Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove

Chemistry

Новый простой метод для измерения липофильностью (logP) с помощью 19F NMR спектроскопия

doi: 10.3791/58567 Published: January 30, 2019

Summary

Роман и простой вариант метода встряхивания полной колбы был разработан для измерения точные липофильностью фторсодержащих соединений 19F ЯМР спектроскопии.

Abstract

Фторирование стал эффективным инструментом для оптимизации физико-химических свойств биологически активных соединений. Одним из применений фтора введение является модулировать липофильностью соединения. В нашей группе мы заинтересованы в изучении влияния фторирования на липофильностью алифатические fluorohydrins и фторированных углеводов. Это не УФ активность, что приводит к сложным определение липофильностью. Здесь мы представляем простой метод для измерения липофильностью фторсодержащих соединений по 19F ЯМР спектроскопии. Этот метод требует не УФ активности. Точная масса вещества, объем растворителя и аликвота также не обязаны быть измерена. С помощью этого метода, мы измерили lipophilicities большое количество фторсодержащих alkanols и углеводов.

Introduction

Липофильностью является ключевым параметром физико-химических молекул наркотиков который влияет на свойства наркотиков кандидатов во многих аспектах, включая наркотиков растворимость, биодоступность и токсичности1. Липофильностью измеряется как логарифм (logP) коэффициента смеси концентрации после разделения между n октанола и воды. Были предложены оптимальные липофильностью диапазоны на основании статистических данных перорального наркотиков, из которых Липинский в «правило 5'' является наиболее известный пример2,3. Действительно контролируя липофильностью показал важное значение для улучшения перспектив наркотиков кандидатов. Увеличивая повышенных липофильностью сродство наркотиков была обнаружена как одной из основных проблем в проектах обнаружения наркотиков в течение последних нескольких десятилетий, приводит к увеличению истощение ставки3. Таким образом было высказано предположение о том, что успешный наркотиков развитие связано с сохранением молекулярных липофильностью наркотиков кандидатов в рамках оптимального границ во время близости оптимизации процесса3,4. В этой связи новых концепций (например, показатели эффективности липофильных) были введены5,6.

Таким образом, это большое значение для точного измерения липофильностью во время процесса разработки препарата. Кроме того, наличие простых методов для измерения липофильностью востребована как фундаментальных исследований стремится определить решения для журналаP модуляции. В настоящее время многочисленные установленные методы доступны для липофильностью определения1. Метод стандартного «встряхивания полной колбы (SF)»7и его вариации обычно используются для измерения значения logP непосредственно, которые в большинстве случаев зависят спектроскопия UV-Vis для количественной оценки. Основной недостаток этого метода классический SF является его трудоемкий характер. Кроме того образование эмульсий может произойти, особенно для очень липофильных соединений8,9. Несколько методов были разработаны обойти такие вопросы, как с помощью анализа потоков инъекций, диализ трубы, и т.д. 9,10. Однако ни один из этих методов являются простым и легко применимым в неспециализированных лабораториях.

Есть также много косвенных методов, доступных для использования, например потенциометрического титрования11, электрофоретические методы12,13, основанные на RP-ВЭЖХ Хроматографические методы, методы, основанные на масс спектрометрии14, др. Это косвенные методы, как журналP значения получаются путем калибровочных кривых. Среди этих методов RP-ВЭЖХ метод широко используется потому, что это удобный и экономии времени. Тем не менее ее точность зависит от обучающего набора, используемый для установления калибровочной кривой, и оценкам липофильностью зависит от раздела система используется13,15.

Существует ряд 1H ЯМР-методов на основе сообщили в литературе для определения липофильностью. Mo et al. разработал метод измерения журналаP 1H ЯМР без транс растворителей. Воде и октаноле, как раздел растворители, были использованы как ссылки для количественного определения концентрации примеси в каждой фазе16. Подход, в котором раздел эксперимент произошло непосредственно в NMR трубки, где были собраны данные ЯМР нижней D2O водного слоя до и после экстракции с 1-октанол, для получения распределения сообщили также Херц и коллег Коэффициент17. Кроме того Соулзби et al. эксплуатации 1H ЯМР как инструмента анализа, определяя амплитуду сигналов с помощью полное сокращение амплитудно частотной таблицы программного обеспечения. Отношение амплитуды в обоих слоях, привело к измеренной раздела коэффициент18. Эти методы являются относительно легко использовать, но часто требуют калибровки селективного импульсов и уровни мощности или использование формы градиента импульсов для обеспечения соответствующего растворителя подавления и сигнал избирательности.

