Summary
Burada, silikon yağı intrakalik enjeksiyonu ve ön hazneden silikon yağı kaldırma prosedürü ile fare gözlerinde oküler hipertansiyon ve glokom nörodejenerasyon indüklemek için bir protokol sunmak yüksek göz içi basıncı dönmek için Normal.
Abstract
Yüksek göz içi basıncı (IOP) glokom için iyi belgelenmiş bir risk faktörüdür. Burada, insan vitreoretinal cerrahisinde tamponad ajanı olarak silikon yağı (SO) kullanımının postoperatif komplikasyonu taklit eden farelerde sürekli olarak istikrarlı IOP yükselmesini indükleyen yeni ve etkili bir yöntemi açıklıyoruz. Bu protokolde SO, göz bebeğini engellemek ve sulu mizah girişini önlemek için fare gözünün ön odasına enjekte edilir. Arka oda sulu mizah birikir ve bu da arka segmentin IOP artırır. Tek bir SO enjeksiyonu güvenilir üretir, yeterli, ve istikrarlı IOP yükseklik, hangi önemli glokom nörodejenerasyon indükler. Bu model göz kliniğinde ikincil glokom gerçek bir kopya. Daha fazla klinik ayarı taklit etmek için, SO drenaj yolunu yeniden açmak ve ön oda açısında trabeküler meshwork (TM) ile boşaltılır sulu mizah, girişine izin ön odasından kaldırılabilir. IOP hızlı bir şekilde normale döndüğünden, model glokom retinaganglion hücreleri üzerinde IOP düşürücü etkisini test etmek için kullanılabilir. Bu yöntem basittir, özel ekipman veya tekrar prosedürleri gerektirmez, klinik durumları yakından simüle eder ve çeşitli hayvan türleri için uygulanabilir. Ancak, küçük değişiklikler gerekebilir.
Introduction
Retina ganglion hücrelerinin ilerleyici kaybı (RGCs) ve aksonlar glokom, retinada yaygın bir nörodejeneratif hastalık özelliğidir1. 2040 yılına kadar 40−80 yaş ları arasında 100 milyondan fazla kişiyietkileyecektir. IOP glokom gelişimi ve ilerlemesinde tek değiştirilebilir risk faktörü olmaya devam etmektedir. Glokomun patogenezini, progresyonunu ve potansiyel tedavilerini araştırmak için, insan hastalarının temel özelliklerini kopyalayan güvenilir, tekrarlanabilir ve indükedilemez deneysel oküler hipertansiyon/glokom modeli zorunludur.
IOP, arka haznedeki siliyer gövdeden ön odaya sulu mizah girişine ve ön odanın açısında trabeküler meshwork (TM) ile çıkışa bağlıdır. Sabit bir duruma ulaştıktan sonra, IOP korunur. Giriş, çıkış sınırını aştığında veya daha az olduğunda, IOP sırasıyla yükselir veya düşer. Ön odanın açısını tıkararak veya TM'ye zarar vererek sulu çıkışazalarak3,4,5,6,7,8,9,10olmak üzere çeşitli glokom modelleri oluşturulmuştur. Bu modeller normalde geri dönüşümsüz göz dokusu hasarı ile ilişkilidir, ve ön odada yüksek IOP da kornea ödemi ve göz içi iltihabı gibi istenmeyen komplikasyonlara neden olur, hangi retinagörüntüleme ve görsel fonksiyon tahlilleri yapmak ve yorumlamak zor olun.
Bu eksikliklerin üstesinden gelen bir model geliştirmek için, insan vitreoretinal cerrahi nin ameliyat sonrası komplikasyonu olarak ortaya çıkan silikon yağının (SO) neden olduğu iyi belgelenmiş sekonder glokoma odaklandık11,12. SO, yüksek yüzey gerilimi nedeniyle retinal ameliyatlarda tamponad olarak kullanılır. Ancak, SO fiziksel olarak ön odaya sulu akışını önler sulu ve vitreus sıvıları, daha hafif olduğu için gözbebeği tıkayabilirsiniz. Tıkanıklık sulu mizah birikimi nedeniyle arka odada IOP yükselmesine neden olur. Bu geliştirmek ve intracameral SO enjeksiyonu ve pupillary blok13dayalı yeni bir oküler hipertansiyon fare modeli karakterize bizi motive , ikincil glokom temel özellikleri ile: etkili pupillary blok, SO kaldırma sonra normale dönebilirsiniz önemli IOP yüksekliği, ve glokom nörodejenerasyon.
