Summary
Fuga anastomótica ou avaria após a cirurgia é das principais causas de mortalidade e morbidade pós-operatória. A cirurgia para a criação de uma anastomose colônica é um método confiável e reprodutível para estudar os mecanismos de cicatrização de anastomoses.
Abstract
Anastomose intestinal é comumente realizada em operações eletivas e emergentes. Mesmo assim, anastomótica vazamentos são um altamente temida complicações de cirurgias do cólon e podem ocorrer em até 26% de anastomose cirúrgica, com mortalidade sendo até 39% para pacientes com tal um vazamento. Atualmente, ainda há uma escassez de dados, detalhando os mecanismos celulares de cura anastomótica. Elaboração de estratégias preventivas e modalidades de tratamento para fuga anastomótica poderia ser grandemente potencializado por uma melhor compreensão da cura anastomótica apropriado.
Um modelo murino é ideal como estudos anteriores mostraram que a anastomose murino é o mais clìnica semelhante ao caso humano em comparação com outros modelos animais. Oferecemos um modelo murino facilmente reproduzível de anastomose colônica em ratos que permitirá mais exemplo de cura anastomótica.
Introduction
Uma altamente temida complicação da anastomose cirúrgica do intestino é anastomótica avaria ou vazamento. Fuga anastomótica, o que provoca o derrame do conteúdo intraluminal na cavidade abdominal, é fatal e pode levar rapidamente a sepse abdominal; taxas de choque variam de 0,3% para 5,5% após a anastomose de intestino e subir para entre 0,5% e 26% para anastomose colônica1,2. Taxas de mortalidade após vazamentos podem ser tão elevadas como 39% devido ao rápido início da sepse e rápida progressão para morte seguindo intraabdominal contaminação3. Estratégias preventivas e as modalidades de tratamento baseiam-se atualmente na fisiopatologia que não é totalmente compreendida.
Atualmente, anastomótica cura é muitas vezes comparada com a cicatrização de feridas cutâneas mais amplamente estudados, que está provando para ser um fac-símile relativamente pobre. Cicatrização ocorre em uma série de fases sobrepostas, começando com a fase de retardo inicial. Durante dias 0-4 após a criação da anastomose intestinal, a fase de retardo é definida por uma resposta inflamatória aguda que limpa a ferida de restos celulares. Em seguida, nos dias 3-4, proliferação fibroblástica e produção de colágeno tipifica a fase fibrophasia. Finalmente, dia 10, depois de um período prolongado de remodelação do colágeno é conhecido como a fase de maturação. É importante notar que força anastomótica é baixa e depende do apoio extrínseco de grampos colocados cirurgicamente ou sutura até que o colágeno é depositado4. Compreender o papel e sincronismo cada camada da parede intestinal desempenha na cicatrização de feridas anastomótica e o envolvimento em tipos de células inflamatória mediada como macrófagos, bem como elucidar marcadores de substituto para prever anastomótica falha ou sucesso poderia reduza significativamente a morbilidade, mortalidade e despesas de saúde do cólon operações5a seguir.
O modelo murino tem demonstrado em estudos anteriores para ser útil em imitando anastomose humana6. Enquanto existem exemplos populares, comprovados e bem estudados o modelo murino Colônico anastomótica, particularmente o método descrito por Komen et al 7, estes modelos favorecem ileocecal ou ascendente colocolonic anastomótica técnicas8. Estudos anteriores de pacientes humanos demonstraram diferença significativa nas taxas de vazamento entre ileocecal, colocolonic e anastomose colorretal, destacando a necessidade de mais modelos experimentais em diferentes localizações anatômicas. Métodos adicionais, popularmente usados visam desenvolver um modelo que intencionalmente cria uma fuga anastomótica, ao invés de elucidar os mecanismos celulares necessários para normal anastomótica ferida cura9. Modelos do rato tem sido tentados no passado, mas têm taxas de deiscência anastomótica e/ou sinais de vazamento (ou seja, formação de abscesso) significativamente mais baixo do que os seres humanos e ratos6,7. Além disso, linhas experimentais mais geneticamente modificadas estão disponíveis em ratos do que ratos. Isto torna o modelo de rato menos útil para um modelo anastomótica. Além disso, suínos e caninos modelos tiveram investigação clínica menos do que o modelo murino6,7.
