Summary
Анастомоза утечки или разбивка после операции является одной из основных причин послеоперационной заболеваемости и смертности. Наши операции для создания толстой кишки анастомоз — надежных и воспроизводимых метод для изучения лечебных механизмов анастомозов.
Abstract
Кишечных анастомозов обычно выполняются как факультативные, так и возникающих операций. Тем не менее анастомоза утечки являются очень боялись осложнения операций на ободочной кишки и может произойти в до 26% хирургических анастомозов, с смертности до 39% для пациентов с такой утечки. В настоящее время остается нехватка данных, детализируя клеточных механизмов анастомоза исцеления. Разработка превентивных стратегий и методов лечения для анастомоза утечки может значительно потенцированные по более глубокому пониманию соответствующих анастомоза исцеления.
Мышиных модель идеально, как предыдущие исследования показали, что мышиных анастомоза является наиболее клинически похож на человеческий случай по сравнению с другими животных моделей. Мы предлагаем легко воспроизводимые мышиных модель толстой анастомоза у мышей, которые позволят для дальнейшей иллюстрации анастомоза исцеления.
Introduction
Весьма опасным осложнением хирургических анастомозов кишечника является анастомоза пробоя или утечки. Анастомоза утечки, которая вызывает разлива внутрипросветная содержимого в брюшную полость, угрожающих жизни и может быстро привести к внутрибрюшной сепсис; шок ставки варьируются от 0,3% до 5,5%, после тонкого кишечника анастомозов и подняться до 0,5% и 26% для кишечных анастомозов1,2. Смертности после утечки может быть выше, чем 39% из-за быстрого наступления сепсиса и быстрой прогрессии к смерти внутрибрюшное загрязнения3. Превентивные стратегии и методов лечения в настоящее время основаны на Патофизиология, что не вполне понятно.
В настоящее время анастомоза исцеление часто сравнивают с более широко изучены кожный заживление ран, которая оказалась сравнительно бедных факсимиле. В серии перекрывающихся этапов, начиная с этапа первоначального ЛАГ происходит исцеление. Во время дней 0-4 после создания кишечного анастомоза запаздывание фазы определяется острой воспалительной реакции, которая очищает рану сотовой мусора. Далее через дня 3-4, фибробластический распространение и производство коллагена является типичным fibrophasia фазы. Наконец после 10 день, длительного периода коллагена Ремоделирование известен как на этапе созревания. Важно, что анастомоза сила является довольно низким и зависит от внешней поддержки хирургически размещены скобы или шовные пока Коллаген является хранение4. Понимание роли и времени каждого слоя стенок кишечника играет анастомоза заживление ран и участия в типах воспалительных опосредованной клеток как макрофаги, а также разъяснения суррогатных маркеров предсказать анастомоза провал или успех может значительно снизить заболеваемость, смертность и медицинских расходов после двоеточия операций5.
Чтобы быть полезным в имитируя человека анастомоза6в предыдущих исследованиях было показано мышиных модель. Хотя есть популярные, проверенные и хорошо изучены примеры мышиных толстой анастомоза модели, особенно с методом, описанным в Комен et al. Эти модели 7, в пользу илеоцекальной или возрастания colocolonic анастомоза методы8. Предыдущие исследования человека пациентов продемонстрировали значительную разницу в показателях утечки между илеоцекальной, colocolonic и прямой кишки анастомозов, подчеркнув необходимость дальнейших экспериментальных моделей на различных анатомических местах. Дополнительные, широко используемые методы направлены на разработку модели, которая намеренно создает анастомоза утечки вместо прояснения клеточных механизмов, необходимых для нормального анастомоза ранозаживляющее9. Крыса модели пытались в прошлом, но темпы анастомоза зияние и/или признаки утечки (например, формирование абсцесса) значительно ниже, чем людей и мышей6,7. Кроме того более генетически модифицированные экспериментальные линии доступны в мышей, чем крысы. Это делает модель крыса менее полезными для анастомоза модели. Кроме того свиней и собак модели имели менее клиническое исследование чем мышиных модель6,7.