Burada fare gözüne SO enjeksiyonu, çıkarılması ve IOP ölçümü dahil olmak üzere SO'ya bağlı oküler hipertansiyon için ayrıntılı bir protokol sokulduk.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
Tüm prosedürler Stanford Üniversitesi Kurumsal Hayvan Bakım ve Kullanım Komitesi (IACUC) tarafından onaylanmıştır.
1. So intracameral enjeksiyon ile oküler hipertansiyon indüksiyonu
- Bir mikropipet oluşturmak için bir pipet puller ile bir cam kılcal çekerek intracameral SO enjeksiyon için bir cam mikropipet hazırlayın. Mikropipetin ucundaki bir açıklığı kesin ve 35°−40° açı yapmak için mikrodeğirmenci-beveling makinesiyle ucu daha da keskinleştirin.
- Cila lı yontucun kenarlarını temizleyin ve suyla yıkayarak tüm enkazları çıkarın. Kullanmadan önce mikropipetok.
- Kornea girişi için paracentesis iğne hazırlayın. Bunu yapmak için, luer kilidindeki 5 mL'lik şırıngaya 32 G iğne takın ve bantla daha da sabitleyin. İğne ucu nu 30°'de yukarı doğru bükün.
- So enjektörü önce 10 mL'lik bir şırıngaya 18 G iğne takarak ve emniyete alarak hazırlayın. Sonra bir ucunda 18 G iğne ile plastik bir tüp takın ve diğer ucundan gerektiği gibi SO ile doldurun.
- Sterilize edilmiş mikropipeti plastik boruya takın ve şırınga pistonluyu itin ve tüm mikro pipeti SO ile doldurun.
2. Bir göz için intracameral SO enjeksiyonu
- 9−10 haftalık erkek C57B6/J fareyi %3 izofluran oksijenle karıştırılmış bir indüksiyon odasına yerleştirin ve 3 dk boyunca 2 L/dk'da oksijenle karıştırın.
- İntraperitoneally enjekte 2,2,2-tribromoetanol 0.3 mg/g vücut ağırlığı.
NOT: Ketamin/ksilazin aksine, 2,2,2-tribromoetanol belirgin göz bebeği genişlemesine neden olmaz. - Bir parmak sıkışması yanıt eksikliği ve anestetik gücünü belirlemek için bıyık veya kuyruk hareket eksikliği olup olmadığını kontrol edin.
- Fareyi cerrahi platformda yanal bir konuma yerleştirin. İşlem sırasında hassasiyetini azaltmak için enjeksiyondan önce korneaya %0.5 proparacaine hidroklorür uygulayın.
- Limbustan yaklaşık 0,5 mm uzaklıktaki süperotemporal kadranda 32 G paracentesis iğnesi ile giriş kesisi yapın.
- Ön odaya piercing önce yaklaşık 0,3 mm için kornea katmanları ile Tünel. Lens veya iris dokunmamaya dikkat edin.
- Tünelden (paracentesis) ön odadan bazı sulu mizah (yaklaşık 1−2 μL) serbest bırakmak için iğneyi yavaşça geri çekin.
- IOP'yi daha da azaltmak için ~8 dk bekleyin. Bu kontralateral, kontrol gözü ölçülerek belirlenebilir.
- Kornea tünelinden SO ile önceden yüklenmiş cam mikropipeti ön odaya yerleştirin ve yontman iris yüzeyine bakacak şekilde.
- SO damlacık iris yüzeyinin en, ~ 2.3−2.4 mm çapında kaplayana kadar so ön hazneiçine SO enjekte etmek için şırınga piston yavaş yavaş itin.
- Mikropipeti yavaş yavaş çekmeden önce 10 s daha fazla ön haznede bırakın.
- SO sızıntısını en aza indirmek için üst göz kapağını kornea kesisini kapatmak için yavaşça itin.
- Göz yüzeyine antibiyotik merhem (bacitracin-neomisin-polimisin) uygulayın.
- İşlem boyunca, sık sık yapay gözyaşları ile kornea nemlendirin.
- Anestezi tamamen iyileşene kadar fareyi ısıtma yastığında tutun.
3. SO kaldırma
- Sulama sistemini hazırlayın.
- Sulama çözeltisini üreticinin talimatlarına göre hazırlayın ve sulama şişesine yerleştirin. Sulama çözeltisi şişesini ameliyat platformunun üzerinde 110−120 cm'ye (81−88 mmHg) yükseltin.
