Summary
Les auteurs décrivent un protocole facile, spécialement conçu pour atteindre des concentrations précises et contrôlées du sévoflurane ou isoflurane le in vitro afin d’améliorer notre compréhension des mécanismes impliqués dans les lésions épithéliales pulmonaires et de tester les roman traitements pour le syndrome de détresse respiratoire aiguë.
Abstract
Syndrome de détresse respiratoire aiguë (SDRA) est un syndrome d’une blessure alvéolaire diffuse avec dégagement de fluide alvéolaire avec facultés affaiblies et une inflammation sévère. L’utilisation d’agents halogénés, comme sévoflurane ou isoflurane, pour la sédation des patients de l’unité de soins intensifs (USI) peut améliorer les échanges gazeux, réduire l’oedème alvéolaire et atténuer l’inflammation au cours du SDRA. Cependant, manque des données sur l’utilisation des agents inhalés pour la sédation continue en réanimation pour traiter ou prévenir les dommages aux poumons. Afin d’étudier les effets des agents halogénés sur les cellules épithéliales alvéolaires dans des conditions « physiologiques », nous décrire un système facile à des cellules de culture à l’interface air-liquide et de les exposer à des agents halogénés pour fournir des fractions précis contrôlé « air » et concentrations de « moyen » pour ces agents. Nous avons développé une chambre hermétique scellée dans laquelle plaques avec des cellules immortalisées épithéliales alvéolaires humaines pourraient être exposés à une fraction précise et contrôlée du sévoflurane ou isoflurane en utilisant un flux de gaz en continu fourni par un circuit de la machine anesthésique. Les cellules ont été exposés à 4 % de sévoflurane et 1 % d’isoflurane pendant 24 heures. Spectrométrie de masse de gaz a été réalisée afin de déterminer la concentration des agents halogénés dissous dans le milieu. Après la première heure, la concentration de sévoflurane et isoflurane dans le milieu ont été 251 mg/L et 25 mg/L, respectivement. Les courbes représentant la concentration de sévoflurane et isoflurane dissolvent dans le milieu ont montré des cours similaires au fil du temps, avec un plateau à une heure après l’exposition.
Ce protocole a été spécialement conçu pour atteindre des concentrations précises et contrôlées de sévoflurane ou isoflurane in vitro afin d’améliorer notre compréhension des mécanismes impliqués dans les lésions épithéliales pulmonaires au cours du SDRA et de tester de nouveaux traitements pour les syndrome.
Introduction
Syndrome de détresse respiratoire aiguë (SDRA) est un syndrome clinique caractérisé par des lésions alvéolaires diffuses, œdème pulmonaire et une insuffisance respiratoire hypoxémie. Bien que SDRA représente plus de 10 % des admissions de l’unité de soins intensifs (USI) et près de 25 % des patients ICU nécessitant une ventilation mécanique, c’est toujours un défi sous-diagnostiquée pour les cliniciens, avec un taux de mortalité de l’hôpital de 35 à 45 %1. Malgré d’intenses recherches, l’identification d’un traitement pharmacologique efficace SDRA ou la prévention a échoué jusqu'à présent. Deux principales caractéristiques contribuent à la mortalité en SDRA : malentendants jeu fluide alvéolaire (AFC) (c.-à-d., la résorption altérée du liquide d’oedème alvéolaire d’espaces d’air pulmonaire distale) et une inflammation sévère2. Puisque ARDS de mortalité demeure élevé, initiatives actuelles devraient également inclure la prévention primaire ; Cependant, des principaux défis sont d’identifier les patients à risque dans lesquels SDRA est susceptible de se transformer et qui bénéficieraient si SDRA ont été empêché.
Les anesthésiques halogénés volatils, comme le sévoflurane et isoflurane, sont largement utilisés pour fournir une anesthésie générale au bloc opératoire. Dans le monde entier, plus de 230 millions de patients subissant une intervention chirurgicale majeure chaque année nécessitent une anesthésie générale et ventilation mécanique3, et des complications pulmonaires postopératoires altèrent les résultats cliniques et l’utilisation de soins de santé4 . L’utilisation de sévoflurane au lieu de propofol a été associée à l’inflammation pulmonaire améliorée chez les patients subissant une chirurgie thoracique et une diminution significative des événements indésirables, tels que l’ARDS et complications pulmonaires postopératoires5. De même, un prétraitement à l’isoflurane a des effets protecteurs sur la mécanique respiratoire, l’oxygénation et l’hémodynamique dans des modèles animaux expérimentaux de SDRA6,7. Bien que d’autres études sont garantis d’examiner l’incidence des agents inhalés sur les résultats en chirurgie thoraciques, une diminution des complications pulmonaires similaire a été observée récemment dans une méta-analyse, démontrant que par inhalation des agents anesthésiques — comme opposé à l’anesthésie intraveineuse — sont significativement associée à une réduction de la mortalité pour la chirurgie cardiaque,8.