Мы предлагаем безопасный, технически простых и быстро и легко воспроизводимые процедуры для создания кишечных анастомозов в мышиных модели, который должен облегчить дальнейшее расследование занижены механизм исцеленияанастомоза рану 10 .
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
Следующий протокол был одобрен Оклахомский университет наук Центр институциональных животных здравоохранения и использовать Комитет (IACUC) и соблюдает все институциональные этические руководящие принципы, касающиеся использования исследований животных. Кроме того все эксперименты были проведены в соответствии с институциональной, государственных и федеральных правил, касающихся экспериментальных исследований на животных.
Примечание: Для этого протокола, мы использовали мужского и женского congenic разводят в C57BL6/J мышей в 12 до 72 недель возраста. Все мыши, используемые для этой процедуры хранились в нашем учреждении-барьер для по крайней мере за одну неделю до операции адаптироваться к местным биома. Животных было позволено кормить до время операции, и мы использовали подготовку устных механические кишечника ни ректальной промывка до процедуры.
1) создание анастомозов
- Автоклав хирургических инструментов, теплый раствор солевой орошения и тщательно очистить все постановляющей части поверхности с 70% этиловом спирте.
- Чтобы побудить анестезии, поместите курсор мыши в поле индукции, который подключен к испарителем. Доставить изофлюрановая 2-3% в 1-2 Л/мин до тех пор, пока седативные мышей.
- Поместите животное на потепление устройства, например, грелки, для профилактики гипотермии.
- Подкожно вводить одно время доза 0,1 мг/кг бупренорфин (3 мкг для мыши 30 g) для послеоперационного обезболивания и один раз в дозе 10 мг/кг Энрофлоксацин для предоперационной антибиотикотерапия.
Примечание: Хотя пред- и послеоперационном периоде антибиотики не требуются для этой операции, институциональных руководящих принципов и животное уход и использовать Комитет в наше учреждение, рекомендуется их использовать в нашем учреждении. - Место цистит носовой конус вокруг мыши мордой. На протяжении всей операции тщательно отслеживать частота дыхания животных и отрегулировать скорость потока анестезии при необходимости. Поддержание дыхания на 30-40 вдохов в минуту.
- Используйте машинку для стрижки волос, следуют агента для удаления волос для удаления волос с поверхности всей кожи живота. Тщательно удалите агент для депиляции с марлей, смоченные водой или 70% этанола. Тщательно высушите животного.
- До prepping живота, лента мыши конечностей грелку или постановляющей части поверхности в конце каждой ноги, чтобы предотвратить смещение во время операции мыши. Продезинфицируйте живота с хлоргексидином. Включать всю область бритая, а также волосы на краев области побрился. Место стерильным драпировка над мыши (рис. 1A).
- До драпировки, нарежьте небольшие овальные или прямоугольные окна драпировка подвергать prepped живота.
Примечание: Окно должен предоставлять весь живот мыши, но охватывают конечностей, хвост, голова и грудь. Мы прорубил окно2 4 x 3 см для наших операций (рис. 1B). - Сделайте небольшой разрез вдоль средней линии пелерина, от нижнего края к овальные или прямоугольные окна, чтобы разрешить доступ к прямой кишки во время процедуры (рис. 1 c).
- До драпировки, нарежьте небольшие овальные или прямоугольные окна драпировка подвергать prepped живота.
- Сделайте разрез кожи. Начните вдоль средней линии нижней части живота и надрезать кожу с ножницы вертикально на Мечевидный. Надрезать только кожу и избежать сокращения мышц брюшной стенки (рис. 2A).
- Возьмите midline брюшной стенки с щипцами и выньте от содержимого брюшной полости. Уход не травмировать внутрибрюшное структур, вертикально надрезать длина средней линии живота фасции с острыми ножницами. Увеличить длину Кожный разрез (рис. 2B).
- Когда кишечник подвергаются, найдите слепой кишки и тонкого кишечника и вращать левосторонней внутренностей медиально подвергать спуск и сигмовидной кишки. Слой тупым насадка с смазочных желе и тщательно заранее зонд в прямую кишку, чтобы помочь в идентификации спуск/сигмовидной кишки (рис. 3).