Propomos um procedimento seguro, tecnicamente simples e rapidamente e facilmente reproduzível para a criação de uma anastomose colônica em um modelo murino que deveria facilitar mais investigação sobre o mecanismo underreported de ferida anastomótica cura10 .
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Protocol
O seguinte protocolo foi aprovado pela Universidade de Oklahoma Ciências centro institucional Animal cuidados de saúde e Comissão usar (IACUC) e está em conformidade com todas as orientações éticas institucionais relativas à utilização de animais de pesquisa. Além disso, todos os experimentos foram realizados em conformidade com os regulamentos institucionais, estaduais e federais sobre pesquisas com animais experimentais.
Nota: Para este protocolo, usamos congenic feminino e masculino na raça camundongos C57BL6/J em 12 a 72 semanas de idade. Todos os mouses utilizados para este procedimento foram mantidos nas nossas instalações não-barreira para pelo menos uma semana antes da operação para adaptar-se ao bioma local. Animais foram autorizados para alimentar ao tempo de operação e usamos preparação intestinal mecânica oral nem lavagem retal antes do procedimento.
1) criação de Anastomoses
- Autoclave os instrumentos cirúrgicos, aquecer a solução de irrigação salina e limpe todas as superfícies operativas com etanol a 70%.
- Para induzir anestesia, posicione o mouse em uma caixa de indução que é conectada a um vaporizador. Entrega 2-3% de isoflurano em 1-2 L/min até ratos estão sedados.
- Coloque o animal em um dispositivo de aquecimento, como uma almofada de aquecimento, para evitar a hipotermia.
- Por via subcutânea injetar uma dose de tempo de 0,1 mg/kg de buprenorfina (3 µ g para um rato de 30 g) para analgesia pós-operatória e uma vez a dose de 10 mg/kg de enrofloxacina para profilaxia antibiótica no pré-operatório.
Nota: Apesar de pré e pós-operatório de antibióticos não são necessários para esta operação, as orientações institucionais e o animal conta e usam o Comitê em nossa instituição recomendada seu uso em nossas instalações. - Coloque o cone de nariz anestésico ao redor do focinho do rato. Durante toda a operação, cuidadosamente monitorar a frequência respiratória do animal e ajustar a taxa de fluxo anestésico conforme necessário. Manter uma taxa respiratória em 30-40 respirações por minuto.
- Use um aparador de cabelo, seguido por um agente depilatório para remover o cabelo da superfície inteira de pele do abdômen. Remova completamente o agente depilatório com gaze molhada com água ou 70% de etanol. Seque cuidadosamente o animal.
- Antes de preparar o abdômen, fita os membros do rato para a almofada de aquecimento ou superfície operativa na extremidade de cada perna para impedir que o mouse deslocando durante a cirurgia. Desinfecte o abdômen com clorexidina. Inclua toda a área depilada, bem como o cabelo nas bordas da área raspada. Coloque um pano estéril sobre o mouse (figura 1A).
- Antes de drapejar, cortar a cortina para expor o abdome preparado uma pequena janela retangular ou ovoide.
Nota: A janela deve expor o abdome inteiro do mouse mas cobrir a membros, cauda, cabeça e tórax. Cortamos uma janela de2 a 3 x 4 cm para nossas operações (figura 1B). - Faça um pequeno corte ao longo da linha mediana drape, desde a borda inferior em direção a janela retangular ou ovoide, para permitir o acesso do reto durante o procedimento (Figura 1).
- Antes de drapejar, cortar a cortina para expor o abdome preparado uma pequena janela retangular ou ovoide.
