Summary
Здесь мы описываем протокол для визуализации аксональное ориентации с флуоресцентными белка в взрослых ноги дрозофилы , фиксации, монтаж, обработка изображений и шаги пост изображений.
Abstract
Большая часть работы по нейрональных спецификации были проведены в генетически и физиологически шансов справиться с возникающими моделей, таких как C. Элеганс, дрозофилы личинок и рыбы, которые занимаются волнообразно движений (как обход или плавание) как их основной режим локомоции. Однако, более сложный понимание спецификации индивидуального двигательного нейрона (MN) — по крайней мере с точки зрения информирования терапии болезни — требует столь же шансов справиться с возникающими системы, которая лучше моделирует комплекс на базе придаток локомоции схемы позвоночных животных. Взрослых дрозофилы опорно-двигательного аппарата отвечает за ходьба отвечает всем из этих критериев с легкостью, поскольку в этой модели это можно изучить спецификации небольшое количество легко отличить ноги MNs (примерно 50 MNs на ноги) как с использованием обширной массив из мощных инструментов генетических и в контексте физиологические системы на основе придаток локомоции. Здесь мы описываем протокол для визуализации иннервации мышц ног в взрослых летать.
Introduction
Как позвоночных конечности дрозофилы взрослых ноги делится на сегменты. Каждый полет нога содержит 14 мышцы, каждая из которых включает в себя несколько мышечных волокон1,2. Клетки тела взрослых ноги MNs расположены в Т1 (prothoracic), (mesothoracic) T2 и T3 (metathoracic) ганглиев на каждой стороне воспалении брюшины шнура (VNC), структурный аналог позвоночных спинного мозга (рис. 1). Есть примерно 50 MNs в каждом ганглии, какие целевые мышцы в четырех сегментах ипсилатеральной ноге (coxa, вертела, бедра и голени) (рис. 1)3. Важно отметить, что каждый индивидуальный Взрослый ноги MN имеет уникальный морфологической идентификации, который весьма стереотипно между животных3,4. Все эти уникальные MNs являются производными от 11 стволовых клеток, называемых нейробласты (НБС) производства ногу MNs в личиночной стадии3,4. В конце все личиночной стадии незрелых Постмитотические MNs дифференцировать во время метаморфозы приобретать их конкретных дендритных беседки и аксональной терминала цели, которые определяют их уникальной морфологии3,4. Ранее мы тестировали гипотеза, комбинаторные код транскрипционных факторов (TFs) определяет уникальный морфология каждой дрозофилы ноги MN5взрослых. Как модель мы использовали линии B, один из 11 линий NB, которые производит семь из МНБ и продемонстрировал, что комбинаторной кода TFs, выраженные в Постмитотические взрослых ногу MNs диктует свои индивидуальные морфологии. Reprograming код TF МНБ мы были в состоянии переключиться MN морфологии на предсказуемой основе. Мы называем эти TFs: mTFs (морфологические TFs)5.
Одна из самых сложных частей морфологического анализа взрослых MNs является визуализировать аксоны через толстые и авто люминесцентные кутикулы с высоким разрешением. Мы обычно ярлык аксоны с меткой мембраны GFP, что выражается в MNs с системой двоичного выражения, такие как DVglut-Gal4/бла mCD8::GFP или DVglut-QF / QUAS mCD8::GFP, где DVglut — это сильное драйвер, выраженных в 6мотонейронов. Объединив эти инструменты с другими клоновых методы, как анализ мозаика с repressible маркер (MARCM)7,8стран СНГ MARCM или MARCMbow5, мы можем ограничить экспрессия гена GFP в субпопуляции МНБ фенотипического анализа аксонов проще. Мы породили протокол для того, чтобы держать ноги MN аксональное морфология нетронутыми для изображений и последующих 3D-реконструкции путем решения конкретных проблем, присущих взрослых дрозофилы ноги как (1) фиксация внутренних структур взрослых ноги не затрагивая аксона морфологии, эндогенного флуоресцентные выражение и мускулатура ноги, (2) монтаж ноги, чтобы сохранить общую структуру под coverslip и соответствующей ориентации для обработки для получения кутикулы изображений изображений и (3) фон, а также аксональное флуоресцентного сигнала. Хотя этот протокол был подробно для обнаружения флуоресцентные выражения в MN аксонов, он может применяться для визуализации другие компоненты ноги neuromusculature в членистоногих.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
1. ноги диссекции и фиксация
- Возьмите стеклянную пластину и несколькими хорошо и заполнить соответствующее количество скважин с 70% этиловом спирте. Добавить 15 – 20 CO2-наркотизированных мух (и либо пола любого возраста) каждому хорошо и с помощью кисти, аккуратно промокните мух в этанола раствор до тех пор, пока летит полностью погружены.