Les données prospectives spécifiques sur l’utilisation des agents volatils pour la sédation des patients ICU pour prévenir ou traiter des lésions pulmonaires sont absent. Toutefois, plusieurs essais prennent désormais en charge l’efficacité et l’innocuité du sévoflurane inhalée pour la sédation des patients ICU, et les études précliniques ont montré que le sévoflurane inhalée et isoflurane7,9 améliorer les échanges gazeux, réduire oedème alvéolaire et atténuer l’inflammation dans des modèles expérimentaux de SDRA. En outre, sévoflurane atténue type II cellules épithéliales dommages10, tandis qu’isoflurane maintient l’intégrité de la barrière alvéolo-capillaire par la modulation des protéines de jonction serrée11. Toutefois, les autres études sont nécessaires pour vérifier dans quelle mesure les preuves expérimentales de protection orgue de sévoflurane inhalée et isoflurane peuvent se traduire pour l’être humain. Un premier single-Centre contrôlée-essai randomisé (ECR) de notre groupe ont découvert que l’utilisation précoce de sévoflurane inhalé chez les patients atteints de SDRA et oxygénation améliorée, réduction des taux de certains marqueurs pro-inflammatoires et pulmonaire réduite épithéliales dommage, tel qu’évalué par le niveau de la forme soluble du récepteur pour produits de glycation avancée (iniriale) dans le plasma et alvéolaire fluide12.
Pris ensemble, les effets bénéfiques de sévoflurane et isoflurane sur lésion pulmonaire peuvent pointer vers plusieurs voies biologiques ou les processus fonctionnels qui dépendent de la voie de la RAGE, à savoir jeu fluide alvéolaire (AFC), des lésions épithéliales, la translocation du facteur nucléaire (NF)-κB et l’activation des macrophages. En outre, sévoflurane peut influencer l’expression de la protéine RAGE lui-même. Étant donné que des recherches antérieures par notre équipe de recherche et d’autres prend en charge un rôle essentiel pour la RAGE en inflammation alvéolaire et poumon épithéliales blessure/réparation au cours du SDRA, nous avons conçu un modèle expérimental pour fournir une compréhension translationnelle des mécanismes de sévoflurane en poumon dommage et réparation13,14,15. Les effets in vitro de sévoflurane et isoflurane ont été étudiés en ligne roman humaine alvéolaire primaire des cellules épithéliales, spécifiquement conçue pour étudier la barrière air-sang du poumon périphérique, hAELVi (humain LentiVirus épithélial alvéolaire immortalisée), présentant des caractéristiques de j’ai-comme de type alvéolaire dont des jonctions serrées fonctionnelles16.
Tout en préparant la conception de nos recherches in vitro (p. ex., cultures de cellules épithéliales alvéolaires à l’interface air-liquide avec l’exposition « inhalation » sévoflurane ou isoflurane, nous avons compris dès inédit qui étudie fractions de sévoflurane ont seulement été évaluées dans le « air » interface17,18,19 à l’aide de moniteurs standard (similaires à celles utilisées en milieu clinique). Concentrations d’agent halogénés ont été choisies généralement selon les valeurs de concentration alvéolaire minimale (MAC) (par exemple, chez l’homme, pour le sévoflurane, 0,5 1,1 et vol 2,2 %, ce qui représente 0,25, 0,5 et 1 MAC, respectivement ; pour l’isoflurane, 0.6, 0.8, et 20de vol 1,3 % ce qui représente 0,25, 0,5 et 1 MAC, respectivement). En effet, concentration de sévoflurane et isoflurane ont jamais été étudiées dans le milieu de culture lui-même, ce qui limite la validité des anciens modèles expérimentaux/instruments. En outre, la plupart des expériences utilisés pot d’anaérobie qui a été scellé après que le sévoflurane contenant de mélange air avait été vidée à l’intérieur. Comme notre but était d’étudier les cellules épithéliales alvéolaires dans des conditions « physiologiques », nous avons cru que tel un État anaérobie n’est peut-être pas optimale et qu’il ne serait pas compatible avec des durées longues expérimentales. Donc, nous avons développé notre propre système de cellules en culture à l’interface air-liquide et de les exposer aux agents halogénés (sévoflurane et isoflurane) dans le but de fournir des fractions « aérien » contrôlé précis et des concentrations « moyen » pour ces agents. À notre avis, cette étape expérimentale, qui n’a pas été signalée à ce jour dans la littérature, est obligatoire avant toute autres investigations in vitro de sévoflurane et isoflurane.