- Faça uma incisão de pele. Começar ao longo da linha mediana da parte inferior do abdome e faça uma incisão da pele com uma tesoura na vertical para o xifoide. Incise apenas a pele e evitar cortar a musculatura da parede abdominal (Figura 2A).
- Segure a linha média da parede abdominal com fórceps e levante longe o conteúdo abdominal. Tendo o cuidado para não ferir as estruturas intra-abdominais, entalha o comprimento da fáscia abdominal mediana verticalmente com uma tesoura afiada. Estenda o comprimento da incisão da pele (Figura 2B).
- Quando os intestinos são expostos, localize o ceco e intestino e girar as vísceras lado esquerdo medialmente para expor o descendente e o cólon sigmoide. Cubra a ponta romba com gel lubrificante e Avance cuidadosamente a sonda no recto para auxiliar na identificação do cólon descendente/sigmoide (Figura 3).
Nota: Ao contrário dos humanos, o ceco rato é encontrado geralmente no quadrante superior esquerdo do abdômen. Tome cuidado para não perfurar a parede do intestino com a sonda nesta etapa. Se a parede do intestino é perfurada, encerrar o procedimento e eutanásia o mouse.- Evite agarrar o ceco com pinça dentada ou cortantes. Em vez disso, use Pinças atraumáticas, aplicador com ponta, ou dedo suave manipulação para girar as vísceras de algodão.
- Uso aquecido solução salina estéril para garantir que o intestino exposto é mantido úmido durante todo o procedimento.
- Os dois pontos serão no lado esquerdo da linha mediana e anexado para o retroperitônio através do mesentério. Após a identificação, retire a sonda sem corte parcialmente para facilitar colotomy.
- Execute colotomy transversal do cólon sigmoide.
- Segure cuidadosamente o cólon sigmoide superior a entrada pélvica com Pinças atraumáticas (Figura 4A).
- Usando microtesoura afiada, fazer um corte em todo o cólon sigmoide perpendicular à direção de cólon e estendendo-se através de 80-90% da largura do cólon. Isto ajudará a prevenir a retração de uma das extremidades do cólon para fora do campo cirúrgico e facilitar o reparo (Figura 4B).
- Se uma veia mesentérica é ferida durante o curso da rotação visceral ou colotomy, pressione cuidadosamente a pressão para até 2 min com gaze ou um cotonete. Se a hemorragia persistir após este tempo, coloque um figura de oito sutura de monofilamento de 8-0 em torno do ponto de sangramento.
Nota: Se o intestino mostra sinais de necrose ou lesão após isto, encerrar o procedimento e eutanásia o mouse usando um método humano aprovado pelo seu Comité de uso institucional de animais.
- Repare o colotomy sigmoide.
- Usando um driver de agulha Castroviejo, coloque 5-6 simples interrompida 8-0 inabsorvíveis polipropileno pontos para reparar a colostomia. Coloque as suturas 1mm afastados uns dos outros com mordidas de 0,5 mm.
- Tome cuidado para evitar as bordas do intestino de rolamento para o reparo tomando serosa ligeiramente mais do que a mucosa com cada ponto. Deixe as caudas de 5 mm de comprimento. Tenha cuidado para não acidentalmente captura circundante do intestino para a sutura (Figura 4).
Nota: É útil começar a sutura na perto de borda mesentérica de colotomy, salvando o mesenteric-mais parte o colotomy para o final. - No decorrer do reparo, sonda de dissecação ponta romba de avanço a trans-anal para abranger o reparo antes que as suturas finais. Isto ajudará a impedir um reparo muito estreito e diminuir taxas de estenose anastomótica.
- Tome cuidado para evitar as bordas do intestino de rolamento para o reparo tomando serosa ligeiramente mais do que a mucosa com cada ponto. Deixe as caudas de 5 mm de comprimento. Tenha cuidado para não acidentalmente captura circundante do intestino para a sutura (Figura 4).