Также можно получить значения вычисляемого logP (забиваютP) для соединения. Доступно несколько методов расчета и коммерчески доступное программное обеспечение. Такие забиваютP значения обычно используются в фармацевтической промышленности, при оценке большое количество наркотиков молекул. Однако большие ошибки от засоритьP значения не являются редкостью в19,20.

Требования УФ деятельности для анализа концентрации и создание калибровочных кривых для расчета журналаP препятствуют прогрессу научных исследований в этой области. В частности это касается УФ активность алифатических соединений. Фторированные алифатических постановление становятся все более привлекательными для конструкции снадобья в последние годы, и их влияние на общую липофильностью комплекса является темой исследований в нашей группы21. Кроме того, 19F является весьма деликатным ЯМР активные ядра, делая 19F ЯМР является полезным инструментом для анализа фторированные соединения. Она также имеет больший диапазон химический сдвиг по сравнению с 1ч. Таким образом целесообразно разработать простой метод для журналаP определение УФ активность фторсодержащих соединений методом 19F ЯМР спектроскопии. Таким образом общая цель этого метода является достижение удобно липофильностью определение фторсодержащих соединений.

Ключевой принцип нашей 19F ЯМР-метод является добавление ссылки фторированные соединения в эксперименте (рис. 1) раздела21. Справочник составные (БС) и составные X секционируются между водой и n- октанол. После equilibrating, Алиготе от каждой фазы взят в трубу ЯМР и 19F ЯМР эксперименты выполняются на обоих образцах ЯМР. Интенсивности пиков фтора пропорциональна концентрации (C) и количество атомов фтора (n) соединений. Между составные X и ref неотъемлемой соотношения могут быть получены для обоих этапов. Соотношение в n- октанол слоя определяется как ρoctи ρaq для слоя воды (уравнение 1). Соотношение значений ρ равно соотношение коэффициентов (P) соединение X и ref (уравнение 2). Это приводит к окончательной уравнение (экв. 4) для журналаP измерение составных X. Таким образом для того чтобы определить журнала значениеP неизвестное соединение x, только интеграции коэффициенты (ρoct и ρaq) в обоих слоёв необходимо быть измерено 19F ЯМР.

Protocol

1. Разметка дисков

  1. Добавить 4,4,4-trifluorobutan-1-ол (соединения X, ca. 6,0 мг) и 2,2,2-Трифторэтанол (ссылка составные, ca. 3,0 мг) для грушевидной формы флакон 10 мл, растворить в n- октанол (класс ВЭЖХ, ca. 2 мл) и добавить воду (класс ВЭЖХ, ca. 2 мл).
    Примечание: Этот эксперимент выполняется в трех экземплярах. Составные растворимость в воде и n- октанол должны быть проверены. Количество соединения, используемые для секционирования должны рассматриваться тщательно избегать перенасыщения комплекса в любом слое. Массового соотношения между составные X и ссылки, соединения предложение должно рассматриваться также избежать неотъемлемой соотношения данного образца ЯМР находятся за пределами диапазона 10/1 до 1/10. Например, если есть разница в < 2 журналаP единиц между составные X и ref, оптимального соотношения масс может заверить, что интеграция соотношения в пробах воды и 1-октанол ЯМР в радиусе 10/1 до 1/10. Напротив если получен интеграции соотношение 50/1 в один слой, будет существовать более вероятно относительно большие ошибки в интеграции для пик с низкой концентрации. Уравнения ниже может использоваться для прогнозирования оптимальное соединение массовое соотношение:
    mX / mref = {(cP Pref)-0,5 * (MX/ Mref) * [(1 + cPX) / (1 + Pref)]} / (NX / Nref)
    м, массы; M, молекулярная масса; N, количество атомов F; P, коэффициенты разделения; cP, рассчитанные коэффициенты.
  2. Место колбы внутри сосуда, контролем температуры, над stirplate и подключитесь к рециркуляционный охладитель. Перемешайте смесь двухфазный при 25 ° C для 2 h, с перемешивания скорость на 600 об/мин.
  3. Сбалансировать смесь при 25 ° C ночь (ОК. 16 h), чтобы разрешить для завершения этапа разъединения.
    Примечание: В некоторых случаях может наблюдаться образование пены между - октанолеи Водная граница. В этом случае смесь была передана в 4 мл флакон стеклянный и центрифугировали до исчезновения пены. Двухфазный смесь был затем слева, чтобы сбалансировать снова при 25 ° C на ночь.