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Protocol
1. culture des cellules épithéliales alvéolaires (hAELVi)
- Dégel
- Pipetter 4 mL de milieu de culture prêt à l’emploi humain alvéolaire épithéliales (huAEC) dans un tube en plastique de 15 mL et décongeler rapidement le flacon au bain-marie préchauffé (37 ° C).
- Transférer la suspension cellulaire décongelés dans un tube de 15 mL en plastique contenant 4 mL du milieu avant la centrifugation du tube à 200 x g pendant 5 min.
- Aspirer le surnageant et remettre en suspension le culot cellulaire avec 5 mL de la milieu de culture. Ensuite, transférer les cellules dans une fiole de T25.
- Cultiver les cellules dans des conditions normales (5 % de CO2, 95 % humidifie l’air, 37 ° C)
- Fractionnement
- Vérifier l’état des cellules au microscope. Lorsque les cellules sont 80 à 90 % anastomosé, fractionner les cellules, en suivant les étapes 1.2.2 par 1.2.10.
- Aspirer le support de culture des cellules avec une pipette stérile de.
- Laver les cellules une fois avec 4 mL de Dulbecco Phosphate Buffered Saline (SPD) et aspirer le SPD.
- Ajouter 1 mL de solution de trypsine/EDTA (TE) dans les cellules avant incubation à 37 ° C pendant 3 min, jusqu'à ce que les cellules commencent à se détacher ; Recherchez le détachement sous un microscope.
- Remettre en suspension les cellules avec 2 mL de milieu de culture et centrifuger les cellules à 200 x g pendant 5 min. Ensuite, aspirer le surnageant et remettre en suspension le culot cellulaire avec 3 mL de milieu culture.
- Utilisez le test d’exclusion de colorant bleu trypan pour déterminer la viabilité des cellules. Prendre 30 µl de la suspension cellulaire et ajouter 30 µl d’une solution de 0,4 % de trypan bleu dans un tube. Après cela, effectivement mélanger la solution 3 - 5 fois en utilisant une pipette 100 µl. Prendre 10 µl de la solution et placez-la sous le couvre-objet de l’hémocytomètre.
- Compter le nombre de cellules viables tant le nombre de cellules mortes (bleu) dans les domaines de l’hémocytomètre. Puis, calculer la viabilité cellulaire [%] en utilisant l’équation : viabilité cellulaire = 100 – (100 / nombre total de cellules x nombre de cellules mortes)
- Transférer l’aliquote avec le culot cellulaire resuspendues dans un nouveau flacon de T25 de culture cellulaire ou une plaque 6 puits. Ajouter le milieu de culture pour les cellules pour atteindre un total de 5 mL de milieu de culture dans le flacon de T25, ou 1 mL pour chaque puits de la plaque 6 puits.
- Cultiver les cellules dans un incubateur dans des conditions normales (5 % de CO2, 95 % humidifie l’air, 37 ° C)
- Une fois que les cellules sont complètement confluentes, ils sont prêts pour l’expérience.
2. Elaboration d’une chambre étanche à l’Air
Remarque : Le plan de construction de la chambre étanche à l’air est représenté dans la Figure 1.
- Utilisez une boîte hermétique en polypropylène avec une capacité de 6,5 L. La longueur, la largeur et la hauteur sont 30 x 20 x 15,5 cm, respectivement. Veuillez noter que le volume de la boîte est plus faible que le volume théorique en raison de l’arrondi.
- Percer un trou de diamètre de 2,5 cm sur la face inférieure de la paroi latérale.
- Insérer un tube ondulé avec une marque verte, qui servira le tuyau d’entrée du mélange gaz-air et scellez-la avec de la silicone.
- Percer un deuxième trou de diamètre de 2,5 cm sur le dessus de la paroi latérale opposée.
- Insérer un autre tube ondulé avec une marque rouge et le connecter avec un filtre à charbon, ce qui servira le tuyau de sortie du mélange gaz-air et scellez-la avec de la silicone.
- Percer un trou de diamètre serré de 4 mm au centre de la moyenne de la paroi de la boîte.
- Insérer tubulure de perfusion courte qui est relié à un collecteur avec un rotation luer-lock mâle, qui doit être connecté à un analyseur de gaz et scellez-la avec de la silicone.
- Placez un thermomètre/hygromètre digital à l’intérieur de la chambre étanche à l’air.