Примечание: Этот шаг заключается в удалении гидрофобность кутикулы. Не мойте для более чем 1 мин, потому что это увеличивает auto флуоресценции кутикулы. - Промывайте мух 3 раза с 0,3% раствором моющего средства неионогенных ПАВ в 1 x-фосфатный буфер (PBS). Мух в это решение, по крайней мере 10 минут.
Примечание: Лучше ноги фиксируются при том числе моющее средство, которое может увеличить проникновение фиксатором внутри ногу. - Место несколько хорошо пластины на льду вместе с трубки параформальдегида 4% (PFA).
Примечание: Подготовка свежие 4% PFA от 16% PFA этанола бесплатно Стоковый раствор имеет решающее значение. - Используйте пинцет, чтобы удалить головы и живота мух без повреждения грудной сегмент или ноги.
Примечание: Удаление живота делает его легче держать лету и вскрыть ноги. - Вскрыть ноги от грудного сегмента с щипцами и поместите ноги в скважинах, содержащий 4% PFA. Для этого нажимаем мягко, но твердо на стыке coxa-грудной клетки, используя кончик тонкой щипцы, до тех пор, пока ноги отсоединяется.
- Исправьте ноги в 4%, PFA на ночь при 4 ° C (всего около 20 h).
- Мойте ноги с 0,3% раствором моющего средства неионогенных ПАВ в однократном ПБС, 5 x 20 мин.
- Отмывающий буфер замените монтажа средних. Держите ноги в среде установки для по крайней мере за день до монтажа для его полного проникновения в ногу.
Примечание: Если монтажа средних высоковязких, разбавляют монтажа средних 80% с ПБС потому, что при резком изменении вязкости может вызвать кутикулы, чтобы свернуть и ущерб общей структуры ногу. В зависимости от драйвера Gal4 мухи могут быть сохранены для 1-3 недель при 4 ° C в монтаж СМИ до монтажа.
2. нога монтажа
- Место примерно 20 мкл 70% глицерина на левой стороне микроскопа и крышка с coverslip2 квадратный 22 x 22 мм (рис. 2A, B). Пипетка около 10 мкл монтажа среды вдоль линии, параллельной и на небольшом расстоянии от правого края этой coverslip. Мкл еще 30 монтажа средних далее на правой стороне слайда (рис. 2 c).
Примечание: При применении coverslip над ногами (см. ниже) монтажа средних будет мягко распространяться под coverslip и вокруг ноги без вытесняя их. - С помощью тонкой щипцы поднять ногу из раствора и осторожно положил его на носителе монтажа возле левой coverslip. Сделайте то же самое для каждой ноги и выровнять их сверху вниз (рис. 2D).
- Поднимите и передаче ноги в капле среднего между обоих советов щипцы. Ориент ноги двумя способами: внешняя сторона вверх или вниз.
- После того, как все ноги (в возрасте до 6-8 ног может быть установлен) были надлежащим образом выровнены, положите второй coverslip над ноги, таким образом, что это coverslip лежит слегка на ранее размещенных coverslip (рисунок 2E) для пространства между coverslip и ткани и предотвратить ноги от получать поврежденные (рис. 2 g).
Примечание: в качестве альтернативы, используйте наклейку скважин или ортодонтических воск для создания пространства между coverslip и слайд. - Используйте Лак для фиксации положение coverslips на каждом углу (Рисунок 2F).
Примечание: Ткани теперь готов к изображению.
3. томография
- Настройте один трек с использованием 488 нм лазер и два детекторы одновременно для получения GFP флуоресценции и кутикулы auto флуоресценции. С помощью элемента управления диапазона или ползунок Отображение в окне спектральный свет путь окна программного обеспечения, комплекс обнаружения один детектор (1) между 498-535 Нм и другое одно (детектор 2) между 566-652 Нм.
Примечание: Как правило, детектор 1 должно быть Хаасп детектор и детектор 2 трубки фотоэлектронный умножитель. 498-535 канал оптимально обнаруживает сигнал GFP, но также обнаруживает флуоресценции авто от кутикулы. Однако 566 – 652 канал обнаруживает только auto флуоресценции от кутикулы (рис. 3A). - Используйте 20 X или 25 X нефти цель погружения, 1024 x 1024 пикселей, 12-бит глубины и задать интервал Z 1 µm. набор пикселей останавливаться время как около 1,58 МКС, а средняя 2 кадров/изображения. Использование задач с высокой числовая апертура.
