Summary
El propósito de este trabajo es describir un protocolo para la creación de un fantasma de grasa agua práctico que puede personalizarse para producir fantasmas con diferentes porcentajes de grasa y volumen.
Abstract
Desarrollo de nuevas técnicas de imagen del tejido adiposo, métodos para validar tales protocolos son cada vez más importantes. Fantasmas, réplicas experimentales de un tejido u órgano de interés, proporcionar una solución de bajo costo, flexible. Sin embargo, sin acceso a los equipos caros y especializados, construcción de fantasmas estables con altas fracciones de grasa (por ej., > niveles de 50% fracción de grasa tales como ésos vistos en tejido adiposo marrón) puede ser difícil debido a la naturaleza hidrofóbica de los lípidos. Este trabajo presenta un protocolo detallado y de bajo costo para crear fantasmas 5 x 100 mL con fracciones de grasa de 0%, 25%, 50%, 75% y 100% con componentes fácilmente accesibles (agua destilada, agar, soluble en agua y suministros de laboratorio básico (placa, vasos de precipitado, etcetera.) surfactante, benzoato de sodio, agente de contraste gadolinio-diethylenetriaminepentacetate (DTPA), aceite de cacahuete y surfactante soluble en aceite). El protocolo fue diseñado para ser flexible; puede ser utilizado para crear fantasmas con diferentes fracciones de grasas y una amplia gama de volúmenes. Fantasmas creados con esta técnica se evaluaron en el estudio de viabilidad que en comparación con los valores de la fracción grasa de grasa agua magnética resonancia a los valores de destino de los fantasmas construidos. Este estudio produjo un coeficiente de correlación concordancia de 0.998 (intervalo de confianza del 95%: 1.00 0.972). En Resumen, estos estudios demuestran la utilidad de grasa fantasmas para la validación de técnicas de imagen en una variedad de órganos y tejidos clínicamente relevantes del tejido adiposo.
Introduction
Interés en la cuantificación de tejido adiposo y triglicéridos el contenido mediante modalidades de imágenes, tales como la proyección de imagen de resonancia magnética (MRI), extiende a través de muchos campos. Áreas de investigación incluyen la investigación de los depósitos de tejido adiposo blanco y marrón y ectópico almacenamiento de lípidos en órganos y tejidos como hígado1,2de páncreas y músculo esquelético3. Desarrollo de estas nuevas técnicas para la cuantificación de grasa, se necesitan métodos para confirmar que los parámetros de proyección de imagen son válidos para la investigación y aplicaciones clínicas.
Fantasmas, réplicas experimentales de un tejido u órgano, proporcionar una herramienta de bajo costo, flexible y controlada para desarrollar y validar técnicas imagen4. Específicamente, los fantasmas pueden construirse consisten en grasa y agua en una proporción o grasa fracción de volumen (FF) comparable a la del tejido de interés clínico. Clínico, los valores de FF en tejidos y órganos pueden variar ampliamente: FF en tejido adiposo marrón cae entre 29,7% y 93.9%5; el hígado promedio FF en pacientes esteatosis es 18,1 ± 9.0%6; el FF pancreático en adultos en riesgo de rangos de diabetes tipo 2 entre 1,6% y 22,2%7; y en algunos casos de enfermedad avanzada, los pacientes con distrofia muscular de Duchenne pueden tener valores FF de casi el 90% en algunos músculos8.
Porque las moléculas no polares como lípidos no se disuelven bien en soluciones compuestas por moléculas polares como el agua, creando fantasmas estables con un alto objetivo FF sigue siendo desafiante. Para FF hasta 50%, muchos métodos existentes pueden utilizarse para crear agua grasa fantasmas9,10,11,12. Otros métodos que logran mayor FFs generalmente requieren equipo costoso como un homogeneizador o una célula ultrasónica disruptor13,14. Aunque estas técnicas proporcionan una hoja de ruta para alta fantasmas de FF, las limitaciones de equipo y cantidades variables de datos experimentales limitan los esfuerzos para crear fantasmas de agua grasa reproducible y robusto.