- Usando um driver de agulha Castroviejo, coloque 5-6 simples interrompida 8-0 inabsorvíveis polipropileno pontos para reparar a colostomia. Coloque as suturas 1mm afastados uns dos outros com mordidas de 0,5 mm.
- Utilizando uma seringa de 10 mL, preenchida com solução salina aquecida, irriga o abdômen várias vezes. Se a superfície sob o mouse fica encharcada, seque o mouse ou mover o mouse para uma superfície seca, a fim de evitar a hipotermia.
- Use uma gaze estéril colocada sobre a incisão para absorver o excesso irrigação.
- Para a irrigação final, encha o abdômen com soro fisiológico estéril. Cuidadosamente, avançar uma angiocatheter de 18 G lubrificado no reto e inflar com 0,5-1 cm3 de ar. Isso irá demonstrar qualquer vazamento na anastomose do que pode ser reparado com outra sutura de polipropileno interrompida usando a sonda estéril para abranger a anastomose.
- Esvazie o cólon usando o angiocatheter antes da remoção.
- Certifique-se de que não há nenhum sangramento ativo. Se houver, exerça uma ligeira pressão diretamente sobre o ponto de sangramento por 1-2 min. sutura hemostática de lugar conforme descrito acima, se o sangramento continua.
- Retorne suavemente as vísceras medializadas à sua posição anatômica normal (Figura 5A).
- Feche a incisão abdominal (Figura 5B).
- Usando o 4-0 reabsorvível trançada, coloque uma sutura correndo ao longo da camada muscular da parede abdominal, começando na parte superior da incisão e acabamento na face inferior da incisão. Instalar uma gravata e cortar a sutura deixando 5mm caudas.
Nota: Não incorpore acidentalmente intestino no fechamento da parede abdominal. - Repita com sutura de monofilamento de 4-0 para fechar a pele (Figura 5).
- Usando o 4-0 reabsorvível trançada, coloque uma sutura correndo ao longo da camada muscular da parede abdominal, começando na parte superior da incisão e acabamento na face inferior da incisão. Instalar uma gravata e cortar a sutura deixando 5mm caudas.
- Certifique-se de que o animal inteiro é quente e seco, para evitar a hipotermia pós-operatória.
- Monitore cuidadosamente o animal enquanto ele se recupera da anestesia. Administre a buprenorfina 0,1 mg/kg cada 72 h para 2-3 dias após o procedimento para controle da dor. Durante o período de recuperação, os ratos devem ser cuidadosamente examinados diariamente para sinais de abscesso ou sepse peritoneal. Deve incluir a observação pós-operatória para a dor e o sofrimento: restrição de movimento, incluindo curvar tipo de postura, falta de comer ou beber, aliciamento não adequada, excessiva inflamação ao redor da ferida, a falta de cicatrização normal no local da incisão, ou Não é normal fazer o ninho. Qualquer animal demonstrando qualquer um destes comportamentos deve ser imediatamente sacrificado por CO2 asfixia por um período mínimo de 10 min, seguido por toracotomia bilateral.
- Misture 0,1 mg/mL de enrofloxacina com água potável do rato durante 7 dias após a cirurgia para prevenir a infecção abdominal ou sepse devido à contaminação fecal, associada com a operação.
2) colheita anastomótica tecido
- Pouco antes da excisão de tecido anastomótica, eutanásia o mouse usando um método humano, aprovado pelo Comité de uso institucional de animais.
Nota: Com base na política institucional, nós eutanásia em nossos animais, colocando-os em uma câmara de dióxido de carbono, com 100% infusão de gás de dióxido de carbono em 2 L/min para 5 min antes de executar a toracotomia bilateral. - Esterilize o abdômen com clorexidina seguida de etanol a 70%.
- Re-entalha a incisão original com uma tesoura afiada. Começar no polo inferior da incisão anterior e estender este corte superiormente ao xifoide (figura 6A).