- Установите все остальные параметры, в зависимости от Конфокальный микроскоп и изображений используется.
- Убедитесь в том получить сигнал ярче кутикулы от 566 – 652 детектора, а не из 498-535 детектор. Для этого, используйте же мощность лазера 488-лазера для обоих детекторов. С помощью маркеров насыщения, сначала необходимо настройте усиление детектор 1 для получения достаточно яркий GFP сигнал (рис. 3B, D). Затем отрегулируйте усиление детектор 2 обеспечить, что некоторые районы с высоким кутикулы сигнала (края ног, суставов) производить насыщенный сигнала в этот детектор (рис. 3 c, E).
- Если нога расширенный и слишком большой для записи образа в одном кадре, используйте параметр плитки или позиции от Микроскоп визуализации программного обеспечения.
- Реконструировать окончательного изображения, либо с помощью несвободных микроскопа изображений или с помощью freeware ImageJ/Фиджи (см. ниже).
4. пост обработки изображений
- Откройте конфокальный стека в ImageJ/Фиджи.
- Использовать плагин Bioformats (плагины | Био форматы | Импортер Bio-formats) в Фиджи для открытия изображения, которые не являются в. Формат TIF от проприетарное программное обеспечение пакеты9изображений.
- Разделение каналов, выбрав изображение | Цвет | Разделение каналов.
Примечание: Если изображения с нескольких позиций были сделаны и должны быть recombined, используйте парные строчки плагин в Фиджи (плагины > колющие > Pairwise шить)10,11. - Чтобы вычесть кутикулы сигнал от сигнала GFP, откройте изображение калькулятор (процесс | Изображения калькулятор): выберите стек от детектора 1 изображение 1 (GFP + кутикулы) (рис. 4A), в окне операции выберите вычестьи выберите стек от детектора 2 изображение 2 (кутикула) (рис. 4В). В результате только эндогенного GFP сигнал (ГПУП) получается (рис. 4 c).
- Снова объединить этот стек (ГПУП) с «только для кутикулы» стек, полученные от детектора 2 (рис. 4В изображение | Цвет | Объединить каналы) для получения изображения RGB, состоящий из ткани конкретных GFP сигнала, а также сигнал для кутикулы, который помогает выявлению аксон беседки в сегментах ноги (рис. 4 d).
- Отрегулируйте контраст и яркость каждого изображения (изображения | Отрегулируйте | Brightness/Contrast), а затем создать один RGB-изображения (изображения | Тип | Цвета RGB).
Примечание: Для создания максимальной проекции Z-стека (изображения | Стеки | Проект Z...), Проекция максимальной интенсивности использования GFP сигнала и средней интенсивности для кутикулы, который затем может быть скорректирована для яркости до слияния двух каналов.
- Альтернативно используйте макрос для автоматического вычитания и обработки изображений в ImageJ/Фиджи. Скопируйте текст дополнительного файла 1 в редакторе макросов (плагины | Новые | Макрос), сохранить макрос в папке плагинов и перезапустите ImageJ/Фиджи один раз, чтобы иметь возможность использовать макрос.
- Чтобы использовать макрос, откройте конфокальный стека и откройте окно яркость/контрастность (изображения | Отрегулируйте | Brightness/Contrast). Затем запустите макрос (плагин | Макрос | Запуск) и следуйте инструкциям.
- Когда его спросили, для указания операции (окно калькулятора изображения), выберите изображение 1 как стек 1 (КГВ), 2 изображения как стек 2 (кутикула) и вычитания.
Примечание: Макрос создает образ максимальной проекции обработанного сигнала GFP (MAX_Result stack1), средняя проекция кутикулы (AVG_stack2), в результате вычитание стек кутикулы от GFP стека (результат stack1), а необработанные Кутикула стека (stack2). - Когда попросили контраст, используйте элементы управления в окне регулировки яркости для регулировки яркости и контраста максимальной проекции изображения GFP и средняя проекция кутикулы, создания объединенного изображения RGB обоих сигналов, показаны GFP в зеленый и кутикулы серым цветом. Слияние в результате stack1 и stack2, аналогичным образом сформировать объединенные GFP и кутикулы стека, который может использоваться на следующем этапе.
- Чтобы визуализировать ноги в трех измерениях, используйте специализированное программное обеспечение 3D с созданным стеков (Рисунок 4E).
