Summary
Anastomotic läcka eller uppdelning efter operationen är en viktig orsak till postoperativ morbiditet och mortalitet. Vår kirurgi för att skapa en colonic anastomos är en pålitlig och reproducerbar metod för att studera den helande mekanismen av anastomoser.
Abstract
Intestinal anastomoser utförs vanligen i såväl elektiv som framväxande verksamhet. Trots detta anastomotic läckor är en mycket fruktade komplikationer av kolon operationer och kan förekomma hos upp till 26% av kirurgiska anastomoser, med dödligheten vara upp till 39% för patienter med sådan en läcka. För närvarande fortfarande finns det en brist på data som beskriver de cellulära mekanismerna anastomotic helande. Utforma förebyggande strategier och behandlingsmetoder för anastomotic läcka kan kraftigt Genauair och en bättre förståelse av lämpliga anastomotic healing.
En murin modell är perfekt som tidigare studier har visat att murina anastomos är den mest kliniskt liknar mänskliga fallet jämfört med andra djurmodeller. Vi erbjuder en lätt reproducerbar murina modell av kolon anastomos i möss som kommer att möjliggöra ytterligare illustration av anastomotic healing.
Introduction
En mycket fruktad komplikation av kirurgiska anastomos i tarmen är anastomotic nedbrytnings- eller läcka. Anastomotic läcka, vilket orsakar spill av intraluminal innehållet i bukhålan, är livshotande och kan snabbt leda till intraabdominella sepsis; chock priser varierar från 0,3% till 5,5% efter tunntarmen anastomoser och stiga till mellan 0,5% och 26% för kolon anastomoser1,2. Dödlighet efter läckor kan vara så hög som 39% på grund av den snabba uppkomsten av sepsis och snabb progression till döden efter intraabdominal kontaminering3. Förebyggande strategier och behandlingsmetoder baseras för närvarande på patofysiologi som inte är helt klarlagt.
För närvarande jämförs anastomotic healing ofta med de mer allmänt studerade kutan sårläkning, som har visat sig vara en relativt dålig faksimil. Läkning sker i en serie överlappande faser, börjar med den första lag fasen. Under dagarna 0-4 efter skapandet av intestinal anastomos definieras fasen lag av en akut inflammatorisk reaktion som rensar såret av cellulära skräp. Nästa, under dagarna 3-4, fibroblastic spridning och produktionen av kollagen kännetecknar den fibrophasia fasen. Slutligen, efter dag 10, en långvarig period av kollagen remodeling kallas den mognad fasen. Det är viktigt att Observera att anastomotic styrka är ganska låg och beror på yttre stöd av kirurgiskt placerad häftklamrar eller sutur tills kollagen är deponerade4. Förstå rollen och timing varje lager av tarmväggen spelar i anastomotic sårläkning och inblandning i inflammatoriska-medierad celltyper som makrofager, samt belysa surrogatmarkörer att förutsäga anastomotic misslyckande eller framgång kunde kraftigt minska sjuklighet, dödlighet och vårdkostnader efter kolon verksamhet5.
Murina modellen har visat i tidigare studier att vara den användbara i härma mänskliga anastomos6. Medan det finns populära, beprövade och väl studerat exempel av murina colonic anastomotic modellen, särskilt den metod som beskrivs av Komen o.a. 7, dessa modeller för ileocecal eller stigande colocolonic anastomotic tekniker8. Tidigare studier av mänskliga patienter har visat signifikant skillnad i läcka priser mellan ileocecal, colocolonic och kolorektal anastomoser, belyser behovet av ytterligare experimentella modeller på varierande anatomiska platser. Ytterligare, populärt används metoder syftar till att utveckla en modell som avsiktligt skapar en anastomotic läcka snarare än belysa de cellulära mekanismer som krävs för normal anastomotic sårläkning9. Rat modeller har varit försökt tidigare men har andelen anastomotic sårruptur och/eller tecken på läckage (dvs abscess formation) betydligt lägre än människor och möss6,7. Dessutom finns mer genetiskt modifierade experimentella linjerna hos möss än råttor. Detta gör råtta modellen mindre användbar för en anastomotic modell. Svin och hund modeller har dessutom haft mindre klinisk utredning än murina modell6,7.
