Summary
Anastomotisk lekkasje eller sammenbrudd etter kirurgi er en viktig årsak til postoperativ sykelighet og dødelighet. Våre kirurgi for å lage en colonic anastomose er en pålitelig og reproduserbar metode for å studere helbredende mekanismer for forekomst.
Abstract
Intestinal forekomst utføres vanligvis både valgfag og emergent operasjoner. Likevel anastomotisk lekkasjer er en svært fryktet komplikasjoner av colonic operasjoner og kan oppstå i opptil 26% av kirurgiske forekomst, med dødelighet blir opp til 39% for pasienter med slik en lekkasje. Foreløpig er det fortsatt en paucity data detaljering de cellulære mekanismene anastomotisk healing. Utarbeide forebyggende strategier og behandlingsmetoder for anastomotisk lekkasjen kan være sterkt potentiated av en bedre forståelse av aktuelle anastomotisk healing.
En murine modell er ideelt som tidligere studier har vist at den murine anastomose er mest klinisk lik menneskelige saken mot andre dyr modeller. Vi tilbyr en å reprodusere murine modell av colonic anastomose i mus som vil tillate for ytterligere illustrasjon av anastomotisk healing.
Introduction
En svært fryktet komplikasjon av kirurgiske anastomose i tarmen er anastomotisk sammenbrudd eller lekkasje. Anastomotisk lekkasje, som forårsaker utslipp av intraluminal innholdet i bukhulen, er livstruende og kan raskt føre til intra-abdominal sepsis; sjokk priser varierer fra 0,3% til 5,5% etter tynntarmen forekomst, og stige til mellom 0,5% og 26% for colonic forekomst1,2. Dødelighet etter lekkasjer kan så høye som 39% på grunn av rask utbruddet av sepsis og rask progresjon til døden etter intraabdominal forurensning3. Forebyggende strategier og behandlingsmetoder er for tiden basert på patofysiologi som ikke er fullt ut forstått.
Foreløpig er anastomotisk healing ofte sammenlignet med grundigere studerte kutan sår helbredelse, som viser seg for å være en relativt dårlig faksimile. Helbredelse oppstår i en rekke overlappende faser, fra og med første lag fase. I løpet av dager 0-4 etter intestinal anastomose er lag fasen definert av en akutt betennelsesreaksjon som fjerner såret av mobilnettet rusk. Deretter dagene 3-4, typisk fibroblastic spredning og produksjon av kollagen fibrophasia fasen. Endelig, etter dag 10, en lengre kollagen remodeling er kjent som den modning fasen. Det er viktig å merke seg at anastomotisk styrke er ganske lav og avhenger av ytre støtte kirurgisk plassert stifter eller Sutur til kollagen er avsatt4. Forståelsen og timing hvert lag av tarmveggen spiller i anastomotisk sårheling og involvering i inflammatorisk-mediert celletyper som makrofager, samt Klargjørende surrogat markører å forutsi anastomotisk svikt eller suksess kan sterkt redusere sykelighet, dødelighet og helsetjenester utgifter etter kolon operasjoner5.
Murine modellen har vist i tidligere studier å være nyttig i etterligne menneskelige anastomose6. Mens det er populære, dokumentert og godt studert eksempler på murine colonic anastomotisk modellen, spesielt metoden beskrevet av Komen et al. 7, disse modellene favorisere ileocecal eller stigende colocolonic anastomotisk teknikker8. Tidligere studier av menneskelige pasienter har vist betydelig forskjell i lekkasje priser mellom ileocecal, colocolonic og colorectal forekomst, fremhever behovet for videre eksperimentelle modeller med varierende anatomiske steder. Ytterligere, populær anvendt metoder er å utvikle en modell som bevisst skaper en anastomotisk lekkasje snarere enn belyse de cellulære mekanismene som kreves for vanlig anastomotisk sårheling9. Rotte modeller forsøkt tidligere, men har av anastomotisk dehiscence og/eller tegn til lekkasje (dvs. abscess dannelse) betydelig lavere enn mennesker og mus6,7. I tillegg er mer genmodifiserte eksperimentelle linjer tilgjengelige i mus enn rotter. Dette gjør rotte modell mindre nyttig for en anastomotisk modell. Dessuten, har svin og hjørnetann modeller mindre klinisk undersøkelse murine modell6,7.