- Откройте стек RGB с 3D программного обеспечения (см. Таблицу материалы). В всплывающем диалоговом окне выберите все каналы в разделе режим преобразования и введите размер вокселом (количество пикселей).
Примечание: Вся необходимая информация содержится в файлах изображений из любых несвободных Микроскоп программного обеспечения используется. - На канале 2 модуля (GFP сигнал), щелкните правой кнопкой мыши и выберите дисплей | volren. Затем щелкните левой кнопкой мыши на volren модуль. В разделе Свойства (слева внизу экрана) щелкните слева на редактирования и выберите volrengreen.col. На канале 1 модуль (кутикулы сигнал) щелкните правой кнопкой мыши и выберите дисплей | volren. Затем щелкните левой кнопкой мыши на volren модуль. В разделе Свойства левой кнопкой мыши на Дополнительно и выберите ddr (прозрачный дисплей рентгенограмме подобных) затем отрегулируйте значение гаммы для кутикулы фон (Рисунок 4E).
- Для создания 3D вращение, щелкните правой кнопкой мыши на модуле стека проекта. Затем выберите анимировать | повернуть. Щелкните левой кнопкой мыши на модуле поворот.
- В окне свойств щелкните на bbox центр. На модуле вращать правой кнопкой мыши и выберите вычислить | киностудии. На модуле киностудии нажмите левую кнопку мыши. В разделе Свойства щелкните левой на Advanced (вверху справа в разделе Свойства).
- В поле имя файла введите имя фильма вращения. В поле качество записи 1 (Макс качество). Оставить кадра на 200, по желанию 8.3 вращение s (это число может уменьшилось или увеличилось до изменения скорости вращения). Нажмите кнопку Применить (зеленая кнопка, внизу слева в разделе Свойства (см. видео 1)).
- Откройте стек RGB с 3D программного обеспечения (см. Таблицу материалы). В всплывающем диалоговом окне выберите все каналы в разделе режим преобразования и введите размер вокселом (количество пикселей).
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
Как показано на рисунке 4, эта процедура позволяет отличные снимки GFP-меченых аксоны в взрослых дрозофилы ноги, вместе с их терминала беседки. Главное чистый сигнал GFP получается без любого загрязнения от флуоресценции, испускаемых кутикулу ног. Сигнал от кутикулы затем может сочетаться с GFP сигнала для идентификации позиционирования аксоны в ногах (4E рисунок, Рисунок 1и 1 видео). Критически важно для получения хорошо фиксированной ноги. Рисунок 5 показывает примеры хорошо фиксированная (Рисунок 5A) и плохо Исправлена ног (Рисунок 5B). В первом случае внутренней структуры внутри ног однородного цвета и трахеи, которые являются темные, видны. Основные трахеи трубку работает в центре каждого сегмента ноги (рядом с основной ствол нерва) и много тоньше последствия также видны. В последнем, темный материал присутствует в Тарсусе и голени и системе трахеи не видна в бедренной и coxa: в таких случаях всегда отмечается, что сигнал от флуоресцентных белков разлагается низкой интенсивности или отсутствует вообще. Во-вторых, тщательное вскрытие ног необходимо для получения всех сегментов ноги (от coxa голени) и избегать механических ударов на ногах. В-третьих ноги должны быть оставлены в монтаж среднего достаточно долго для того, чтобы проникнуть внутрь ног. Иногда появляются рухнул нога сегментов, особенно бедренной кости, — это может быть из-за отсутствия проникновения фиксатором и/или монтажа среднего. Наконец необходимо использовать высокое качество Микроскоп целей, исправления для ровности поля и специально разработанные для флуоресценции и/или apochromatic.
Рисунок 1: схема системы взрослых дрозофилы ноги мотора. Клетки тела взрослых ноги MNs (зеленый) локализуются в коре (серый) грудной ганглий VNC. MNs arborize их дендритов в ногу Нейропиль (синий) и отправить их аксоны в ноги, чтобы иннервируют одной из мышц 14 ног (красный). Обратите внимание, что только ноги T1 схематизируются. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.
Рисунок 2: процедура монтажа ноги на скольжениях микроскопа. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.