3. exposer les cellules épithéliales alvéolaires à des Agents halogénés (sévoflurane et Isoflurane)
Remarque : Un schéma de l’appareil est représenté dans la Figure 2.
ATTENTION : Bien que les études chez l’animal ont révélé aucun signe de blessure fœtale ou altération de la fertilité, et une très petite étude au cours de la césarienne n’a pas montré les effets négatifs sur la mère ou le foetus, l’innocuité des halogénés (p. ex., des agents sévoflurane ou isoflurane) pendant le travail et l’accouchement n’a pas été démontré à ce jour. En outre, aucune données contrôlées n’ont été collectées au cours de la grossesse humaine. Par conséquent, réaliser des expériences à l’aide de sévoflurane ou isoflurane tandis que les femmes enceintes doivent être fortement déconseillés.
- Travailler sous une hotte de laboratoire.
- Personnaliser un circuit anesthésique machine permettant de changer la conduite de gaz d’oxyde nitreux en dioxyde de carbone (CO2).
- Branchez la chambre étanche à l’air avec le tube ondulé, vert marqué dans le circuit machine anesthésique sur mesure. Introduisez un humidificateur chauffant (tels que ceux utilisés sur les ventilateurs d’ICU) dans le tuyau entre la machine d’anesthésie et de la chambre étanche à l’air pour réchauffer le mélange de débit de gaz d’environ 37 ° C
- Installer la chambre étanche à l’air sur une plaque chauffante, un chauffage sur plaque de température de 37° C.
- Mettre la plaque-puits 6 contenant les cellules hAELVI dans l’air ne s’échappe de chambre et sceller le couvercle.
- Réguler le débit de gaz (c'est-à-dire, le mélange d’air et CO2) afin d’obtenir rapidement les conditions standards, définies comme 5 % de CO2 et 95 % de l’air humidifié.
- Ouvrez l’évaporateur agent halogénés et choisissez le pourcentage désiré (dans la présente étude, les concentrations testées de sévoflurane et isoflurane étaient de 4 % et 1 %, respectivement).
- Notez la composition de la concentration de gaz mélange et le sévoflurane ou isoflurane mesuré par un analyseur de gaz externe et affichée sur l’écran.
- Une fois que les valeurs cibles sont atteints, réduire le débit de gaz frais à 1 L/min.
- La chambre étanche à l’air peut être maintenue à ce débit de gaz aussi longtemps que nécessaire pour l’expérience.
4. mesurer le sévoflurane ou Isoflurane par chromatographie
- Préparation des échantillons
- À différents moments, très brièvement ouvrir la chambre pour sortir les échantillons étudiés (dans la présente étude, nous avons utilisé une plaque 6 puits) et refermer le couvercle. Gardez les autres échantillons dans la zone. Ensuite, aspirez 1 mL de milieu contenu dans chaque échantillon avec une micropipette réglable multi-volumes.
- Mettre le support en flacons de chromatographie de feuillure de 10 mL, qui doivent être vissés hermétiquement étanche avec un bouchon étanche téflon. Congeler les flacons de chromatographie à-20 ° C si vous ne les utilisez pas immédiatement.
- Préparer une solution mère de sévoflurane et une autre solution-mère d’isoflurane, tous deux à 50 g/L dans le méthanol. En même temps, préparer une solution de chloroforme (standard interne, IS) à 2 g/L dans le méthanol. Stocker toutes les solutions standards à-20 ° C.
- Préparer des solutions de travail de sévoflurane et isoflurane à 50, 500 et 5 000 mg/L dans l’eau ultrapure/diméthyl diméthylsulfoxyde (50/50 ; v/v). De normalisation interne, la solution de travail est fixée à 100 mg/L dans le méthanol.
- Analyse des échantillons cellulaires
Remarque : La procédure d’extraction est basée sur la méthode précédemment validée de chromatographie en phase gazeuse et spectrométrie de masse de Bourdeaux et al. 1 et utilise les mêmes paramètres de sensibilité et de spécificité. Sévoflurane et le chloroforme (IS) ont été utilisés dans le présent protocole, et isoflurane a été associé à la méthode d’analyse multiparamétrique. En bref, pour l’acquisition de spectrométrie de masse, la méthode a été développée après l’injection de solution pure. Puis, m/z a été confirmée avec des étalons de référence et les données de la littérature. Trois m/z ont été choisis pour chaque analyte (sauf IS) : un m/z pour la quantification (le plus abondant et le plus élevé), pour lequel l’abondance a été calculée en intégrant la surface sous la courbe pour la quantification et deux m/z pour confirmation. À l’aide de trois m/z, analytes pourrait être spécifiquement identifiées car tout m/z avait le mêmes temps de rétention, mais aussi parce que tous les montants de m/z (parent d’ion confirmation vs quantification) étaient les mêmes dans la norme pure et dans tous les échantillons. Avec ce mode d’acquisition, les analytes pourraient être identifiés et quantifiés avec bonne spécificité.- Construire une courbes de 8 points d’étalonnage avec les gammes de concentration de 0,5 à 400 mg/L et qualité plusieurs contrôles (0,5, 1, 5, 10, 20, 75, 200 et 400 mg/L).