2. ЯМР пробоподготовки

  1. Исправьте Фляга для реторты стенд с зажимом.
  2. Принимают Алиготе ca. 0,70-0,85 мл из воды и n- октанол слои, используя 1 мл шприцы одноразовые пластиковые с длинные иглы.
    1. Для принятия воды аликвота, нарисуйте ca. 0,02 мл воздуха в шприц перед вводом иглы в смеси. Во время перемещения иглы через верхние n- октанол слоя в слой воды, аккуратно вытолкнуть воздух для предотвращения проникновения иглы n- октанол решение.
    2. Удалите из смеси длинная игла, зам. Отменить небольшое количество пробы воды, оставляя ca. 0,6 мл образца слева в шприц. Тщательно протрите иглы сухой салфеткой и вставляют ОК. 0,5 мл пробы воды чистой ЯМР трубки. Быстро закройте трубку ЯМР с крышкой.
    3. Для n- октанол образца удалите длинной иглой из n- октанол слоя. Отменить небольшое количество n- октанол образца, оставляя ca. 0,6 мл образца слева в шприц. Тщательно протрите иглы сухой салфеткой и вставляют ОК. 0,5 мл n- октанол образца чистого ЯМР трубки. Быстро закройте трубку ЯМР с крышкой.
  3. Осмотрите обе n- коэффициент разделения октанола и воды образцы для любого загрязнения (например., маленькие капельки n- октанол образца воды или маленькие капельки воды в n- октанол образца).
    Примечание: Если есть любое загрязнение, аликвота образца должна быть вновь подготовленных от однофазных смеси. Поскольку измерение производится в трех экземплярах, получены шесть пробирки для NMR.
  4. В каждую пробирку ЯМР, добавить 0,1 мл транс ЯМР растворителя, который смешивается с n- октанола и воды (например., ацетон d6) чтобы включить сигнал блокировки во время приобретения ЯМР.
  5. Для соединений с низкой точкой кипения (например., < 120 ° C), печать с помощью паяльной лампы пробирки для NMR и после охлаждения, перевернуть трубку, чтобы проверить на наличие течи. Тщательно инвертировать запечатан или незапечатанным ЯМР трубы 20 раз, чтобы получить однородный раствор для 19F ЯМР экспериментов.

3. ЯМР эксперименты

  1. Запустить, используя стандартные настройки параметров ЯМР (NS 64, D1 1 s, SW 300 ppm, O1P-100 ppm), 19F {1H} ЯМР экспериментов для определения химических сдвигов 4,4,4-trifluorobutan-1-ол (составные X) и 2,2,2-Трифторэтанол (ссылка соединения) в обоих n пробы ЯМР - октанола и воды.
  2. Измерьте время релаксации спина решетки (T1) для диагностики фтора ядер с помощью последовательности инверсии восстановление22. Оценить уровень время задержки соответствующего импульса (D1, установить в качестве ≥ 5 * T1) от полученных значений T1 для точных количественных ЯМР интеграции.
    Примечание: Это очень много времени, но D1 60 s для образца воды фазы и 30 s для образца фазы октанол, являются консервативной параметры, которые будут безопасно выполнить D1 ≥ 5 * T1 критерий.
  3. Запуск 19F {1H} ЯМР эксперименты снова с скорректировать настройки параметров следующим образом:) использование D1 ≥ 5 * T1; b) центр частоты смещения точки (O1P) между двумя сигналами диагностических фтора, так что оба ядра может быть одинаково рады; c) Задать Спектральная ширина (SW) как 300 ppm, но уменьшить, если лучшее соотношение SNR, при необходимости; d) Задать количество транзиентов (NS) 64, но увеличить при необходимости выше SNR.
    Примечание: Не отделить 19F ЯМР экспериментов может также использоваться для сбора данных ЯМР. Однако, Протон развязкой 19F ЯМР эксперименты являются предпочтительными здесь, как это упрощает фтора сигналов путем удаления Протон фторопласт муфты, которые также увеличивает соотношение сигнал шум. Мы используем inverse Гейтд развязки для получения отделенных спектра без ное (ядерный эффект Оверхаузера) улучшения23. Для количественных интеграции желательно отношение сигнал шум (≥300). 24

