bemærk: Begge ædelgas, Argon eller Helium, kan bruges til plasma koagulation. Koagulering effekter er sammenlignelige. Se reference7 for detaljer. - Udføre plasma koagulation på venstre lever lap som tidligere beskrevet7. Bruge en titanium mug (firkantet aperture 1 x 1 cm2) for at standardisere zonen koagulation. Koagulere i 5 s med en sonde afstand af 1 cm. Coagulations med forskellige strømindstillinger kan udføres sammen med en kort afstand mellem coagulations af 5 mm (figur 1).
- Til høst af leveren, opdele alle ligamenternes forbindelser til leveren. Isolere og opdele hepatisk pedicle over den overlegne duodenal flexure forlader lang dele af Vena, og fælles galdegang. Opdele caval venen over og under leveren og hente orgel.
- Efter høst leveren, blev svinene aflivet af i.v. indgift af 0.16 g/kg BW pentobarbital.
- For burst pres eksperimenter, resect halvdelen af den venstre mediale lever lap med en skarp saks. Plasma-koagulerer cut overflade (100W udgangseffekt) eller forsegle snitfladen med fibrin fugemasse (figur 2).
4. mikrocirkulationen måling
Bemærk: Laser Doppler spektroskopi kan bestemme blodgennemstrømningen i væv gennem måling af Doppler Skift forårsaget af bevægelse af erytrocytter. Laser signal korrelerer med antallet af bevægelige erytrocytter. Laser Doppler spektroskopi er i klinisk brug (f.eks. transplantation medicin) og har været valideret flere gange15.
- Tænd laser Doppler flowmeter og Spektrofotometer. Bruge en flad sonde.
- Tage grundlæggende målinger for flow og hastighed. Gemme eller Bemærk værdierne.
- Udføre koagulation, som beskrevet under 3,5.
- Sted flad sonden på koagulation websteder og foranstaltning flow og hastighed. Igen, Spar eller Bemærk værdier.
- Gentag for alle strømindstillinger af coagulator enhed.
5. temperaturmåling
- Anlægget på (termografisk kamera, notebook og infrarøde termometer) og lad den køre i mindst 1 time før du udfører målinger.
- Justere fokus og se rammen på de termografisk kamera på webstedet koagulation. Infrarød sekvenser kan påvises med den rumlige opløsning på 1024 x 768 pixel med en temperatur opløsning større end 20 mK. Tage i betragtning, at regionen koagulation og det omgivende væv — påvirket af varmeoverførsel — ligger i visningen.
Bemærk: Det bør omfatte så mange pixels på rammen som muligt for en optimal rumlige opløsning. - Optage koagulation proces med plasma coagulator på leveren overfladen med termografisk kamera over en 2-minutters periode.
- Analysere billedsekvenser med termografi analyse software: definere områder af interesse.
Bemærk: Softwaren beregner løbet af tilsvarende gennemsnitlige temperatur over tid.
6. Koagulering dybde måling
- Høste venstre mediale lever lap med en skarp saks.
- Punktafgifter koagulation websteder med 1 cm tykkelse. Skæres i 3 mm tykke langsgående segmenter til yderligere behandling.
- Fix vævsprøver ved 4 ° C natten over med neutral 10% buffered formalin. Varme paraffin 2 ° C over smeltepunktet og integrere skiver. Processen natten over.
- Udføre hæmatoxylin/Eosin pletter.
- Deparaffinize og fugte væv af efterfølgende dypning i 2 x xylen, 100% ethanol (EtOH), 95% EtOH, 70% EtOH, deioniseret vand H2O i 2 min.
- Pletten vævsprøve med Meyers hæmatoxylin løsning i 3 min.
- Nu skylles i vand fra hanen i 5 min.
- Pletten væv med Eosin løsning i 3 min.
- Skyl i 2 x EtOH 95% og derefter xylen i 3 min. Monteres med standard montering medium.
- Anlægget på (mikroskop tilsluttede kamera, imaging software). Se alle sektioner med 40 X forstørrelse.
- Tage et billede af et objekt mikrometer ved 40 X forstørrelse. Tryk på rekalibrere knappen i vinduet mål. Vælg manuel kalibrering. Tegn en streg på mikrometer billedet af 100 µm. Enter 0,1 mm i dialogboksen, og tryk på OK.
- Vælg længde i visningen > analyse kontrol > anmærkninger og målinger vindue. Måle fra leveren overfladen koagulation margen med musen. Eksportere eller Bemærk resultatet. Gentage måling på en anden placering på den samme dias.