Remarque : Pour valider chaque étalonnage, quatre contrôles de qualité ont été utilisés : la limite inférieure de quantification (C1 = 0,5 mg/L), deux intermédiaires niveaux (C2 = 20 mg/L et C3 = 75 mg/L) et le niveau final (C4 à 400 mg/L ; niveau supérieur de quantification). Toutes les normes et les contrôles ont été analysées dans des matrices de cellules cultivées pour éviter l’effet de la matrice. Pour chaque courbe d’étalonnage, une matrice vide a été analysée afin de valider qu’il n’a pas d’interférence avec les normes internes et cellulaires cultivées. - Préparer une solution mère de sévoflurane et une autre solution-mère d’isoflurane, tous deux à 50 g/L dans le méthanol. En même temps, préparer une solution de chloroforme (standard interne, IS) à 2 g/L dans le méthanol. Stocker toutes les solutions standards à-20 ° C. Ensuite, préparer une travail mixte sévoflurane/isoflurane à 50, 500 et 5 000 mg/L dans l’eau ultrapure / diméthyl diméthylsulfoxyde (50/50 ; v/v). Pour IS, la solution est diluée à 100 mg/L dans le méthanol.
- Pour les contrôles et les courbes d’étalonnage, préparer les échantillons en fortification 50 µL de IS (100 mg/L) dans 1 mL des matrices de prélèvement cellulaire.
- Préparer les solutions d’échantillon avec 200 µL de solution aqueuse saturée de chlorure de sodium dans un tube de 10 mL headspace, vissé hermétiquement étanche avec un bouchon étanche téflon.
- Construire une courbes de 8 points d’étalonnage avec les gammes de concentration de 0,5 à 400 mg/L et qualité plusieurs contrôles (0,5, 1, 5, 10, 20, 75, 200 et 400 mg/L).
- Chromatographie en phase gazeuse et spectrométrie de masse
- Pour les analyses de l’échantillon, utiliser des injections de feuillure à une chromatographie en phase gazeuse, couplée avec la méthode de dépistage de masse.
- Transporter des tubes headspace pendant 10 min à 80 ° C avec un shaker de chauffage. Ensuite, retirer et injecter 1,5 mL de l’échantillon de gaz dans le chromatographe en phase gazeuse. Définissez le paramètre de l’injecteur à 260 ° C avec un débit de split à 100 mL/min pendant 2 min au début de la course de chromatographie.
- Utiliser un injecteur Split/splitless avec une pression de mode-programmé du transporteur. Tout d’abord, maintenir la pression du gaz à 40 kPa pour 0.15 min. Ensuite, augmenter la pression de programme de taux à 150 kPa à 125 kPa/min avant d’affecter un taux de 16 kPa/min 300 kPa pression pendant 5 min.
- Simultanée à l’injection, commencez avec une température de 60 ° C pendant 1 min et augmentation jusqu'à obtention d’une température de 140 ° C à raison de 20 ° C/min. Ensuite, augmenter la température à nouveau jusqu'à atteindre 250 ° C. La durée totale de la course est de 7 min.
- Effectuer la séparation de chromatographie à l’aide d’une colonne capillaire en silice fondue (30 m x 1,4 µm, 0,25 mm ID). Réaliser des expériences de massives avec une ion simple surveillance de l’État (SIM) et surveiller la quantification d’ion m/z 181 et ion qualités m/z 151 et 51 simultanément à un temps de rétention (RT) de 2,30 min pour le sévoflurane, m/z 149 (quantification des ions), m/z 115 et 87 (ion qualifications) pour l’isoflurane à 2.8 RT min et m/z 83 (quantification de l’ion), du chloroforme à RT 3,70 min.
- Déterminer la concentration de sévoflurane et isoflurane dans la culture de cellules de leurs ratios de surface à celui de l’IS à l’aide d’une forme quadratique de poids. La limite de quantification (PPQM) pour le sévoflurane et isoflurane était à 0,5 mg/L et la limite supérieure de quantification (LSDQ) était de 400 mg/L.