Vi föreslår en säker, tekniskt enkel och snabbt och enkelt reproducerbar förfarande för skapandet av kolon anastomoser i en murin modell som bör underlätta ytterligare utredning av underrapporterat mekanismen av anastomotic såret helande10 .
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
Följande protokoll har godkänts av University of Oklahoma Health Sciences Center institutionella djurvård och använda kommittén (IACUC) och uppfyller alla institutionella etiska riktlinjer angående användning av försöksdjur. Dessutom utfördes alla experimenten i enlighet med institutionella, statliga och federala förordningar om experimentella djurförsök.
Obs: För detta protokoll använde vi kvinnliga och manliga congenic i-uppfödda C57BL6/J möss vid 12 till 72 veckors ålder. Alla möss används för proceduren hölls på vår icke-barriären anläggning för minst en vecka före operationen att anpassa sig till den lokala biomen. Djur tilläts mata till tiden för operation och vi använde varken muntliga mekaniska tarm förberedelse eller rektal spolning före ingreppet.
1) skapande av anastomoser
- Autoklav de kirurgiska instrument, varm koksaltlösning bevattning lösningen och rengör noggrant alla operativa ytor med 70% etanol.
- För att inducera anestesi, Placera musen i en induktion-box som är ansluten till en spridare. Leverera 2-3% isofluran vid 1-2 L/min tills möss är drogad.
- Placera djuret på en värmande enhet, till exempel en värmedyna, att förhindra hypotermi.
- Subkutant injicerar en tid dos på 0,1 mg/kg buprenorfin (3 µg för en 30 g-mus) för postoperativ smärtlindring och en dos av 10 mg/kg av enrofloxacin för preoperativ antibiotikaprofylax.
Obs: Även om pre- och postoperativ antibiotika inte krävs för denna operation, institutionella riktlinjer och djuret hand och användning kommittén på vår institution rekommenderas deras användning vid vår anläggning. - Placera bedövningsmedel näskotten runt musens nos. Under hela operationen, noga övervaka andningsfrekvensen djuret och justera bedövningsmedel flödet efter behov. Upprätthålla en andningsfrekvens på 30-40 andetag per minut.
- Använda en hårklippare följt av en hårborttagningsprodukter agent att ta bort håret från hela hudytan av buken. Grundligt avlägsna hårborttagningsprodukter agenten med en kompress fuktad med vatten eller 70% etanol. Torka djuret.
- Före prepping buken, tejpa musens lemmar till värmedyna eller operativa yta i slutet av varje ben att hindra musen från skiftande under operation. Desinficera buken med klorhexidin. Inkludera hela rakade området liksom håret på kanterna av den rakade området. Placera en steril draperi över musen (figur 1A).
- Innan drapering, skär ett litet ovala eller rektangulära fönster i drapera att exponera preppad buken.
Obs: Fönstret bör exponera hela buken av musen men täcker armar och ben, svans, huvud och bröstkorg. Vi skär ett 4 x 3 cm2 fönster för verksamheten (figur 1B). - Gör en liten skåra längs drapera mittlinjen, från den nedre kanten mot det ovala eller rektangulära fönstret, att tillåta åtkomst till ändtarmen under förfarandet (figur 1 c).
- Innan drapering, skär ett litet ovala eller rektangulära fönster i drapera att exponera preppad buken.
- Gör ett snitt i huden. Starta längs mittlinjen av nedre delen av buken och incisionsfilm hud med sax vertikalt till xiphoid. Incisionsfilm bara huden och undvika skärning bukväggen muskulaturn (figur 2A).
- Förstå mittlinjen av bukväggen med pincett och lyft bort från buken innehållet. Noga med att inte skada intraabdominal strukturer, incisionsfilm längden på mittlinjen buk fascian vertikalt med vass sax. Förlänga hud snittet (figur 2B).
- När tarmen utsätts, leta upp blindtarmen och tunntarmen och rotera vänstersidig inälvor medialt för att exponera den fallande och Colon sigmoideum. Coat trubbiga sondens spets med smörjning av gelé och försiktigt föra sonden i ändtarmen för att underlätta identifiering av fallande/sigmoid kolon (figur 3).
Obs: Till skillnad från människa, mus blindtarmen är i allmänhet finns i övre vänstra kvadranten av buken. Se till att inte perforera tarmväggen med sonden i detta steg. Om tarmväggen är perforerad, avsluta förfarandet och avliva musen.- Undvik att greppa blindtarmen med tandade eller vassa pincetten. I stället använder atraumatiska pincett, bomull lutad applikator, eller mild finger manipulation att rotera inälvor.
- Användning värmde steril koksaltlösning så utsatta tarmen hålls fuktig under hela förfarandet.
- Tjocktarmen blir till vänster om mittlinjen och bifogas den retroperitoneum via krös. Efter identifiering, återkalla trubbiga sonden delvis för att underlätta colotomy.
- Utföra tvärgående colotomy av sigmoideum.
- Försiktigt ta tag sigmoideum överlägsen det bäcken inloppet med atraumatiska pincett (figur 4A).
- Med skarpa mikro-sax, göra ett snitt över sigmoideum vinkelrätt mot riktningen av tjocktarmen och sträcker sig över 80-90% bredden på tjocktarmen. Detta kommer att förhindra indragning av ena änden av tjocktarmen av operationsområdet, och underlätta reparation (figur 4B).
- Om ett mesenterica blodkärl skadas under loppet av den viscerala rotation eller colotomy, försiktigt hålla trycket för upp till 2 min med gasväv eller en bomull spets applikator. Om blödning kvarstår efter denna tid, placera en-åtta 8-0 monofilament suturen runt punkten av blödning.
Obs: Om tarmen visar tecken på nekros eller skada efter detta, avsluta förfarandet och avliva musen med en human metod som godkänts av ert utskott för institutionella användning av djur.
- Reparera den sigmoideum colotomy.
- Använda en Castroviejo nål förare, plats 5-6 enkla avbrutna 8-0 oresorberbara polypropylen stygn för att reparera kolostomi. Placera suturer 1 mm ifrån varandra med 0,5 mm tuggor.
- Var noga med för att undvika rullande kanterna av tarm i reparation genom att ta något mer serosa än slemhinna med varje stygn. Lämna svansar 5 mm lång. Ta hand inte att av misstag fånga omgivande tarm till suturen (figur 4 c).
Obs: Det är bra att börja suturering vid den nära mesenterica gränsen till den colotomy, sparar den anti-mesenteric-mest delen av colotomy till sist. - Som reparation fortskrider, advance trans-anal trubbig spets dissektion sonden att spänna reparation innan de slutliga suturerna placeras. Detta kommer att undvika alltför smala en reparation och minska andelen anastomotic striktur.
- Var noga med för att undvika rullande kanterna av tarm i reparation genom att ta något mer serosa än slemhinna med varje stygn. Lämna svansar 5 mm lång. Ta hand inte att av misstag fånga omgivande tarm till suturen (figur 4 c).
- Använda en Castroviejo nål förare, plats 5-6 enkla avbrutna 8-0 oresorberbara polypropylen stygn för att reparera kolostomi. Placera suturer 1 mm ifrån varandra med 0,5 mm tuggor.
- Med en 10 mL spruta fylld med värmde koksaltlösning, vattna buken flera gånger. Om ytan under musen blir blöt, torka musen eller flytta musen till en torr yta för att undvika hypotermi.
- Använd en steril kompress som placeras över snittet för att suga upp överflödigt bevattning.
- Vid den slutliga bevattningen, Fyll buken med steril koksaltlösning. Noggrant avancera en smorda 18 G angiocatheter i ändtarmen och blåsa med 0,5-1 cm3 luft. Detta kommer att visa några läckor i anastomos än kan repareras med en annan avbrutna polypropylen sutur med steril sonden för att spänna anastomos.
- Tömma tjocktarmen med hjälp av angiocatheter före borttagning.
- Kontrollera att det finns ingen aktiv blödning. Om det finns, tillämpa lätt tryck direkt på peka av blödning för 1-2 min. plats hemostatiska sutur som beskrivs ovan om blödningen fortsätter.
- Försiktigt tillbaka medialiserad inälvor till sin normala anatomiska position (figur 5A).
- Nära buken snittet (figur 5B).
- Med 4-0 resorberbar flätad suturer, placera en rinnande sutur längs den muskulösa lagret av den buk-väggen börjar överst på snittet och slutar på sämre aspekt av snittet. Installera en slips och skär suturen lämnar 5 mm svansar.
Obs: Inte oavsiktligt införliva tarmen i bukväggen stängningen. - Upprepa med 4-0 monofilament sutur att stänga huden (figur 5 c).
- Med 4-0 resorberbar flätad suturer, placera en rinnande sutur längs den muskulösa lagret av den buk-väggen börjar överst på snittet och slutar på sämre aspekt av snittet. Installera en slips och skär suturen lämnar 5 mm svansar.
- Säkerställa att hela djuret är varm och torr, att förhindra postoperativ hypotermi.
- Noggrant övervaka djuret när det återhämtar sig från anestesi. Administrera 0,1 mg/kg buprenorfin varje 72 h för 2-3 dagar efter ingreppet för smärtkontroll. Under återhämtningsperioden, bör möss undersökas noggrant dagligen för tecken på abscess eller peritoneal sepsis. Postoperativ observation för smärta och ångest bör omfatta: begränsning av rörelse inklusive hunching typ av hållning, bristande äta eller dricka, inte ordentlig grooming, överdriven inflammation runt sår, brist på normal läkning på platsen för snitt, eller inte normalt häckande. Alla djur som visar något av dessa beteenden bör bli euthanized omedelbart av CO2 kvävning i minst 10 min följt av bilaterala torakotomi.
- Blanda 0,1 mg/mL av enrofloxacin med musens dricksvatten i 7 dagar efter operation för att förhindra intraabdominell infektion eller sepsis på grund av fekal förorening som associeras med operationen.
(2) skörd Anastomotic vävnad
- Strax före excising anastomotic vävnad, avliva musen med hjälp av en human metod som godkänts av utskottet för institutionella användning av djur.
Obs: Baserat på institutionella politiken, avliva vi våra djur genom att placera dem i en kammare som koldioxid med 100% koldioxid gas infusion på 2 L/min för 5 min innan du utför bilaterala torakotomi. - Sterilisera buken med klorhexidin följt av 70% etanol.
- Re incisionsfilm ursprungliga mittlinjen snitt med vass sax. Starta på den nedersta Polen av det tidigare snittet och förlänga detta skära fint att xiphoid (figur 6A).
- Med sax, klippa in den muskulösa lagret, och efter att ange peritoneal rymden, förlänga snittet till toppen och botten av snittet. Var noga med för att undvika att skada tarmen när du anger buken eller störa anastomos, eftersom det kan finnas tarm följs till snitt eller anastomotic webbplats.
- Noggrant utföra en vänster mediala viscerala rotation utsätta reparerade sigmoideum (figur 6B). Det kommer sannolikt att tarm till tarm sammanväxningar kring reparation. Försiktigt och rakt på sak dissekera dessa sammanväxningar från platsen för reparation. Ta stor omsorg för att inte störa anastomos.
- Identifiera reparationsytan genom att lokalisera svansar av polypropylen sutur används för reparation. Med sax och börjar 1 cm proximalt till reparation, tvären transekt genom det fallande kolonet. Upprepa detta steg 1 cm distalt till platsen för anastomos.
- Ta bort segmentet sigmoidal genom kraftigt dissekera kolon från bifogade krös längs den bakre gränsen i tjocktarmen med fina sax (figur 7).
- Identifiera mesenterica gränsen av kolon förlagan och Använd fin sax för att klippa längs längden av den mesenteriska gränsen i en längsgående mode. Detta kommer att skapa en fyrkantig eller rektangulär sektion av kolon från cylindriska preparatet tidigare bort (figur 8).
- Använd en märkning penna för att avgränsa anti mesenterica gränsa av kolon före borttagning av segmentet kolon. Efter avlägsnande, gör ett längsgående snitt längs längden av tjocktarmen mittemot märkning. Fixa, bädda in och skär vävnadsprover som behövs för histologi och/eller immunfärgning.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
På 7 dagar efter operation, bör anastomos vara väl läkt. Anastomos kan skördas vid tidpunkter före och efter sju dagar för att bättre illustrera stadier av anastomotic healing. I figur 9, den histologiska analysen visar en fibrotisk (kollagen visualiseras genom trikrom färgning) svar medieras av glatt muskulatur alpha-aktin positiva myofibroblaster. Vi har dock funnit att resultaten från histologiska analyser varierar mellan möss, särskilt graden av återepitelisation och koncentrationen av myofibroblaster på webbplatsen anastomotic. Vi rapporterar dödlighet efter detta förfarande vara mindre än 10%, med mer än 90% av överlevande möss har väl läkta anastomoser på 7 dagar.
Figur 1: Draperingar och kirurgisk beredning. (A) A steril duk placeras över musen efter buken har varit förberedd. (B) en liten oval eller rektangulär skärs i drapera att exponera buken. (C), en liten springa bör göras längs mittlinjen av drapera nära fönstret ovala eller rektangulära att tillåta åtkomst till ändtarmen under förfarandet. Klicka här för att se en större version av denna siffra.
Figur 2 : Snitt. (A) A huden snitt medan ta hand inte att skada bukhinnan. ()B) bukhinnan är förhöjd från buken innehållet och anskäras utsätta intraabdominella innehållet.
Figur 3 : Sonden placering. En trubbig sond placeras försiktigt i ändtarmen. Efter att lokalisera blindtarmen, roterar innehållet i buken medialt visualisera rektal sonden tidigare placerats.
Figur 4 : Colotomy och reparera. (A) Den sigmoideum är förstått med atraumatiska pincett. (B) använda skarpa mikro-sax, göra ett snitt över sigmoideum vinkelrätt mot riktningen av tjocktarmen och sträcker sig över 80-90% bredden på tjocktarmen. (C) använda en Castro-Viejo nål förare, plats 5-6 enkla avbryts 8-0 polypropylen stygn för att reparera colotomy. Suturer bör vara ca 1 mm från varandra med 0,5 mm tuggor. Klicka här för att se en större version av denna siffra.
Figur 5 : Sår stängning. (A) de viscerala organ återgår till sin normala anatomiska position. (B) buken snittet försluts med 4-0 flätad sutur. (C), huden är stängd med 4-0 monofilament sutur. Klicka här för att se en större version av denna siffra.
Figur 6 : Snitt efter operationen. (A) att åter öppna den ursprungliga mittlinjen snitt avslöjar intraabdominella innehållet. Tänk på att förlänga snittet fint och sidled för bättre exponering för den sigmoideum. (B) rotera inälvor medialt avslöjar sigmoideum anastomos.
Figur 7 : Skörd anastomos. Ta bort segmentet av tarm proximala och distala till anastomos 1 cm på varje sida.
Figur 8 : Orientering för vävnadssnitt. Skär längs längden av den mesenteriska gränsen i en längsgående mode. Detta lämnar en rektangulär förlaga. Detta skildrar exemplar av sigmoideum anastomos.
Figur 9 : Histologi och immunhistokemisk analys av en helt läkta colonic anastomos. Histologisk analys visar fibrotiska (kollagen visualiseras genom trikrom färgning) svar medieras av glatt muskulatur alpha-aktin positiva myofibroblaster.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
I området i närheten finns det flera viktiga steg för att säkerställa framgång och minimera sjukligheten/dödligheten är associerad med den här proceduren. Först säkerställa noggrann hantering av Tarmvävnaden och ta hand för att förhindra traktion skada när roterande inälvor för att exponera kolon. Onödig spänning på tarm eller tarmkäx kan skada tarmen eller blodkärlen och orsaka tarm nekros från platsen för anastomos. Dessutom bör vass tång eller pincett med tänder inte användas för att hantera tarmen.