- Sulama çözeltisi şişesine bir IV uygulama seti takın. IV tüp hava kabarcıkları çıkarın. IV boruya kadar 20° yüze bükülmüş 33 G'lik bir iğne bağlayın.
- Drenaj sistemini hazırlamak için, 1 mL şırıngadan pistonu çıkarın. Şırıngaya 33 G iğne takın ve iğneyi 20°'ye kadar bükün.
- SO'yu ön odadan çıkarın.
- İntraperitoneally enjekte 2,2,2-tribromoetanol (0.3 mg/g vücut ağırlığı). Anestezik mukavemet ve bıyık veya kuyruk hareket eksikliği belirlemek için parmak çimdik yanıt eksikliği olup olmadığını kontrol edin.
- Fareyi bir ameliyat platformuna yerleştirin ve bantla yanal pozisyonda sabitleyin. Hassasiyetini azaltmak için korneaya %0.5 proparacaine hidroklorür damlatın.
- Önceden yapılmış 32 Gacentesi paracentesis iğnekullanarak SO damlacık kenarında ~ 2 ve 5 arasında korneanın temporal kadranda iki kesi ler olun.
- Bir kornea kesisi, maksimum hız ile sulama çözeltisi bağlı bir 33 G sulama iğnesi takın.
- So damlacık sulama çözeltisi ile sulama sırasında ön oda çıkmak için izin vermek için diğer kornea kesi ile bir piston olmadan şırınga bağlı başka bir 33 G drenaj iğnesi yerleştirin.
- Drenaj iğnesini, sonra da sulama iğnesini geri çek.
- Normal derinliğini korumak için ön odaya bir hava kabarcığı enjekte edin ve kornea kesisini kapatmak için basın.
- Her iki göze de antibiyotik merhem uygulayın.
- Anestezi tamamen iyileşene kadar fareyi ısıtma geri kazanım yastığında tutun.
4. Haftada bir Kez IOP ölçümü
- Fareyi 2L/dk'da oksijenle karıştırılmış %3 izofluran ile perdelik bir indüksiyon odasına yerleştirin.
- İntraperitoneally ksilazin ve ketamin enjekte (0.01 mg xylazine/g, 0.08 mg ketamin/g).
- İşlem boyunca yapay gözyaşı uygulayarak korneanemli tutun.
- Göz bebeğinin tam olarak dilate izin vermek için yaklaşık 15 dk bekleyin.
- Ürün talimatlarına göre bir tonometre kullanarak her iki gözün IOP'sini ölçün. Tonometreyi fare gözünün yanına getirin. Sondanın ucundan fare korneasına olan mesafeyi yaklaşık 3−4 mm. Tek bir okuma oluşturmak için ölçüm düğmesine 6x basın. Ortalama IOP'yi elde etmek için her gözden üç makine tarafından oluşturulan okuma elde edilir.
- SO enjeksiyonundan 8 hafta sonra hayvanları kurban edin ve tam montaj retina, RGC sayma, optik sinir (ON) yarı ince kesitlerin immünohistokimyasını ve13'tenönce tanımlanan aksonların niceliğini gerçekleştirin.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
Enjeksiyondan kısa bir süre sonra, SO damlacıklarının çok küçük olması nedeniyle stabil oküler hipertansiyon üretmeyen fareleri kolayca tanımlayabiliriz (≤1.5 mm)13. Bu hayvanlar sonraki deneylerin dışında tutulur. Enjeksiyon prosedürlerini takiben, SO enjekte edilen farelerin %80'inden fazlası 1,6 mm'den daha büyük damlacıklarla sonuçlanır. Biz tek bir SO enjeksiyonsonra 8 hafta boyunca haftada bir kez bu fare gözlerinin IOP ölçüldü. SO alan gözün IOP'su yüksek kaldı, genellikle kontralateral kontrol gözünün IOP'unun iki katı, etkili göz bebeği engellemeyi gösterir(Şekil 1). Fare korneasında ödem normalde iyileşme için 2−3 gün süren bir intracameral enjeksiyondan sonra hafif bir diseksiyon mikroskobu altında kontrol edilebilir. Gözbebeği genişlemesi zaman alır ve IOP ölçümü almadan önce gözbebeği genişlemesini beklemek gerekir. Bu nedenle, bir enjeksiyondan sonra IOP'yi çok erken ölçmemeye çalışırız. Aynı nedenle, IOP'yi çok sık ölçmenizi önermiyoruz. Başka bir fare grubuyla SO'yu SO enjeksiyonundan 2 hafta sonra ön odadan dışarı attık ve Korneanın IOP'u ölçmeden önce toparlanmasını sağlamak için bir hafta daha bekledik, bu da IOP'yi normale döndürdü(Şekil 1).
SO enjeksiyonu ile RGC'lere indüklenen oküler hipertansiyonun etkilerini belirlemek için, retina lüstajilerinin periferik bölgelerinde kalan RGC somatasını RBPMS14,15 ve ON yarı ince kesitlerinde kalan aksonlar PPD16'yı SO enjeksiyonundan 8 hafta sonra 8 hafta sonra boyanarak ölçtük. Glokom RGC ölümü ve akson dejenerasyonu SO-indüklenen göz altı gözde dramatik (SOHU)(Şekil 2). Bu konuda daha fazla bilgi tartışma bölümünde verilmiştir.
Şekil 1: SO gözlerinde ve kontralateral kontrol gözlerinde IOP ölçümleri, SO çıkarılması ile veya olmadan. SO = SO enjekte edilen gözler; CL = kontralateral kontrol gözleri. Veriler ± S.E.M, n = 12 anlamına gelir. Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.
Şekil 2: SOHU'da glokom RGC soma ve akson dejenerasyonu. (A) Üst panel, tüm monte retinaların SO enjeksiyonundan 8 hafta sonra RGC'leri (RBPMS+, kırmızı) gösteren periferik bölgeyi göstermektedir. Ölçek çubuğu = 20 μm. Alt panel, SO enjeksiyonundan 8 hafta sonra PPD ile boyanmış ON'un kesitlerinin yarı ince görüntülerini görüntüler. Ölçek çubuğu = 10 μm. (B) Periferik retinada (n = 12) ve AKSonların (n = 10) aksonların kontralateral kontrol (CL) gözlere göre SO enjeksiyonundan 8 hafta sonra kalan RGC'lerin nicel verileri. Veriler ± S.E.M. ****: P < 0.0001; Öğrencinin eşleştirilmiş t testi. RGC = retinaganglion hücre; ON = optik sinir. Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
Burada SO intracameral enjeksiyon ile fare gözü sürekli IOP yükseklik indükleyen basit ama etkili bir prosedür göstermektedir. Bu işlem mikroskop altında mikrodiseksiyon deneyimi olan herkes tarafından hızlı bir şekilde öğrenilebilir. Birincil başarısızlık riski kornea kesisinden SO sızıntısıdır. Ancak, SO kullanmanın avantajlarından biri yağ damlacık görünür ve ölçülebilir olduğu için, biz kolayca enjeksiyondan kısa bir süre sonra istikrarlı oküler hipertansiyon neden ve sonraki deneyler onları dışlamak için çok küçük damlacıklar alınan fareler tespit edebilirsiniz. Biz rutin bir% 80 başarı oranı elde ettik ve farelerin yaklaşık% 20 küçük bir SO damlacık nedeniyle hariç (≤1.5 mm)13. Ancak, beveled ucu ile ön odaya kornea nüfuz önce kornea katmanları içinde nispeten uzun bir tünel (0.3 mm) yapabilirsiniz deneyimli bir cerrah neredeyse dış açıklık çok daha küçük kornea tünelin iç açılış yaparak herhangi bir SO sızıntısı önleyebilirsiniz. Bu nedenle, farelerin hemen hemen tüm 1.8 mm daha büyük bir SO damlacık enjekte edildi. Tünelin uzunluğuna ek olarak, diğer bazı kritik noktalar da vurgulamaya değer. İlk olarak, SO'yu ön haznenin dışına itmemek için enjekte edilen gözde IOP'u düşük tutmak önemlidir. Bir yaygın hata sızıntı kolaylaştırır çok fazla SO enjekte etmektir. Neredeyse, ama tamamen değil, iris yüzeyini kaplar, böylece ön hazneso hacmini sınırlayın. Bu SO damlacıklarının çapı ~2.3−2.4 mm'dir. İkinci olarak, kornea tüneli kesi, kesiye yakın olmak için limbusa mümkün olduğunca yakın yapılır, ancak iris insizye kolayca girebilsin diye insizyona zarar vermez. Üçüncü olarak, enjeksiyon hızı ön odaya SO aşırı taşmasını önlemek için mümkün olduğunca yavaş olmalıdır. Dördüncü olarak, enjeksiyondan sonra üst göz kapağı masajı kornea kesi kapatmak için yardımcı olur ve bazen kornea kesi kapatmak için periferik iris ön syne yardımcı olur, ve bu nedenle yağ sızıntısı önlemek için.
Gözün sadece arka kısmında IOP bir artış var, ama ön odasında değil, Bu modelin benzersiz bir özelliği yapma. Gözbebeği engelleme ön haznesine sulu mizah girişini önler ve bu nedenle sadece arka kısımda IOP'yi artırır. Iris ve büyük göz merceği ile birlikte SO tarafından oluşturulan fiziksel bariyer arka segmentten ön oda kesebilir, hangi sadece arka segmentte IOP yüksekliği sınırlayabilir, sulu malzeme birikir nerede. Fare gözbebeği genişlemeden sonra SO damlacıkından daha büyük olduğunda, ön ve arka bölmeler yeniden bağlanır ve ön bölmede sulu su baskını ile IOP'nin hızlı bir şekilde artmasına izin verilir. Bu nedenle, bir tonometre sadece pupillary blok çıkardıktan sonra artan IOP tespit edebilirsiniz, bu yüzden arka segmentte gerçek IOP şüphesiz hafife alınır. Bu nedenle, bu modele, modelin bu temel özelliğini daha doğru ve yararlı bir şekilde yansıtan, az tespit edilen oküler hipertansiyon modeli (SOHU) adını verdik. Doğrudan arka segmentte IOP ölçmek mümkün olmak en iyisi olacaktır, ama şimdiye kadar mümkün değildir. SOHU modelinin bu eşsiz patogenezinin iki avantajlı özelliği vardır: Birincisi, deneysel gözlerde görme fonksiyonu ve morfolojisinin canlı değerlendirilmesinde izin veren açık oküler elemanlar ve ikincisi, şiddetli glokom nörodejenerasyonu nöroprotektiflerin test edilmesine yarar sağlar.
SO enjeksiyonu geçici olarak kornea ödemi neden olabilir ve biz çok erken veya çok sık IOP ölçümleri yapmamanızı öneririz. SOHU gözlerinde ön hazne veya korneada herhangi bir iltihap tespit etmedik, ancak SO enjeksiyonu alan 100'den fazla farede kornea nevasaskülarizasyonu iki örneğiyle karşılaştık.
SO hem insan hastalarda hem de farelerde göz hipertansiyonuna neden olduğu için, bu kavramsal olarak yeni ve pratik olarak önemli glokom modelinin klinik öncesi uygulamalar için daha uygun olan daha büyük hayvanlar için uyarlanabildiği öne sürülebilir. Bu modelin nöral fonksiyon ve morfolojisi açıklarının karakterizasyonu kesinlikle glokom ile ilgili önemli sorular takip etmek için diğer araştırmacılar yararlanmak için teşvik edecek ve daha geniş, RGC ve ON neden hastalıklar Dejenerasyonu.
Özetle, bu özel ekipman veya tekrar yaralanmalar gerektirmez ve diğer hayvan türleri için geçerli olabilir basit bir hayvan glokom modelidir. İlginçtir, SOHU modelinin IOP yükseklik ön odasından yağ kaldırarak ters olabilir, böylece IOP düşürücü tedaviler ile birlikte nöroprotektif tedavi tarama için yararlıdır.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
Yazarların açıklayacak bir şeyi yok.
Acknowledgments
Bu çalışma NIH'nin YH'ye EY024932, EY023295 ve EY028106 hibeleri ile desteklenmiştir.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| 0.5% proparacaine hydrochloride | Akorn, Somerset | ||
| 10mL syinge | BD | Luer-Lok Tip | |
| 18G needle | BD | with Regular Bevel, Needle Length:25.4 mm | |
| 2,2,2-Tribromoethanol (Avertin) | Fisher Scientific | CAS# 75-80-9 | 50g |
| 32G nano | BD | 320122 | BD Nano Ultra Fine Pen Needle-32G 4mm |
| 33G ophalmology needle | TSK/ VWR | TSK3313/ 10147-200 | |
| 5mL syinge | BD | Luer-Lok Tip | |
| AnaSed Injection (xylazine) | Butler Schein | 100 mg/ml, 50 ml | |
| artificial tears | Alcon Laboratories | 300651431414 | Systane Ultra Lubricant Eye Drops |
| BSS PLUS Irrigating solution | Alcon Laboratories | 65080050 | |
| Dual-Stage Glass Micropipette Puller | NARISHIGE | PC-10 | |
| EZ-7000 Classic System | EZ system | ||
| Isoflurane | VetOne | 502017 | isoflurane, USP, 250ml/bottle |
| IV Administration sets | EXELint/ Fisher | 29081 | |
| KETAMINE HYDROCHLORIDE INJECTION | VEDCO | 50989-996-06 | KETAVED 100mg/ml * 10ml |
| microgrind bevelling machine | NARISHIGE | EG-401 | |
| Miniature EVA Tubing | McMaster-Carr | 1883T4 | 0.05" ID, 0.09" OD, 10 ft. Length |
| silicon oil (SILIKON) | Alcon Laboratories | 8065601185 | 1,000 mPa.s |
| Standard Glass Capillaries | WPI/ Fisher | 1B150-4 | 4 in. (100mm) OD 1.5mm ID 0.84mm |
| TonoLab tonometer | Colonial Medical Supply, Finland | ||
| veterinary antibiotic ointment | Dechra Veterinary | 1223RX | BNP ophthalmic ointment, Vetropolycin |
References
- Chang, E. E., Goldberg, J. L. Glaucoma 2.0: neuroprotection, neuroregeneration, neuroenhancement. Ophthalmology. 119 (5), 979-986 (2012).
- Tham, Y. C., et al. Global prevalence of glaucoma and projections of glaucoma burden through 2040: a systematic review and meta-analysis. Ophthalmology. 121 (11), 2081-2090 (2014).
- Pang, I. H., Clark, A. F. Rodent models for glaucoma retinopathy and optic neuropathy. Journal of Glaucoma. 16 (5), 483-505 (2007).
- Morrison, J. C., Johnson, E., Cepurna, W. O. Rat models for glaucoma research. Progress in Brain Research. 173, 285-301 (2008).
- McKinnon, S. J., Schlamp, C. L., Nickells, R. W. Mouse models of retinal ganglion cell death and glaucoma. Experimental Eye Research. 88 (4), 816-824 (2009).
- Chen, S., Zhang, X. The Rodent Model of Glaucoma and Its Implications. Asia Pacific Journal of Ophthalmology (Philadelphia). 4 (4), 236-241 (2015).
- Sappington, R. M., Carlson, B. J., Crish, S. D., Calkins, D. J. The microbead occlusion model: a paradigm for induced ocular hypertension in rats and mice. Investigative Ophthalmology and Visual Science. 51 (1), 207-216 (2010).
- Chen, H., et al. Optic neuropathy due to microbead-induced elevated intraocular pressure in the mouse. Investigative Ophthalmology and Visual Science. 52 (1), 36-44 (2011).
- Cone, F. E., Gelman, S. E., Son, J. L., Pease, M. E., Quigley, H. A. Differential susceptibility to experimental glaucoma among 3 mouse strains using bead and viscoelastic injection. Experimental Eye Research. 91 (3), 415-424 (2010).
- Samsel, P. A., Kisiswa, L., Erichsen, J. T., Cross, S. D., Morgan, J. E. A novel method for the induction of experimental glaucoma using magnetic microspheres. Investigative Ophthalmology and Visual Science. 52 (3), 1671-1675 (2011).
- Ichhpujani, P., Jindal, A., Jay Katz, L. Silicone oil induced glaucoma: a review. Graefes Archieves for Clinical and Experimental Ophthalmology. 247 (12), 1585-1593 (2009).
- Kornmann, H. L., Gedde, S. J. Glaucoma management after vitreoretinal surgeries. Current Opinion in Ophthalmology. 27 (2), 125-131 (2016).
- Zhang, J., et al. Silicone oil-induced ocular hypertension and glaucomatous neurodegeneration in mouse. Elife. 8, (2019).
- Kwong, J. M., Caprioli, J., Piri, N. RNA binding protein with multiple splicing: a new marker for retinal ganglion cells. Investigative Ophthalmology and Visual Science. 51 (2), 1052-1058 (2010).
- Rodriguez, A. R., de Sevilla Muller, L. P., Brecha, N. C. The RNA binding protein RBPMS is a selective marker of ganglion cells in the mammalian retina. Journal of Comparative Neurology. 522 (6), 1411-1443 (2014).
- Smith, R. S. Systematic evaluation of the mouse eye : anatomy, pathology, and biomethods. , CRC Press. (2002).