Примечание: В отличие от людей, слепой кишки мыши обычно находится в левом верхнем квадранте живота. Будьте осторожны, не перфорации кишечника стены с зонд в этом шаге. Если перфорированные кишечника стены, прекратить процедуру и усыпить мыши.- Избегайте, схватив слепой кишки с зубчатыми или острые щипцы. Вместо этого используйте корнцанг атравматической, хлопок наконечником аппликатором, или мягкий палец манипуляции поворота внутренностей.
- Использование утепленные стерильного физиологического раствора чтобы убедиться, что подвергается кишечника хранится влажной на протяжении всей процедуры.
- Двоеточием будет на левой стороне срединной и придает retroperitoneum через брыжейка. После идентификации снять тупым зонд частично для облегчения colotomy.
- Выполняйте поперечной colotomy сигмовидной кишки.
- Нежно обхвати сигмовидной кишки, превосходит тазовых входе с атравматической щипцами (рис. 4A).
- С помощью микро ножницами, сделайте разрез через сигмовидная кишка перпендикулярно направлению толстой кишки и простирающихся на 80-90% ширины толстой кишки. Это поможет предотвратить втягивание один конец кишки из операционного поля и облегчения ремонта (рис. 4В).
- Если в ходе висцеральных вращение или colotomy ранен брыжеечных сосудов, аккуратно прижмите давление до 2 мин с марлей или ватным наконечником аппликатором. Если кровотечение продолжается после этого времени, место цифра восемь 8-0 леска швом вокруг точки кровотечения.
Примечание: Если кишечника показывает признаки некроза или травмы после этого, прекратить процедуру и усыпить мыши, используя гуманный метод, одобренный Комитетом институциональных использования животных.
- Ремонт сигмовидной кишки colotomy.
- Использование драйвера иглы Кастровьехо, место 5-6 простых Прерванный 8-0 nonabsorbable полипропиленовые швы для ремонта колостомы. Место швы 1 мм друг от друга с укусами 0,5 мм.
- Позаботьтесь, чтобы избежать прокатки края кишечника в ремонт, взяв немного больше serosa чем слизистая оболочка с каждой строчки. Оставьте хвосты длиной 5 мм. Будьте осторожны не случайно поймать окружающие кишечника в шов (рис. 4 c).
Примечание: Это полезно начать наложение швов на вблизи верхней брыжеечной границы colotomy, сохранение mesenteric-большая часть colotomy для последнего. - По ходу ремонта, заранее транс анальный зонд Блант накренилась рассечение занимаемых ремонта, прежде чем окончательный швы помещены. Это поможет предотвратить слишком узким ремонт и снижении ставок стриктуры анастомоза.
- Позаботьтесь, чтобы избежать прокатки края кишечника в ремонт, взяв немного больше serosa чем слизистая оболочка с каждой строчки. Оставьте хвосты длиной 5 мм. Будьте осторожны не случайно поймать окружающие кишечника в шов (рис. 4 c).
- Использование драйвера иглы Кастровьехо, место 5-6 простых Прерванный 8-0 nonabsorbable полипропиленовые швы для ремонта колостомы. Место швы 1 мм друг от друга с укусами 0,5 мм.
- С помощью 10 мл шприц, заполнены с утепленным физраствора, орошают живот несколько раз. Если поверхность под мышь становится мокрой, сухой мыши или переместите мышь на сухую поверхность во избежание гипотермии.
- Используйте стерильные марлевые помещен над разрез понежиться избыточного полива.
- В заключительном орошения заполните живот стерильного физиологического раствора. Тщательно заранее смазкой angiocatheter 18 G в анальное отверстие и надуть с 0,5-1 см3 воздуха. Это продемонстрирует любой утечки в анастомоза, чем могут быть отремонтированы с другой Прерванный полипропиленовые швом, используя стерильный зонд занимаемых анастомоза.
- Выкачать толстой кишки с использованием angiocatheter до удаления.
- Убедитесь, что существует не носовое кровотечение. Если есть, мягкое давление непосредственно на точку кровотечения для 1-2 мин место гемостатических швов, как описано выше, если кровотечение продолжается.