Basándose en estas técnicas anteriores, se desarrolló un método para la construcción de fantasmas agua grasa estable y rentable a través de un valores personalizables gama de FF. Este protocolo detalla los pasos necesarios para completar 5 x 100 mL de grasa fantasmas con valores FF de 0%, 25%, 50%, 75% y 100% con una sola placa. Puede ajustarse fácilmente para crear varios volúmenes (10 a 200 mL) y porcentajes de grasa (0 a 100%). Se evaluó la eficacia de la técnica de fantasmas de la factibilidad estudio comparando agua grasa MRI FF valores que los valores objetivo de FF en los fantasmas construidos.
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Protocol
1. prepare el sitio de trabajo y materiales
- Cumplir todas las normas de seguridad del laboratorio. Use guantes y protección para los ojos. Lea la hoja de datos material de seguridad para cada uno de los reactivos utilizados y tomar las precauciones apropiadas. Revisar los materiales y lista de equipo, procedimientos químicos y precauciones de cristalería.
PRECAUCIÓN: Este protocolo requiere el uso de una placa caliente a altas temperaturas. Tenga cuidado y use guantes resistentes al calor cuando interactuando con caliente recipientes y no toque la superficie de la placa. - El espacio de trabajo y limpie las superficies con desinfectante. Lávese las manos y colóquese guantes.
- Esterilizar todos los instrumentos y el interior de los frascos de vidrio para reducir el riesgo potencial de contaminación y aumentar la longevidad del fantasma.
Nota: Si el fantasma se utilizará más de un par de días, limpiar periódicamente la superficie del fantasma completa con etanol para prevenir el crecimiento bacteriano.
2. preparar la solución de agua
- Preparar el espacio de trabajo para la solución de agua. Coloque los siguientes materiales y equipos en el Banco: Graduado de cilindro, vaso de precipitados de 400 mL, barra agitadora, escala, barcos de pesaje x 2, espátula, 2 x 1.0 mL jeringas con aguja, agua destilada, agente de contraste gadolinio-diethylenetriaminepentacetate (DTPA), surfactante soluble en agua, agar y benzoato de sodio.
Nota: Pueden utilizarse jeringas con o sin agujas. Sin embargo, utilizando una aguja mejorará la exactitud de la medida y ayudar a prevenir la salpicadura cuando el contenido se añaden a las soluciones de agua o aceite. - Coloque una barra de agitación en un vaso de precipitados de 400 mL. Use un cilindro de 100 o 200 mL graduado para medir 300 mL de agua destilada y vierta el agua en el vaso. Colocar el vaso sobre la placa y a 90 ° C con una velocidad de agitación de 100 rpm.
Nota: Las temperaturas altas se usan en este protocolo para lograr resultados rápidos. Porque las soluciones no se quedan en la placa calefactora durante largos períodos de tiempo, el punto preconfigurado de temperatura para la placa no refleja la temperatura de la solución. - Utilice una escala calibrada para medir 0.30 g de benzoato de sodio en un barco de pesaje. Añadir el benzoato de sodio a la solución del agua.
- Utilice una jeringa para medir 0.6 mL del tensioactivo soluble en agua. Asegúrese de que no hay ninguna burbuja de aire. Sujete la aguja unos pocos milímetros sobre el centro de la solución y suelte lentamente el tensioactivo soluble en agua para evitar salpicaduras en las paredes del vaso.
- Utilizando una jeringa limpia, medir 0,24 mL del agente de contraste gadolinio-DTPA. Añadir en el vaso, utilizando la misma técnica como en el paso 2.4.
Nota: Gadolinio-DTPA se utiliza para ajustar propiedades de relajación de MRI del fantasma para coincidir con los del tejido de interés. El lector puede ajustar el volumen de agregado gadolinio-DTPA para adaptarse mejor a las propiedades de relajación de los tejidos de interés. - Medida 9,0 g de agar en un barco de pesaje. El agar con una espátula lentamente la cuchara en el vaso con agua.
- Una vez que todo ha sido añadido a la solución de agua, aumentar la temperatura de la placa caliente a 350 ° C y revuelva la barra velocidad a 1100 rpm durante 5-10 minutos fundir el agar.
- Para comprobar si el agar se derrite, brevemente Retire la solución de agua de la placa, dejar de revolver y compruebe el color de la solución. Agar fundido debe ser claro (no hay serpentinas o matas) y amarillo o color ámbar.
- Una vez que el agar se derrite completamente, use una jeringa o vierta aproximadamente 3,5 mL de la solución de agua en un frasco pequeño. Si la solución no establece o se separa después de 5-10 min, el agar no se derrite. Aumentar la temperatura de la placa caliente a 350 ° C y continuar calentando la solución.
- Repita el paso 2.8 hasta la solución del agua en los sistemas vial de prueba correctamente.
- Dejar la solución del agua sobre la placa caliente a 50 ° C y 100 rpm. Limpiar el espacio de trabajo y preparar la solución de aceite.
- Retire los materiales desde el banquillo: escala, 2 x barcos de pesaje, espátula, jeringas 2 x 1.0 mL con aguja (usada), agua destilada, agente de contraste gadolinio-DTPA, agente tensioactivo soluble en agua, agar y benzoato de sodio.
- Coloque los siguientes materiales y equipos en el Banco: vaso de precipitados de 400 mL (limpia), revuelva la barra (limpio), jeringa de 2.0 mL con aguja, aceite de cacahuete y surfactante soluble en el aceite.
3. una solución de aceite
- Coloque una nueva barra de agitación en un vaso de precipitados de 400 mL limpia. Use un cilindro graduado para medir 300 mL de aceite de cacahuete y vierta en el vaso. Retire el vaso de precipitados que contiene la solución de agua y coloque el vaso de la solución de aceite en la placa. Situado a 90 ° C con una tasa de agitación de 100 rpm durante 1 minuto.
Nota: el aceite de cacahuete se utiliza porque tiene un espectro similar de la resonancia magnética nuclear en comparación con los triglicéridos en el tejido adiposo humano15.- No descuide el aceite sobre la placa. Si el aceite se calienta demasiado y comienza a fumar, quitarlo de la placa y reducir la temperatura antes de regresar el aceite a la plancha.
- Medir 3,0 mL de surfactante soluble en el aceite con una jeringa limpia. Utilizando la misma técnica descrita en el paso 2.4, agregar el surfactante soluble en el aceite en el vaso. Ajuste la placa de cocción a 150 ° C y 1100 rpm por 5 min mezclar completamente la solución de aceite.
- La solución de aceite de la placa y limpiar el espacio de trabajo en preparación para la creación del fantasma.
- Retire los materiales desde el banquillo: jeringa de 2.0 mL con aguja (usada), aceite de cacahuete y surfactante soluble en el aceite.
- Coloque los siguientes materiales y equipos en el Banco: matraz Erlenmeyer de 250 mL agregue bar (limpiar), pipetas volumétricas, soporte de pipeta aforada y frascos de vidrio 5 x 120 mL.
4. crear emulsión fantasma
- Preparar pipetas volumétricas para las soluciones de agua y el aceite. Pipetas deben ser utilizadas con su respectiva solución para evitar la contaminación cruzada.
- Coincide con el tamaño de la pipeta el volumen que se utiliza en el protocolo. Por ejemplo, utilizar pipetas volumétricas de 2 x 50 mL (50 mL de solución de agua + 50 mL de solución de aceite) para crear un 100 mL fantasma con un objetivo FF de 50% de materia grasa.
- Coloque la solución de agua sobre la placa y la placa caliente a 300 ° C y 1100 rpm. Después de 4-5 minutos, apague el agitador.
- Usando una pipeta volumétrica, compruebe si la solución de agua lista para extracción parcialmente llenar la pipeta con una pequeña cantidad (5-10 mL) de la solución y soltando hacia el vaso. Si la solución del agua se puede quitar fácilmente y lanzada sin exceso remanente en la pipeta, pasemos al siguiente paso, de lo contrario, deja sobre la placa y comprobar otra vez en 2-3 minutos.
Nota: Los componentes de la solución del agua son más susceptibles a establecer y separar, por lo que es mejor que la solución de agua caliente tan a menudo como sea posible o agitación. Si la solución del agua no se calienta y agita antes de transferir, será muy difícil de medir volúmenes exactos debido a la tendencia de agar a congelar cuando está refrescado. - Agregue cuidadosamente una barra de agitación limpio a un erlenmeyer de 250 mL. Tomar la solución de agua de la placa, medir el volumen adecuado (tabla 2) y transferir al matraz Erlenmeyer.
- Coloque la solución de aceite en la placa y ajuste a 90 ° C y 1100 rpm para asegurar que la solución es homogénea. Después de 1-2 min, retirar la solución de aceite de la placa y reemplazarlo con el matraz Erlenmeyer.
- Mida la cantidad apropiada de la solución de aceite (tabla 2) y añadir lentamente a la solución del agua en el matraz Erlenmeyer.
- Una vez que se ha añadido una solución de aceite todos, aumentar la temperatura a 300 ° C y mantener la agitación a 1100 rpm. Mezcle las soluciones combinadas para 4-5 minutos (debe ser vortex de la barra de agitación). La emulsión debe ser blanca, con una textura cremosa.
- Utilizar un recuperador de la barra de agitación magnética para quitar la barra de agitación.
Nota: El recuperador de bar Revolver se debe utilizar para eliminar las barras de agitación de todo futuro emulsiones. Límpielo a fondo entre cada uso. - Utilice guantes resistentes al calor para con cuidado, vierta la mezcla en el matraz Erlenmeyer en un tarro de cristal de 120 mL limpio. Vierta lentamente la mezcla hacia abajo el lado de la jarra de vidrio para evitar burbujas en la mezcla, se enfría.
- Limpia el matraz Erlenmeyer y barra de agitación, luego repita los pasos 4.2-4.8, ajustando las cantidades de soluciones de agua y aceite, hasta que se crean todos los fantasmas.
Nota: Asegúrese de que el vidrio esté frío antes de limpiarlo.
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Representative Results
Si la solución del agua ha sido preparada correctamente, una pequeña cantidad de la solución debe congelar rápidamente en un frasco de prueba (figura 1, izquierda). Si la solución separa (figura 1, derecha), la solución se prepara otra vez (como se indica en el paso 3.8 del Protocolo). Si la emulsión separa (ejemplos en la figura 2, izquierda y derecha), el fantasma no es viable y debe ser desechado. Cuando esto ocurre, generalmente es porque la emulsión no alcanzó una temperatura lo suficientemente alta.
Fantasmas de éxito se congelan para formar una mezcla homogénea, que puede ser reflejada y medida a través de MRI. (Figura 3). Un coeficiente de correlación concordancia alta (0.998; intervalo de confianza del 95%: 0.972-1.00) y la inclusión de la línea de identidad dentro de la banda de confianza del 95% de la línea de regresión sugiere los valores de señal grasa MRI observó media fracción (FSF) medidos en un región de interés en las imágenes no difirieron significativamente de los valores conocidos de FF en los fantasmas de la grasa del agua (figura 4).