- Usando a tesoura, corte na camada muscular e depois de entrar no espaço peritoneal, estender o corte a parte superior e inferior da incisão. Tome cuidado para evitar ferir o intestino, ao entrar no abdômen ou interromper a anastomose, como pode haver intestinal aderida à incisão ou anastomótico.
- Cuidadosamente, execute uma rotação visceral medial esquerda expondo o cólon sigmoide reparado (Figura 6B). Provavelmente vai haver aderências do intestino para intestino circundantes a reparação. Suavemente e sem rodeios disse estas aderências longe do local de reparo. Tome muito cuidado para não perturbar a anastomose.
- Identifique o local de reparação, localizando as caudas da sutura de polipropileno usada para a reparação. Usando uma tesoura e começando a 1 cm proximal ao reparo, transecto transversalmente através do cólon descendente. Repita este passo 1cm distal ao local da anastomose.
- Remova o segmento sigmoidal agudamente dissecando o cólon do mesentério anexado na borda posterior do cólon com tesoura fina (Figura 7).
- Identificar a borda mesentérica do espécime do cólon e use tesoura fina para cortar ao longo do comprimento da borda mesentérica de forma longitudinal. Isto irá criar uma seção quadrada ou retangular do cólon do provete cilíndrico retirado anteriormente (Figura 8).
- Use uma caneta para demarcar a fronteira antimesentérica do cólon antes da remoção do segmento do cólon. Após a remoção, fazer um corte longitudinal ao longo do comprimento do cólon em frente à marcação. Corrigir, incorporar e cortar o tecido da amostra conforme necessário para histologia e/ou immunostaining.
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Representative Results
7 dias após a cirurgia, a anastomose deve ser bem curada. A anastomose pode ser colhida em pontos de tempo antes e depois de sete dias para melhor ilustrar as fases da cicatrização anastomótica. Na Figura 9, a análise histológica mostra um fibrótico (colágeno visualizado pela coloração tricromo) resposta mediada por músculo liso alfa-actina myofibroblasts positivo. No entanto, achamos que os resultados das análises histológicas variar entre ratos, especificamente o grau de concentração de miofibroblastos em anastomótico e re-epitelização. Nós relatamos mortalidade após este procedimento ser inferior a 10%, com mais de 90% de sobrevivência ratos tendo bem curados anastomoses em 7 dias.
Figura 1: Preparação cirúrgica e drapejando. Drape estéril (A) A é colocado sobre o mouse, depois o abdômen foi preparado. (B) uma pequena oval ou retangular é cortar a cortina para expor o abdome. (C) uma pequena fenda deve ser feita ao longo da linha mediana da cortina perto da janela retangular ou ovoide, para permitir o acesso do reto durante o procedimento. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.
Figura 2 : Incisões. (A), A incisão na pele feita enquanto tendo o cuidado para não machucar o peritônio. (B) peritônio é elevado longe o conteúdo abdominal e incisão para expor o conteúdo abdominal.
Figura 3 : Colocação de sonda. Uma sonda sem corte é colocada suavemente no reto. Depois de localizar o ceco, o conteúdo do abdômen é rotacionado medialmente, visualizando a sonda retal previamente colocada.
Figura 4 : Colotomy e reparar o. (A) o sigmoide é pego com Pinças atraumáticas. (B) usando microtesoura em ponto, fazer um corte em todo o cólon sigmoide, perpendicular à direção do cólon e estendendo-se através de 80-90% da largura do cólon. (C) usando um driver de agulha Castro Viejo, coloque 5-6 simples interrompida 8-0 pontos de polipropileno para reparar o colotomy. As suturas devem ser cerca de 1 mm afastados uns dos outros com mordidas de 0,5 mm. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.
Figura 5 : Ferida encerramento. (A) os órgãos viscerais são retornados para a sua posição anatômica normal. (B) o abdominal incisão é fechada com sutura trançada 4-0. (C), a pele é fechada com sutura de monofilamento de 4-0. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.
Figura 6 : Pós-cirurgia de incisão. (A) re-abrir a incisão original revelando o conteúdo abdominal. Certifique-se de alargar a incisão superiormente e lateralmente para a melhor exposição para o sigmoide. (B) Gire as vísceras medialmente, revelando a anastomose sigmoide.
Figura 7 : Colheita da anastomose. Remova o segmento do intestino proximal e distal à anastomose por 1 cm de cada lado.
Figura 8 : Orientação para cortes histologicos. Corte ao longo do comprimento da borda mesentérica de forma longitudinal. Isto deixa um espécime retangular. Isto retrata o espécime de anastomose sigmoide.
Figura 9 : Análise imunohistoquímica e histologia de uma anastomose colônica totalmente curado. A análise histológica mostra fibrótico (colágeno visualizado pela coloração tricromo) resposta mediada por músculo liso alfa-actina myofibroblasts positivo.
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Discussion
Existem várias etapas-chave para assegurar o sucesso e minimizar a morbidade/mortalidade associada com este procedimento. Primeiro, certifique-se de tratamento cuidadoso do tecido intestinal e tome cuidado para evitar lesão de tração quando as vísceras para expor os dois pontos de giro. Uma tensão indevida sobre o intestino ou mesentério podem lesão a necrose intestinal intestino ou vasculatura e causa longe do local da anastomose. Além disso, Pinças afiadas ou fórceps com dentes não deve ser usado para lidar com o intestino.
Prejuízo para o intestino, separado do local da anastomose planejada, durante a rotação visceral ou por perfuração com sonda sem corte, deve resultar em eutanásia do animal. Em nossa experiência, necrose do intestino ou lesão pode levar a sepse abdominal ou morte e uma resposta inflamatória extremamente aumentada que dificulta a recuperação de um espécime anastomótica curado proibitiva.
Transecção do cólon deve abranger o máximo possível, o cólon descendente, mas deve ter cuidado para não transeção do serosa do intestino em contacto com o mesentério. Em nossa experiência, que inclui o serosa transecção- e especialmente o mesentério-pode levar à retração da secção proximal do cólon que dificulta a anastomose e pode levar ao agravamento do prejuízo tentando recuperar o segmento retraído.
Anastomose pode ser reparada com suturas interrompidas de 5-6. Mais podem ser necessária para ratos grandes. As suturas devem ser afastados de 1 mm. Suturas de lugar em ambos os lados da borda mesentérica e, em seguida alternando os lados da transecção para atender ao meio na borda antifacilita mesentérica uma anastomose mais fácil e mais rápida. Antes da sutura final, abrangendo a anastomose com a ponta de prova contundente garante uma anastomose patente e impede "costas-parede" anastomose, que teria efetivamente ligate do cólon.
Garantir a hemostasia antes do fechamento abdominal. Apesar da cobertura antibiótica pós-operatória, hemoperitônio durante o período de recuperação após contaminação intraabdominal pode levar a uma taxa inaceitavelmente elevada de infecção abdominal e doença adesiva.
Ao primeiro executar este procedimento, vários ratos podem ser perdidos no período pós-operatório. Nossa taxa de mortalidade inicial aproximada de 30%. Encontramos este é principalmente devido à estenose anastomótica, levando à obstrução e necrose do intestino, avaria de reparação anastomótica, ou necrose de parede intestinal longe do local da anastomose, provavelmente devido a isquemia após lesão mesentérica. Tudo isso pode levar à morte, septicemia e infecções intra-abdominais. Uma vez experimentado neste procedimento, o cirurgião deve experimentar uma taxa de mortalidade de menos de 10%. Evidência de vazamento subclínica anastomótico, ilustrado por purulência e densas aderências no local da anastomose, estavam presentes em até 10%. Embora este procedimento pode ser feito sem o auxílio de magnificação, sua maior desvantagem como modelo experimental pode ser reproduzido é o desafio técnico relativo quando comparado ao ileocecal ou cólon ascendente anastomoses. Nós encontramos lupas cirúrgicas extremamente útil na realização de anastomose, minimizando o trauma na parede do intestino. Também pode ser utilizado um microscópio cirúrgico, mas não encontramos isso necessário.