Vi foreslår en trygg, teknisk enkelt og raskt og enkelt reproduserbar prosedyre for etableringen av colonic forekomst i en murine modell som skal lette videre undersøkelser i underrapportert mekanismen av anastomotisk sår helbredelse10 .
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
Følgende protokollen er godkjent av University of Oklahoma Health Sciences Center institusjonelle dyr omsorg og bruke Committee (IACUC) og overholder alle institusjonelle etiske retningslinjer for bruk av forskning dyr. I tillegg ble alle eksperimentene utført i henhold til institusjonelle, statlige og føderale forskrifter om eksperimentell Forsøksdyrutvalget.
Merk: For denne protokollen, vi brukte kvinnelige og mannlige congenic i-oppdrettet C57BL6/J mus 12 til 72 uker gamle. Alle mus brukes for denne prosedyren ble holdt på våre ikke-barriere anlegget for minst en uke før til å tilpasse seg den lokale biome. Dyrene ble tillatt å mate til tiden for operasjon og vi brukte verken muntlig mekanisk tarm forberedelse eller endetarms rødme før prosedyren.
1) opprettelse av forekomst
- Autoclave kirurgiske varmt saltvann vanning løsningen og rengjør alle operative overflater med 70% etanol.
- For å indusere anestesi, plass musen i en induksjon som er koblet til en vaporizer. Gir 2-3% isoflurane på 1-2 L/min til mus er bedøvet.
- Plassere dyret på en oppvarming enhet som en oppvarming pad, å hindre nedkjøling.
- Subcutaneously injisere en gang dose 0,1 mg/kg buprenorfin (3 µg for 30 g mus) for postoperativ analgesi og en dose av 10 mg/kg av enrofloxacin for preoperativ antibiotika profylakse.
Merk: Selv om pre- og postoperativ antibiotika ikke er nødvendig for denne operasjonen, institusjonelle retningslinjer og dyret og bruke komiteen på våre institusjonen anbefalt bruken på våre anlegg. - Plass bedøvende nesen kjegle rundt musen er snute. Hele operasjonen, nøye overvåke respirasjonsfrekvens av dyret og justere bedøvende flow rate etter behov. Opprettholde en respiratory rate på 30-40 åndedrag per minutt.
- Bruk en hårklipperen etterfulgt av en depilatory agent for å fjerne håret fra hele huden overflaten av magen. Grundig fjerne depilatory agent med gasbind wetted med vann eller 70% etanol. Grundig tørr dyret.
- Før fikse magen, tape musen er lemmer varmeputen eller operative overflaten på slutten av hver etappe hindre at musen skiftende under operasjonen. Desinfiser magen med chlorhexidine. Inkluder hele barberte området samt håret på kantene av barberte området. Plass en steril drapere over musen (figur 1A).
- Før draping, skåret en liten ovale eller rektangulære vinduet i drapere å avsløre prepped magen.
Merk: Vinduet skal utsette hele magen av mus men dekke lemmer, hale, hode og brystkasse. Vi kuttet et 4 x 3 cm2 vindu for vår virksomhet (figur 1B). - Lage en liten rift langs drapere midtlinjen, fra nederkant mot vinduet ovale eller rektangulære, å tillate tilgang til endetarmen under prosedyren (figur 1 c).
- Før draping, skåret en liten ovale eller rektangulære vinduet i drapere å avsløre prepped magen.
- Gjøre en huden snitt. Start langs midtlinjen av nedre magen og incise huden med saks vertikalt til xiphoid. Incise bare huden og unngå klipping bukveggen muskulatur (figur 2A).
- Forstå midtlinjen av bukveggen med tang og løft fra mage innholdet. Tar seg ikke skade intraabdominal strukturer, incise lengden på midtlinjen abdominal fascia loddrett med skarp saks. Forleng huden snitt (figur 2B).