Skada på tarmen separat från platsen för planerade anastomos, antingen under viscerala rotation eller genom perforation med trubbiga sond, bör medföra avlivning av djuret. Vår erfarenhet kan tarm nekros eller skada leda till intraabdominella sepsis eller död, och en kraftigt ökad inflammatorisk reaktion som gör återhämtning av läkta anastomotic provexemplar oöverkomligt svårt.
Transection av tjocktarmen bör spänna så mycket av det fallande kolonet som möjligt, men försiktighet bör iakttas att inte transekt tarm slemhinnorna kommer i kontakt med krös. Vår erfarenhet, transection som inkluderar buk-och brösthinnan- och särskilt krös-kan leda till indragning av den proximala delen av tjocktarmen som försvårar anastomos och kan leda till ytterligare skada försökande till återvinna segmentet infällt.
Anastomos kan repareras med 5-6 avbrutna suturer. Mer kan behövas för stora möss. Suturer bör vara 1 mm från varandra. Plats suturer på endera sidan av gränsen mesenteriska och sedan på alternerande sidor av transection att mötas i mitten på anti mesenterica gränsen underlättar en enklare och snabbare anastomos. Innan den slutliga suturen, spanning anastomos med trubbiga sonden garanterar en patent anastomos och förhindrar ”back-mur” anastomos, som effektivt skulle ligera kolon.
Säkerställa hemostas innan buken stängning. Trots postoperativ antibiotika täckning, hemoperitoneum i återhämtningsperioden efter intraabdominal kontaminering kan leda till en oacceptabelt hög andel intraabdominella infektioner och självhäftande sjukdom.
När du först utför proceduren, kan flera möss gå förlorad i den postoperativa perioden. Vår första dödligheten approximeras 30%. Vi har funnit att det är främst på grund av anastomotic striktur leder till obstruktion och tarm nekros, uppdelning av anastomotic reparation eller tarm väggen nekros från platsen för anastomos sannolikt på grund av ischemi efter mesenterica skada. Alla dessa kan leda till intraabdominella infektioner, sepsis och död. När upplevt i detta förfarande, bör fungerande kirurgen uppleva en dödlighet på under 10%. Bevis av subklinisk anastomotic webbplats läcka, illustrerad av purulence och tät sammanväxningar på platsen för anastomos, var närvarande i ytterligare 10%. Medan detta förfarande kan göras utan hjälp av förstoring, är dess största nackdel som reproducerbara experimentell modell den relativa tekniska utmaningen jämfört ileocecal eller stigande kolon anastomoser. Vi hittade kirurgiska luppar ytterst hjälpsam utföra anastomos samtidigt minimera trauma till tarmväggen. Ett kirurgiskt Mikroskop kan också användas, men vi finner inte det nödvändigt.
Många tekniker har använts för att beskriva djurmodeller för kolon anastomos; särskilt utnyttja råtta och kanin modeller. Vi har hittat det finns en brist av reproducerbara förfaranden av fallande kolon anastomos i musmodeller; Vi misstänker att detta är på grund av den mindre storleken av möss öka den tekniska svårigheten anastomotic förfaranden. Möss har dock större urval och större tillgänglighet för transgena linjerna och antikroppar, som till denna punkt var tillgängliga för att användas i kolon anastomos modell. Vi utvecklade den nuvarande modellen för att förena musmodell med en modell av kolon anastomos.
Vår erfarenhet med detta förfarande omfattar såväl kvinnliga som manliga möss i olika storlekar och åldrar. Vid denna punkt, har vi inte jämfört anastomotic sårläkning resultat mellan åldrar, storlekar eller könen av möss, men det kan säkert förekomma skillnader, och denna modell skulle tillåta denna jämförelse.
Vi anser att denna modell kan vara enkelt och konsekvent reproduceras och används för att studera anastomotic sårläkning. Även om vi rekommenderar första exemplaret skördar på sju dagar tidigare och senare kan tidpunkter vara till hjälp för att illustrera en tidslinje av anastomotic healing; demonstrera, till exempel tidig migration av inflammatoriska celler och mediatorer i anastomotic webbplats och nedfall av kollagen av fibroblaster under de följande veckorna.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
Författarna förklarar att de har inga konkurrerande finansiella intressen.
Acknowledgments
Ingen
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| C57BL6/J mice | Jackson Labs | #00664 | |
| Fisherbrand Absorbent Underpads, 20" x 24" | Fisher Scientific | 14-206-62 | |
| Polylined Sterile Field, 18" x 24" | Busse Hospital Disposables | 696 | Cut a rectangular hole |
| Isothesia isoflurane | Henry Schein | 50033 | |
| Fisherbrand Sterile cotton gauze pad, 4" x 4" | Fisher Scientific | 22-415-469 | |
| Puralube petrolatum ophthalmic ointment, 1/8 oz. tube | Dechra Veterinary Products | NDC 17033-211-38 | |
| Nair depilatory cream | Church & Dwight Co. | 22339-05 | |
| Buprenex buprenorphine 0.3 mg/ml | Reckitt Benckiser Pharma Inc | NDC 12496-0757-5 | |
| 1 cc insulin syringe, 27 G | Becton Dickinson | 329412 | |
| Chloraprep Shampoo | Medline | APL82287 | |
| Webcol alcohol prep swabs | Covidien | 6818 | |
| BioGel PI surgical gloves | Mölnlycke Health Care | ALA42675Z | |
| Micro Forceps with teeth | Roboz | RS-5150 | |
| Fine scissors- sharp | Fine Science Tools | 14060-09 | |
| Straight serrated forceps | Fine Science Tools | 11050-10 | |
| Castro-Viejo needle driver | Fine Science Tools | 12565-14 | |
| 0.9% Sodium Chloride Irrigation | Baxter | BHL2F7121 | Warm to 37 °C prior to use |
| 10 ml syringe | Becton Dickinson | 309604 | |
| 4-0 Vicryl absorbable braided suture, 18", PS-2 needle | Henry Schein | 6546037 | |
| Blue monofilament suture 24” BV-1 needle | Henry Schein | 8305H | Usually comes double-armed. Cut the suture at the midway point to generate two usable sutures. |
| Cole-Parmer Microscissors, Standard Grade, Straight, 4". | Cole- Parmer | EW-10818-06 | |
| Medline Sterile lubricating jelly | Medline | MDS032273H |
References
- Murrell, Z. A., Stamos, M. J.
- Shaban, F., Carney, K., McGarry, K., Holtham, S. Perforated Diverticulitis: To Anastomose or Not to Anastomose? A Systematic Review and Meta-Analysis. International journal of surgery (London, England). , (2018).
- Chambers, W. M., Mortensen, N. J. Postoperative leakage and abscess formation after colorectal surgery. Best practice, research. Clinical gastroenterology. 18, 865-880 (2004).
- Ashkanani, F., Krukowski, Z. H. Surgery - Oxford International Edition. Intestinal Anastomosis. 20, 104-107 (2002).
- Raptis, D., Pramateftakis, M. G., Kanellos, I. Our 20-year experience with experimental colonic anastomotic healing. Journal of medicine and life. 11, 5-14 (2018).
- Pommergaard, H. C., Rosenberg, J., Schumacher-Petersen, C., Achiam, M. P. Choosing the best animal species to mimic clinical colon anastomotic leakage in humans: a qualitative systematic review. European surgical research. Europaische chirurgische Forschung. Recherches chirurgicales europeennes. 47, 173-181 (2011).
- Komen, N., et al. Colorectal anastomotic leakage: a new experimental model. The Journal of surgical research. 155, 7-12 (2009).
- Perry, T., Borowiec, A., Dicken, B., Fedorak, R., Madsen, K. Murine ileocolic bowel resection with primary anastomosis. Journal of visualized experiments : JoVE. , e52106 (2014).
- Pommergaard, H. C., Achiam, M. P., Rosenberg, J. Colon anastomotic leakage: improving the mouse model. Surgery today. 44, 933-939 (2014).
- Bosmans, J. W. A. M., Jongen, A. C. H. M., Bouvy, N. D., Derikx, J. P. M. Colorectal anastomotic healing: why the biological processes that lead to anastomotic leakage should be revealed prior to conducting intervention studies. BMC Gastroenterology. 15, 180 (2015).