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Representative Results
Les concentrations du sévoflurane et isoflurane, qui dissous dans le milieu au fil du temps, sont signalées dans le tableau 1 et tableau 2, respectivement.
Les méandres de la concentration de sévoflurane et isoflurane dans le milieu étaient semblables au fil du temps. Immédiatement après que la concentration requise d’agent halogéné a été définie, les concentrations ont augmenté au cours de la première heure. Ensuite, un plateau a été atteint, qui persistent jusqu'à ce que l’administration de l’agent halogéné a été arrêtée. Après l’interruption de l’administration, les concentrations ont diminué dans l’heure (Figure 3).
Après la première heure, les concentrations médianes de sévoflurane et isoflurane dans le milieu ont été 251 mg/L et 25 mg/L, respectivement. Aucune différence significative n’a été trouvée entre les différentes expériences.
Figure 1 : plan de Construction de la chambre étanche à l’air S’il vous plaît cliquez ici pour visionner une version agrandie de cette figure.
Figure 2 : schéma de l’appareil S’il vous plaît cliquez ici pour visionner une version agrandie de cette figure.
Figure 3 : Concentration de sévoflurane (n = 5) et isoflurane (n = 5) au fil du temps. A) Concentration d’agent halogéné au fil du temps. Les valeurs sont exprimées en mg/L., les valeurs sont exprimées en moyenne et SEM. B) Concentration d’agent halogéné au fil du temps pour chaque expérience. Valeur sont exprimées en mg/L. C) Fraction d’agent halogéné au fil du temps dans la chambre étanche à l’air, mesurée par l’analyseur de gaz. Les valeurs sont exprimées en pourcentages. S’il vous plaît cliquez ici pour visionner une version agrandie de cette figure.
| Temps | Concentration de sévoflurane dans le milieu | Fraction de sévoflurane | |
| (mg/L) | dans la chambre étanche à l’air | ||
| Médiane | IC | (%) | |
| 5 min | 27 | [19 - 31] | 4.6 |
| 30 min | 152 | [142 - 152] | 4.1 |
| 1 h | 251 | [243 - 332] | 4.1 |
| 4 h | 259 | [256 - 271] | 4.2 |
| 8h | 265 | [237 - 280] | 4.2 |
| 24 h (arrêt) | 218 | [196 - 247] | 4.3 |
| Stop + 5 min | 237 | [214 - 241] | 0 |
| Stop + 30 min | 92 | [91 - 104] | 0 |
| Stop + 1 h | 57 | [42 - 58] | 0 |
Tableau 1 : Concentration de sévoflurane dissous dans le milieu au fil du temps. Données numériques sont exprimées comme une valeur médiane avec interquartile pour la concentration et en pourcentage de la fraction. EI (pour intervalle interquartile)
| Temps | Concentration d’isoflurane dans le milieu | Fraction d’isoflurane | |
| (mg/L) | dans la chambre étanche à l’air | ||
| Médiane | IC | (%) | |
| 5min | 2 | [2 - 2.5] | 0,8 |
| 30min | 16 | [4 - 18] | 1.3 |
| 1h | 22 | [18 - 27] | 0,9 |
| 4h | 30 | [25 - 31] | 1.4 |
| 8h | 22 | [15 - 26] | 1.2 |
| 24h (arrêt) | 26 | [23 - 27] | 1.1 |
| Stop + 5min | 19 | [12 - 25] | 0 |
| Stop + 30min | 4 | [4 - 4] | 0 |
| Stop + 1h | 1 | [0,8 - 1] | 0 |
Tableau 2 : Concentrations d’isoflurane dissous dans le milieu au fil du temps. Données numériques sont exprimées comme une valeur médiane avec interquartile pour la concentration et en pourcentage de la fraction. EI (pour intervalle interquartile)
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Discussion
Notre protocole décrit une méthode simple pour exposer les cellules à une fraction précise d’un agent anesthésique halogéné, comme sévoflurane ou l’isoflurane. En outre, nous rapportons ici — pour la première fois — une corrélation rigoureuse entre la fraction de gaz et la concentration de sévoflurane et isoflurane à l’intérieur du milieu de culture lui-même. Cette étape fondamentale permet maintenant d’utiliser en toute sécurité notre chambre étanche à l’air pour étudier les effets de ces agents halogénés dans une culture monocouche de cellules épithéliales alvéolaires humains.
Actuellement, la plupart des équipes de recherche étudiant les effets de sévoflurane dans les cellules alvéolaires utilisent un récipient qui est tout d’abord saturé de gaz halogéné et ensuite scellé. Dans ce cas, le sévoflurane peut être métabolisé, et on pourrait spéculer que la fraction d’agent volatil peut réduire linéairement avec le temps, conduisant à une concentration de gaz instable. Cependant, la corrélation entre la fraction de gaz de sévoflurane et sa concentration dans le milieu de culture n’est pas clairement rapportée dans la littérature. Généralement, la concentration de sévoflurane utilisé dans ces expériences est choisie basé sur une relation simple entre la fraction de gaz et le Mac. MAC a été introduite en 1965 et la concentration d’une vapeur dans les poumons, ce qui est nécessaire pour éviter une réponse motrice (mouvement) dans 50 % des sujets en réponse à un stimulus chirurgical (douleur)22. MAC est utilisé pour comparer la force, ou la puissance, de vapeurs anesthésiques. Chez les patients de l’ICU, MAC est corrélée à la FeSevo et la clinique de Richmond évaluation Agitation-sédation échelle (RASS)23. Même s’il est un indicateur utile en pratique clinique quotidienne, la pertinence de ce paramètre n’a jamais été étudiée dans le cadre de la recherche expérimentale in vitro . Dans notre protocole, à l’aide d’analyses par chromatographie du milieu, nous avons déterminé la corrélation précise entre le sévoflurane contenue dans la fraction de gaz et le sévoflurane dissous dans le milieu. Avec cette méthode, l’effet spécifique d’un agent volatil est exprimée selon la concentration réelle dans le milieu plutôt que fondée sur le rapprochement d’un effet clinique. Cet élément important permet l’étude de l’effet spécifique d’une concentration précise d’un agent halogéné sur cellules cultivées dans un milieu, afin de comparer les effets de différentes concentrations d’agents inhalés. En outre, comme la chambre étanche à l’air est très facile à utiliser, cette méthode permet aux chercheurs de reproduire l’expérience avec précision.
Un autre point important qui peut-être nuire à l’utilisation de la corrélation entre la fraction de gaz et MAC en recherche expérimentale, c’est qu’un agent halogéné a faible solubilité dans le sang (coefficient de partage sang/gaz à 37 ° C = 0,63 à 0,69 pour sévoflurane). Une quantité minime de sévoflurane est mandatée pour dissoudre dans le sang avant la pression dans les alvéoles réalise l’équilibre avec la pression dans les artères. Ainsi, au cours de l’induction de l’anesthésie, la concentration (fin d’expiration) alvéolaire (AF, fraction alvéolaire) de sévoflurane augmente rapidement autour de la concentration inspirée (FI, inspiré de fraction). Cependant, conditions de culture in vitro ne permettent pas de tels mécanismes et milieux cellulaires habituels consistent principalement en des solutions aqueuses. En outre, le coefficient de solubilité entre eau/gaz (coefficient de partage à 37 ° C = 0,36 pour sévoflurane) est inférieur à entre le sang et le gaz, qui sous-tendent l’importance cruciale de faire des analyses par chromatographie.
En outre, lorsqu’on utilise un bocal scellé, l’oxygène de l’air dans le bocal est absorbé par les cellules avec la production simultanée de dioxyde de carbone. Cet effet est probablement négligeables procédures expérimentales en bref, mais pour des durées plues expérimentales, les cellules qui sont privés d’oxygène seraient tourneraient vers un métabolisme anaérobie ; ce changement dans le métabolisme peut induire une certaine partialité dans les analyses expérimentales. À la différence du pot scellé, lorsque vous utilisez notre chambre étanche à l’air, d’oxygène et de flux agent halogénés sont réglables au fil du temps pour maintenir le niveau ciblé. Cette caractéristique majeure de notre protocole permet donc à la conception des expériences de in vitro pour longues périodes (par exemple, plus d’un jour), ce qui en fait un intéressant outil pour étudier les mécanismes cellulaires qui interviennent dans les lésions épithéliales pulmonaires et réparation au fil du temps, surtout quand les agents halogénés sont utilisés. En effet, les effets des agents anesthésiques inhalés sur cellules pulmonaires ou des tissus au cours de lésions alvéolaires restent mal étudiés à ce jour, alors que cette thérapie alternative semble montrer très encourageants résultats12.