- Når tarmen er utsatt, finne cecum og små tarm, og roter venstre-sidig viscera medialt for å avsløre den synkende og sigmoid kolon. Coat sløv probespissen med smøre gelé og nøye forhånd sonde inn i endetarmen til ved identifikasjon av synkende/sigmoid kolon (Figur 3).
Merk: I motsetning til mennesker, musen cecum vanligvis finnes i den venstre øvre delen av magen. Ta vare ikke for å autoperforering tarmveggen med sonde i dette trinnet. Hvis tarmveggen er perforert, avslutte prosedyren og euthanize musen.- Unngå fatte cecum med tenner eller skarp tang. I stedet bruker atraumatiske tang, bomull tippet applikatoren eller mild finger manipulasjon å rotere innvollene.
- Bruk varmet sterilt saltvann å sikre eksponert tarm holdes fuktig hele prosedyren.
- Tykktarmen blir til venstre på midtlinjen og festet til retroperitoneum via mesentery. Etter identifikasjon, trekke sløv sonden delvis for å lette colotomy.
- Utføre tverrgående colotomy av sigmoid kolon.
- Forsiktig ta tak sigmoid kolon overlegen bekkenet innløp med atraumatiske tang (figur 4A).
- Bruke skarp mikro-saks, lage et kutt over sigmoid kolon vinkelrett retning av kolon og strekker seg over 80-90% bredden av kolon. Dette vil hjelpe forhindre tilbakekalling av en ende av kolon av kirurgiske feltet, og lette reparere (figur 4B).
- Hvis en hvem blodåre er skadet i løpet av visceral rotasjon eller colotomy, hold press for opptil 2 min med gasbind eller en bomull-tipped applikator. Hvis blødning fortsetter etter denne tid plassere et åttetall 8-0 monofilament Sutur rundt punktet av blødning.
Merk: Hvis tarm viser tegn til nekrose eller skader etter dette, avslutte prosedyren og euthanize musen bruker en human metode godkjent av komiteen din institusjonelle dyr bruk.
- Reparer den sigmoid colotomy.
- Bruke en Castroviejo nål driver, plass 5-6 enkel avbrutt 8-0 er skjærende polypropylen masker for å reparere colostomy. Plasser suturer 1 mm fra hverandre med 0,5 mm biter.
- Ta vare for å unngå rullende kantene av tarm inn reparasjon ved å ta litt mer serosa enn mucosa hver maske. La haler 5 mm lang. Ta vare ikke å tilfeldigvis fange omkringliggende tarm i suture (figur 4C).
Merk: Det er nyttig å begynne suturing på den nær hvem grensen til colotomy, lagre den anti-mesenteric-mest delen av colotomy siste. - Som reparasjon utvikler, forhånd trans-anal Butt-tipped disseksjon sonden å omfatte reparasjon før siste bildet er plassert. Dette vil hjelpe hindre for smale en reparasjon og redusere utbredelsen av anastomotisk striktur.
- Ta vare for å unngå rullende kantene av tarm inn reparasjon ved å ta litt mer serosa enn mucosa hver maske. La haler 5 mm lang. Ta vare ikke å tilfeldigvis fange omkringliggende tarm i suture (figur 4C).
- Bruke en Castroviejo nål driver, plass 5-6 enkel avbrutt 8-0 er skjærende polypropylen masker for å reparere colostomy. Plasser suturer 1 mm fra hverandre med 0,5 mm biter.
- Bruker en 10 mL sprøyte fylt med oppvarmet saltvann, vanne magen flere ganger. Hvis overflaten under musen blir gjennomvåt, tørr musen eller flytter musen på en tørr overflate for å unngå nedkjøling.
- Bruk et sterilt gasbind plassert over innsnitt slikke overskytende irrigasjon.
- På siste vanning, fylle magen med sterilt saltvann. Nøye forhånd en smurt 18 G angiocatheter i endetarmen og blåse med 0,5-1 cm3 luft. Dette vil vise eventuelle lekkasjer i anastomose enn kan repareres med en annen avbrutt polypropylen Sutur ved hjelp av sterile sonden skal gå over anastomose.
- Tømming kolon bruke angiocatheter før fjerning.