- Осторожно верните нормальное анатомическое положение (Рисунок 5A) medialized внутренностей.
- Закройте брюшной разрез (Рисунок 5B).
- Использование 4-0 рассасывающиеся швы плетеные, место работает шовные вдоль мышечный слой начиная в верхней части разреза и заканчивая в нижней аспект разрез брюшной стенки. Установите галстук и сократить шов, оставив 5 мм хвосты.
Примечание: Не случайно включить intestine в закрытия брюшной стенки. - Повторите с 4-0 леска швом чтобы закрыть кожи (рис. 5 c).
- Использование 4-0 рассасывающиеся швы плетеные, место работает шовные вдоль мышечный слой начиная в верхней части разреза и заканчивая в нижней аспект разрез брюшной стенки. Установите галстук и сократить шов, оставив 5 мм хвосты.
- Убедитесь, что весь животное тепло и сухо, для предотвращения послеоперационного гипотермии.
- Внимательно следить за животное, как он восстанавливается от анестезии. Администрировать бупренорфин 0,1 мг/кг каждые 72 ч 2-3 дня после процедуры для контроля боли. Во время периода восстановления ежедневно признаков абсцесса или перитонеальный сепсис следует тщательно изучить мышей. Послеоперационное наблюдение за боль и страдания должны включать в себя: ограничение свободы передвижения, включая скрючившись тип осанки, отсутсвие еды или питья, не надлежащий уход, чрезмерное воспаление вокруг раны, отсутствие нормального заживления в месте разреза, или не нормальный вложенности. Любое животное, демонстрируя любой из этих поведений должны быть немедленно euthanized CO2 удушение минимум 10 мин, последовали двусторонние торакотомии.
- Смесь 0,1 мг/мл энрофлоксацина мыши питьевой водой для 7 дней после операции для предотвращения внутрибрюшного инфекции или сепсиса вследствие фекального загрязнения, связанного с операцией.
2) заготовка анастомоза ткани
- Как раз перед иссечения анастомоза ткани, усыпить мыши, используя гуманный метод, одобренный Комитетом институциональных использования животных.
Примечание: На основе институциональной политики, мы усыпить наших животных, помещая их в камеру углекислого газа с 100% двуокиси углерода газа настойка 2 Л/мин за 5 мин до выполнения двусторонних торакотомии. - Стерилизуйте живота с хлоргексидином, следуют на 70% спирте.
- Повторно надрезать оригинальный срединной линии разреза с острыми ножницами. Начало в нижний полюс предыдущего разреза и расширить этот отрезок главно к мечевидный (рис. 6A).
- Ножницами, вырезать в мышечный слой и после ввода перитонеального пространства, расширить разрез в верхней и нижней части разреза. Позаботьтесь, чтобы избежать ранения кишечника при въезде в живот или нарушая анастомоза, как там может быть что кишечника придерживаться разрез или анастомоза сайта.
- Тщательно выполните левый медиальной висцеральных вращение, подвергая отремонтированы сигмовидная кишка (Рисунок 6B). Скорее всего будет спайки кишечника для кишечника, окружающих ремонта. Нежно и тупо препарировать эти спайки от места ремонта. Проявлять большую осторожность, чтобы не нарушить анастомоза.
- Определение сайта ремонт, найдя хвосты полипропиленовые швов, используемых для ремонта. С помощью ножниц и начиная 1 см проксимальнее ремонт, поперек разрез через нисходящей ободочной кишки. Повторите этот шаг 1 см дистальной сайт анастомоза.
- Удаление сегмента сигмоид, резко рассекая двоеточие прилагаемый брыжейка вдоль задней границы толстой кишки с тонкой ножницы (рис. 7).
- Идентифицировать брыжеечных границы образца Колон и использование тонкой ножницы для резки по длине верхней брыжеечной границы в продольные моды. Это создаст квадратную или прямоугольную часть толстой кишки из цилиндрических образцов удалены ранее (Рисунок 8).
- Используйте перо маркировки для демаркации границы анти брыжеечных толстой кишки до удаления толстой сегмента. После удаления сделайте продольной резки по длине кишки напротив маркировки. Исправить, внедрить и разрезать образец ткани, необходимые для гистологии и/или иммуноокрашивания.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
7 дней после операции должны хорошо исцелил анастомоза. Анастомоз могут быть собраны в моменты времени до и после 7 дней, чтобы лучше проиллюстрировать на этапах анастомоза исцеления. На рисунке 9, гистологический анализ показывает фиброзный (коллаген визуализированы пятнать trichrome) ответ при посредничестве миофибробласты позитивных альфа актина гладких мышц. Однако мы обнаружили, что результаты гистологического анализа различаются мышей, специально степень эпителизация и концентрации миофибробласты на объекте анастомоза. Мы приводим смертности после этой процедуры, чтобы быть менее 10%, с более чем 90% живых мышей, имея хорошо исцелил анастомозов на 7 дней.
Рисунок 1: Подготовка драпировки и хирургические. (A) A стерильные Пелерина помещается над мыши после нацелен живота. (B) A маленький овал или прямоугольник нарезать драпировка подвергать живота. (C) A небольшие щели следует вдоль средней драпировка вблизи овальные или прямоугольные окна, чтобы разрешить доступ к прямой кишки во время процедуры. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.
Рисунок 2 : Разрезы. (A) A кожи разрез заботясь чтобы не травмировать брюшины. ()B) брюшины повышенных от содержимого брюшной полости и резаная подвергая внутрибрюшного содержимое.
Рисунок 3 : Зонд размещение. Тупой зонд аккуратно помещается в прямой кишке. После нахождения слепой кишки, содержание живота поворачиваются медиально визуализации ректальный датчик ранее размещенные.
Рисунок 4 : Colotomy и ремонт. (A) сигмовидной захватил с атравматической щипцами. (B) использование острых микро ножницы, сделать разрубом через сигмовидная кишка перпендикулярно направлению толстой кишки и простирающихся на 80-90% ширины толстой кишки. (C) с помощью драйвера иглы Кастро-Вьехо, место 5-6 простой прервана 8-0 полипропилен швы для ремонта colotomy. Швы должны быть около 1 мм друг от друга с укусами 0,5 мм. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.
Рисунок 5 : Ушивание. (A) висцеральных органов возвращаются в нормальное анатомическое положение. (B) брюшной разрез закрыт с 4-0 плетеные швом. (C) кожи закрыт с 4-0 леска швом. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.
Рисунок 6 : Разрез послеоперационный. (A) вновь открыть оригинальный срединной линии разреза, раскрывая внутрибрюшного содержимое. Не забудьте расширить надрез сверху и сбоку для лучшего воздействия сигмовидной кишки. (B) повернуть внутренностей, медиально выявление сигмовидной кишки анастомоз.
Рисунок 7 : Заготовка анастомоза. Удалите сегмент кишечника проксимальном и дистальном анастомоза по 1 см с каждой стороны.
Рисунок 8 : Ориентация на разделах ткани. Разрежьте по длине верхней брыжеечной границы в продольные моды. Это оставляет прямоугольной образца. Это изображает образца сигмовидной кишки анастомоз.
Рисунок 9 : Гистология и иммуногистохимической анализ полностью исцелил толстой кишки анастомоз. Гистологический анализ показывает фиброзный (коллаген визуализированы пятнать trichrome) ответ при посредничестве миофибробласты позитивных альфа актина гладких мышц.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
Есть несколько основных шагов для обеспечения успеха и свести к минимуму заболеваемости/смертности, связанные с этой процедурой. Во-первых обеспечение тщательного регулировать кишечную ткани и заботиться, чтобы предотвратить травмы тяги при вращении внутренностей подвергать толстой кишки. Чрезмерное напряжение на кишечника или брыжейка можно травмы кишечника или сосудистую и причиной некроз кишечника от сайт анастомоза. Кроме того острые щипцы или щипцы с зубами не должен использоваться для обработки кишечника.
Травмы отдельно от сайта запланированных анастомоза, кишечника при висцеральных вращения или перфорация с тупым зонд, должно привести к эвтаназии животного. По нашему опыту некрозы кишечника или травмы может привести к внутрибрюшной сепсис или смерти и значительно возросла воспалительной реакции, которая чрезмерно затрудняет восстановление исцелил анастомоза образца.
Перерезка толстой кишки должен охватывать как много нисходящей ободочной кишки как можно, но следует позаботиться не разрез serosa кишечника при контакте с брыжейка. По нашему опыту, перерезка, который включает serosa- и особенно брыжейка может привести к Ретракция проксимальном отделе толстой кишки, что делает более трудным анастомоза и может привести к дальнейшей травмы, пытаясь восстановить отозванные сегмента.
Анастомоза может быть восстановлена с 5-6 Прерванный швами. Больше могут быть необходимы для больших мышей. Швы должны быть 1 мм друг от друга. Место швы по обе стороны от верхней брыжеечной границы, а затем на чередующихся стороны перерезка встретиться в середине в борьбе с верхней брыжеечной границы облегчает легче и быстрее анастомоза. Перед окончательной шовный материал охватывающих анастомоза с тупым зонд обеспечивает патент анастомоза и предотвращает «бэк стеновые» анастомоза, который бы эффективно перевязать толстой кишки.
Обеспечению гемостаза до закрытия брюшной полости. Несмотря на послеоперационной антибиотикотерапии освещение hemoperitoneum в период восстановления после внутрибрюшное загрязнение может привести к неприемлемо высоким уровнем внутрибрюшного инфекции и спаечной болезни.
При выполнении этой процедуры сначала несколько мышей может быть потеряно в послеоперационном периоде. Наши первоначальные смертности приблизительно 30%. Мы нашли это главным образом объясняется анастомоза уретры, ведущих к обструкции и некрозы кишечника, разбивка анастомоза ремонт, или некроз стенки кишечника от сайта анастомоза, вероятно, из-за ишемии после верхней брыжеечной травмы. Все это может привести к внутрибрюшного инфекции, сепсис и смерти. После того, как опытный в этой процедуре, оперирующего хирурга должны испытывать смертности до 10%. Доказательства субклинической анастомоза сайта утечки, иллюстрируется гнойные и плотные спайки в месте наложения анастомоза, были представлены в еще 10%. Хотя эта процедура может быть сделано без помощи масштаба, его крупнейшим недостатком как модель воспроизводимых экспериментальных является относительной технической задачей по сравнению с илеоцекальной или восходящей толстой анастомозов. Мы нашли хирургические лупы чрезвычайно полезны при выполнении анастомоза при сведении к минимуму травмы к стенке кишечника. Хирургический Микроскоп также могут быть использованы, но мы не нашли, необходимые.
Многие методы были использованы для описания животных моделей для толстой анастомоза; особенности использования модели крыс и кроликов. Мы нашли там быть нехватка воспроизводимые процедуры по убыванию толстой кишки анастомоз в моделях мыши; Мы подозреваем, что это из-за меньшего размера мышей, возрастающей технической сложности анастомоза процедур. Однако мыши имеют больший выбор и более широкой доступности трансгенных линий и антител, которые к этому моменту были недоступны для использования в модели анастомоза толстой кишки. Мы разработали текущей модели унифицировать модель мыши с моделью анастомоза толстой кишки.
Наш опыт работы с этой процедуры включает мужской и женский мышей различных размеров и возрастов. На данный момент мы не сравнивал анастомоза ранозаживляющее результаты между возрастов, размеров или полов мышей, хотя конечно могут существовать различия, и эта модель позволит сравнения.
Мы считаем, что эта модель может быть легко и последовательно воспроизведены и используется для изучения анастомоза заживление ран. Хотя мы рекомендуем первый образец урожаи на семь дней, ранее и позднее время точки могут быть полезны в иллюстрирующие Хронология анастомоза исцеление; демонстрации, например, ранние миграции воспалительных клеток и посредников в узле анастомоза и отложение коллагена, фибробластов в следующие недели.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
Авторы заявляют, что они не имеют никаких финансовых интересов.
Acknowledgments
Нет
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| C57BL6/J mice | Jackson Labs | #00664 | |
| Fisherbrand Absorbent Underpads, 20" x 24" | Fisher Scientific | 14-206-62 | |
| Polylined Sterile Field, 18" x 24" | Busse Hospital Disposables | 696 | Cut a rectangular hole |
| Isothesia isoflurane | Henry Schein | 50033 | |
| Fisherbrand Sterile cotton gauze pad, 4" x 4" | Fisher Scientific | 22-415-469 | |
| Puralube petrolatum ophthalmic ointment, 1/8 oz. tube | Dechra Veterinary Products | NDC 17033-211-38 | |
| Nair depilatory cream | Church & Dwight Co. | 22339-05 | |
| Buprenex buprenorphine 0.3 mg/ml | Reckitt Benckiser Pharma Inc | NDC 12496-0757-5 | |
| 1 cc insulin syringe, 27 G | Becton Dickinson | 329412 | |
| Chloraprep Shampoo | Medline | APL82287 | |
| Webcol alcohol prep swabs | Covidien | 6818 | |
| BioGel PI surgical gloves | Mölnlycke Health Care | ALA42675Z | |
| Micro Forceps with teeth | Roboz | RS-5150 | |
| Fine scissors- sharp | Fine Science Tools | 14060-09 | |
| Straight serrated forceps | Fine Science Tools | 11050-10 | |
| Castro-Viejo needle driver | Fine Science Tools | 12565-14 | |
| 0.9% Sodium Chloride Irrigation | Baxter | BHL2F7121 | Warm to 37 °C prior to use |
| 10 ml syringe | Becton Dickinson | 309604 | |
| 4-0 Vicryl absorbable braided suture, 18", PS-2 needle | Henry Schein | 6546037 | |
| Blue monofilament suture 24” BV-1 needle | Henry Schein | 8305H | Usually comes double-armed. Cut the suture at the midway point to generate two usable sutures. |
| Cole-Parmer Microscissors, Standard Grade, Straight, 4". | Cole- Parmer | EW-10818-06 | |
| Medline Sterile lubricating jelly | Medline | MDS032273H |
References
- Murrell, Z. A., Stamos, M. J.
- Shaban, F., Carney, K., McGarry, K., Holtham, S. Perforated Diverticulitis: To Anastomose or Not to Anastomose? A Systematic Review and Meta-Analysis. International journal of surgery (London, England). , (2018).
- Chambers, W. M., Mortensen, N. J. Postoperative leakage and abscess formation after colorectal surgery. Best practice, research. Clinical gastroenterology. 18, 865-880 (2004).
- Ashkanani, F., Krukowski, Z. H. Surgery - Oxford International Edition. Intestinal Anastomosis. 20, 104-107 (2002).
- Raptis, D., Pramateftakis, M. G., Kanellos, I. Our 20-year experience with experimental colonic anastomotic healing. Journal of medicine and life. 11, 5-14 (2018).
- Pommergaard, H. C., Rosenberg, J., Schumacher-Petersen, C., Achiam, M. P. Choosing the best animal species to mimic clinical colon anastomotic leakage in humans: a qualitative systematic review. European surgical research. Europaische chirurgische Forschung. Recherches chirurgicales europeennes. 47, 173-181 (2011).
- Komen, N., et al. Colorectal anastomotic leakage: a new experimental model. The Journal of surgical research. 155, 7-12 (2009).
- Perry, T., Borowiec, A., Dicken, B., Fedorak, R., Madsen, K. Murine ileocolic bowel resection with primary anastomosis. Journal of visualized experiments : JoVE. , e52106 (2014).
- Pommergaard, H. C., Achiam, M. P., Rosenberg, J. Colon anastomotic leakage: improving the mouse model. Surgery today. 44, 933-939 (2014).
- Bosmans, J. W. A. M., Jongen, A. C. H. M., Bouvy, N. D., Derikx, J. P. M. Colorectal anastomotic healing: why the biological processes that lead to anastomotic leakage should be revealed prior to conducting intervention studies. BMC Gastroenterology. 15, 180 (2015).
