Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Engineering

One-Step Ansatz zur Herstellung von Polydimethylsiloxan mikrofluidische Kanäle von verschiedenen geometrischen Abschnitte durch sequentielle Nassätzen Prozesse

Published: September 13, 2018 doi: 10.3791/57868

Summary

Für die Herstellung der Kanäle nicht-rechteckige Abschnitte eingebettet in Polydimethylsiloxan mikrofluidischen Geräte gibt es mehrere Methoden. Die meisten von ihnen beinhalten mehrstufige Fertigung und umfassende Ausrichtung. In diesem Papier ist ein ein-Schritt-Ansatz zur Herstellung von mikrofluidischen Kanäle von verschiedenen geometrischen Querschnitte von Polydimethylsiloxan sequentielle Nassätzen gemeldet.

Abstract

Polydimethylsiloxan (PDMS) Materialien sind wesentlich ausgenutzt, um mikrofluidischen Geräten mit weichen Lithographie Replik Formteil Techniken zu fabrizieren. Maßgeschneiderte Kanal-Layout-Designs sind für bestimmte Funktionen und integrierten Performance von mikrofluidischen Geräten in zahlreichen chemischen und biomedizinischen Anwendungen (z. B. Zellkultur, Biosensoren, chemische Synthese und Handhabung von Flüssigkeiten) notwendig. Aufgrund der Beschaffenheit der Guß Ansätze mit Silizium-Wafer mit Fotolack Schichten als Meister-Schimmel durch Photolithographie gemustert haben mikrofluidische Kanäle häufig regelmäßige Querschnitte von rechteckigen Formen mit identischen Höhen. In der Regel Kanäle mit mehreren Höhen oder verschiedene geometrische Abschnitte sollen dazu dienen, bestimmte Funktionen zu besitzen und in verschiedenen mikrofluidische Anwendungen auszuführen (z. B.Hydrophoresis wird verwendet für die Sortierung von Partikeln und in kontinuierlichen Bewegungen zum Trennung von Blutkörperchen6,7,8,9). Daher hat viel Aufwand Kanäle mit verschiedenen Abschnitten durch mehrstufige Ansätze zu konstruieren, wie Photolithographie mit mehreren Photoresist Schichten und Montage von verschiedenen PDMS Blätter dünne. Dennoch, solche mehrstufige Ansätze beinhalten in der Regel langwierige Verfahren und umfangreiche Instrumentierung. Darüber hinaus gefertigten Geräte können nicht konsequent durchführen und die entstandenen experimentellen Daten können unberechenbar sein. Hier wird ein ein-Schritt-Ansatz für die einfache Herstellung von mikrofluidischen Kanäle mit verschiedenen geometrischen Querschnitte durch PDMS sequentielle Nassätzen Prozesse, entwickelt das Ätzmittel in Kanäle der geplanten Einzellagen-Layouts einführt eingebettet in PDMS Materialien. Im Vergleich zu den vorhandenen Methoden zur Herstellung von PDMS mikrofluidische Kanäle mit unterschiedlichen Geometrien, kann die entwickelten ein-Schritt-Ansatz deutlich die um Kanäle mit nicht-rechteckige Abschnitte oder in verschiedenen Höhen zu fabrizieren vereinfachen. Infolgedessen ist die Technik einen Weg für den Bau von komplexen mikrofluidische Kanäle, die eine Fertigung Lösung zur Förderung der innovativen mikrofluidischen Systemen.

Introduction

Mikrofluidischen Techniken haben in den letzten Jahrzehnten aufgrund ihrer inhärenten Vorteile für eine Vielzahl von chemischen und biomedizinischen Forschung und Anwendung. Es gibt verschiedene Materialeinsatz-Möglichkeiten für den Bau von mikrofluidischen Chips heute, wie Polymere, Keramiken und Silizium-Materialien. Nach bestem Wissen, unter den Materialien mikrofluidischen ist PDMS die häufigste aufgrund seiner entsprechenden Materialeigenschaften für verschiedene Mikrofluidik-Forschung und Anwendungen, einschließlich seiner optischen und biologischen Kompatibilitäten mit Partikeln, Flüssigkeiten und extrem kleine Lebewesen1,2,3,4,5. Darüber hinaus können die Chemie und Struktur mechanischen Oberflächeneigenschaften von PDMS Materialien angepasst werden, um mikroelektromechanische und Einhaltung Studien zu erleichtern, durch die Anwendung solcher Polymer-basierten mikrofluidischen Geräten10, 11,12. Bezüglich der Herstellung von mikrofluidischen Geräten mit gestalteten Kanal Muster gelten weiche Lithographie Replik Formgebungsverfahren in der Regel um die mikrofluidische Kanäle zu schaffen, durch den Einsatz ihrer entsprechenden Meister-Schimmel, bestehend aus sind Photolithographie-gemusterten Photoresist Schichten und Silizium Wafer Substrate12. Aufgrund der Beschaffenheit der Guß Ansätze mit Silizium-Wafer mit gemusterten Photoresist Schichten haben mikrofluidische Kanäle häufig regelmäßige Querschnitte von rechteckigen Formen mit identischen Höhen.

Vor kurzem haben Forscher erhebliche Fortschritte in biomedizinischen Studien, zum Beispiel behandeln, Sortierung Partikel und Zellen mit Hydrophoresis, Trennung von Blutplasma und Anreicherung von weißen Blutkörperchen durch die Anwendung von mikrofluidischen Chips mit Kanälen verschiedenen Höhen oder geometrische Abschnitte6,7,8,9. Diese Sortierung und Trennung der Funktionen der Mikrofluidik für biomedizinische Anwendungen werden realisiert durch Kanäle mit verschiedenen geometrischen Abschnitten anpassen. Mehrere Studien haben auf die Herstellung von mikrofluidischen Kanälen mit Querschnitten von verschiedenen Geometrieelemente gewidmet, durch die Herstellung von Meister-Schimmel mit bestimmten Oberflächenmuster verschiedener Höhen oder nicht-rechteckige Querschnitte. Diese Studien über Schimmel Fertigung gehören Techniken wie mehrstufige Photolithographie, Fotolack Reflow und Graustufen-Lithographie13,14,15. Die bestehenden Techniken zwangsläufig fein gearbeitete Photomasks oder eine präzise Ausrichtung in mehrstufigen Herstellungsverfahren, die die variationsebenen der entsprechenden Fabrikation von mikrofluidischen Kanälen erheblich verbessern kann. So weit, auf Einzelschritt Fertigungsprozesse für mikrofluidische Kanäle aus verschiedenen Bereichen wurden mehrere Versuche unternommen, aber die jeweiligen Techniken sind auf spezifische Querschnittsformen Kanäle16sehr beschränkt.