- Kontroller at det er ingen aktive blødninger. Hvis det er, kan du bruke lett trykk direkte på poenget med blødninger i 1-2 min. sted hemostatic Sutur som beskrevet ovenfor hvis blødning fortsetter.
- Forsiktig tilbake medialized viscera normal anatomisk posisjon (figur 5A).
- Lukk abdominal innsnitt (figur 5B).
- Bruker 4-0 absorberbare flettet suturer, plass en kjører Sutur langs muskel laget av bukveggen starter øverst i snitt og etterbehandling ved dårligere aspekt av innsnitt. Installere et slips og kutt suture forlater 5 mm haler.
Merk: Ikke uhell inkorporere tarmen i bukveggen nedleggelsen. - Gjenta med 4-0 monofilament Sutur lukke huden (figur 5C).
- Bruker 4-0 absorberbare flettet suturer, plass en kjører Sutur langs muskel laget av bukveggen starter øverst i snitt og etterbehandling ved dårligere aspekt av innsnitt. Installere et slips og kutt suture forlater 5 mm haler.
- Kontroller at hele dyret er varmt og tørt å hindre postoperativ nedkjøling.
- Nøye overvåke dyret som gjenoppretter bedøvelsen. Administrere 0,1 mg/kg buprenorfin hver 72 h i 2-3 dager etter prosedyren for smerte kontroll. Under restitusjonsperioden undersøkes mus nøye daglig for underskriver av svulst eller peritoneal sepsis. Postoperativ observasjon for smerte og nød bør inneholde: begrensning av bevegelse inkludert hunching type holdning, mangel på spise eller drikke, ikke riktig Stell, overdreven betennelse rundt såret, mangel på normal healing på stedet av snitt, eller ikke normal nesting. Noen dyr viser noen av disse virkemåtene bør være umiddelbart euthanized av CO2 kvelning i minst 10 min etterfulgt av bilaterale thoracotomy.
- Bland 0,1 mg/mL enrofloxacin med musen er drikkevann i 7 dager etter operasjonen for å hindre intra-abdominal infeksjoner eller sepsis på grunn av fecal forurensning tilknyttet operasjonen.
2) høsting anastomotisk vev
- Like før excising anastomotisk vev, euthanize musen bruker en human metode godkjent av institusjonelle dyr bruk.
Merk: Basert på institusjonelle policy, euthanize vi dyr ved å plassere dem i en karbondioksid kammer med 100% karbondioksid gass infusjon på 2 L/min i 5 minutter før du utfører bilaterale thoracotomy. - Sterilisere magen med chlorhexidine etterfulgt av 70% etanol.
- Nytt incise den opprinnelige midtlinjen snittet med skarp saks. Start på den nedre Polen på den forrige snittet og utvide dette kuttet overlegent til xiphoid (figur 6A).
- Ved hjelp av saks, kuttet i muskel laget, og etter inn peritoneal plass, utvide kuttet øverst og nederst i snitt. Ta vare for å unngå skader tarmen når inn magen eller forstyrre anastomose, kan det være tarm overholdt snitt eller anastomotisk området.
- Nøye utføre en venstre mediale visceral rotasjon utsette reparerte sigmoid kolon (figur 6B). Det vil trolig være tarm til tarm adhesjon rundt reparasjon. Forsiktig og rett ut dissekere disse adhesjon fra stedet for reparasjon. Ta stor forsiktighet for ikke å forstyrre anastomose.
- Identifisere reparasjon stedet ved å finne haler av polypropylen Sutur brukes for reparasjon. Ved hjelp av saks og starter 1 cm proksimale til reparasjon, tvers mudderbunn gjennom synkende tykktarmen. Gjenta dette trinnet 1 cm distale området av anastomose.
- Fjerne det sigmoidal segmentet av kraftig dissecting kolontegnet fra den vedlagte mesentery langs bakre kant av kolon med fine saks (figur 7).
- Identifisere hvem grensen av kolon prøven og bruk fint saks til å klippe langs hvem grensen i en langsgående mote. Dette vil opprette en kvadratisk eller rektangulær del av kolon fra sylindriske prøven tidligere fjernet (Figur 8).