Cependant, il y a des limites à cette technique. Tout d’abord, un circuit de la machine anesthésique est nécessaire pour fournir de l’oxygène, le dioxyde de carbone et halogénés agent flux de gaz. En utilisant un tel dispositif est obligatoire pour définir la vitesse d’écoulement et de maintenir des concentrations stables au fil du temps. Seconde, pour goûter le milieu avant les analyses par chromatographie, la chambre étanche à l’air est brièvement ouverte, ce qui induit une diminution transitoire de la concentration de gaz. Comme nous utilisons un circuit de machines anesthésiques, les flux de gaz sont augmentés par la suite jusqu'à ce que les concentrations attendues sont atteints à nouveau sur l’analyseur de gaz. En troisième lieu, nous avons mesuré la concentration dans le milieu pour seulement une fraction de chaque agent halogéné, choisie a priori basé sur l’étude précédente. Quatrièmement, pour stabiliser le milieu cellulaire à la croissance des cellules épithéliales alvéolaires, nous devons utiliser le dioxyde de carbone à une concentration de 5 %. En effet, aucun circuit anesthésique machine ne fournit une telle concentration de dioxyde de carbone. Par conséquent, le circuit machine anesthésique doit être personnalisée pour permettre la connexion du débit de gaz de dioxyde de carbone à la place de l’oxyde nitreux. Cette connexion doit être utilisée exclusivement dans le cadre de la recherche expérimentale et doit être prudemment à la débranché après chaque expérience. En outre, pour éviter tout risque pour les humains, nous invitons les chercheurs à utiliser un circuit dédié machine anesthésique d’effectuer ce protocole et ne pas se servir d’une machine dédiée à l’anesthésie clinique.
Les principaux avantages de cette technique sont qu’il est relativement peu coûteux et très facile à adopter, même lorsque les chercheurs ont manipulé jamais une chambre hermétique avant. En outre, avec notre protocole, les résultats des opérations de concentration de sévoflurane et isoflurane dissoute sont reproductibles, ce qui représente un critère de qualité majeur pour la recherche expérimentale. En outre, notre système pourrait permettre l’étude des autres agents halogénés volatils, comme le desflurane. En effet, un simple changement du type de dispositif d’évaporation de gaz serait suffisant dans ce cas. De même, notre système pourrait fournir un moyen d’étude sur la concentration de sévoflurane ou isoflurane dissous dans tout type de support avec des solubilités différentes, telles que l’eau, du sang ou huile.
Notre expérience représente une étape fondamentale qui fait partie d’un projet plus vaste visant à tester l’hypothèse que sévoflurane et isoflurane peuvent exercer des effets bénéfiques sur la lésion pulmonaire, l’inflammation et AFC par voies induite par la RAGE. Une culture primaire de cellules épithéliales alvéolaires humains sera utilisée pour les études mécanistiques des transport transépithélial des fluides, transport des fluides canal spécifique (par exemple, à l’aide de l’antagonisme pharmacologique), épithélial paracellulaire perméabilité, cicatrisation, la migration cellulaire et la prolifération, avec ou sans agent anesthésique halogéné (sévoflurane ou isoflurane), seul ou combiné avec cytomix (in vitro modèle de lésions alvéolaires)24.
En conclusion, ce protocole a été conçu pour atteindre des concentrations précises et contrôlées de sévoflurane ou isoflurane in vitro afin d’améliorer notre compréhension des mécanismes impliqués dans les lésions épithéliales pulmonaires au cours du SDRA et de tester le roman traitements pour ce syndrome fréquent et mortelles.
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Disclosures
Les auteurs déclarent qu’ils n’ont aucun intérêt financier concurrentes.
Acknowledgments
Les auteurs remercient le Conseil régional d’Auvergne (« Programme Nouveau Chercheur de la Région Auvergne » 2013) et le Français Agence Nationale de la Recherche et la Direction de le Générale L'Offre de Soins (Programme de Recherche Translationnelle en « Santé » ANR-13-prts-0010) pour les subventions. Les bailleurs de fonds n’avaient aucune influence dans la conception de l’étude, conduite et analyse ou dans la préparation de cet article.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Sevoflurane | Baxter | Performing experiments using sevoflurane or isoflurane while being pregnant should be strongly discouraged | |
| Isoflurane | Virbac | Performing experiments using sevoflurane or isoflurane while being pregnant should be strongly discouraged | |
| Human Alveolar Epithelial cells | InScreenex | INS-CI-1015 | |
| huAEC Medium (ready-to-use) | InScreenex | INS-ME-1013-500ml | |
| Anesthetic machine circuit | Drager | Fabius | |
| Gas analyzer | Drageer | Vamos Plus | |
| Anesthetic gas filter | SedanaMedical | FlurAbsord | |
| Heated Humifier | Fisher&Paykel | MR850 | |
| Chamber | Curver | 00012-416-00 | |
| Gas chromatography coupled with mass detection | Thermo Fisher Scientific, San Jose, CA, USA | Trace 1310 with TSQ 8000evo | |
| Fused-silica column (30 m x 1.4 μm, 0.25 mm ID) | Restek, Lisses, France | Rxi-624Sil MS |
References
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