Рисунок 3: Imaging процедуры. (A) выбросов спектры GFP и ноги кутикулы с помощью 488 нм аргон лазерного возбуждения, полученные с помощью спектральных изображений секций ноги, выражая GFP и ноги дрозофилы , которые не выражают GFP соответственно. Обратите внимание, что интенсивностью флюоресценции не были нормализованы, например, от необработанных данных, с использованием тех же параметров (цель, монтаж среднего, мощность лазера, конфокальная диафрагмы, усиление, смещение) что касается ноги изображений процедуры. Также изображены детектор windows, используемый для визуализации GFP + кутикулы флуоресцирования (детектор 1: зеленый) и кутикулы (детектор 2: розовый), основанный на спектры фон GFP против кутикулы. (B, C) Конфокальный часть ноги, помечены mCD8::GFP под контролем DVGlut-Gal4 получены от 1 (B) и извещатель 2 (C). (D, E) Насыщенность маркер параметры, используемые для изображения (B, C), соответственно (см. текст для разъяснения): синий не насыщение сигнала, красный. Обратите внимание, что на детектор 1 главный нерв треков насыщения, в то время как на детектор 2 некоторых регионов кутикулу, насыщенных (см. стрелки). Шкалы бар = 100 µm. пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.
Рисунок 4: обработка изображений с помощью ImageJ/Фиджи. (A) Макс проекция конфокальный стеков, полученные от 498-535 Нм детектора. (B) Макс проекция конфокальный стека, полученные от 566-652 Нм детектора. (C) изображение с только GFP сигнала, получаемое в результате вычитания (A) от (B). (D) слияние изображений (B) и (C). (E) 3-D реконструкция (C). Шкалы бар = 100 µm. пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.
Рисунок 5: маломощные вид расчлененных ноги, показывая примеры хороших (A) и плохие (B) фиксации. Шкалы бар = 200 мкм. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.
Видео 1: фильм GFP-меченых аксонов (зеленый) вместе с кутикулы (серый) leg. Пожалуйста нажмите здесь, чтобы посмотреть это видео. (Правой кнопкой мыши для загрузки.)
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
Кутикула взрослых дрозофилы и других членистоногих, который содержит много темные пигменты, является основным препятствием для просмотра структуры внутри своего тела. Кроме того это сильно авто люминесцентная, которая усугубляется фиксации. Эти две функции являются весьма проблематичными для наблюдений флуоресцентных красителей или молекул внутри тела животных с экзоскелет.
Процедуры, что мы описали, и что мы обычно используют в лаборатории дает чистый и подробные изображения аксона траекторий и их терминала окончаний в взрослых дрозофилы ноги. Главное чистый сигнал GFP получается без любого загрязнения от флуоресценции, испускаемых кутикулу ног. Эта функция является обязательным для того, чтобы иметь возможность визуализировать и quantitate трехмерные функции аксона беседок с помощью программы 3D-изображений. Таким образом можно сравнить данные, полученные из нескольких ноги. Процедура легко адаптируется для наблюдения за сигналами от других флуоресцентных белков и могут быть легко использованы для изображения аксоны в других взрослых членистоногих.
Два важнейших аспекта процедуры являются i) чтобы получить сильный сигнал GFP и ii) правильной фиксации ноги. Для этого мы регулярно получать хорошую фиксацию, тем не менее некоторые ноги иногда не закреплены должным образом. Таким образом процедура должна быть улучшена, возможно, добавив агенты, которые способствуют проникновения реагентов (например, диметилсульфоксид), или другие средства крепления (микроволновой фиксации, если он сохраняет GFP флуоресценции), но мы еще не изучили эту возможность Наряду с использованием preincubation шаг в PBS, содержащих Тритон (который значительно улучшилась фиксации). Для того, чтобы получить хороший сигнал GFP мы используем сильные драйвер DVglut-Gal4 (также называемый OK371-Gal4). Это также необходимо использовать хороший репортер – мы используем mCD8-GFP и также получили хорошие сигналы с цитоплазматических GFP или mCherry. Несмотря на это мы используем репортеров, которые содержат несколько копий первичного репортер (hexameric) и несколько копий LexO или UAS сайтов.
Ограничением этой процедуры является, что он применяется только к фиксированной ткани. Мы в настоящее время разрабатывают процедуры для наблюдений в естественных условиях и тестирования различных альтернатив (монтаж и микроскопы). Одно ограничение с помощью конфокальной микроскопии, что это трудно для просмотра через всю ногу: это потому, что для сигналов от глубинных районов сигнал от GFP рассеивается через вышележащих тканей. Попеременно бифотонного микроскоп позволяет изображения сквозь толщу всей ноги.