Bemærk: Koagulation dybde kan nemt skelnes fra de normale levervæv af skarpe margenen mellem normal hepatocyt snore og zone af nekrose med indskrumpet cytoplasma, pyknotic kerner og blødning zoner. - Beregne gennemsnittet af to målinger.
7. burst trykmåling
- Anlægget på (automatisk pumper, pres meter). Forberede de lever prøveeksemplarer efter trin 3.7.
Bemærk: Brug to parallelle pumper forbundet via en 3-måde-stophane. Den maksimal pres på 1.500 mm Hg ikke kan opnås med en enkelt pumpe. - Isolere Vena, fælles hepatisk arterie og galdegang med saks i den haptiske pedicle. Klemme portal vene med en overholt pincet og ligate med en monofil sutur 4-0. Klemme fælles hepatisk arterie en overholt pincet og ligate med en monofil sutur 4-0.
- Indsæt Ch-16 kateter i fælles galdegang og ligate med en 2-0 silke sutur. Tilsluttes de automatiske pumper kateteret, installere 3-vejs stophane med pres meter (figur 3).
- Fylde perfusion sprøjte med saltvand.
- Start automatisk pumper med en levering sats af 99 mL/h.
- Overvåge lever cut overflade og pres meter for lækage og post burst pres.
Bemærk: For lettere anerkendelse af lækage, patent blue kan føjes til saltvand (2 mL patent blue + 18 mL saltvand). Det er lettere at observere burst pres ved at lægge mærke til tidspunktet for tab af pres på måleren pres.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
Mikrocirkulationen: Udnytte den diagnostiske enhed for hæmostase efter plasma koagulation kan påvises ved mikrocirkulationen ændringer. Kapillær blod flow (vises som vilkårlige enheder (AU)) falder fra en oprindelig værdi af 142.7 ± 76.08 AU til 57.78 ± 49.57 AU på 25 W enhed arbejdsydelse kraft, at 48.5 ± 7.26 AU på 50 W og at 5,04 ± 1,31 AU på 100 W (figur 4).
Temperatur: Temperatur på koagulation websteder blev målt med et termografisk kamera (figur 5). Kun ubetydelige temperaturændringer blev dokumenteret med et infrarødt termometer. Det viste en baseline temperatur af 32.42 ± 2,27 ° C. Efter koaguleringen med 25 W, var temperaturen 33.33 ± 1,81 ° C. Koagulering med en 50 W laser viste en temperatur på 31.17 ± 2,13 ° C. Efter koaguleringen med indstillingen for maksimal effekt på 100 W var temperaturen for det meste uændret med 30.17 ± 3.19 ° C (figur 6).
Koagulering dybde: Plasma koagulation skaber en overfladisk zone af nekrose med kan være let at skelne fra den normale lever parenkym (figur 7). Dybden af nekrose kan måles på flere sektioner og viser en ikke helt lineær stigning med stigende magt niveauer af plasma-coagulator. Efter helium plasma koagulation er koagulerende dybde 230.2 ± 57.83µm på 25W 314.6 ± 87.39 µm på 50 W, 292.2 ± 45.65 µm på 75W og 412.9 ± 160.9 µm på 100 W enhed udgangseffekt (figur 8). Output-effekt af enheden kan vælges frit og valgte en positiv sammenhæng med koagulation dybde7.
Brast pres: Burst pres målinger, der er udført på snitfladen af eksplanterede venstre mediale lever lap viser ingen forskel efter helium (1254±578.7 mmHg) eller argon (1003 ± 554.4 mmHg) plasma koagulation (figur 9). Burst pres er lavere i forhold til fibrin fugemasser7 men synes relevante for klinisk brug.
Figur 1: venstre mediale lever lobe efter argon plasma koagulation. Otte koagulation websteder på den venstre mediale lever lap (fra øverst til venstre til nederst til højre: 10 W, 15 W, 20 W, 25 W, 30 W, 50 W, 75 W, 100 W). Omfanget af koagulation standardiseret med formen. Venligst klik her for at se en større version af dette tal.
Figur 2: forberedelse af leveren graft for burst pres målinger. Halvdelen af den lever lap er resektion, og leveren snitfladen er forseglet med fibrin fugemasse. Venligst klik her for at se en større version af dette tal.
Figur 3: udstyr for burst pres målinger. Automatisk pumpe (sprøjte fyldt med saltvand) og pres meter tilsluttet via en 3-måde-stophane. Venligst klik her for at se en større version af dette tal.