- Bruk en merking til å avgrense anti-hvem grensen av kolon før fjerning av kolon segmentet. Etter fjerning, kan du lage en langsgående kutt langs kolon overfor merkingen. Fastsette, bygge og kutt prøven vev behov for histology og/eller immunostai.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
På 7 dager etter operasjonen, skal anastomose bli godt helbredet. Anastomose kan høstes på tidspunkt før og etter sju dager for å bedre illustrere stadier av anastomotisk healing. Figur 9, histologiske analyse viser en fibrotiske (kollagen visualisert ved trichrome flekker) svar formidlet av glatt muskel alpha-utgangen positiv myofibroblasts. Vi har imidlertid funnet at resultater fra histologiske analyser varierer mellom mus, spesielt graden av ny epithelialization og konsentrasjonen av myofibroblasts på anastomotisk område. Vi rapporterer dødelighet denne fremgangsmåten være mindre enn 10%, med mer enn 90% av overlevende mus har godt helbredet forekomst på 7 dager.
Figur 1: Drapering og kirurgisk forberedelse. (A) A Sterile drapere er plassert over musen etter magen har vært prepped. (B) en liten ellipse eller rektangel kuttet til drapere å avsløre magen. (C) en liten sprekk bør gjøres langs midtlinjen av drapere nær vinduet ovale eller rektangulære å tillate tilgang til endetarmen under prosedyren. Klikk her for å se en større versjon av dette tallet.
Figur 2 : Incisions. (A) A huden snitt lages samtidig ta vare ikke å skade peritoneum. (B) peritoneum er hevet fra mage innholdet og avbildning utsette intra-abdominal innholdet.
Figur 3 : Probeplassering. En sløv sonde plasseres forsiktig i endetarmen. Etter finne cecum, roteres innholdet i magen medialt visualisere endetarms sonden tidligere.
Figur 4 : Colotomy og reparere. (A) den sigmoid er grep med atraumatiske tang. (B) bruke skarpe mikro-saks, gjøre et kutt over sigmoid kolon vinkelrett på retningen av kolon og strekker seg over 80-90% bredden av kolon. (C) bruker en Castro-Viejo nål driver, sted 5-6 enkel avbrutt 8-0 polypropylen masker for å reparere colotomy. Suturer bør være ca 1 mm fra hverandre med 0,5 mm biter. Klikk her for å se en større versjon av dette tallet.
Figur 5 : Sår nedleggelsen. (A) visceral organer returneres til deres normale anatomisk posisjon. (B) abdominal snitt er lukket med 4-0 flettet Sutur. (C) huden er lukket med 4-0 monofilament Sutur. Klikk her for å se en større versjon av dette tallet.
Figur 6 : Snitt etter operasjonen. (A) åpne den opprinnelige midtlinjen snittet avsløre intra-abdominal innholdet. Husk å forlenge innsnitt overlegent og lateralt for bedre eksponering for den sigmoid. (B) rotere viscera medialt avsløre sigmoid anastomose.
Figur 7 : Høsting av anastomose. Fjerne segmentet av tarm proksimale og distale til anastomose ved 1 cm på hver side.
Figur 8 : Retning for vev delene. Skjær langs hvem grensen i en langsgående mote. Dette etterlater en rektangulær prøven. Dette viser eksemplar av sigmoid anastomose.
Figur 9 : Histology og immunohistochemical analyse av en fullt leget colonic anastomose. Histologiske analyse viser fibrotiske (kollagen visualisert ved trichrome flekker) svar formidlet av glatt muskel alpha-utgangen positiv myofibroblasts.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
Det er flere viktige trinn for å lykkes med og redusere sykelighet/dødelighet forbundet med denne fremgangsmåten. Først sikre forsiktig behandling av tarmen tissue og ta vare for å hindre trekkraft skade når roterende viscera å avsløre kolon. Utilbørlig spenning på tarmen eller mesentery kan skade av tarm eller blodkar og årsak tarm nekrose fra stedet av anastomose. Skarp tang eller tang med tenner bør i tillegg ikke brukes til å håndtere tarm.