In den letzten zwei Jahrzehnten neben die Formteil-Ansätze für die Herstellung von PDMS mikrofluidische Kanäle mit verschiedenen Abschnitten, Radierung Techniken zur Musterung PDMS Kanäle mit geometrischen Merkmalen der Herstellung der Wahl in einer Vielzahl von geworden mikrofluidische Anwendungen. Zum Beispiel wird PDMS Nassätzen zusammen mit mehrschichtigen PDMS kleben für den Bau einer pneumatisch betätigten Zelle Kultur Gerät der Mikrofluidik mit rekonstituierten ORGANEBENE Lunge Funktionen17genutzt. Die PDMS nasse Ätzen Technik wird zusammen mit PDMS Casting am zylindrischen Mikrovertiefungen bearbeitet durch computergestützte Steuerungssysteme für die Herstellung von 3D PDMS Microneedle Arrays18eingesetzt. PDMS trockene Radierung dient zur PDMS Mikrostrukturen als Teile von Mikro-elektromechanischen Aktoren19,20. Poröse PDMS-Membranen mit gestalteten Pore Layouts werden auch durch trockene Radierung Prozesse21hergestellt. Die nasse und trockene Radierung Techniken können in PDMS Filme mit bestimmten geometrischen Formen22-Strukturierung integriert werden.

Jedoch Kanal die Radierung Techniken zur Bildung von PDMS Strukturen mit komplexen Abschnitt, die Formen durch ihre immanente Grenzen auf mikrofluidischen Herstellung häufig nicht angewendet wurden. Zuerst, während die Techniken des PDMS Nassätzen Nutzung laminare Strömungen von Chemikalien für die Erstellung von mikrofluidischen Kanäle aus verschiedenen Abschnitten hergestellt worden, ist die nachfolgende Kanal Abschnitt Bildung noch eingeschränkt, da die grundlegenden Merkmale isotrope chemische Ätzung Prozesse23. Darüber hinaus, obwohl es angemessenen Raum scheint für die Steuerung der Kanal Abschnitt Geometrien in einem Mikrofluidik-Herstellung mit PDMS trockenen Radierung Techniken20, soll die erforderliche Radierung Zeit in der Regel zu lang (in Stunden) praktisch für die Herstellung von mikrofluidischen Chips. Darüber hinaus ist die Radierung Selektivität zwischen PDMS Materialien und die entsprechenden Maskierung Photoresist Schichten könnte im Allgemeinen niedrig sein, und die entstandenen geätzten tiefen für die Kanäle sind so nicht akzeptabel20.

In diesem Papier entwickeln wir einen einstufigen Ansatz zur mikrofluidische Kanäle von verschiedenen geometrischen Querschnitte von PDMS sequentielle Nassätzen Prozesse (nachfolgend SWEP) herzustellen. Die SWEP beginnen mit einem PDMS mikrofluidischen Gerät mit Einzellagen-Kanäle. Mit verschiedenen Layout-Designs der Kanäle kann die Herstellung mikrofluidische Kanäle mit verschiedenen geometrischen Abschnitten verschiedener Art durch sequentielle Radierung Prozesse erreicht werden. Die sequentielle Radierung braucht nur ein Ätzmittel in bestimmte Kanäle der geplanten Einzellagen-Layouts eingebettet in PDMS Materialien eingebracht werden. Im Vergleich zu herkömmlichen PDMS Herstellungsprozesse, die SWEP benötigen nur ein weiterer Schritt, mikrofluidische Kanäle nicht-rechteckige Abschnitte zu fabrizieren oder in verschiedenen Höhen. Der vorgeschlagenen SWEP bieten eine unkomplizierte und einfache Herstellung mikrofluidische Kanäle mit verschiedenen Abschnitten entlang der Fließrichtung, die die Prozesse in den oben genannten Methoden erheblich vereinfachen können.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

1. Herstellung von mikrofluidischen Geräte mit Single-Layer-Kanal Layouts

Hinweis: In diesem Papier, ist die weiche Lithographie Methode3 angenommen, für die Herstellung von mikrofluidischen Geräten aus PDMS Materialien hergestellt, um vorzuführen, wie Kanäle mit verschiedenen Abschnitten zu fertigen.