4. обработка данных

  1. Обработка полученных данных с помощью ACD/ЯМР академические версии процессора или других программного обеспечения обработки ЯМР.
    1. Откройте файл данных ЯМР, затем откройте папку pdata , а затем папка 1. Удалите файл 1r .
    2. Вернуться к файлу данных ЯМР и перетащите файл ССИ в окно ACD/ЯМР процессора.
    3. Нажмите на WFunctions кнопку, выберите экспоненциальный, значение LB как 2и нажмите кнопку ОК .
    4. Нажмите кнопку Zero заполнение , увеличить Количество очков в 4 раза Оригинальные количество очков , нажав маленькую кнопку рядом с номер и нажмите кнопку ОК кнопка.
    5. Нажмите на кнопку Tr. Фурье .
    6. Нажмите кнопку фазы , затем нажмите кнопку Мыши тел , нажмите и удерживайте левую кнопку мыши, переместите мышь вперед или назад до основных пик спектра должным образом поэтапно.
      1. Нажмите и удерживайте правую кнопку мыши, переместите мышь вперед или назад до тех пор, пока другие peak(s) спектра должным образом поэтапно. Затем снимите кнопку Мыши тел , увеличить в спектральной области с вершины фтора, нажмите Тонкой настройки, коррекции фазы, при необходимости, как описано ранее, пока все вершины правильно постепенно и затем нажмите на галочку кнопку.
    7. Нажмите кнопку базовой линии , затем кнопку Параметры . Выберите Спектр усреднения для автоматических моделей, настроить количество точек на половину ширины коробки, при необходимости (в частности для спектра с низким соотношением S/R), нажмите кнопку OK | Автои затем нажмите кнопку « тик ».
    8. Нажмите кнопку интеграции, интегрировать вершины диагностических фтора и нажмите кнопку клеща .
      Примечание: Если составной кривой не параллельно базовой линии, нажмите на кнопку Предвзятости Corr. и отрегулируйте наклон и наклон кривой параллельно базовой линии.
  2. Получить коэффициенты интеграции - октанолеи ЯМР проб воды и использования в уравнение расчета журналаP (Рисунок 1, уравнение 4) для получения значения logP 4,4,4-trifluorobutan-1-ол (составные X).

Representative Results

Два комплекта данных как управления экспериментов показано на рисунке 221. С помощью 2,2,2-Трифторэтанол как соединение, ссылки, значения logP были получены 2-fluoroethanol и 3,3,3,2,2-pentafluoropropanol-0,75 и 1.20, соответственно (рис. 2A). Впоследствии липофильностью 2-fluoroethanol было определено снова, но с 3,3,3,2,2-pentafluoropropanol ссылки (с помощью его предыдущий экспериментально измеренная log значениеP 1.20). Журнале измеренное значениеP был-0.76, который был только разница 0.01 журналаP единиц по сравнению с значением, измеряется с помощью 2,2,2-Трифторэтанол как ссылка.

Аналогичным образом, для СНГ-2,3-difluoro-1,4-бутандиол, разница в измеренные значения logP с помощью 2-fluoroethanol и его изомера trans также очень мала (0.01 журналаP единицы, Рисунок 2B). Это показали, что выбор соединения ссылки не имеют влияния на измерениеP . Кроме того, довольно небольшой стандартное отклонение (< 0.01) отметил хорошую воспроизводимость нашего метода.