Muitas técnicas têm sido usadas para descrever modelos animais para anastomose colônica; particularmente, utilizando modelos de rato e coelho. Achamos que haja uma escassez de procedimentos podem ser reproduzidos de decrescente a anastomose do cólon em modelos do rato; Suspeitamos que isso é devido ao menor tamanho de ratos, aumentando a dificuldade técnica dos procedimentos anastomótica. No entanto, os ratos têm seleção maior e mais ampla disponibilidade de linhas transgénicas e anticorpos, que, a este ponto, não estavam disponíveis para ser usado em um modelo de anastomose do cólon. Desenvolvemos o modelo atual para unificar o modelo de rato com um modelo de anastomose do cólon.
Nossa experiência com este procedimento inclui ratos machos e fêmeas de diferentes tamanhos e idades. Neste ponto, não comparamos anastomótica ferida cura resultados entre as idades, tamanhos ou os sexos de ratos, que certamente podem existir diferenças, e este modelo permitiria essa comparação.
Acreditamos que este modelo pode ser facilmente e consistentemente reproduzido e costumava estudar cicatrização anastomótica. Embora nós recomendamos primeiras colheitas de amostra em sete dias, mais cedo e mais tarde pontos de tempo podem ser útil em ilustrando uma linha do tempo da cura anastomótica; demonstrando, por exemplo, migração precoce de células inflamatórias e mediadores em anastomótico e a deposição de colágeno pelos fibroblastos nas semanas seguintes.
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Disclosures
Os autores declaram que eles têm não tem interesses financeiro concorrente.
Acknowledgments
Nenhum
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| C57BL6/J mice | Jackson Labs | #00664 | |
| Fisherbrand Absorbent Underpads, 20" x 24" | Fisher Scientific | 14-206-62 | |
| Polylined Sterile Field, 18" x 24" | Busse Hospital Disposables | 696 | Cut a rectangular hole |
| Isothesia isoflurane | Henry Schein | 50033 | |
| Fisherbrand Sterile cotton gauze pad, 4" x 4" | Fisher Scientific | 22-415-469 | |
| Puralube petrolatum ophthalmic ointment, 1/8 oz. tube | Dechra Veterinary Products | NDC 17033-211-38 | |
| Nair depilatory cream | Church & Dwight Co. | 22339-05 | |
| Buprenex buprenorphine 0.3 mg/ml | Reckitt Benckiser Pharma Inc | NDC 12496-0757-5 | |
| 1 cc insulin syringe, 27 G | Becton Dickinson | 329412 | |
| Chloraprep Shampoo | Medline | APL82287 | |
| Webcol alcohol prep swabs | Covidien | 6818 | |
| BioGel PI surgical gloves | Mölnlycke Health Care | ALA42675Z | |
| Micro Forceps with teeth | Roboz | RS-5150 | |
| Fine scissors- sharp | Fine Science Tools | 14060-09 | |
| Straight serrated forceps | Fine Science Tools | 11050-10 | |
| Castro-Viejo needle driver | Fine Science Tools | 12565-14 | |
| 0.9% Sodium Chloride Irrigation | Baxter | BHL2F7121 | Warm to 37 °C prior to use |
| 10 ml syringe | Becton Dickinson | 309604 | |
| 4-0 Vicryl absorbable braided suture, 18", PS-2 needle | Henry Schein | 6546037 | |
| Blue monofilament suture 24” BV-1 needle | Henry Schein | 8305H | Usually comes double-armed. Cut the suture at the midway point to generate two usable sutures. |
| Cole-Parmer Microscissors, Standard Grade, Straight, 4". | Cole- Parmer | EW-10818-06 | |
| Medline Sterile lubricating jelly | Medline | MDS032273H |
References
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