Skade på tarmen atskilt fra stedet av planlagte anastomose, enten under visceral rotasjon eller perforering med sløv sonde, bør føre euthanasia av dyret. I vår erfaring, kan tarm nekrose eller skade føre til intra-abdominal sepsis eller død, og en kraftig økt betennelsesreaksjon som gjør utvinning av en helbredet anastomotisk prohibitively vanskelig.
Transection av kolon skal spenne over så mye av synkende tykktarmen som mulig, men bekymre burde være tatt å ikke mudderbunn tarm serosa i kontakt med mesentery. I vår erfaring, transection som inneholder serosa- og spesielt mesentery-kan føre til tilbakekalling av den proksimale delen av kolon som gjør anastomose vanskeligere og kan føre til ytterligere skade prøver å gjenopprette trukket inn segmentet.
Anastomose kan repareres med 5-6 avbrutt suturer. Mer kan være nødvendig for store mus. Suturer skal 1 mm fra hverandre. Sted suturer på hver side av hvem grensen og deretter alternerende sider av transection å dekke midt på grensen til anti-hvem gir en enklere og raskere anastomose. Før det siste suture, spanning anastomose med sløv sonden sikrer en patent anastomose og hindrer "back-vegg" anastomose, som ville effektivt ligate kolon.
Sikre hemostasen før abdominal nedleggelse. Til tross for postoperativ antibiotika dekning, hemoperitoneum i utvinningen perioden etter intraabdominal forurensning kan føre til en svært høy intra-abdominal infeksjoner og lim sykdom.
Når du først utfører denne prosedyren, kan flere mus gå tapt i den postoperative perioden. Vår første dødelighet rundet 30%. Vi har funnet dette er hovedsakelig på grunn av anastomotisk striktur fører til obstruksjon og tarm nekrose, nedbryting av anastomotisk reparasjon eller tarm veggen nekrose fra stedet av anastomose sannsyligvis iskemi etter hvem skader. Alle disse kan føre til intra-abdominal infeksjoner, sepsis og død. Når opplevde i denne prosedyren, bør drift kirurg oppleve en dødelighet på under 10%. Bevis på subklinisk anastomotisk nettstedet lekkasje, illustrert av purulence og tett adhesjon på stedet av anastomose, var tilstede i ytterligere 10%. Denne fremgangsmåten kan gjøres uten hjelp av forstørrelse, er den største ulempen som reproduserbar eksperimentell modell relativ teknisk utfordring i forhold til ileocecal eller stigende kolon forekomst. Vi fant kirurgisk forstørrelsesglass overmåte nyttig i å utføre anastomose samtidig minimere traume til tarmveggen. Kirurgisk mikroskop kan også brukes, men vi fant ikke som nødvendig.
Mange teknikker har blitt brukt til å beskrive dyr modeller for colonic anastomose; spesielt utnytte rotte og kanin. Vi har funnet det å være en paucity reproduserbar prosedyrer i synkende tykktarmen anastomose i musen modeller; Vi tror dette skyldes mindre størrelsen på mus øke den tekniske vanskeligheten anastomotisk prosedyrer. Mus har imidlertid større utvalg og større tilgjengelighet av transgene linjer og antistoffer, som til dette punktet var utilgjengelig i kolon anastomose modell. Vi utviklet den gjeldende modellen å forene musemodell med en modell for kolon anastomose.
Vår erfaring med denne prosedyren inneholder både mannlige og kvinnelige mus i varierende størrelser og aldre. Foreløpig har vi ikke sammenlignet anastomotisk sår helbredelse resultater mellom aldre, størrelsene eller kjønn mus, men forskjeller kan sikkert, og denne modellen ville tillate sammenlikningen.
Vi tror at denne modellen kan være enkle gjengitt og brukes til å studere anastomotisk sårtilheling. Selv om vi anbefaler første prøven avlinger på syv dager, tidligere og senere kan tidspunkt være nyttige i illustrerer en tidslinje over anastomotisk healing; demonstrere, for eksempel tidlig migrering av inflammatoriske celler og meglere i anastomotisk området og avsetning av kollagen av fibroblaster i de følgende ukene.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
Forfatterne erklærer at de har ingen konkurrerende økonomiske interesser.
Acknowledgments
Ingen
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| C57BL6/J mice | Jackson Labs | #00664 | |
| Fisherbrand Absorbent Underpads, 20" x 24" | Fisher Scientific | 14-206-62 | |
| Polylined Sterile Field, 18" x 24" | Busse Hospital Disposables | 696 | Cut a rectangular hole |
| Isothesia isoflurane | Henry Schein | 50033 | |
| Fisherbrand Sterile cotton gauze pad, 4" x 4" | Fisher Scientific | 22-415-469 | |
| Puralube petrolatum ophthalmic ointment, 1/8 oz. tube | Dechra Veterinary Products | NDC 17033-211-38 | |
| Nair depilatory cream | Church & Dwight Co. | 22339-05 | |
| Buprenex buprenorphine 0.3 mg/ml | Reckitt Benckiser Pharma Inc | NDC 12496-0757-5 | |
| 1 cc insulin syringe, 27 G | Becton Dickinson | 329412 | |
| Chloraprep Shampoo | Medline | APL82287 | |
| Webcol alcohol prep swabs | Covidien | 6818 | |
| BioGel PI surgical gloves | Mölnlycke Health Care | ALA42675Z | |
| Micro Forceps with teeth | Roboz | RS-5150 | |
| Fine scissors- sharp | Fine Science Tools | 14060-09 | |
| Straight serrated forceps | Fine Science Tools | 11050-10 | |
| Castro-Viejo needle driver | Fine Science Tools | 12565-14 | |
| 0.9% Sodium Chloride Irrigation | Baxter | BHL2F7121 | Warm to 37 °C prior to use |
| 10 ml syringe | Becton Dickinson | 309604 | |
| 4-0 Vicryl absorbable braided suture, 18", PS-2 needle | Henry Schein | 6546037 | |
| Blue monofilament suture 24” BV-1 needle | Henry Schein | 8305H | Usually comes double-armed. Cut the suture at the midway point to generate two usable sutures. |
| Cole-Parmer Microscissors, Standard Grade, Straight, 4". | Cole- Parmer | EW-10818-06 | |
| Medline Sterile lubricating jelly | Medline | MDS032273H |
References
- Murrell, Z. A., Stamos, M. J.
- Shaban, F., Carney, K., McGarry, K., Holtham, S. Perforated Diverticulitis: To Anastomose or Not to Anastomose? A Systematic Review and Meta-Analysis. International journal of surgery (London, England). , (2018).
- Chambers, W. M., Mortensen, N. J. Postoperative leakage and abscess formation after colorectal surgery. Best practice, research. Clinical gastroenterology. 18, 865-880 (2004).
- Ashkanani, F., Krukowski, Z. H. Surgery - Oxford International Edition. Intestinal Anastomosis. 20, 104-107 (2002).
- Raptis, D., Pramateftakis, M. G., Kanellos, I. Our 20-year experience with experimental colonic anastomotic healing. Journal of medicine and life. 11, 5-14 (2018).
- Pommergaard, H. C., Rosenberg, J., Schumacher-Petersen, C., Achiam, M. P. Choosing the best animal species to mimic clinical colon anastomotic leakage in humans: a qualitative systematic review. European surgical research. Europaische chirurgische Forschung. Recherches chirurgicales europeennes. 47, 173-181 (2011).
- Komen, N., et al. Colorectal anastomotic leakage: a new experimental model. The Journal of surgical research. 155, 7-12 (2009).
- Perry, T., Borowiec, A., Dicken, B., Fedorak, R., Madsen, K. Murine ileocolic bowel resection with primary anastomosis. Journal of visualized experiments : JoVE. , e52106 (2014).
- Pommergaard, H. C., Achiam, M. P., Rosenberg, J. Colon anastomotic leakage: improving the mouse model. Surgery today. 44, 933-939 (2014).
- Bosmans, J. W. A. M., Jongen, A. C. H. M., Bouvy, N. D., Derikx, J. P. M. Colorectal anastomotic healing: why the biological processes that lead to anastomotic leakage should be revealed prior to conducting intervention studies. BMC Gastroenterology. 15, 180 (2015).