С помощью нашего метода, ряд соединений с известными журналаP значения была измерена, как показано в таблице 1. Разница между литературных данных и значения, измеренные с помощью нашего метода показано в последнем столбце таблицы. В целом значения экспериментально полученных logP (при 25 ° C) имеют хорошо отличную соответствии с литературы ценностей, которые дополнительно подтверждена наш метод.

Дополнительные отдельные примеры21 были показаны на рисунке 3. Все эти УФ активность алифатических соединений (из фторированных углеводов до fluorohydrins) может быть легко измеряется с нашим методом.

Figure 1
Рисунок 1: Принцип журналаP определение метода. Эта цифра была воспроизведена с разрешения от Wiley-VCH Verlag GmbH & Co. KGaA. 21. Этот метод встряхивания полной колбы основывается на 19F ЯМР спектроскопии. Ссылка соединение используется для раздела эксперимента. Аликвоты - октанолеи водной фазы были взяты для NMR эксперимент. Интеграции соотношения между ссылкой соединения и соединения измеряться получены для определения журнала значениеP . Также даны подробные математической вычет уравнений, что приводит к окончательной уравнение для измерения. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.

Figure 2
Рисунок 2: примеры для внутренней проверки 21. были проведены два набора управления экспериментов, с использованием двух различных опорных соединений для измерения значение журналаP одного комплекса. ЖурналP разница между этих экспериментов является незначительным. Стандартное отклонение (< 0.01) от экспериментов запуск в трех экземплярах показывает хорошую воспроизводимость метода. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.

Figure 3
Рисунок 3: Далее отдельные примеры журналаP измерения, используя наш метод. Применения этого метода, были получены значения logP 8 фторсодержащих соединений (например фторированные углеводов, ациклические alkanols и конформационно ограниченных fluorohydrins). Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.

Таблица 1: Сравнение данных литературы и значения экспериментальной logP , используя наш метод21. значения logP 14 фторсодержащих соединений (с известными журнала данныхP ) были измерены с помощью этого нового метода. Были также представлены ссылки соединений, используемых для каждого измерения. Сравнение (logP) между литературными значениями и результатами журналаP от нашего метода продемонстрировал хорошую точность этого метода. 2,2,2-Трифторэтанол (ОКР), 2-Fluoroethanol (FE); b Журнал усредненное значениеP от по крайней мере трех экспериментов; c Экспериментально измеренная журнала значениеP нашим методом (-0,75) был использован как ссылка. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы загрузить этот файл.

Discussion

Протокол, описанный в документе является простой метод для журналаP измерения фторсодержащих соединений. Этот метод применим к фторированные соединения с журналомP значение от -3 до 3. Для более гидрофильные (входP < -3) или липофильных соединений (logP > 3), этот метод можно использовать, но потребует гораздо больше времени NMR эксперимент как расширенное количество переходных процессов необходимо получить хорошее соотношение сигнал шум. Таким образом это ограничение метода. Существует никаких требований для частоты NMR спектрометр, при условии, что соблюдены условия (ЯМР параметров и достаточно SNR) для количественных интеграции. Что касается любого метода колбу трясти важно избежать перенасыщения и загрязнения во время выборки слоя.

По сравнению с предыдущим методом встряхивания полной колбы и его вариации, есть несколько преимуществ в нашем методе в отношении существующих методов. 1) измерения массы вещества, объем раздела растворителей и аликвоты для ЯМР образца не являются необходимыми. 2 соединение для измерения может быть нечистый, условии, что отличается от измеренной соединения фтора химически переносы примесей. 3) из-за внутренней компенсационного эффекта при работе с коэффициентом соотношения систематические ошибки устранены. 4) Этот метод применим к УФ активность фторированные соединения. 5) Этот метод прост в использовании с открытым доступом ЯМР зал, поскольку никаких специальных настроек ЯМР необходимы (например, растворителей подавления, применяя небольшой возбуждения угол и т.д.).

В настоящее время, мы используем этот метод для измерения lipophilicities фторированные углеводы, fluorohydrins и фторированных амидов, чтобы исследовать влияние фторирования на липофильностью и выявления фторированные постановление с снижение липофильностью эффект. Разработка метода для журналаP измерения более липофильных соединений (входP > 3) и для фторированных амины продолжается в нашей группе.

Можно отметить, что 19F NMR также может использоваться для определения концентрации (CMC) критических мицеллы30.

Disclosures

Авторы не имеют ничего сообщать.

Acknowledgments

Это исследование финансируется как частью EPSRC предоставляет EP/K016938/1 и EP/P019943/1 (ZW, HRF) и арбитражного дела EPSRC/AstraZeneca преобразования (BFJ). Саутгемптонский университет поблагодарил за дополнительной поддержкой. EPSRC далее поблагодарил за основные возможности Грант EP/K039466/1.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
NMR (400 MHz) with Bruker 5 mm SEF probe Bruker n/a AVIIIHD400
NMR (400 MHz) with Bruker 5 mm SMART probe Bruker n/a
DrySyn Snowstorm reactor Asynt ADS13-S
recirculating chiller Asynt n/a model:Grant-LTC2
magnetic stirplate Asynt ADS-HP-NT
ACD/NMR processor software ACD/Labs n/a ACD/NMR processor academic edition or ACD/Spectrus processor 2015

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Arnott, J. A., Planey, S. L. The influence of lipophilicity in drug discovery and design. Expert Opinion on Drug Discovery. 7, (10), 863-875 (2012).
  2. Lipinski, C. A., Lombardo, F., Dominy, B. W., Feeney, P. J. Experimental and computational approaches to estimate solubility and permeability in drug discovery and development settings. Advanced Drug Delivery Reviews. 23, (1), 3-25 (1997).
  3. Leeson, P. D., Springthorpe, B. The influence of drug-like concepts on decision-making in medicinal chemistry. Nature Reviews Drug Discovery. 6, 881 (2007).
  4. Perola, E. An Analysis of the Binding Efficiencies of Drugs and Their Leads in Successful Drug Discovery Programs. Journal of Medicinal Chemistry. 53, (7), 2986-2997 (2010).
  5. Tarcsay, A., Nyiri, K., Keseru, G. M. Impact of Lipophilic Efficiency on Compound Quality. Journal of Medicinal Chemistry. 55, (3), 1252-1260 (2012).
  6. Tarcsay, Á, Keserű, G. M. Contributions of Molecular Properties to Drug Promiscuity. Journal of Medicinal Chemistry. 56, (5), 1789-1795 (2013).
  7. OECD Guidelines for Testing of Chemicals. Paris. (1992).
  8. Tsang, S. C., Yu, C. H., Gao, X., Tam, K. Y. Preparation of nanomagnetic absorbent for partition coefficient measurement. International Journal of Pharmaceutics. 327, (1), 139-144 (2006).
  9. Andersson, J. T., Schräder, W. A Method for Measuring 1-Octanol−Water Partition Coefficients. Analytical Chemistry. 71, (16), 3610-3614 (1999).
  10. Danielsson, L. -G., Yu-Hui, Z. Mechanized determination of n-octanol/water partition constants using liquid-liquid segmented flow extraction. Journal of Pharmaceutical and Biomedical Analysis. 12, (12), 1475-1481 (1994).
  11. Scherrer, R. A., Donovan, S. F. Automated Potentiometric Titrations in KCl/Water-Saturated Octanol: Method for Quantifying Factors Influencing Ion-Pair Partitioning. Analytical Chemistry. 81, (7), 2768-2778 (2009).
  12. Poole, S. K., Poole, C. F. Separation methods for estimating octanol-water partition coefficients. Journal of Chromatography B. 797, (1), 3-19 (2003).
  13. Ishihama, Y., Oda, Y., Uchikawa, K., Asakawa, N. Evaluation of Solute Hydrophobicity by Microemulsion Electrokinetic Chromatography. Analytical Chemistry. 67, (9), 1588-1595 (1995).
  14. Jorabchi, K., Smith, L. M. Single Droplet Separations and Surface Partition Coefficient Measurements Using Laser Ablation Mass Spectrometry. Analytical Chemistry. 81, (23), 9682-9688 (2009).
  15. Kaliszan, R. Quantitative structure-retention relationships. Analytical Chemistry. 64, (11), 619A-631A (1992).
  16. Mo, H., Balko, K. M., Colby, D. A. A practical deuterium-free NMR method for the rapid determination of 1-octanol/water partition coefficients of pharmaceutical agents. Bioorganic & Medicinal Chemistry Letters. 20, (22), 6712-6715 (2010).
  17. Stéen, E. J. L., et al. Development of a simple proton nuclear magnetic resonance-based procedure to estimate the approximate distribution coefficient at physiological pH (logD7.4): Evaluation and comparison to existing practices. Bioorganic & Medicinal Chemistry Letters. 27, (2), 319-322 (2017).
  18. Soulsby, D., Chica, J. A. M. Determination of partition coefficients using 1H NMR spectroscopy and time domain complete reduction to amplitude-frequency table (CRAFT) analysis. Magnetic Resonance in Chemistry. 55, (8), 724-729 (2017).
  19. Tetko, I. V., Poda, G. I., Ostermann, C., Mannhold, R. Accurate In Silico log Predictions: One Can't Embrace the Unembraceable. QSAR & Combinatorial Science. 28, (8), 845-849 (2009).
  20. Waring, M. J. Lipophilicity in drug discovery. Expert Opinion on Drug Discovery. 5, (3), 235-248 (2010).
  21. Linclau, B., et al. Investigating the Influence of (Deoxy)fluorination on the Lipophilicity of Non-UV-Active Fluorinated Alkanols and Carbohydrates by a New log P Determination Method. Angewandte Chemie International Edition. 55, (2), 674-678 (2016).
  22. Derome, A. E. Modern NMR Techniques for Chemistry Research. 6th ed, Pergamon: Oxford. (1997).
  23. Claridge, T. High-Resolution NMR Techniques in Organic Chemistry. Pergamon. (1999).
  24. Zhang, F. -F., et al. Quantitative analysis of sitagliptin using the 19F-NMR method: a universal technique for fluorinated compound detection. Analyst. 140, (1), 280-286 (2015).
  25. Muller, N. When is a trifluoromethyl group more lipophilic than a methyl group? partition coefficients and selected chemical shifts of aliphatic alcohols and trifluoroalcohols. Journal of Pharmaceutical Sciences. 75, (10), 987-991 (1986).
  26. Hansch, C., Leo, A. Substituent constants for correlation analysis in chemistry and biology. Wiley. (1979).
  27. Dillingham, E. O., Mast, R. W., Bass, G. E., Autian, J. Toxicity of Methyl- and Halogen-Substituted Alcohols in Tissue Culture Relative to Structure-Activity Models and Acute Toxicity in Mice. Journal of Pharmaceutical Sciences. 62, (1), 22-30 (1973).
  28. Leo, A., Hansch, C., Elkins, D. Partition coefficients and their uses. Chemical Reviews. 71, (6), 525-616 (1971).
  29. Fujita, T., Iwasa, J., Hansch, C. A New Substituent Constant, π, Derived from Partition Coefficients. Journal of the American Chemical Society. 86, (23), 5175-5180 (1964).
  30. Zhong-Xing, J., Xin, L., Eun-Kee, J., Bruce, Y. Y. Symmetry-Guided Design and Fluorous Synthesis of a Stable and Rapidly Excreted Imaging Tracer for 19F MRI. Angewandte Chemie International Edition. 48, (26), 4755-4758 (2009).
Новый простой метод для измерения липофильностью (log<em>P</em>) с помощью <sup>19</sup>F NMR спектроскопия
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Wang, Z., Jeffries, B. F., Felstead, H. R., Wells, N. J., Chiarparin, E., Linclau, B. A New Straightforward Method for Lipophilicity (logP) Measurement using 19F NMR Spectroscopy. J. Vis. Exp. (143), e58567, doi:10.3791/58567 (2019).More

Wang, Z., Jeffries, B. F., Felstead, H. R., Wells, N. J., Chiarparin, E., Linclau, B. A New Straightforward Method for Lipophilicity (logP) Measurement using 19F NMR Spectroscopy. J. Vis. Exp. (143), e58567, doi:10.3791/58567 (2019).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
simple hit counter