Наконец другие методы используют различные виды монтажа и крепления4,12. Значимость и силу нашей процедуры является вычитание шаг, отделяя истинный GFP сигнал от других (главным образом кутикулярного) сигналов позволяет отлично 3-мерной реконструкции и визуализация аксонов и их терминала беседки.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
Авторы не имеют ничего сообщать.
Acknowledgments
Мы благодарим Роберт Ренар для подготовки среднего покупать продукты питания. Эта работа было поддержано NIH Грант NS070644 R.S.M. и финансирования от ALS ассоциация (#256), FRM (#AJE20170537445) и программа ATIP-Avenir ю.е.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Ethanol absolute | Fisher | E/6550DF/17 | Absolute analytical reagent grade |
| nonionic surfactant detergent | Sigma-Aldrich | T8787 | Triton X-100, for molecular biology |
| Fine forceps | Sigma-Aldrich | F6521 | Jewelers forceps, Dumont No. 5 |
| Glass multi-well plate | Electron Microscopy Sciences | 71563-01 | 9 cavity Pyrex, 100 mm x 85 mm |
| PFA | Thermofisher | 28908 | Pierc 16% Formaldehyde (w/v), Methanol-free |
| Glycerol | Fisher BioReagents | BP 229-1 | Glycerol (Molecular Biology) |
| Spacers | Sun Jin Lab Co | IS006 | iSpacer, four wells, around 12 μL working volume per well, 7 mm diameter, 0.18 mm deep |
| Square 22 mm x 22 mm coverslips | Fisher Scientific | FIS#12-541-B | No.1.5-0.16 to 0.19 mm thick |
| Mounting Medium | Vector Laboratories | H-1000 | Vectashield Antifade Mounting Medium |
| Confocal microscope | Carl Zeiss | LSM780; objective used LD LCI Plan-Apochromat 25X/0.8 Imm Korr DIC M27 (oil/ silicon/glycerol/water immersion) (420852-9871-000) |
|
| imaging software | Carl Zeiss | ZEN 2011 | |
| 3D-Image software | ThermoFisher Scientific | Amira 6.4 | |
| ImageJ | National Institutes of Health | https://imagej.nih.gov/ij/ | ImageJ/FIJI |
References
- Miller, A. The internal anatomy and histology of the imago of Drosophila melanogaster. Biology of Drosophila. Demerec, M. , John Wiley & Sons. New York, NY. 420-531 (1950).
- Soler, C., Ladddada, L., Jagla, K. Coordinated development of muscles and tendons of the Drosophila leg. Development. 131 (24), 6041-6051 (2004).
- Baek, M., Mann, R. S. Lineage and Birth Date Specify Motor Neuron Targeting and Dendritic Architecture in adult Drosophila. Journal of Neuroscience. 29 (21), 6904-6916 (2009).
- Brierley, D. J., Rathore, K., VijayRaghavan, K., Williams, D. W. Developmental origins and architecture of Drosophila leg motoneurons. Journal of Comparative Neurology. 520 (8), 1629-1649 (2012).
- Enriquez, J., Mann, R. S. Specification of Individual Adult Motor Neuron Morphologies by Combinatorial Transcription Factor Codes. Neuron. 86 (4), 955-970 (2015).
- Mahr, A., Aberle, H. The expression pattern of the Drosophila vesicular glutamate transporter: a marker protein for motoneurons and glutamatergic centers in the brain. Gene Expression Patterns. 6 (3), 299-309 (2006).
- Lee, T., Luo, L. Mosaic analysis with a repressible cell marker (MARCM) for Drosophila neural development. Trends in Neuroscience. 24 (5), 251-254 (2001).
- Enriquez, J., Rio, L. Q., Blazeski, R., Bellemin, S., Godement, P., Mason, C. A., Mann, R. S. Differing Strategies Despite Shared Lineages of Motor Neurons and Glia to Achieve Robust Development of an Adult Neuropil in Drosophila. Neuron. 97 (3), 538-554 (2018).
- ImageJ. Bio-Formats. , Available from: http://imagej.net/Bio-Formats (2018).
- ImageJ. Image Stitching. , Available from: http://imagej.net/Image_Stitching (2018).
- Preibisch, S., Saalfeld, S., Tomancak, P. Globally optimal stitching of tiled 3D microscopic image acquisitions. Bioinformatics. 25 (11), 1463-1465 (2009).
- Brierley, D. J., Blanc, E., Reddy, O. V., Vijayraghavan, K., Williams, D. W. Dendritic targeting in the leg neuropil of Drosophila: the role of midline signalling molecules in generating a myotopic map. PLoS Biology. 7 (9), e1000199 (2009).