  1. Erstellung von Meister-Schimmel für einen PDMS-Layer mit gestalteten Topologie Funktionen
    1. Kanal-Layouts auf einer PDMS-Schicht für eine einzelne Ätzprozess oder Ätzen nacheinander zu entwerfen.
    2. Skizzieren Sie die invertierten Topologie Features des gestalteten PDMS Layers mit einem CAD-Zeichenprogramm.
    3. Liefern Sie die Skizze-Datei in eine Photolithographie Einrichtung eine gemusterte Fotomaske mit den hochpräzisen invertierten Topologie Eigenschaften gedruckt auf einer Transparenz24Kanal-Layouts zu erhalten.
    4. Einsatz-Isopropyl-Alkohol (2-Propanol (IPA), ≥ 99.9 %), Aceton (Wasserrückstände-2-One, ≥ 99.5 %) und gepufferten oxid Ätzen (BOE, NH4F:HF (V/V) = 6:1) auf der Oberfläche von einem 4-Zoll-Silizium-Wafer, entfernen Staub oder Rückstände und Verunreinigungen zu vermeiden.
    5. Benutzen Sie rund 500 mL entionisiertem Wasser, um die Silizium-Wafer für einen letzten Schliff zu waschen, und wenden Sie dann Stickstoff gespülten Wafer zu trocknen.
    6. Legen Sie einen negativen Ton Fotolack von etwa 20 g auf dem Wafer. Dann drehen die Wafer auf 500 u/min für 15 s und 2.000 u/min für 30 s, eine Photoresist Schicht von rund 75 µm Dicke zu produzieren.
      Hinweis: Verschiedene Photoresist dicken können erreicht werden mit negativen Ton Photoresists mit unterschiedlichen Produktnummern und mit unterschiedlichen Spin-Coating, Back- und Entwicklungsbedingungen, nach der Benutzer-Handbücher25,26.
    7. Weiche Backen des Wafers durch Erhitzen auf einer Herdplatte bei 65 ° C für 3 min. und dann bei 95 ° C für 9 min.
    8. Genommen Sie die Wafer in einer Fotomaske Aligner Maschine zusammen mit gemusterten Transparenz aus Schritt 1.1.3 als Maske.
    9. Gelten Sie in der Maschine Aligner ultraviolettes (UV) Licht bei 300 mJ/cm2 , die Wafer abgedeckt durch die Transparenz verfügbar zu machen.
    10. Nach Exposition gegenüber UV-Licht Platz des Wafers auf einer Herdplatte bei 65 ° C für 2 min und dann bei 95 ° C für 7 min als Post Exposure Bake (PEB).
    11. Nach der PEB stark Regen Sie den Wafer inmitten einer negativen Ton Photoresist Entwickler oder platzieren Sie eingetauchten Wafer in einem Ultraschallbad (37 kHz, Wirkleistung von 180 W) für 7 min zu.
    12. Reinigen Sie den gesamten Wafer wieder mit Isopropyl-Alkohol, jeder Entwickler noch auf den Wafer-Oberfläche zu beseitigen.
    13. Um zu verhindern, dass unerwünschte bonding, Silanize die Oberfläche des Wafers durch die Einführung des Wafers mit 100 µL 97 % Silan (1H, 1H, 2H, 2H- Perfluorooctyl-Trichlorsilan) einer 6 cm Petrischale in den Exsikkator gestellt.
    14. Verbindung der Exsikkator mit einer Vakuumpumpe und der Unterdruck 760 MmHg.
    15. Als nächstes schalten Sie die Pumpe für 15 min. Schalter es ab, und lassen Sie die Wafer zur Ruhe in einem Vakuum in den Exsikkator für 30 min.
      Achtung: Das verdampfte Silan ist extrem schädlich für den Menschen; Daher muss die ganze Wafer-Oberflächen-Passivierung in einem Abzug durchgeführt werden.
    16. Holen Sie den silanisiert Wafer, der Oberfläche Passivierung unterzogen wurde. Den Wafer in einem 15 cm Petrischale zur weiteren Verwendung zu beheben.
      Hinweis: Die gemusterte Wafer ist bereit, als Form von verwendet werden, um die gestalteten Kanal-Layouts zu replizieren umgekehrt PDMS Materialien.
  2. Herstellung von PDMS Kanal Layouts durch die Replikation der invertierten Topologie auf die Formen
    1. Setzen Sie die base PDMS (Monomer) zusammen mit der entsprechenden Katalysator (härter) in einem Volumenverhältnis von 10:1 in einem sauberen und Einweg-Plastikbecher.
    2. Mischen Sie die PDMS-prepolymer-Mischung (aus Schritt 1.2.1) durch ein macht-Rührer mit homogen.
    3. Setzen Sie den Becher in den Exsikkator verbunden mit der Vakuumpumpe für 60 min, eventuell eingeschlossenen Luftblasen in der PDMS-Mischung zu entfernen.
    4. Gießen Sie 20 g (Abschnitt 2) oder 8 g (Abschnitt 3) der PDMS prepolymer Mischung auf der master-Form (hergestellt in Schritt 1.1) mit den invertierten Topologie Eigenschaften der gestalteten Kanal Layouts, und beseitigen Sie alle möglichen Bläschen eingebettet in der PDMS-Materialien mithilfe von t He Exsikkator (für 60 min).
    5. Legen Sie die Form tragen die PDMS-Mischung in einem Ofen bei 60 ° C für 4 h, die Silikon-basierte flüssigen prepolymer Materialien zu heilen.
    6. Nach dem Abkühlen des Wafers mit PDMS auf Raumtemperatur für ca. 20 min, lösen Sie die ausgehärtete PDMS aus der Form mit einem Skalpell und Pinzette.
    7. Passen Sie die freistehende PDMS-Schicht auf eine Fläche (ca. 6 x 6 cm2 für Abschnitt 2 oder 2 x 7,5 cm2 für Abschnitt 3) Abdeckung den gesamten Kanal-Layouts mit einem Skalpell.
    8. Erstellen Sie Kanal-Access-Ports (ein- und Ausläufe) mithilfe einer Biopsie-Punch von 1,5 mm Durchmesser.
      Hinweis: Die Zahlen und die Positionen der ein- und Ausläufe sind basierend auf der Radierung-Prozesse für die Herstellung von spezifischen mikrofluidische Kanäle ausgelegt.
    9. 30 g der PDMS-prepolymer-Mischung in eine Petrischale Gießen, und dann eventuell möglichen Luftblasen eingebettet in der PDMS-Materialien mithilfe der Exsikkator (für 60 min) zu beseitigen.
    10. Setzen Sie die Petrischale mit PDMS-Mischung in einem Ofen bei 60 ° C für mehr als 4 h, die flüssigen prepolymer Materialien zu heilen.
    11. Nach dem Abkühlen der Petrischale zusammen mit PDMS auf Raumtemperatur für ca. 20 min, lösen Sie die ausgehärtete PDMS aus der Schale mit einem Skalpell und Pinzette.
    12. Mit einem Skalpell, passen Sie die freistehende PDMS-Schicht ohne Merkmale Abmessungen identisch mit denen der oben genannten PDMS-Schicht (ca. 6 x 6 cm2 für Abschnitt 2 oder 2 x 7,5 cm2 für Abschnitt 3).
    13. Aktivieren Sie die Oberflächen der beiden PDMS-Schichten (hergestellt in den Schritten 1.2.7 und 1.2.12) mit den gestalteten Kanal-Layouts und ohne Merkmale durch die Aufdeckung der Top PDMS-Materialien zu Sauerstoffplasma in einer Oberflächenbehandlung-Maschine bei 90 W für 40 s.
    14. Bond 2 PDMS "layers" indem man Kontakt zwischen ihren behandelten Oberflächen direkt nach der Sauerstoff-Plasma-Oberflächenaktivierung. Dann verlassen Sie die verklebten PDMS-Schichten in einem Ofen bei 60 ° C für mehr als 30 min.
      Hinweis: Es gibt keine Obergrenze der Zeit für das Verlassen der verklebten PDMS-Schichten in den Ofen.
    15. Nachdem die 2 verklebt PDMS Schichten haben gekühlt, PDMS-Überbestände vom gefertigte Gerät für eine später Versuchsaufbau zu trimmen.

(2) die einstufige Ansatz zur Herstellung von PDMS mikrofluidische Kanäle von verschiedenen Abschnitten

Hinweis: Zur Charakterisierung der PDMS Ätzrate nass, wird eine mikrofluidischen Gerät mit einem einlagigen und geraden Kanal rechteckige Formen vorgeschlagen, zur Identifizierung von spezifischen Radierung Preise entsprechend bestimmten experimentellen Einstellungen ausgebeutet werden.

  1. Experimentelle Charakterisierung von PDMS nass Radierung
    1. Bereiten Sie eine Ätzmittel Lösung durch Mischen von Tetra-n-Butylammonium Fluorid (TBAF, eine 1 M Lösung in Tetrahydrofuran (THF)) mit 1-Methyl-2-Pyrrolidinone (NMP) mit einer Rate von V: V = 01:10.
      Hinweis: NMP ist in der Lage, effizient lösen chemische Rückstände durch das Ätzmittel induziert. Im allgemeinen PDMS Materialien sind geringfügig von der NMP geschwollen, und die PDMS mikrofluidischen Geräte sind noch in der Lage, ihre Formen, Volumen, bewahren und Bedingungen zu versiegeln.
    2. Zeichnen Sie die gemischten TBAF/NMP Ätzmittel in eine 10 mL Spritze mit einer rostfreien stumpfen Nadel (16 G) verbunden.
    3. Richten Sie eine Spritzenpumpe als Controller der Druck angetrieben Flüssigkeiten in den Kanälen.
    4. Schließen Sie die stumpfen Nadeln von Spritzen mit der Ätzmittel Lösung zum Kanal Hafen des oben genannten einfachen Gerätes gefüllt und führen Sie den entsprechenden Port aus der Steckdose zu einem Abfallbehälter Schläuche, wie in Abbildung 1dargestellt.
    5. Führen Sie die Spritzenpumpe tragen die Spritzen mit der gemischten TBAF/NMP Ätzmittel Lösung bei 150 µL/min Durchfluss zur Charakterisierung der PDMS Radierung nass.
    6. Verwenden Sie Hellfeld mikroskopische Ansichten und sicherstellen Sie, dass die geätzte Kanal entlang der Fließrichtung eine einheitliche Breite hat, somit bestätigen, dass das Mischungsverhältnis von das Ätzmittel Volumen und die Durchflussmenge Ätzmittel sind ausreichend.
    7. Die Zeitreihen Aufnahmen des Kanals Querschnitt unter einem inversen Mikroskop mit 4 X Vergrößerung während der Ätzprozess PDMS.
    8. Analysieren Sie die gespeicherten Bilder, durch die Anwendung der grundlegenden Messfunktion in einer 2D Analyse des Programms bildgebenden Verarbeitung eine zeitlichen Abfolge der Zahlen für die Kanalbreite während der nassen Ätzprozess PDMS Materialien zu sammeln.
    9. Bewerten die Zeitreihen Ätzen-Preise durch die Gleichung dargestellt in Abbildung 2, die 50 % der Breite Kanalwechsel spaltet (ΔW / 2) um die Dauer der PDMS-Radierung (t).
    10. Führen Sie eine lineare Regression der gesammelten Datenpunkte, um eine allgemeine Schätzung Ätzrate von gemischten TBAF/NMP-Ätzmittel mit dem spezifischen Volumen Mischungsverhältnis von 01:10 für die PDMS-Materialien, wie in Abbildung 2dargestellt.
  2. PDMS sequentielle nass für die Herstellung von mikrofluidischen Kanäle von verschiedenen geometrischen Abschnitte Ätzen
    1. Entwerfen Sie eine Anordnung von Ätzmittel Buchten für die einschichtige PDMS Kanallayout dienen die entsprechenden ätzprozesse nacheinander, so dass einem bestimmten Kanaltyp der verschiedenen Querschnittsformen wie in Abbildung 3 dargestellt gefertigt werden kann.
    2. Folgen Sie die nachfolgend beschriebenen Schritte 2.1.1 - 2.1.7 für PDMS nassen Ätzen Ansatz.
      Hinweis: Die Durchflussmenge wird als 50 μL/min eingestellt.
    3. Während die TBAF/NMP Ätzmittel fließen, inspizieren Sie die geätzten Kanäle unter dem Mikroskop zu sehen, ob es erhebliche Probleme wie eine merkliche Menge Blasen gibt, eine verbleibende mehrere chemische Rückstände durch das Ätzmittel, ein Austreten von das Ätzmittel induziert, oder einen Fluss von Ätzmittel auf einer schiefen Ebene.
    4. Beobachten der mikrofluidischen Kanal wanddickenschwankung invertierte Mikroskopie und Zeit den nassen Ätzverfahren um sicherzustellen, dass die richtigen Kanal Geometrien erreicht werden.

3. das Design eines mikrofluidischen Mixer

Hinweis: Eine Design von mikrofluidischen Mischer der effizient 2 unterschiedliche Flüssigkeiten mischen kann zeigt hier um eine vorteilhafte Anwendung mikrofluidische Kanäle mit verschiedenen Abschnitten zu zeigen.

  1. Herstellung von einem mikrofluidischen Mischer mit verschiedenen u-profile
    1. Machen Sie eine PDMS-Gerät mit einem einlagigen mikrofluidischen Kanal des Entwurfs durch das weiche Lithographie Replikat molding Technik (Abschnitt 2) in Abbildung 4 dargestellt.
    2. Die einschichtige mikrofluidischen Kanallayout führen Sie die TBAF/NMP Ätzmittel Lösung gemäß die Verfahren in Schritt 2.1.1 vom Hafen gekennzeichnet als "Outlet" bei 20 µL/min Durchfluss in Abbildung 4beschrieben vorbereitet ein.
    3. Die mikrofluidischen Kanal wanddickenschwankung unter dem Mikroskop zu beobachten, und Zeit nassen Ätzverfahren um sicherzustellen, dass die richtigen Kanal-Geometrien, wie Sie in Abbildung 5 dargestellt erreicht werden.
  2. Experimentelle Charakterisierung von mikrofluidischen mixer
    1. Nachdem der mikrofluidischen Kanal mit Abschnitten in verschiedenen Formen in einem alternativen Muster realisiert wird, Pumpe 2 unterschiedliche Flüssigkeiten einschließlich einer Lösung von Fluorescein Natrium Salz mit einer Konzentration von 50 µg/mL und destilliertes Wasser in 2 separate Kanäle mit 20 µL/min Durchfluss.
    2. Nehmen Sie Fluoreszenz Mikroskopbilder des Kanals in der Draufsicht an den Positionen gekennzeichnet als A, B, C und D unter einem inversen Mikroskop (4 X Vergrößerung) für die 2 Mischer mit einheitlichen (vor der Ätzung) und verschiedene geometrische Abschnitte (nach 2 h von SWEP), bzw.) ( Abbildung 6).
      Hinweis: Die Fluoreszenz-Mikroskop-Bilder stammen, während die stabile Ströme auftreten, zum Zeitpunkt der 5 min, gerechnet ab Beginn Momente durch den Mixer-Kanäle zu mischen.
    3. Analysieren die fluoreszierenden Aufnahmen mithilfe eines bildgebenden Verarbeitung-Programms um zu schätzen, die entsprechenden mischen Effizienz-Nummern, die durch Mischen Residual definiert sind (MR, 0,5 = unvermischt, 0 = vollständig gemischt) in der folgenden Gleichung27, 28:
      Equation
      Hier,
      t ist die Zeit, Radierung,
      L ist die Kanalbreite an einer bestimmten Position von Interesse,
      S ist ein Liniensegment über den Kanal an der Position, und
      I ist die Fluoreszenz Intensitätsverteilung über S t.
    4. Plot der Fluoreszenz Intensitätsverteilung über S über den Kanal an den Positionen gekennzeichnet als A, B, C und D für die 2 Mischer mit einheitlichen (vor der Ätzung) und verschiedene geometrische Abschnitte (nach 2 h von SWEP), beziehungsweise. Schätzen Sie die entsprechenden Herr, wie in Abbildung 6dargestellt.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

Vor kurzem wurden eine große Anzahl von Studien auf die Herstellung von mikrofluidischen Geräten mit Kanälen von verschiedenen Abschnitten von Lithographie Replik Formen von13,14,15 und PDMS Radierung Techniken17 gemacht , 18 , 19 , 20 , 21 , 22. jedoch bestehen noch erhebliche Einschränkungen der Musterung Formen und Schwierigkeiten bei der Herstellung von Operationen16,23. In diesem Papier wird ein einstufige Ansatz zur Herstellung von PDMS mikrofluidische Kanäle von verschiedenen geometrischen Abschnitte von SWEP vorgeschlagen.

Abbildung 1 schematisch zeigt die mikrofluidischen Einzellagen-Kanal Layouts für PDMS Kanäle von verschiedenen Abschnitten von SWEP erstellen und der experimentelle Aufbau des zugehörigen Schlauchsystem. NMP ist ein Puffer für den SWEP-Experimenten verwendet, wie in Abbildung 1a und 1 bdargestellt. In den Experimenten SWEP ist es wichtig, wählen eine richtige Lösungsmittel, die Radierung-Produkte in den Kanälen für die Aufrechterhaltung der laminare Strömungen ausgenutzt, indem die Radierung Prozesse zu beseitigen. Infolgedessen wird die NMP-Puffer als Lösungsmittel ausgewählt, um effektiv lösen sich die Produkte von SWEP22,23.

Die geätzten Kanäle sind auch mit blauen Lebensmittelfarben zeigen die Entwicklung der u-Profile im Inneren des Gerätes mikrofluidischen gefüllt. Durch die Anordnung Ätzmittel Buchten des Musters gestaltete Einzellagen-Kanal, mikrofluidischen u-Profile mit verschiedenen Geometrie-Eigenschaften der verschiedenen Arten der SWEP erhalten Sie durch wie in Abbildung 3gezeigt.

Zur Charakterisierung der PDMS nass Ätzen, eine mikrofluidischen Gerät mit einer Single-Layer und geraden Kanal rechteckige Formen wird genutzt zur Identifizierung einer umfassendes Ätzrate von gemischten TBAF/NMP-Ätzmittel mit einem bestimmten Volumen mischen Verhältnis für die PDMS Materialien. Durch die lineare Regression der gesammelten Datenpunkte der Kanal Breite Variationen in Bezug auf bestimmte Radierung Zeiten, die insgesamt dürfte Ätzrate Ätzmittel Lösung experimentell 2.714 µm/min (Abbildung 2).

Flüssigkeiten fließen in mikrofluidische Kanäle mit einheitlichen Querschnitte meist entlang der Kanalwände, die zufällige Kontakte zwischen Substanz Teilchen zu unterdrücken; Daher wird die Flüssigkeit mischen angetrieben durch Diffusion in der Regel durch besonders lange Kanäle erreicht. Mikrofluidische Kanäle von verschiedenen geometrischen Abschnitte werden dadurch voraussichtlich erleichtern Flüssigkeit mischen mit Hilfe der seitlichen fließenden Bewegungen über u-Profile. In dieser Studie zeigt eine Design von mikrofluidischen Mixer (Abbildung 4) wo zwei unterschiedliche Flüssigkeiten effizient gemischt werden hier für eine vorteilhafte Anwendung mikrofluidische Kanäle mit verschiedenen Abschnitten zu präsentieren. Abbildung 5 präsentiert die Zeitreihen Bilder von mikrofluidischen Mixer-Kanal hergestellt durch die SWEP mit PDMS Materialien in Draufsicht in Stufen von 0 h, 0,25 h 0,40 h, 0,55 h, 0,70 h, h 1,00 und 2,00 h nacheinander Ätzen.

Nach der mikrofluidischen Kanal mit Abschnitten in verschiedenen Formen in einem alternativen Muster realisiert wird und zwei unterschiedliche Flüssigkeiten einschließlich einer Lösung von Fluorescein Natrium Salz und destilliertem Wasser anschließend in zwei getrennten Kanälen, Fluoreszenz gepumpt Mikroskop-Bilder des Kanals in der Draufsicht an den Positionen gekennzeichnet als A, B, C und D unter einem inversen Mikroskop für die zwei Mischer mit Uniform (vor der Ätzung) und verschiedene geometrische Abschnitte (nach 2 h von SWEP), bzw. erfasst werden (Abbildung 6). Diese Bilder sind getroffen, während die stabile Ströme auftreten, zum Zeitpunkt der 5 min, gerechnet ab Beginn Momente durch den Mixer-Kanäle zu mischen. Dann liefern wir diese Fluoreszenz-Mikroskop-Bilder um ein automatisiertes Programm, entwickelt in dieser Studie, die entsprechende Herr Zahlen repräsentieren die mischende Leistungsfähigkeit des Mischers zu extrahieren.

Vor der Ätzvorgang hatte der Kanal des Mischers mit einer serpentine Kanallayout identische Querschnitte der rechteckigen Form. Aufgrund der ausreichenden Kanal Länge notwendigen Mechanismen der Verbreitung, der mikrofluidischen Mixer besitzt ein wesentlicher mischen Effizienz vertreten durch 0.4607, 0.3403, 0.2450 und 0,1940 Herr Zahlen a, B, C und D positioniert, beziehungsweise. Nach 2 h von SWEP, mit gleicher Gesamtlänge Kanal mit dem original hat der mikrofluidischen Mixer u-Profile in verschiedenen Formen in einem anderen Muster. Es ist wichtig, dass der Mixer mit verschiedenen u-Profile einen deutlichen Anstieg bietet in mischenden Leistungsfähigkeit, vertreten durch deutlich sinkenden Herr 0.3875, 0.1915, 0.1336 und 0.0680 bei A, B, C und D positioniert, bzw. wegen der seitlichen Flüssigkeit Bewegungen zu Advektion neben Diffusion Mechanismen. Außerdem von Position B - D, solche Advektion Mechanismen über Kanal Abschnitte führen eine scheinbare und einheitlichen Auftritt Steigerung der mischen Effizienz des Mischers von den SWEP hergestellt.

Figure 1
Abbildung 1: Schlauch-Set-up in mikrofluidischen Einzellagen-Kanal Layouts zum Erstellen von PDMS Kanäle von verschiedenen geometrischen Querschnitte durch sequentielle Nassätzen Prozesse (SWEP). (ein) zeigt diese Schaltplan mikrofluidischen Geräte mit Einzellagen-Kanäle. Die oberste Schicht ist hergestellt mit PDMS mehrere Kanal Entwürfe für nasse Ätzmittel Einlass Arrangements. Die Unterschicht besteht aus PDMS mit einem leeren Muster. (Oben: ein Ätzmittel Einlass, Mitte: zwei Ätzmittel Buchten.) Der Boden ist die Form für die oberste Schicht-Herstellung. (b) zeigen diese Platten das zusammengebaute Gerät für die Herstellung der Kanäle von verschiedenen Abschnitten. Die Breite der Kanäle und die Dicke der Wände sind 50 µm und 100 µm. (c) diese Platten zeigen die experimentellen Fotos des Schlauch-Set-up in mikrofluidischen Einzellagen-Kanal Layouts für die SWEP. (Obere Reihe: ein Ätzmittel Einlass; untere Reihe: zwei Ätzmittel Buchten.) Bitte klicken Sie hier für eine größere Version dieser Figur.

Figure 2
Abbildung 2: Charakterisierung von PDMS nass Ätzen. Diese Abbildung zeigt die lineare Regression des gesammelten halben Kanals Breite Änderungen in Bezug auf die Radierung-Zeiten für die Schätzung einer umfassendes Ätzrate von gemischten TBAF/NMP-Ätzmittel mit einem bestimmten Volumen mischen Verhältnis für die PDMS-Materialien. [Einschub ist ein Schema der Querschnittsgeometrie eine einfache und direkte Kanal Muster für die Charakterisierung von nassen Ätzen Raten von PDMS Materialien. Die gesamte Ätzrate von TBAF/NMP (V: V = 01:10) ist 2.714 µm/min und das entsprechende R-2 (Bestimmungskoeffizient) 0.9913.] Bitte klicken Sie hier für eine größere Version dieser Figur.

Figure 3
Abbildung 3: mikrofluidische Kanäle von verschiedenen geometrischen Abschnitte von sequentiellen PDMS Nassätzen hergestellt. Diese Tafeln zeigen verschiedene Arrangements Ätzmittel Buchten für einlagige PDMS Kanal Layouts dienen die entsprechenden ätzprozesse in Reihenfolge für die Herstellung von bestimmten Kanaltypen der verschiedenen Querschnittsformen wie (ein) kreuzförmige, (b) Hantel-förmige, und (c) glockenförmige Cross-Sectional Geometrien. Bitte klicken Sie hier für eine größere Version dieser Figur.

Figure 4
Abbildung 4: mikrofluidischen Mischer Verwendung Kanäle mit verschiedenen Abschnitten hergestellt. (ein) das Paneel ist eine Konstruktionszeichnung der Layoutbreite Einzellagen-Kanal für die Herstellung von mikrofluidischen Mixer Kanäle mit verschiedenen Abschnitten zu nutzen. Die Unterseite weist die Form für die Herstellung von einschichtigen Kanal. (b) zeigen diese Platten der Kachel-Scan Mikroskop-Bilder von der ganzen Mischpultkanal vor und nach 1 bis 2 h von PDMS nass Ätzen. (c) Diese Tafeln zeigen experimentelle Hellfeld Bilder des Mischers u-Profile, die von 1 bis 2 h von PDMS nass hergestellt sind Ätzen in einer Top-Aussicht (obere Reihe), in ein Schnitt senkrecht zur Strömungsrichtung entlang der X-Achse (zweite aus der (oben), und schneiden Sie in einer Schnittansicht im Schnitt A-A (3. von oben) und B-B (untere Zeile) Positionen. Bitte klicken Sie hier für eine größere Version dieser Figur.

Figure 5
Abbildung 5: Zeitreihen Bilder von mikrofluidischen-Mixer-Kanäle von verschiedenen Abschnitten von der sequentiellen Nassätzen PDMS Materialien hergestellt. (ein) zeigt dieses Fenster die schematische Darstellung einer einlagigen Kanallayout für die Herstellung von einem mikrofluidischen Mischer mit verschiedenen u-Profile. (b) diese Platten zeigt Mikroskopbilder der Mixer-Kanal in einem Top in jeder Radierung Phasen nacheinander anzeigen. Bitte klicken Sie hier für eine größere Version dieser Figur.

Figure 6
Abbildung 6: Charakterisierung von mikrofluidischen Mixer hergestellt durch sequentielle PDMS Nassätzen. (ein) Diese Tafeln zeigen Fluoreszenz Mikroskopbilder des Mixer-Kanal an den Positionen gekennzeichnet als A, B, C und D vor der Einführung von Ätzmittel und um 2 Uhr Ätzen von PDMS Materialien feucht. (b) zeigen diese Platten gemessenen Fluoreszenz Intensität Felder in eine normalisierte Koordinate über den mixerkanal an den Positionen A, B, C und D vor (oben) und um 2 Uhr von PDMS Nassätzen (Mitte) präsentiert. Es zeigt auch die analysierten Herr repräsentieren die mischende Leistungsfähigkeit des Mischers (0,5: unvermischt, 0: vollständig gemischt) auf verschiedene Programmplätze vor und um 2 Uhr der Radierung (unten). Bitte klicken Sie hier für eine größere Version dieser Figur.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

In den letzten Jahrzehnten hat die Mikrofluidik angeboten viel versprechende Mittel durch den experimentellen Plattformen für chemischen und biomedizinischen Forschung sein können systematisch1,2,3,4gebaut, 5. Die Plattformen haben auch ihre Fähigkeiten zu untersuchen verschiedene Zellfunktionen in Vivo unter physiologischen Mikroumgebung Bedingungen über in-vitro- Zelle Studien6,7, präsentiert. 8 , 9. in experimenteller Forschung und Anwendungen, die meisten des Kanals Querschnitte von mikrofluidischen Geräte sind einheitlich und rechteckigen-förmig. Bei solchen Geräten mikrofluidischen Rolle Kanalstrukturen eine wichtige in der Mikroumgebung Bedingungen. Beispielsweise ist mit Mikrofluidik als Apparat für Drug-Delivery, eine passive Kontrolle über solche chemischen Transport durch tuning Durchfluss in den rechteckigen Kanal des standard Querschnitt Geometrie29moduliert. Für eine gewünschte Flussmittel Verteilung der Stofftransport über den Kanal entlang der Fließrichtung können mikrofluidische Kanäle mit verschiedenen geometrischen Abschnitten unter einem insgesamt Volumenstrom Rate Set-up erforderlich sein. Eine beträchtliche Anzahl von Studien haben einige wichtige Schritte zur fertigen solche Chips mit gewünschten Kanäle mit verschiedenen Bereichen, einschließlich der Errichtung von Meister-Schimmel mit bestimmten Oberflächenmuster verschiedener Höhen oder nicht-rechteckige Kreuz genommen. Abschnitte13,14,15 und PDMS Radierung Techniken zur Erstellung von Oberflächen mit geometrischen Merkmalen17,18,19,20 , 21 , 22. jedoch diese Bemühungen nicht nur komplexe Fertigungsprozesse sondern auch beschränken sich auf bestimmte Querschnittsformen der Kanäle16,23.

In diesem Papier ist ein ein-Schritt-Ansatz zur Erstellung PDMS Kanäle mit verschiedenen Abschnitten fortgeschritten durch Ätzmittel in bestimmte Kanäle der geplanten Einzellagen-Layouts in PDMS Materialien eingebettet in eine einfache und konsistente Weise einzuführen. Darüber hinaus sind die isotrope sequentielle Nassätzen Prozesse der Bildung von Kanälen mit verschiedenen Querschnittsformen verifiziert, indem iterative numerische Berechnung30. Offenbar ist es schwierig wegen der isotropen Entfernung des PDMS Materials während der sequenziellen nassen Ätzverfahren Kanal Abschnitt Geometrien mit scharfen Winkeln herzustellen. In der Praxis erfordert die präzise Kontrolle über die fabrizierten Abschnitt Geometrien mikrofluidische Kanäle eine genaue Charakterisierung des PDMS nass Radierung Preise und sorgfältige Arrangements von der damit verbundenen Schlauch-Systemkonfiguration. Im Vergleich zu den vorhandenen Methoden zur Herstellung von PDMS mikrofluidische Kanäle mit unterschiedlichen Geometrien, kann entwickelten ein-Schritt-Ansatz erheblich vereinfachen die Prozesse der Herstellung von Kanälen mit nicht-rechteckige Abschnitte oder in verschiedenen Höhen. Infolgedessen bietet entwickelte Technik eine Möglichkeit für den Bau von komplexen mikrofluidische Kanäle, die zur Entwicklung von innovativen mikrofluidischen Systemen für die unterschiedlichsten Anwendungen führen können.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

Die Autoren haben nichts zu verzollen.

Acknowledgments

Die Autoren dankbar anerkennen, die Unterstützung von National Health Research Institute (NMRI) in Taiwan unter der innovativen Research Grant (IRG) (EX106-10523EI), die Taiwan Ministerium für Wissenschaft und Technologie (die meisten 104-2218-E-032-004, 104 - 2221 - E-001-015-MY3, 105-2221-E-001-002-MY2, 105-2221-E-032-006, 106-2221-E-032-018-MY2), und der Academia Sinica Career Development Award. Die Autoren möchten Heng-Hua Hsu danken für das Korrekturlesen der Handschrift.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
1-Methyl-2-Pyrrolidinone Tedia, Fairfield, OH ME-1962 NMP
10 ml Syringe Becton-Dickinson, Franklin Lakes, NJ 302151
150 mm Petri dish Dogger Science DP-43151
1H,1H,2H,2H- Perfluorooctyltrichlorosilane Alfa Aesar, Ward Hill, MA L16606 97 % silane 
4'' Silicon Dummy Wafer Wollemi Technical, Taoyuan, Taiwan -
Acetone ECHO Chemical, Miaoli, Taiwan AH3102-000000-72EC
AG Double Expose Mask Aligner M&R Nano Technology, Taoyuan, Taiwan AG500-4D-D-V-S-H
Biopsy Punch Miltex, Plainsboro, NJ 33-31
Blunt Needle Jensen Global, Santa Barbara, CA Gauge 16
Buffered Oxide Etch ECHO Chemical, Miaoli, Taiwan PH3101-000000-72EC
Desicattor A-VAC Industries, Anaheim, CA 35.10001.01
Fluorescein Sodium Salt Water Sigma-Aldrich Co., St Louis, MO F6300
ImageJ National Institutes of Health, Bethesda, MD Ver. 1.51 Imaging Processing Program 
Inverted Fluorescence Microscope  Leica Microsystems, Wetzlar, Germany DMI 6000 B
Isopropyl Alcohol (IPA) ECHO Chemical, Miaoli, Taiwan CMOS112-00000-72EC
Leica Application Suite  Leica Microsystems GmbH LAS X
MATLAB MathWorks, Natick, MA R2015b Programming for MR evaluation
Mechanical Convention Oven ThermoFisher Scientific,Waltham, MA Lindberg Blue M MO1450C
Plasma Tretment System Nordson MARCH, Concord CA PX-250 Oxygen plasma surface treatment
Polydimehtylsiloxane (PDMS)  Dow Corning, Midland, MI SYLGARD 184
Polyethylene Tubing Becton-Dickinson and Company, Sparks, MD 427446 PE 205, 10'
Spin Coater ELS Technology, Hsinchu, Taiwan ELS 306MA
Negative Tone Photoresist  MicroChem, Westborough, MA SU-8 2050
Negative Tone Photoresist Developer MicroChem, Westborough, MA Y020100 SU-8 Developer
Surgical Blade Feather, Osaka, Japan 5005093 PDMS cutting
Syringe Pump Chemyx, Houston, TX Fusion 400
Tetra-n-butylammonium Fluoride (TBAF) Alfa Aesar, Ward Hill, MA A10588

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Tung, Y. -C., et al. Optofluidic Detection for Cellular Phenotyping. Lab on a Chip. 12, 3552-3565 (2012).
  2. Lu, Y., Yang, L., Wei, W., Shi, Q. Microchip-based Single-cell Functional Proteomics for Biomedical Applications. Lab on a Chip. 17, 1250-1263 (2017).
  3. Jensen, K. F., Reizman, B. J., Newman, S. G. Tools for Chemical Synthesis in Microsystems. Lab on a Chip. 14, 3206-3212 (2014).
  4. Chang, C. -W., et al. A Polydimethylsiloxane-polycarbonate Hybrid Microfluidic Device Capable of Generating Perpendicular Chemical and Oxygen Gradients for Cell Culture Studies. Lab on a Chip. 14, 3762-3772 (2014).
  5. Mosadegh, B., et al. Integrated Elastomeric Components for Autonomous Regulation of Sequential and Oscillatory Flow Switching in Microfluidic Devices. Nature Physics. 6, 433-437 (2010).
  6. Choi, S., Park, J. -K. Tuneable Hydrophoretic Separation Using Elastic Deformation of Poly(Dimethylsiloxane). Lab on a Chip. 9, 1962-1965 (2009).
  7. Choi, S., Song, S., Choi, C., Park, J. -K. Microfluidic Self-Sorting of Mammalian Cells to Achieve Cell Cycle Synchrony by Hydrophoresis. Analytical Chemistry. 81, 1964-1968 (2009).
  8. VanDelinder, V., Groisman, A. Separation of Plasma from Whole Human Blood in a Continuous Cross-Flow in a Molded Microfluidic Device. Analytical Chemistry. 78, 3765-3771 (2006).
  9. VanDelinder, V., Groisman, A. Perfusion in Microfluidic Cross-Flow: Separation of White Blood Cells from Whole Blood and Exchange of Medium in a Continuous Flow. Analytical Chemistry. 79, 2023-2030 (2007).
  10. Duffy, D. C., McDonald, J. C., Schueller, O. J., Whitesides, G. M. Rapid Prototyping of Microfluidic Systems in Poly(dimethylsiloxane). Analytical Chemistry. 70 (23), 4974-4984 (1998).
  11. Xia, Y., Whitesides, G. M. Soft Lithography. Annual Review of Material Science. 28, 153-184 (1998).
  12. Mello, A. Plastic Fantastic? Lab on a Chip. 2, 31N-36N (2002).
  13. Choi, S., Park, J. -K. Two-step Photolithography to Fabricate Multilevel Microchannels. Biomicrofluidics. 4, 046503 (2010).
  14. Zhong, K., Gao, Y., Li, F., Zhang, Z., Luo, N. Fabrication of PDMS Microlens Array by Digital Maskless Grayscale Lithography and Replica Molding Technique. Optik. 125, 2413-2416 (2013).
  15. Brower, K., White, A. K., Fordyce, P. M. Multi-step Variable Height Photolithography for Valved Multilayer Microfluidic Devices. Journal of Visualized Experiments. (119), e55276 (2017).
  16. Lai, D., et al. Simple Multi-level Microchannel Fabrication by Pseudo-grayscale Backside Diffused Light Lithography. RSC Advances. 3, 19467-19473 (2013).
  17. Huh, D., et al. Reconstituting Organ-Level Lung Functions on a Chip. Science. 328, 1662-1668 (2010).
  18. Deng, Y. -L., Juang, Y. -J. Polydimethyl Siloxane Wet Etching for Three-Dimensional Fabrication of Microneedle Array and High-Aspect-Ratio Micropillars. Biomicrofluidics. 8, 026502 (2014).
  19. Tung, Y. -C., Kurabayashi, K. Nanoimprinted Strain-controlled Elastomeric Gratings for Optical Wavelength Tuning. Applied Physics Letters. 86, 161113 (2005).
  20. Tung, Y. -C., Kurabayashi, K. A Single-Layer PDMS-On-Silicon Hybrid Microactuator with Multi-Axis Out-Of-Plane Motion Capabilities-Part II: Fabrication and Characterization. Journal of Microelectromechanical Systems. 14, 558-566 (2005).
  21. Chen, W., Lam, R. H. W., Fu, J. Photolithographic Surface Micromachining of Polydimethylsiloxane (PDMS). Lab on a Chip. 12, 391-395 (2012).
  22. Balakrisnan, B., Patil, S., Smela, E. Patterning PDMS Using a Combination of Wet and Dry Etching. Journal of Micromechanics and Microengineering. 19, 047002 (2009).
  23. Takayama, S., et al. Topographical Micropatterning of Poly(dimethylsiloxane) Using Laminar Flows of Liquids in Capillaries. Advanced Materials. 13, 570-574 (2001).
  24. Friend, J., Yeo, L. Fabrication of Microfluidic Devices Using Polydimethylsiloxane. Biomicrofluidics. 4, 026502 (2010).
  25. NANO SU-8 2000 Negative Tone Photoresist formulations 2002-2025. , MicroChem Corporation. Newton, MA. Available from: https://www.seas.upenn.edu/~nanosop/documents/SU8_2002-2025.pdf (2000).
  26. NANO SU-8 2000 Negative Tone Photoresist formulations 2035-2100. , MicroChem Corporation. Newton, MA. Available from: https://www.seas.upenn.edu/~nanosop/documents/SU8_2035-2100.pdf (2000).
  27. Hardt, S., Schönfeld, F. Laminar Mixing in Different Interdigital Micromixers: II. Numerical Simulations. AIChE Journal. 49, 578-584 (2003).
  28. Hessel, V., Löwe, H., Schönfeld, F. Micromixers-A Review on Passive and Active Mixing Principles. Chemical Engineering Science. 60, 2479-2501 (2005).
  29. Damiati, S., Kompella, U., Damiati, S., Kodzius, R. Microfluidic Devices for Drug Delivery Systems and Drug Screening. Genes. 9, 103 (2018).
  30. Wang, C. -K., et al. Single Step Sequential Polydimethylsiloxane Wet Etching to Fabricate a Microfluidic Channel with Various Cross-Sectional Geometries. Journal of Micromechanics and Microengineering. 27, 115003 (2017).

Tags

Engineering nass Ausgabe 139 Mikrofluidik Polydimethylsiloxan Herstellung von mikrofluidischen Geräten Radierung mikrofluidische Kanäle von verschiedenen geometrischen Abschnitte mikrofluidischen Mischer
One-Step Ansatz zur Herstellung von Polydimethylsiloxan mikrofluidische Kanäle von verschiedenen geometrischen Abschnitte durch sequentielle Nassätzen Prozesse
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Wang, C. K., Liao, W. H., Wu, H. M., More

Wang, C. K., Liao, W. H., Wu, H. M., Tung, Y. C. One-Step Approach to Fabricating Polydimethylsiloxane Microfluidic Channels of Different Geometric Sections by Sequential Wet Etching Processes. J. Vis. Exp. (139), e57868, doi:10.3791/57868 (2018).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter