Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
JoVE Journal Medicine
Click here for the English version

Medicine

סיליקון הפיך שמן המושרה מודל יתר לחץ דם בעכברים

Published: November 15, 2019 doi: 10.3791/60409
Automatic Translation
1,2, 1,3, 1, 1, 1, 1,4, 1,4, 1
1Department of Ophthalmology, Stanford University School of Medicine, 2Department of Ophthalmology, Union Hospital, Tongji Medical College, Huazhong University of Science and Technology, 3Department of Ophthalmology, Second Xiangya Hospital of Central South University, 4Department of Ophthalmology, Veterans Affairs Palo Alto Health Care

Summary

כאן, אנו מציגים פרוטוקול כדי לגרום לחץ דם עינית וglaucomatous ניוון בעיני העכבר על ידי הזרקה תאיים של שמן סיליקון ואת ההליך להסרת שמן סיליקון מן החדר הקדמי כדי להחזיר את הלחץ התוך בעינית מוגבה ל נורמלי.

Abstract

לחץ בעינית מוגבר (IOP) הוא גורם סיכון המתועד היטב עבור גלאוקומה. כאן אנו מתארים רומן, שיטה יעילה לגרימת בעקביות העלאת IOP יציבה בעכברים המחקה את הסיבוך שלאחר הניתוח של שימוש בשמן סיליקון (SO) כסוכן טמפונאדה בניתוח הגוף האנושי. בפרוטוקול זה, הוא מוזרק לחדר הקדמי של עין העכבר כדי לחסום את האישון ולמנוע זרימה של הומור מימית. החדר האחורי מצטבר הומור מימית וזה בתורו מגביר את ה-IOP של הקטע האחורי. הזרקה אחת SO מייצרת אמין, מספיק, יציבה IOP העלאת, אשר מעורר glaucomatous נוירוניוון משמעותי. מודל זה הוא שכפול אמיתי של גלאוקומה משנית במרפאת העין. כדי לחקות עוד יותר את ההגדרה הקלינית, ניתן להסירו מהתא הקדמי כדי לפתוח מחדש את מסלול הניקוז ולאפשר זרימה של הומור מימית, אשר מנוקז דרך העבודה הטרטותית (TM) בזווית החדר הקדמי. בגלל IOP במהירות חוזר נורמלי, המודל יכול לשמש כדי לבדוק את ההשפעה של הנמכת IOP על glaucomatous בתאי גנגליון ברשתית. שיטה זו פשוטה, אינה דורשת ציוד מיוחד או הליכים חוזרים, מדמה באופן מדוק מצבים קליניים, ועשויים להיות ישימים למינים שונים של בעלי חיים. עם זאת, ייתכן שניתן יהיה לדרוש שינויים משניים.

Introduction

הפסד פרוגרסיבי של תאים גנגליון ברשתית (rgcs) ו אקסונים שלהם הוא סימן ההיכר של גלאוקומה, מחלה ניווניות נפוצה ברשתית1. זה ישפיע על יותר מ 100,000,000 אנשים 40 על 80 שנים על ידי 20402. IOP נשאר גורם הסיכון היחיד הניתן בפיתוח והתקדמות גלאוקומה. כדי לחקור את הפתוגנזה, התקדמות, וטיפולים פוטנציאליים של גלאוקומה, אמין, הinducible, ומודל לחץ דם עינית ניסיוני/גלאוקומה המשכפלת תכונות מפתח של חולי האדם הוא הכרחי.

ה-IOP תלוי בצורת הומור מימית לחדר הקדמי מתוך הגוף המקולל בחדר האחורי והזרימה הקדמית של העבודה בזווית החדר הקדמי. לאחר שהגיע למצב קבוע, IOP נשמרת. כאשר הזרימה הנכנס עולה או פחות מ-זרימה, IOP עולה או נופל בהתאמה. על ידי הפחתת זרימה רציפה מימית או על ידי הסגר את זווית החדר הקדמי או על ידי פגיעה TM, כמה דגמים גלאוקומה הוקמו3,4,5,6,7,8,9,10. מודלים אלה משויכים בדרך כלל עם נזק בלתי הפיך רקמת העינית, ואת iop גבוה בחדר הקדמי גם גורם סיבוכים לא רצויים כגון בצקת הקרנית ודלקת תוך העין, אשר להפוך הדמיה רשתית ופונקציה חזותית בחני קשה לבצע ולפרש.

כדי לפתח מודל הגוברת על חסרונות אלה, התמקדנו בגלאוקומה המשני המתועדות הנגרמת על ידי שמן הסיליקון (SO) המתרחשת כסיבוך פוסט-פעיל של ניתוח ויטריאורי111,12. SO משמש כטמפונדה ניתוחים ברשתית בגלל מתח משטח גבוה שלה. עם זאת, ניתן לסגר פיזית את התלמיד משום שהוא בהיר יותר מאשר הנוזלים המים והווימים, המונעים זרימה מימית לתוך החדר הקדמי. החסימה גורמת להעלאה בחדר האחורי בגלל הצטברות ההומור הימית. זה מונע מאיתנו לפתח ולאפיין את מודל העכבר לחץ דם העינית הספר מבוסס על הזרקה תאיים ובלוק אישונים13, עם תכונות מפתח של גלאוקומה משני: בלוק אישונים יעיל, העלאת iop משמעותי שיכול לחזור נורמלי לאחר SO להסרת, ו glaucomatous נוירוניוון.

כאן אנו מציגים פרוטוקול מפורט ליתר לחץ דם עינית המושרה בעין העכבר, כולל SO הזרקה והסרה ומדידה IOP.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

כל ההליכים אושרו על ידי הוועדה לטיפול בבעלי חיים מוסדיים (IACUC) של אוניברסיטת סטנפורד.

1. ביתר לחץ דם אינדוקציה על ידי הזרקה תאיים של SO

  1. הכינו מיקרופיפטה מזכוכית להזרקה באמצעות משיכת נימי זכוכית בעזרת פולר לייצור מיקרופיפטה. חותכים את הפתח בקצה המיקרופיפטה ומשחיזים עוד יותר את הטיפ בעזרת מכונת מיקרו-מסתובב העושה שיקוע של 35 ° עד 40 °.
  2. להבריק את קצות השיקוע ולהסיר את כל הפסולת על ידי שטיפת מים. השתמש במיקרופיפטה לפני השימוש.
  3. הכינו את מחט הפרנטזיס. לכניסת הקרנית כדי לעשות זאת, לצרף 32 G מחט ל 5 מזרק mL על נעילת Luer, ולאבטח אותו בקלטת. לכופף את המחט משופע קצה הפנים למעלה ב 30 °.
  4. הכן את מזרק SO על ידי הצמדת ואבטחת בקצה קהה 18 גרם מחט על מזרק 10 mL ראשון. ואז לצרף צינור פלסטיק עם המחט 18 G על קצה אחד ולהתמלא עם כך כנדרש דרך הקצה השני.
  5. חברו את המיקרופיפטה העקר לצינור הפלסטיק ודחפו את המזרק למילוי המיקרופיפטה כולו עם SO.

2. הזרקת כל כך החוצה לעין אחת

  1. מניחים 9 עד 10-שבוע בן זכר C57B6/J העכבר לתוך חדר אינדוקציה עם 3% isof ane מעורבב עם חמצן ב 2 L/min עבור 3 דקות.
  2. Intraperitoneally להזריק 2, 2, 2-triברומאואתנול ב 0.3 מ"ג/g משקל גוף.
    הערה: בניגוד קטמין/xylazine, 2, 2, 2-טריברואואתנול לא גורם התרחבות האישון הברורה.
  3. בדוק את חוסר התגובה לצביטה בבוהן ואת חוסר התנועה של השפם או הזנב כדי לקבוע את חוזק ההרדמה.
  4. למקם את העכבר בעמדה לרוחב על פלטפורמת ניתוח. כדי להפחית את רגישותו במהלך ההליך, להחיל טיפה אחת של 0.5% proparacaine הידרוכלוריד לקרנית לפני הזריקה.
  5. בצע חיתוך כניסה עם מחט 32 G הפרנטזיס ברביע superotemporal, כ 0.5 מ"מ מתוך לימבוס.
  6. מנהרה דרך שכבות הקרנית עבור כ 0.3 מ"מ לפני פירסינג לתוך החדר הקדמי. להיזהר לא לגעת בעדשה או איריס.
  7. למשוך את המחט לאט כדי לשחרר כמה הומור מימית (כ 1-2-2μl) מהתא הקדמי דרך המנהרה (הפאראנטזיס).
  8. המתן ~ 8 דקות כדי להקטין עוד יותר את IOP. זה יכול להיקבע על ידי מדידת הצלעות, עין בקרה.
  9. הכנס את מיקרופיפטה הזכוכית טעונה מטעון עם SO דרך מנהרת הקרנית אל החדר הקדמי, עם השיקוע הפונה מטה אל פני השטח של הקשתית.
  10. דחף את המזרק באיטיות כדי להזריק כך לתוך החדר הקדמי עד שה "מכסה את רוב משטח הקשתית, בקוטר של כ-2.4 מילימטר.
  11. השאר את המיקרופיפטה בחדר הקדמי במשך 10 ס מ לפני שהוא נסוג לאט.
  12. בעדינות לדחוף את העפעף העליון כדי לסגור את החתך קרנית כדי למזער דליפה SO.
  13. החל משחה אנטיביוטית (bacitracin-neomycin-polymyxin) למשטח העין.
  14. במהלך התהליך, לעתים קרובות להרטיב את הקרנית עם דמעות מלאכותיות.
  15. לשמור על העכבר על משטח החימום עד התאושש באופן מלא מן ההרדמה.

3. SO הסרה

  1. . הכן את מערכת ההשקיה
    1. הכינו את פתרון הגירויים בהתאם להוראות היצרן והניחו אותו בבקבוק ההשקיה. העלה את בקבוק פתרון ההשקייה ל-110-120 ס מ מעל פלטפורמת הניתוח.
    2. חברו את הממשל הרביעי. לבקבוק תמיסת השקייה להסיר בועות אוויר מתוך אבובים IV. לחבר מחט 33 G כפוף הפנים 20 ° עד אבובים IV.
  2. כדי להכין את מערכת הניקוז, להסיר את הבוכנה ממזרק 1 mL. לחבר מחט 33 G למזרק ולכופף את המחט ל 20 °.
  3. . תסיר את זה מהתא הקדמי
    1. Intraperitoneally להזריק 2, 2, 2-triברומאואתנול (0.3 מ"ג/g משקל גוף). בדוק את היעדר תגובה צביטה הבוהן כדי לקבוע את חוזק ההרדמה ואת חוסר התנועה של השפם או הזנב.
    2. למקם את העכבר על פלטפורמת ניתוח ולאבטח אותו במצב לרוחב עם קלטת. החל טיפה אחת של 0.5% proparacaine הידרוכלוריד לקרנית כדי להפחית את הרגישות שלה.
    3. לעשות שני חתכים ברביע הזמני של הקרנית בין ~ 2 ו-5 השעה בקצה של ה-SO droplet באמצעות מראש 32 G הפרנטזיס מחט.
    4. הכנס מחטים השקיה 33 G המחובר לפתרון שוטף דרך חתך הקרנית אחד, מהירות מקסימלית.
    5. הכנס עוד 33 G המחט ניקוז מוצמד למזרק ללא בוכנה דרך חתך הקרנית אחרים כדי לאפשר את ה-droplet כדי לצאת מהתא הקדמי תוך שהוא מוסיף פתרון שוטף.
    6. למשוך את המחט ניקוז, ואז את המחט השקיה.
    7. להזריק בועת אוויר לתוך התא הקדמי כדי לשמור על עומק נורמלי שלה ללחוץ כדי לסגור את חתך הקרנית.
    8. החלת משחה אנטיביוטית לשתי העיניים.
    9. לשמור על העכבר על משטח ההתאוששות החימום עד התאושש באופן מלא מן ההרדמה.

4. מדידת IOP פעם בשבוע

  1. מניחים את העכבר לתוך חדר אינדוקציה עם 3% isof, מעורבב עם חמצן ב 2L/min עבור 3 דקות.
  2. Intraperitoneally להזריק xylazine ו קטמין (0.01 mg xylazine/g, 0.08 mg קטמין/g).
  3. לשמור על קרנית לחה על ידי החלת דמעות מלאכותי במהלך ההליך.
  4. המתן כ-15 דקות כדי לאפשר לתלמיד להתרחב במלואה.
  5. למדוד את IOP של שתי העיניים באמצעות טונמטר על פי הוראות המוצר. הביאו את הטונמטר ליד עין העכבר. לשמור על המרחק מהקצה של המכשיר לקרנית העכבר בערך 3-4 מ"מ. לחץ על לחצן מדידה 6x כדי ליצור קריאה אחת. שלושה קריאות מכונה מתקבלים מכל עין כדי לרכוש את IOP מתכוון.
  6. להקריב את החיות ב 8 שבועות לאחר SO הזרקה ולבצע אימונוהיסטוכימיה של הרשתית השלמה של הר, הספירה RGC, לספור את העצב האופטי (על) חלקים דקים, ו כימות של axons ששרדו, אשר תוארו לפני13.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

זמן קצר לאחר ההזרקה אנחנו יכולים בקלות לזהות עכברים שאינם מייצרים לחץ דם עינית יציבה בגלל טיפות SO להיות קטן מדי (≤ 1.5 mm)13. בעלי חיים אלה אינם נכללים בניסויים הבאים. בעקבות הליכי ההזרקה, יותר מ 80% של עכברים מוזרק SO בסופו של דבר עם טיפות גדול יותר 1.6 מ"מ. מדדנו את IOP של עיני העכבר האלה פעם בשבוע עבור 8 שבועות לאחר הזרקה אחת כל כך. IOP של העין מקבל כל כך נשאר גבוה, בדרך כלל כפול IOP של העין בקרת הצלעות, המציין חסימת התלמיד יעיל (איור 1). בצקת בקרנית העכבר ניתן לבדוק תחת מיקרוסקופ לנתיחה אור לאחר הזרקה תאיים כי בדרך כלל לוקח 2-3 ימים להחלמה. התארכות האישון לוקח זמן, וצריך להמתין לתארכות האישון לפני נטילת מדידת ה-IOP. לכן, אנו מנסים לא למדוד את ה-IOP מוקדם מדי לאחר זריקה. מאותה סיבה, אנחנו לא ממליצים למדוד את IOP לעתים קרובות מדי. עם קבוצה אחרת של עכברים, זרקנו את כל כך מן החדר הקדמי 2 שבועות לאחר הזרקת SO, וחיכינו שבוע נוסף כדי לאפשר קרנית להתאושש לפני מדידת IOP, אשר החזירה באופן מצער את IOP נורמלי (איור 1).

כדי לקבוע את ההשפעות של לחץ דם עינית הנגרמת על ידי הזרקה כל כך על rgcs, אנו לכמת את rgc somata ששרדו באזורים היקפיים של הרשתית כל הטעינות על ידי rbpms וסתית כתמים14,15 ואת אקסונים ששרדו בסעיפים לרוחב חצי דקה על ידי PPD צביעת16 ב 8 שבועות לאחר הזרקה. Glaucomatous rgc מוות ו אקסון ניוון היו דרמטיים בהשפעת יתר לחץ דם העינית מתחת לעיניים (sohu) (איור 2). פרטים נוספים על כך מסופקים בסעיף הדיונים.

Figure 1
איור 1: מדידות IOP בעיניים ובעיניים בולטות, עם או בלי הסרה מלאה. SO = אז עיניים מוזרקים; לפקח על העיניים. נתונים מוצגים כאמצעי ± S. E. M, n = 12. אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של איור זה.

Figure 2
איור 2: Glaucomatous rgc מניוון והאקסון ב sohu. (א) הפאנל העליון מתאר את האזור ההיקפי המציג rgcs (הרבעד, אדום) ב 8 שבועות לאחר הזרקה של כל הרשתיות הרכוב. סרגל קנה מידה = 20 μm. הפאנל התחתון מתאר תמונות דקות למחצה של חתכי הצלב של ON מוכתם עם PPD ב 8 שבועות לאחר הזרקה SO. סרגל קנה מידה = 10 μm. (ב) הנתונים לכמת של rgcs ששרדו ברשתית ההיקפית (n = 12) ו אקסונים ב-ON (n = 10) ב 8 שבועות לאחר הזרקה SO בהשוואה לבקרה מודלת (CL) עיניים. נתונים מוצגים כאמצעי ± S.E.M. * * * *: P < 0.0001; . מבחן לא משויך לסטודנט RGC = תא גנגליון רשתית; . על העצבים האופטיים אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של איור זה.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

כאן אנו מדגימים הליך פשוט אך יעיל לגרימת העלאת IOP מתמשכת בעין העכבר על ידי הזרקה תאיים של SO. הליך זה ניתן ללמוד במהירות על ידי כל אדם עם ניסיון מיקרו בניתוח תחת מיקרוסקופ. הסיכון הפוטנציאלי העיקרי של כישלון הוא דליפה של SO מחתך הקרנית. עם זאת, אחד היתרונות של שימוש SO היא כי השמן droplet הוא גלוי ומדידה, אנחנו יכולים בקלות לזהות עכברים שהתקבלו טיפות קטן מדי כדי לגרום ללחץ דם עינית יציב מיד לאחר ההזרקה להוציא אותם מניסויים עוקבים. השגנו באופן שגרתי 80% שיעור הצלחה ולא כולל כ 20% של עכברים בשל אז droplet קטן (≤ 1.5 מ"מ)13. עם זאת, מנתח מנוסה שיכול לעשות מנהרה ארוכה יחסית (0.3 מ"מ) בתוך שכבות של הקרנית לפני חדירה הקרנית לתוך החדר הקדמי עם קצה משופע יכול כמעט למנוע כל דליפה כל כך על ידי הפיכת הפתיחה הפנימית של מנהרת הקרנית הרבה יותר קטן מאשר פתיחה חיצונית. לכן, כמעט כל העכברים הוזרק עם ה-droplet גדול מ 1.8 מ"מ. בנוסף לאורך המנהרה, יש נקודות קריטיות אחרות שכדאי להדגיש. ראשית, חשוב לשמור על IOP נמוך בעין מוזרק כדי להימנע מדחיפת כל כך מהתא הקדמי. טעות נפוצה אחת היא להזריק יותר מדי אז, מה שהופך את הדליפה קלה יותר. אנו מגבילים את עוצמת הקול של SO בחדר הקדמי כך שהוא כמעט, אך לא לגמרי, מכסה את משטח הקשתית. הקוטר של ה-droplet הזה הוא ~ 2.3-2.4 מ"מ. שנית, החתך במנהרה הקרנית נעשה קרוב ככל האפשר כדי לאפשר את החתך כדי להתקרב הקשתית אבל לא לפגוע בו, כך הקשתית יכולה בקלות לקחת את החתך. שלישית, מהירות ההזרקה צריכה להיות איטית ככל האפשר כדי למנוע גלישה מוגזמת של SO לתוך התא הקדמי. רביעי, עיסוי העפעף העליון לאחר ההזרקה מסייע החתך הקרנית לסגור ולפעמים מסייע synechiae הקדמי של הקשתית ההיקפית לסגור את חתך הקרנית, ולכן כדי למנוע דליפת נפט.

יש עלייה ב-IOP רק בחלק האחורי של העין, אבל לא בחדר הקדמי, מה שהופך אותו למאפיין ייחודי של דגם זה. חסימת האישון מונעת זרימה של הומור מימית לתוך התא הקדמי ולכן מגבירה את ה-IOP רק בחלק האחורי. המכשול הפיזי שנוצר על ידי ה-SO יחד עם הקשתית ועדשת העין הגדולה עלולים לנתק את החדר הקדמי מהמקטע האחורי, שעשוי להגביל את העלאת ה-IOP רק בקטע האחורי, שבו החומר המים מצטבר. כאשר תלמידו של העכבר גדול יותר מאשר ה-droplet לאחר התרחבות, התאים הקדמי והאחורי מחוברים מראש, ומאפשרים עלייה מהירה של IOP בחדר הקדמי על-ידי הצפה מימית לתוכו. לכן, טונמטר יכול רק לזהות את ה-IOP המוגבר לאחר הסרת בלוק הפפילארי, כך IOP האמיתי בחלק האחורי הוא ללא ספק מזלזל. לכן, אנו קוראים מודל זה המושרה יתר לחץ דם העינית מודל שזוהו (SOHU), אשר מדויק יותר ושמיש באופן מלא משקף תכונה זו של המודל. עדיף יהיה למדוד את IOP בקטע האחורי ישירות, אבל עד כה זה לא אפשרי. זה הפתוגנזה הייחודית של המודל SOHU יש שני מאפיינים יתרון: ראשית, העיניים ניסיוני יש אלמנטים עינית ברור המאפשרים הערכה vivo של פונקציה חזותית מורפולוגיה ושנית, הglaucomatous חמור הנוירוניוון מאפשר כל תועלת של בדיקות נוירוהגנה להתגלות.

אז הזרקה יכולה לגרום בצקת הקרנית באופן זמני ואנו ממליצים לא לבצע מדידות IOP מדי מוקדם מדי או לעתים קרובות מדי. לא הצלחנו לזהות כל דלקת בחדר הקדמי או בקרנית בעיני sohu, למרות שנתקלנו בשני מקרים של הקרנית ניאוואסקולריזציה ב יותר מ 100 עכברים קבלת זריקות SO.

משום כך גורם ליתר לחץ דם העינית בחולים ועכברים שניהם, סביר לחשוב כי רומן מושגית זה מודל גלאוקומה משמעותי למעשה יכול להיות מותאם עבור בעלי חיים גדולים יותר מתאימים יותר עבור יישומים טרום קליני. האפיון של החסרונות בתפקוד העצבי והמבנה של מודל זה יהיה בהחלט לעודד חוקרים אחרים כדי לנצל אותו כדי להמשיך שאלות חשובות לגבי גלאוקומה, אפילו יותר באופן נרחב, מחלות לגרום RGC ו-ON ניוון.

לסיכום, זהו מודל גלאוקומה בעלי חיים פשוט שאינו דורש ציוד מיוחד או פציעות חוזרות ועשוי להיות רלוונטי למינים אחרים של בעלי חיים. שליט, העלאת IOP של מודל SOHU יכול להיות הפוך על ידי הסרת השמן מן החדר הקדמי, ובכך הוא שימושי לסינון הטיפול נוירומגן בשילוב עם הפחתת טיפולים IOP.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

. למחברים אין מה לגלות

Acknowledgments

עבודה זו נתמכת על-ידי מענקי NIH EY024932, EY023295 וEY028106 לYH.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
0.5% proparacaine hydrochloride Akorn, Somerset
10mL syinge BD Luer-Lok Tip
18G needle BD with Regular Bevel, Needle Length:25.4 mm
2,2,2-Tribromoethanol (Avertin) Fisher Scientific CAS# 75-80-9 50g
32G nano BD 320122 BD Nano Ultra Fine Pen Needle-32G 4mm
33G ophalmology needle TSK/ VWR TSK3313/ 10147-200
5mL syinge BD Luer-Lok Tip
AnaSed Injection (xylazine) Butler Schein 100 mg/ml, 50 ml
artificial tears Alcon Laboratories 300651431414 Systane Ultra Lubricant Eye Drops
BSS PLUS Irrigating solution Alcon Laboratories 65080050
Dual-Stage Glass Micropipette Puller NARISHIGE PC-10
EZ-7000 Classic System EZ system
Isoflurane VetOne 502017 isoflurane, USP, 250ml/bottle
IV Administration sets EXELint/ Fisher 29081
KETAMINE HYDROCHLORIDE INJECTION VEDCO 50989-996-06 KETAVED 100mg/ml * 10ml
microgrind bevelling machine NARISHIGE EG-401
Miniature EVA Tubing McMaster-Carr 1883T4 0.05" ID, 0.09" OD, 10 ft. Length
silicon oil (SILIKON) Alcon Laboratories 8065601185 1,000 mPa.s
Standard Glass Capillaries WPI/ Fisher 1B150-4 4 in. (100mm) OD 1.5mm ID 0.84mm
TonoLab tonometer Colonial Medical Supply, Finland
veterinary antibiotic ointment Dechra Veterinary 1223RX BNP ophthalmic ointment, Vetropolycin