Figura 1. Ilustración de congelado (izquierda) y separado viales de prueba de solución de agua (derecha). Un frasco pequeño de prueba debe ser muestreado para evaluar la viabilidad de la solución de agua. Si la solución del agua se congela (izquierda), continuar con el siguiente paso en el protocolo de construcción fantasma. Si la solución de agua se separa (indicada por dos flechas en derecho vial), la solución de agua necesita volver a estar preparado antes de que puede ser utilizado para la formación de la emulsión fantasma.
Figura 2. Ejemplo de emulsiones fantasmas fracasados. Inspeccione visualmente el fantasma aproximadamente 10 minutos después de servir para determinar si la emulsión se establecido correctamente. Si el fantasma comienza a separar (izquierda) o no homogéneo (derecha), los fantasmas necesitan ser rehecho.
Figura 3. Representación esquemática de una gama de fantasmas y sus resultados respectivos de resonancia magnética (MRI). Imágenes muestran diferencias de color ligero en los fantasmas construidos (0%, 25%, 50%, 75% y 100%; superior). Mapas de densidad de protones de grasa-señal-fracción (FSF) revelan una medida homogénea de FSF relacionada con el contenido de grasa de meta (centro). Efectos de borde distintos debido a las propiedades de proyección de imagen de los envases de vidrio son evidentes en las fronteras de cada mapa FSF.
Figura 4. Diagrama de dispersión que muestra los valores de la FSF medidos en función de valores conocidos de FF (puntos azules). La línea sólida negra indica identidad. La línea azul de trazos indica la línea de mejor ajuste. El área sombreada indica el intervalo de confianza del 95% de las estimaciones. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.
Figura 5. Dibujo que ilustra el alto nivel Resumen del Protocolo de. La parte superior izquierda del diagrama muestra los ingredientes, materiales y configuración de la placa para la preparación de la solución de agua y la parte superior derecha del diagrama muestra los ingredientes, materiales y configuración de la placa para la preparación de la solución de aceite. La parte inferior muestra la configuración de la placa para combinar las soluciones de agua y el aceite para formar la emulsión. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.
| Cantidad | Equipo/Material | ||
| 300 mL | Agua destilada | ||
| 9,0 g | Agar | ||
| 0,6 mL | Surfactante soluble en agua | ||
| 0,24 mL | Agente de contraste gadolinio-DTPA | ||
| 0.3 g | Benzoato de sodio | ||
| 300 mL | Aceite de cacahuete | ||
| 2.0 mL | Soluble en el aceite Surfacant | ||
| 1 * | Placa calefactora con agitador | ||
| 3 | Remover las barras | ||
| 2 | vaso de precipitados de 400 mL | ||
| 1 | Matraz Erlenmeyer de 250 mL | ||
| 2 | Pipeta aforada 25 mL | ||
| 1 | 3.0 mL jeringa | ||
| 2 | 1,0 mL jeringa | ||
| 3 | Agujas de jeringa | ||
| 1 | Espátula de | ||
| 1 | Escala | ||
| 2 | Pesar de barcos | ||
| 5 | Frascos de vidrio de 120 mL | ||
| 1 | Guantes resistentes al calor (par) | ||
| 1 | frasco de 1-3 dram | ||
| 2 | pipeta aforada 50 mL | ||
| 2 | pipeta aforada de 75 mL | ||
Tabla 1. Cantidad de materiales y equipos necesarios para la fantasmas de 5 x 100 mL (0%, 25%, 50%, 75% y 100%).
| Mediciones de agua/aceite fantasma | ||
| Porcentaje de grasa | Solución de agua | Solución de aceite de |
| 0% | 100 mL | 0 mL |
| 25% | 75 mL | 25 mL |
| 50% | 50 mL | 50 mL |
| 75% | 25 mL | 75 mL |
| 100% | 0 mL | 100 mL |
Tabla 2. Mediciones de aceite y agua soluciones para crear fantasmas de 5 x 100 mL (0%, 25%, 50%, 75% y 100%).
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Discussion
Se describe un método robusto para crear fantasmas de grasa agua conveniente para la validación de las técnicas de imagen médicas utilizadas para cuantificar el tejido adiposo y triglicéridos contenidos en vivo. Creando dos embalses (uno para la solución de aceite) y otro para la solución de agua, se construyeron fantasmas estables con una variedad de los valores de FF, incluidos los valores superiores al 50%, sin necesidad de equipo costoso. Fantasmas de FF alta (> 50%) ofrecen la utilidad de las técnicas de imagen para la cuantificación de grasa sean válidas para los tejidos u órganos con altos valores de FF, como tejido adiposo marrón5. Las estimaciones de MRI de la FSF se correlacionaron bien con los valores conocidos de FF.
Cuando hay solamente una sola placa (como se describe en este protocolo), la logística de mantener el calor en cada solución es una preocupación primaria. Sin calefacción ni agitación, la solución del agua puede enfriar y empezar a congelar. Para evitar esto, coloque la solución de agua sobre la placa (< 100 ° C, ~ 100 rpm) siempre que sea posible y siempre entre mezcla fantasmas. Lo importante, soluciones de agua y el aceite deben ser bien mezcladas cuando cada solución se extrae para crear el fantasma. Siempre coloque la solución respectiva en la placa de al menos 30 s (< 100 ° C, ~ 100 rpm) antes de extraer la solución. En un caso ideal, puede usarse placas separadas para la solución de agua, la solución de aceite y la emulsión fantasma. Siga los mismos pasos descritos anteriormente para crear cada solución. Una vez completamente mezclado, configurar ambas placas a 50 ° C y 100 rpm para evitar la congelación y asentamiento. Antes de extraer la solución del vaso, apague el agitador y espere que la barra de agitación completamente detengan.
Mientras que la precisión y exactitud del aceite a la proporción de agua en la emulsión es crítica, las mediciones de cada componente en las soluciones de agua y el aceite permiten más flexibilidad. En su fundación, la FSF observaron MRI es una medida de "grasa" versus "sin grasa" señales en el volumen total; por lo tanto, "sin grasa" puede ser cualquier compuesto que contribuye a la intensidad de la señal de imagen (agua, agar, surfactante, etcetera). Te recomendamos medir tan exactamente como sea posible, los componentes de solución de agua y el aceite como las proporciones encontradas para crear los fantasmas más estables y repetibles. Desviaciones pequeñas de la cantidad de agar en la solución de agua (por ej., 8.9 en vez de 9,0 g), sin embargo, no debería afectar el FF total de la emulsión si se mantiene el aceite a la proporción de la solución de agua. La medición de los volúmenes de las soluciones de agua y el aceite por encima de la temperatura ambiente también puede causar un pequeño error debido a los efectos de expansión térmica del volumen de cada componente. Teniendo en cuenta la temperatura volumétrica coeficientes de expansión de agua y aceite, tal como se refleja en sus densidades16,17y los relativamente pequeños cambios de temperatura, calculamos el error del general FF por termal expansión sea inferior al 0.5%. Además tenemos en cuenta la posibilidad de que el relaxivity de gadolinio-DTPA para el agua y los lípidos puede ser diferentes. Si así y dependiendo de los parámetros de secuencia de pulso, podría disminuir la exactitud cuantitativa de las mediciones de resonancia magnética FSF. La FSF observaron MRI también puede variar con el modelo espectral para analizar los datos.
Aunque el método descrito aquí sólo se ha utilizado para hacer fantasmas entre 10 mL y 200 mL, la técnica puede utilizarse para producir fantasmas de volumen más pequeño o más grande. En particular, es difícil extraer volúmenes de < 10 mL de los embalses debido a la viscosidad de las soluciones. Fantasmas de pequeño volumen, por lo tanto, requieren emulsión sobrante desde el que establecer el volumen deseado para mantener la precisión de FF del fantasma final. Por ejemplo, un fantasma con un 10% objetivo FF de 10 mL requiere una extracción de 10 mL de una emulsión de 100 mL. Al crear fantasmas grandes (> 100 mL), debe ampliarse el tamaño de la barra de agitación y cristalería para arriba junto (y la proporción de solución a la capacidad del material de vidrio) para crear un vórtice en la solución cuando el agitador es > 500 rpm. La emulsión probablemente no lograrán homogeneidad sin un vórtice.
Dada la complejidad de crear fantasmas FF alta, pequeñas desviaciones del protocolo pueden tener un profundo efecto en la estabilidad y la calidad del final fantasma. Las condiciones ambientales, como temperatura, altitud y humedad, pueden alterar el proceso de preparación fantasma de manera inconsistente y afectar el producto final. Los controles intermedios de la solución de agua proporcionan oportunidades para detectar y mitigar estos posibles efectos. Sin embargo, es posible que incluso con atención rigurosa a los detalles de protocolo, el fantasma final puede separarse, y el proceso tendrá que repetirse.
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Disclosures
Los autores declaran que la investigación se llevó a cabo en ausencia de cualquier relación comercial o financiera que pueda interpretarse como un potencial conflicto de interés.
Acknowledgments
Apoyo financiero para esta investigación fue proporcionada a los institutos nacionales de salud (NIH) e Instituto Nacional de Diabetes y digestivo y enfermedades del riñón (NIDDK) / NIH R01-DK-105371. Agradecemos a Dr. Houchun (Harry) Hu para consejos y sugerencias sobre creación fantasma agua grasa.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Distilled Water | Amazon | B000P9BY38 | Base of water solution |
| Agar | Sigma Aldrich Incorporated | A1296-100G | Gelling agent |
| Water-Soluble Surfactant | Sigma Aldrich Incorporated | P1379-500ML | Surfactant/emulsifying agent |
| Gadolinium-DTPA Contrast Agent | Bayer Healthcare | 50419-0188-01 | Magnetic Resonance Imaging Contrast Agent. |
| Sodium Benzoate | Sigma Aldrich Incorporated | 71300-250G | Preservative |
| Peanut Oil | Amazon | 54782-LOU | Base of oil solution |
| Oil-Soluble Surfactant | Sigma Aldrich Incorporated | S6760-250ML | Surfactant/emulsifying agent |
| Hotplate w/ Stirrer | Fisher Scientific | 07-770-152 | |
| Stir bars (Egg-Shaped) | Sigma Aldrich Incorporated | Z127116-1EA | |
| 400 mL Beaker | Sigma Aldrich Incorporated | CLS1003400-48EA | |
| 250 mL Erlenmeyer Flask | Sigma Aldrich Incorporated | CLS4450250-6EA | |
| 25 mL Glass Volumetric Pipette | Fisher Scientific | 13-650-2P | Quantity = 2 |
| 50 mL Glass Volumetric Pipette | Fisher Scientific | 13-650-2S | Quantity = 2 |
| 75 mL Glass Volumetric Pipette | Fisher Scientific | 13-650-2T | Quantity = 2 |
| 3.0 mL Syringe | Sigma Aldrich Incorporated | Z248002-1PAK | |
| 1.0 mL Syringe | Sigma Aldrich Incorporated | Z230723-1PAK | |
| Spatula | Sigma Aldrich Incorporated | S3897-1EA | |
| Scale (100g X 0.01g Resolution) | Amazon | AWS-100-BLK | |
| Weigh Boats | Sigma Aldrich Incorporated | Z740499-500EA | |
| 120 mL Glass Jars | McMaster Carr Supply Co | 3801T73 | |
| Heat Resistant Gloves (pair) | Amazon | B075GX43MN | |
| Syringe Needles | Sigma Aldrich Incorporated | Z192341-100EA | |
| 18" stir bar retriver | Fisher Scientific | 14-513-70 | |
| 1 Dram Clear Glass Vial | Fisher Scientific | 03-339-25B |
References
- Franz, D., et al. Association of proton density fat fraction in adipose tissue with imaging-based and anthropometric obesity markers in adults. Int J Obes. , 1-8 (2017).
- Chai, J., et al. MRI chemical shift imaging of the fat content of the pancreas and liver of patients with type 2 diabetes mellitus. Exp Ther Med. 11 (2), 476-480 (2016).
- Hogrel, J. Y., et al. NMR imaging estimates of muscle volume and intramuscular fat infiltration in the thigh: variations with muscle, gender, and age. Age (Omaha). 37 (3), 1-11 (2015).
- Hoskins, P. R. Simulation and Validation of Arterial Ultrasound Imaging and Blood Flow. Ultrasound Med Biol. 34 (5), 693-717 (2008).
- Hu, H. H., Perkins, T. G., Chia, J. M., Gilsanz, V. Characterization of human brown adipose tissue by chemical-shift water-fat MRI. Am J Roentgenol. 200 (1), 177-183 (2013).
- d'Assignies, G., et al. Noninvasive quantitation of human liver steatosis using magnetic resonance and bioassay methods. Eur Radiol. 19 (8), 2033-2040 (2009).
- Schwenzer, N. F., et al. Quantification of pancreatic lipomatosis and liver steatosis by MRI: comparison of in/opposed-phase and spectral-spatial excitation techniques. Invest Radiol. 43 (5), 330-337 (2008).
- Wokke, B. H., et al. Quantitative MRI and strength measurements in the assessment of muscle quality in Duchenne muscular dystrophy. Neuromuscul Disord. 24 (5), 409-416 (2014).
- Fischer, M. A., et al. Liver Fat Quantification by Dual-echo MR Imaging Outperforms Traditional Histopathological Analysis. Acad Radiol. 19 (10), 1208-1214 (2012).
- Hayashi, T., et al. Influence of Gd-EOB-DTPA on proton density fat fraction using the six-echo Dixon method in 3 Tesla magnetic resonance imaging. Radiol Phys Technol. , (2017).
- Hines, C. D. G., Yu, H., Shimakawa, A., McKenzie, C. A., Brittain, J. H., Reeder, S. B. T1 independent, T2* corrected MRI with accurate spectral modeling for quantification of fat: Validation in a fat-water-SPIO phantom. J Magn Reson Imaging. 30 (5), 1215-1222 (2009).
- Fukuzawa, K., et al. Evaluation of six-point modified dixon and magnetic resonance spectroscopy for fat quantification: a fat-water-iron phantom study. Radiol Phys Technol. , 1-10 (2017).
- Bernard, C. P., Liney, G. P., Manton, D. J., Turnbull, L. W., Langton, C. M. Comparison of fat quantification methods: A phantom study at 3.0T. J Magn Reson Imaging. , (2008).
- Poon, C., Szumowski, J., Plewes, D., Ashby, P., Henkelman, R. M. Fat/Water Quantitation and Differential Relaxation Time Measurement Using Chemical Shift Imagin Technique. Magn Reson Imaging. 7 (4), 369-382 (1989).
- Yu, H., Shimakawa, A., Mckenzie, C. a, Brodsky, E., Brittain, J. H., Reeder, S. B. Multi-Echo Water-Fat Separation and Simultaneous R2* Estimation with Multi-Frequency Fat Spectrum Modeling. Spectrum. 60 (5), 1122-1134 (2011).
- Peri, C. The extra-virgin olive oil handbook. , John Wiley & Sons, Ltd. Chichester, UK. (2014).
- Kell, G. S. Density, Thermal Expansivity, and Compressibility of Liquid Water from 0° to 150°C: Correlations and Tables for Atmospheric Pressure and Saturation Reviewed and Expressed on 1968 Temperature Scale. J Chem Eng Data. 20 (1), 97-105 (1975).