Figur 4: mikrocirkulationen ændringer. Ændringer i blodgennemstrømningen (vises som vilkårlige enheder) før og efter argon plasma koagulation på 25 M, 50 M og 100 W enhed udgangseffekt (n = 3-6). * = P< 0,05, 1-vejs ANOVA. Venligst klik her for at se en større version af dette tal.
Figur 5: temperatur ved Koagulering sites målt med et termografisk kamera. Eksemplarisk billedet med et termografisk kamera under helium plasma Koagulering med 40W enhed udgangseffekt. Venligst klik her for at se en større version af dette tal.
Figur 6: temperatur ved Koagulering sites målt med et infrarødt termometer. Temperaturen ved Koagulering sites målt med et infrarødt termometer før og efter argon plasma koagulation (n = 3-6). Venligst klik her for at se en større version af dette tal.
Figur 7: Zone af overfladiske nekrose efter helium plasma koagulation. Hæmatoxylin/Eosin farves lever sektion på 40 X forstørrelse. Zonen for nekrose viser et tab på hepatocyt ledning arkitektur, celler med indskrumpet cytoplasma og blødning zoner. Pilene angiver dybden af koagulation på to forskellige steder. Venligst klik her for at se en større version af dette tal.
Figur 8: koagulation dybde efter helium plasma koagulation. Koagulering dybde på forskellige effektniveauer (25W, 50W, 75W og 100W, n = 6). * = P< 0,05, *** = P< 0,001, 1-vejs ANOVA. Venligst klik her for at se en større version af dette tal.
Figur 9: brast pres. Burst pres målinger på leveren snitfladen efter enten argon eller helium plasma koagulation. Venligst klik her for at se en større version af dette tal.
Figur 10: blodprøve resultater. Valgte parametre for klinisk biokemi og blod gas resultater er vist før og følgende argon plasma koagulation. Ingen væsentlige ændringer forekomme, demonstrere virkningerne af plasma koagulation begrænset til lokale ændringer på webstedet koagulation. Venligst klik her for at se en større version af dette tal.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
Gnavere modeller for leveren kirurgi er etableret for en lang tid16. Ikke desto mindre stor dyremodeller tilbyde visse fordele: ingen microsurgical udstyr er nødvendig som udløsende standardudstyr for mennesker kan anvendes, kirurgiske teknikker kan sammenlignes med klinisk brug og standard kliniske vurderingsmetoder kan være overført til eksperimenter. Standard kliniske blodprøver kan f.eks udføres uden behov for særlige laboratorium prøvningsmetoder (figur 10).
Svin er passende forsøgsdyr for kardiorespiratorisk forskning som deres fysiologi minder meget om den menneskelige17. På grund af ligheden i størrelse, segmental struktur og histologi er svin også en af standard forsøgsdyr for eksperimenterende hepatisk kirurgi18. Plasma koagulation blev evalueret i modellen svin på grund af fordele (lighed med menneskets fysiologi og evaluering af klinisk standardudstyr)7. I modsætning til kirurgiske teknikker, kan anesthesiologic management ikke nemt ekstrapoleres. Især airway management kan være vanskelige17. Afstanden fra fortænderne til glottis er meget lang og anatomi er anderledes end mennesker gør orotracheal intubation vanskeligt for den uerfarne forsker. Derudover er maske ventilation næsten umuligt i svin, så bjærgning strategier (f.eks. tracheostomi) bør være til stede.
For at opnå sammenlignelige resultater i plasma koagulation, bør forskeren strengt tage opmærksomhed at standardisere sonde afstand og varighed af koagulation. Mens det er relativt nemme at vedligeholde sonde afstand, et stopur kan bruges til at tælle 5 s af koagulation. Den beskrevne teknik af plasma koagulation på leveren overfladen blev brugt i grundforskning på underliggende virkningerne af plasma koagulation på leveren i vivo-7. De ovenfor beskrevne teknikker til svin anæstesi, kirurgi og plasma koagulation kan også bruges til at undersøge store hepatisk resektion og sammenligne forskellige teknikker i snitfladen forsegling derefter.
Laser Doppler flowmeter og Spektrofotometer mikrocirkulationen målinger er en standard kliniske værktøj19 og viste sig for at være meget nyttig for vurderingen af omsætning direkte på orgel parenkym. Værdierne for blodgennemstrømningen og blod strømningshastighed er beregnet med fordelen af ikke-invasivity. Mikrocirkulationen parametre er kun indirekte foranstaltninger af koagulation virkning, så Doppler målinger bør være korreleret med en objektiv parameter for koagulation. I vores forsøg og, brugte vi histologiske koagulation dybde til korrelation.
En mangel ved temperatur målingen er den manglende evne til at måle temperatur i plasma stråle under koagulation, fordi plasma beam temperatur ligger over den øvre grænse på begge enheder. Den infrarøde termometer er let at anvende, hvorimod termografisk kamera setup er mere komplekse, men giver mere præcise data. Den oprindelige temperatur før koagulation er lavere end forventet (svin krop temperatur ~38.5 ° C17), demonstrerer de forstyrrende effekter af laparotomi på kropstemperatur. Den målte temperatur øger ikke under og efter koagulation, demonstrerer den fremragende perfusion af leveren. Denne termisk stjæle effekt af leveren er kendt fra radio frekvens ablation20. Burst pres ledelser blev gennemført på galdegang system frem for hepatisk fartøjer for en simpel grund: det er umuligt for plasma coagulators (som det er for fibrin fugemasser) at forsegle større fartøjer. Begge metoder af sekundær hæmostase forsegle snitfladen af resektion orgel, mens større fartøjer er forbundet under resektion. Vores burst pres eksperimenter blev ændret en smule i forhold til de rapporterede teknik14. Vi målte burst pres på eksplanterede organer for organisatoriske årsager. Disse regler ud af blodtryk relaterede effekter og er meget lettere at anvende end at bruge perfunderet eller in vivo organer. Værdier af presset eksperimenter kan derfor afvige fra perfunderet /in vivo målinger på grund af ændrede leveren struktur (normalt højere pres på eksplanterede organer). Den ovenfor beskrevne burst pres teknik kan også være udføres in vivo.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
Forfatterne har ikke noget at oplyse.
Acknowledgments
Forfatterne har ingen anerkendelser.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Xylazine 20 mg/mL | Vetoquinol GmbH | Xylapan | |
| Ketamine 100 mg/mL | Ceva GmbH | Ceva Ketamine Injection | |
| Atropine 100 mg / 10 mL | Dr. Franz Köhler Chemie GmbH | Atropinsulfat Köhler 100mg Amp. | |
| Propofol | Fresenius Kabi GmbH | Propofol 1% MCT Fresenius | |
| Fentanyl | KG Rotexmedica GmbH | Fentanyl 0,5mg Rotexmedica | |
| Isoflurane | Abbot GmbH | Forene 100% (V/V) 250 mL | |
| Ringer's lactate solution | Baxter Deutschland GmbH | sodium 131mmol/l, potassium 5 mmol/l, calcium 2 mmol/l, cloride 111 mmol/l, lactate 29 mmol/l | |
| Surgical disinfactant | Schülke & Mayr GmbH | Kodan Tinktur forte gefärbt 1l 104804 | |
| Motorized microscope | Nikon Instruments Europe | Eclipse TE2000-E | |
| Microscope camera | Nikon Instruments Europe | Digitalsight DS-Qi1Mc | |
| Imaging software | Nikon Instruments Europe | NIS elements Vers. 4.40 | |
| Plasma coagulator | Söring GmbH | CPC-1000 | |
| Argon gas | Linde AG | Argon 4.8 | |
| Helium gas | Linde AG | Helium 4.8 | |
| O2C | LEA Medizintechnik GmbH | O2C Version 1212 | with LF-2 or LF-3 probe |
| Infrared thermometer | Voltcraft | VOLTCRAFT IR 260-8S | |
| Thermographic camera | InfraTec GmbH | VarioCAM HD head 820 | |
| Thermographic analysis software | InfraTec GmbH | IRBIS 3 | |
| Mayer's Hematoxylin solution | Merck 1.09249 | ||
| Eosin solution | VWR International GmbH | Merck 1.09844 | |
| Rollerpump Masterflex L/S easy Load | Cole-Parmer Instrument Company | model 7518-10 | |
| Perfusorpump | B. Braun Melsungen AG | Perfusor secura FT | |
| Digital pressure meter | Greisinger electronic | GMH 3161 | |
| Perfusorsyringe, 50 mL | B. Braun Melsungen AG | REF 8728810 F | |
| Perfusor line, Type IV Standard, PVC Luer lock | B. Braun Melsungen AG | REF 8722960 | |
| 3-Way stopcock, Dicofix C35C | B. Braun Melsungen AG | REF 16494 C | |
| Silk 2-0. 3 metric | Resorba | REF H5F | |
| Vicryl 4-0 Sutupak | Ethicon | V1224H | |
| NaCl 0.9 % | B. Braun Melsungen AG |
References
- Link, W. J., Incropera, F. P., Glover, J. L. A plasma scalpel: comparison of tissue damage and wound healing with electrosurgical and steel scalpels. ArchSurg. 111, 392-397 (1976).
- Kwon, A. H., Inui, H., Kamiyama, Y. Successful laparoscopic haemostasis using an argon beam coagulator for blunt traumatic splenic injury. EurJSurg. 167, 316-318 (2001).
- Frilling, A., et al. Effectiveness of a new carrier-bound fibrin sealant versus argon beamer as haemostatic agent during liver resection: a randomised prospective trial. Langenbecks ArchSurg. 390, 114-120 (2005).
- Raiser, J., Zenker, M. Argon plasma coagulation for open surgical and endoscopic applications: state of the art. J Phys Appl Phys. 39 (16), 3520-3523 (2006).
- Farin, G., Grund, K. E. Technology of argon plasma coagulation with particular regard to endoscopic applications. EndoscSurgAllied Technol. 2, 71-77 (1994).
- Grund, K. E. Argon plasma coagulation (APC): ballyhoo or breakthrough? Endoscopy. 29, 196-198 (1997).
- Glowka, T. R., Standop, J., Paschenda, P., Czaplik, M., Kalff, J. C., Tolba, R. H. Argon and helium plasma coagulation of porcine liver tissue. J Int Med Res. , (2017).
- Dowling, R. D., Ochoa, J., Yousem, S. A., Peitzman, A., Udekwu, A. O. Argon beam coagulation is superior to conventional techniques in repair of experimental splenic injury. JTrauma. 31, 717-720 (1991).
- Go, P. M., Goodman, G. R., Bruhn, E. W., Hunter, J. G. The argon beam coagulator provides rapid hemostasis of experimental hepatic and splenic hemorrhage in anticoagulated dogs. JTrauma. 31, 1294-1300 (1991).
- Brand, C. U., Blum, A., Schlegel, A., Farin, G., Garbe, C. Application of argon plasma coagulation in skin surgery. Dermatology. 197, 152-157 (1998).
- Carus, T., Rackebrandt, K. Collateral tissue damage by several types of coagulation (monopolar, bipolar, cold plasma and ultrasonic) in a minimally invasive, perfused liver model. ISRNSurg. , 518924 (2011).
- Bludau, M., Vallbohmer, D., Gutschow, C., Holscher, A. H., Schroder, W. Quantitative measurement of gastric mucosal microcirculation using a combined laser Doppler flowmeter and spectrophotometer. DisEsophagus. , (2008).
- Beckert, S., Witte, M. B., Konigsrainer, A., Coerper, S. The impact of the Micro-Lightguide O2C for the quantification of tissue ischemia in diabetic foot ulcers. Diabetes Care. 27, 2863-2867 (2004).
- Erdogan, D., de Graaf, W., van Gulik, T. M. Adhesive strength of fibrinogen-coated collagen patch or liquid fibrin sealant in an experimental liver resection model in pigs. Eur Surg Res Eur Chir Forsch Rech Chir Eur. 41 (3), 298-302 (2008).
- Knobloch, K., et al. Microcirculation of the sternum following harvesting of the left internal mammary artery. ThoracCardiovascSurg. 51, 255-259 (2003).
- Kanzler, S., et al. Recommendation for severity assessment following liver resection and liver transplantation in rats: Part I. Lab Anim. 50 (6), 459-467 (2016).
- Pehböck, D., Dietrich, H., Klima, G., Paal, P., Lindner, K. H., Wenzel, V. Anesthesia in swine optimizing a laboratory model to optimize translational research. Anaesthesist. 64 (1), 65-70 (2015).
- Nykonenko, A., Vávra, P., Zonča, P. Anatomic Peculiarities of Pig and Human Liver. Exp Clin Transplant Off J Middle East Soc Organ Transplant. 15 (1), 21-26 (2017).
- Fechner, G., von Pezold, J., Luzar, O., Hauser, S., Tolba, R. H., Müller, S. C. Modified spectrometry (O2C device) of intraoperative microperfusion predicts organ function after kidney transplantation: a pilot study. Transplant Proc. 41 (9), 3575-3579 (2009).
- Patterson, E. J., Scudamore, C. H., Owen, D. A., Nagy, A. G., Buczkowski, A. K. Radiofrequency ablation of porcine liver in vivo: effects of blood flow and treatment time on lesion size. AnnSurg. 227, 559-565 (1998).