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Chang, E. E., Goldberg, J. L. Glaucoma 2.0: neuroprotection, neuroregeneration, neuroenhancement. Ophthalmology. 119 (5), 979-986 (2012).
  2. Tham, Y. C., et al. Global prevalence of glaucoma and projections of glaucoma burden through 2040: a systematic review and meta-analysis. Ophthalmology. 121 (11), 2081-2090 (2014).
  3. Pang, I. H., Clark, A. F. Rodent models for glaucoma retinopathy and optic neuropathy. Journal of Glaucoma. 16 (5), 483-505 (2007).
  4. Morrison, J. C., Johnson, E., Cepurna, W. O. Rat models for glaucoma research. Progress in Brain Research. 173, 285-301 (2008).
  5. McKinnon, S. J., Schlamp, C. L., Nickells, R. W. Mouse models of retinal ganglion cell death and glaucoma. Experimental Eye Research. 88 (4), 816-824 (2009).
  6. Chen, S., Zhang, X. The Rodent Model of Glaucoma and Its Implications. Asia Pacific Journal of Ophthalmology (Philadelphia). 4 (4), 236-241 (2015).
  7. Sappington, R. M., Carlson, B. J., Crish, S. D., Calkins, D. J. The microbead occlusion model: a paradigm for induced ocular hypertension in rats and mice. Investigative Ophthalmology and Visual Science. 51 (1), 207-216 (2010).
  8. Chen, H., et al. Optic neuropathy due to microbead-induced elevated intraocular pressure in the mouse. Investigative Ophthalmology and Visual Science. 52 (1), 36-44 (2011).
  9. Cone, F. E., Gelman, S. E., Son, J. L., Pease, M. E., Quigley, H. A. Differential susceptibility to experimental glaucoma among 3 mouse strains using bead and viscoelastic injection. Experimental Eye Research. 91 (3), 415-424 (2010).
  10. Samsel, P. A., Kisiswa, L., Erichsen, J. T., Cross, S. D., Morgan, J. E. A novel method for the induction of experimental glaucoma using magnetic microspheres. Investigative Ophthalmology and Visual Science. 52 (3), 1671-1675 (2011).
  11. Ichhpujani, P., Jindal, A., Jay Katz, L. Silicone oil induced glaucoma: a review. Graefes Archieves for Clinical and Experimental Ophthalmology. 247 (12), 1585-1593 (2009).
  12. Kornmann, H. L., Gedde, S. J. Glaucoma management after vitreoretinal surgeries. Current Opinion in Ophthalmology. 27 (2), 125-131 (2016).
  13. Zhang, J., et al. Silicone oil-induced ocular hypertension and glaucomatous neurodegeneration in mouse. Elife. 8, (2019).
  14. Kwong, J. M., Caprioli, J., Piri, N. RNA binding protein with multiple splicing: a new marker for retinal ganglion cells. Investigative Ophthalmology and Visual Science. 51 (2), 1052-1058 (2010).
  15. Rodriguez, A. R., de Sevilla Muller, L. P., Brecha, N. C. The RNA binding protein RBPMS is a selective marker of ganglion cells in the mammalian retina. Journal of Comparative Neurology. 522 (6), 1411-1443 (2014).
  16. Smith, R. S. Systematic evaluation of the mouse eye : anatomy, pathology, and biomethods. , CRC Press. (2002).

Tags

רפואה סוגיה 153 עין גלאוקומה שמן סיליקון החדר הקדמי יתר לחץ דם עינית מודל העכבר לחץ בעינית נוירוניוון
סיליקון הפיך שמן המושרה מודל יתר לחץ דם בעכברים
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Zhang, J., Fang, F., Li, L., Huang,… More

Zhang, J., Fang, F., Li, L., Huang, H., Webber, H. C., Sun, Y., Mahajan, V. B., Hu, Y. A Reversible Silicon Oil-Induced Ocular Hypertension Model in Mice. J. Vis. Exp. (153), e60409, doi:10.3791/60409 (2019).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter