Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Immunology and Infection

ייצור של ברוילרים ללא חיידקים הגדלים במהירות מקו מסחרי ללימודי מיקרוביוטה

Published: June 18, 2020 doi: 10.3791/61148

Summary

כאן אנו מתארים שיטה ליצירת אפרוחים ללא חיידקים מביצים של קו ברוילר מסחרי, Ross PM3. שיטה זו יכולה להיות מותאמת לדור של בעלי חיים ללא חיידקים ממיני עופות אחרים.

Abstract

מחקרים על תרומת המיקרוביוטה של המעיים לפיזיולוגיה של המארח ולתכשירות חיסונית מתאפשרים הודות לזמינותם של מודלים של בעלי חיים נטולי חיידקים, הנחשבים לתקן הזהב. ציפורי קינון הן מודלים אידיאליים לייצור בעלי חיים ללא חיידקים, שכן אין צורך לגדל את קרוביהם בתנאים סטריליים. תרנגולות ללא חיידקים מופקות בעיקר מקווי ניסוי ספציפיים-נטולי פתוגנים (SPF), המייצגים בצורה גרועה קווי עוף מסחריים. השיטה שהוצעה כאן אפשרה ייצור של תרנגולות ללא חיידקים מקו הברוילרים הגדל במהירות רוס PM3, המשמש בדרך כלל את תעשיית העופות. הביצים נאספו במהירות לאחר הטלתן בחוות מגדלי תותחים. הם עברו תהליך טיהור קפדני מהאוסף ועד להקדמה בבידוד בקיעת ביצים סטרילי. האפרוחים בקעו ונשמרו במבודדים סטריליים אלה בתקופה הדרושה כדי לשלוט בעקרותם. הפרוטוקול הנוכחי, שפותח במקור עבור קו קרניים לבנים ניסיוני עם SPF, הותאם לא רק לקו ה-Ross PM3 broiler אלא גם לשליו. לפיכך הוא מייצג הליך חזק וניתן להתאמה בקלות למיני עופות אחרים ולציפורים מקננות בעלות רלוונטיות כלכלית, ביולוגית או אקולוגית.

Introduction

חלה עלייה דרמטית בהתעניינות המדעית והפופולרית בנוגע לתרומתה של המיקרוביוטה של המעיים לבריאות בעלי החיים. המיקרוביוטה, המורכבת מחיידקים, וירוסים, פטריות וארכיאה המאכלסים נישות שונות במעי החיה, מעורבת במישרין או בעקיפין בוויסות של מחלות דלקתיות, זיהומיות ומטבוליות המשפיעות לא רק על מיני יונקים אלא גם על בעלי חיים, כגון עופות1. מספר מודלים של בעלי חיים פותחו כדי לחקור טוב יותר את התרומה של המיקרוביוטה של המעיים לבריאות ולמחלות. לדוגמה, בעלי חיים נטולי חיידקים וגנוטוביוטים מאפשרים לחקור את היעדרם המוחלט של מיקרובים או של מיקרוביוטה ידועה, בהתאמה, על הפיזיופתולוגיה של זיהומים 2,3. עם זאת, יצירה ותחזוקה של בעלי חיים אלה דורשת טכניקות ומתקנים מיוחדים, והעלויות, העבודה והכישורים הנדרשים כדי לתחזק אותם מגבילים את גישתם לחוקרים רבים. ואכן, בעלי חיים ללא חיידקים חייבים להיות מנוטרים באופן קבוע לאיתור זיהום אפשרי באמצעות שילוב של שיטות גידול חיידקים, מיקרוסקופיה, סרולוגיה, מורפולוגיה גסה וטכניקות זיהוי מבוססות ריצוף. נהלים דומים חלים גם על מינים אחרים, כגון בעלי חיים, שבהם בעלי החיים בדרך כלל גדולים יותר ודורשים מתקנים גדולים יותר לצורך הרבייה והתחזוקה שלהם, מה שעלול לעכב, במידה מסוימת, את המחקר על המיקרוביוטה.

עופות, ליתר דיוק תרנגולות, הם אבן הפינה של ייצור בעלי חיים ברחבי העולם, עם אוכלוסיית להקות שעשויה לעלות על 40 מיליארד ציפורים בשנה. זהו המקור החשוב ביותר של חלבון מן החי בעולם (http://www.fao.org/poultry-production-products/en/). יתר על כן, אין טאבו תרבותי או דתי הקשור לגידול או לצריכה של תרנגולות. המיקרוביוטה של המעיים בעופות מעורבת באופן חשוב בגדילה של בעלי חיים, יחס המרת מזון, חסינות, עמידות בפני פתוגנים, בין תהליכים תזונתיים, פיזיולוגיים או פתולוגיים רבים אחרים4. הדור של תרנגולות ללא חיידקים הוא אפוא הכרחי כדי להדגיש את הדיאלוג בין המיקרוביוטה לבין המארחשלה 4. גם אם קהילות מיקרוביאליות מאכלסות את עוףoviduct 5, התוכן של ביצה שהוטלה זה עתה על ידי תרנגולת בריאה נקי ברובו ממיקרואורגניזמים, קליפת הביצה והממברנות בעלות מחסומים מכניים כדי למנוע פלישת מיקרואורגניזמים4. בנוסף, אפרוחים גדלים בקלות בהיעדר קרוביהם, אשר, בניגוד ליונקים, מאפשר ייצור של בעלי חיים ללא חיידקים ללא גידול הורי בתנאים סטריליים.

מתקן הניסוי "זיהום של חיות חווה, מודל וחיות בר" (PFIE, UE-1277, מרכז INRAE Val de Loire, Nouzilly, צרפת, https://doi.org/10.15454/1.5572352821559333e12) הוא חלק מרשת התשתיות הלאומית הצרפתית EMERG'IN (https://www.emergin.fr/). PFIE שולטת בייצור תרנגולות ללא חיידקים כדי לבצע מחקרים ניסיוניים שונים במשך יותר מ -40 שנה 7,8,9,10,11. בעלי חיים אלה הופקו מביצים ספציפיות ללא פתוגנים (SPF) מקו הטלת קרן רגל לבן שגדל ברבייה סגורה מאז שנות ה-70 של המאה ה-20. ציפורים ללא חיידקים, המשמשות בעיקר למחקרים מיקרוביולוגיים 7,8,9, חוות התעוררות מחודשת של עניין עם שאלות כמו תרומת המיקרוביוטה של המעיים להתנהגות13, ניצול מזין14, התפתחות מערכת החיסון15 ופעילות אנדוקרינית. גם אם חלק מהמחקרים פורסמו באמצעות קווי ברוילר16 נטולי חיידקים, מחקרים אלה עדיין אינם מיוצגים כראוי בהשוואה למחקרים המשתמשים בקווי שכבות ניסיוניים. האבולוציה של השאלות המדעיות לקראת ההצלבה בין המיקרוביוטה לבין המארח שלה בבריאות ורווחת העופות הובילה אותנו להתאים את הפרוטוקול ההיסטורי שלנו כדי לייצר ברוילרים נטולי חיידקים של קו Ross PM3, קו העוף הברוילר הנפוץ ביותר בעולם.

Protocol

נהלי הטיפול בבעלי חיים בוצעו בהתאם להנחיות שנקבעו על ידי הדירקטיבה של מועצת הקהילות האירופית (86/609/EEC) ועל ידי התקנות הצרפתיות בנושא ניסויים בבעלי חיים.

1. הכנת מבודד

  1. הכנס את החומרים הדרושים לתוך מבודד קשיח בלחץ חיובי: צינורות 50 מ"ל, 5, 10 ו 25 מ"ל פיפטות פלסטיק, מזון מוקרן, מים אוטוקלאבים ומכלי פלסטיק אטומים סטריליים.
  2. מלאו את מלכודת ההעברה עם תמיסת אמוניום רבעונית של 2%.
  3. לעקר את המבודד שלוש פעמים עם אדי פורמלדהיד באמצעות 60 מ"ל של פורמלין (24% פורמלדהיד) בתוספת 30 גרם אשלגן פרמנגנט למטר מעוקב (m3). הזז את החומרים בתוך המבודד בין כל עיקור כדי להבטיח עיקור של כל משטחי המגע.
  4. הגדר את טמפרטורת המבודד ל -37 מעלות צלזיוס למשך יומיים לפחות לפני החדרת הביצים. הגדר את מד המזמורים ל-65-70% מהלחות היחסית (RH) ביום ההקדמה.

2. איסוף ביצים ודגירה

  1. אספו את הביצים מחוות שנבחרו על בסיס קצב בקיעתן הטוב של התרנגולות המטילות (לפחות 80% בשיא ייצור הביצים) ומצבן הסניטרי הטוב (כלומר, היעדר פתוגנים נפוצים של עופות והיעדר מחלות בתוך הצאן). בחר באופן חזותי ביצים נקיות וללא רבב על ההליכון.
  2. נטרלו מיד את פני הביצה על ידי טבילתם למשך 5 דקות בתמיסת חומצה פראצטית של 1.5% בטמפרטורת החדר.
  3. מעבירים את הביצים למתקן הניסוי באמצעות קופסה עם אדי פורמלדהיד.
  4. אחסנו את הביצים למשך 24 שעות בטמפרטורה של 4 מעלות צלזיוס. חזרו על תהליך הפירוק המתואר בשלב 2.2, והניחו אותם בחממת בקיעה (יום 0) למשך 19 יום.

3. בקיעה

  1. ביום ה-19, אמתו את הפוריות, את הכדאיות (תנועתיות) ואת התפתחות העובר על ידי תפירתם באמצעות נר ביצית קל בתנאים סטריליים. הכניסו רק ביצים שעברו עובר חי לתוך מבודדי הבקיעה הסטרילית.
  2. נטרלו את הביצים שנבחרו על ידי ריסוס תמיסת חומצה פראצטית של 1.5% במשך 30 שניות או עד שכל פני השטח של כל ביצה מכוסים. ביצים ישמרו על קשר עם התרסיס במשך 16 דקות ו -30 שניות במהלך ההעברה למבודדים.
  3. מעבירים את הביצים למבודדים הבוקעים הסטריליים ושוטפים אותן במים סטריליים שעברו דה-מינרליזציה לפני שמניחים אותן בחלל הבקיעה.
    הערה: בעלי חיים בוקעים ומגודלים מבודדים סטריליים. הם מוזנים ב-ad libitum בתזונה מסחרית המעוקרת על ידי הקרנת גמא ומושקים במי ברז אוטוקלביים המסופקים על ידי מתקני מים.

4. ניתוח מצב בקטריולוגי

  1. יום אחד לאחר הבקיעה, קחו דגימת צואה ישירות מפי הטבעת של אפרוחים שונים ואספו אותם בצינור זכוכית מעוקר כדי להפוך דגימה זו למייצגת את כל בעלי החיים בתוך מבודד נתון.
  2. דגימות הצואה הן פחות או יותר נוזליות, מוסיפות שווה ערך של 1 מ"ל של צואה ל -9 מ"ל של ציר thioglycolate עם resazurin. מוסיפים את דגימת הצואה הנותרת ל-9 מ"ל של ציר עירוי לב במוח (BHI) ומדגרים את הצינורות בטמפרטורה של 37 מעלות צלזיוס מבלי לרעוד במשך 18 עד 48 שעות. זה יאפשר צמיחה של מגוון רחב של מינים אירוביים אירוביים, אירוביים פקולטטיביים ואנאירוביים שאינם עמידים.
    הערה: ציר Thioglycolate עם resazurin מיועד לזיהוי של חיידקים אנאירוביים שאינם עמידים, אך הוא גם מאפשר זיהוי של חיידקים אירוביים. מדיום זה תואם את הפרמקופיאה האירופית, האמריקאית והיפנית לבדיקת סטריליות 18,19,20.
  3. חזותית לראות אם כל שינוי במדיית הצמיחה מתרחשת לאחר 18 שעות של דגירה. לאחר 48 שעות, קחו טיפה ממדיית ציר הצואה של BHI, הניחו אותה על מגלשת זכוכית והתבוננו מתחת למיקרוסקופ (הגדלה של פי 40) להיעדר או נוכחות של חיידקים.
  4. אם יש חשד לגבי נוכחותם של חיידקים, קחו דגימה מתרבית BHI וזרעו אותה על צלחות אגר BHI. דגירה בטמפרטורה של 37 מעלות צלזיוס למשך 18 עד 48 שעות.
  5. אם קיימות מושבות, בצע טכניקות בתפוקה גבוהה כגון ספקטרומטריית מסות MALDI-TOF לזיהוי מיקרוביאלי מדויק.
    הערה: לאחר 72 שעות, אם הניתוחים הבקטריולוגיים שליליים, בעלי החיים מוכרזים כנקיים מחיידקים.

Representative Results

שש ריצות של דור אפרוחים נטולי חיידקים נערכו עם ביצי רוס PM3 שהגיעו משתי חוות צרפתיות שונות (טבלה 1). בסך הכל נאספו 853 ביצים ולאחר שני שלבים של פירוק ו-19 ימי דגירה, 86.40% היו בני קיימא. 490 מהביצים הקיימות הללו עברו שלב פירוק שלישי והוכנסו לבידודים שונים של הבקיעה, לשיעור בקיעה ממוצע של 79.80%. נתון זה מייצג שיעור בקיעה של 68.94% בהשוואה למספר הביצים ההתחלתי שנאסף.

עם זאת, תוצאות הבקיעה משתנות באופן משמעותי בהתאם לסדרה שבוצעה: מ-41.67% ל-88.16% מהאפרוחים בני הקיימא בהשוואה למספר הביצים שנאספו. וריאציות אלה נצפו גם בין הפתחים השונים במהלך אותו ניסוי. מכיוון שלא כל המבודדים שימשו לכל הריצות, קשה להחריג השפעה התלויה במבודד. עם זאת, אפקט אצווה זה היה בקורלציה ישירה עם גילן של התרנגולות המטילות (איור 1), שם ביצים שהגיעו מתרנגולות מבוגרות יותר היו פחות בנות קיימא.

שש הריצות בוצעו באמצעות ארבעה מבודדי בקיעה שונים. לאחר בקרה בקטריולוגית, אושר כי בעלי החיים מ-14 מתוך 16 המבודדים היו נקיים מחיידקים. זה מתאים לשיעור הצלחה של 87.5%. שני המבודדים הנותרים היו מזוהמים על ידי חיידק סביבתי אחד ולא פתוגני.

כל בעלי החיים ששימשו לניסויים המדעיים נותרו נקיים מחיידקים עד סוף המחקרים, במשך שלושה שבועות לפחות לאחר הבקיעה.

Figure 1
איור 1: השפעת גיל התרנגולת על קצב הבקיעה הנתון הנוכחי מדגיש את שיעורי הבקיעה שנצפו על סמך גילו של עדר התרנגולות המטיל, שבא לידי ביטוי בשבועות של שכבה. אנא לחץ כאן כדי להציג גרסה גדולה יותר של נתון זה.

ביצים שנאספו D19 ביצים בנות קיימא D19 ביצים בנות קיימא/ביצים שנאספו ביצים שהוכנסו למבודד 1 ביצים שהועתקו למבודד 2 ביצים שהוכנסו למבודד 3 ביצים שהועתקו למבודד 4 סה"כ הביצים המועברות אפרוחים בני קיימא בקעו לתוך מבודד 1 אפרוחים בני קיימא בקעו לתוך מבודד 2 אפרוחים בני קיימא בקעו לתוך מבודד 3 אפרוחים בני קיימא בקעו למבודד 4 סה"כ אפרוחים בוקעים בני קיימא מבודד ביצים בוקעות/מועברות בר קיימא1 מבודד ביצים בוקעות/מועברות בר קיימא2 מבודד ביצים בוקעות/מועברות בר קיימא3 מבודד ביצים בוקעות/מועברות בר קיימא4 ביצים ברות קיימא שבקעו/הועברו ברחבי העולם
ריצה 1 101 93 92.08% 23 24 - - 47 22 23 - - 45 95.65% 95.83% 95.74%
ריצה 2 130 117 90.00% 25 25 25 75 20 24 18 - 62 80.00% 96.00% 72.00% 82.67%
ריצה 3 132 97 73.48% 26 - 26 45 97 14 - 13 28* 27 53.85% 50.00% 62.22% 56.70%
ריצה 4 130 116 89.23% 36 35 - - 71 33 34 - - 67 91.67% 97.14% 94.37%
ריצה 5 180 148 82.22% 30 30 30 30 120 26* 25 17 24 66 86.67% 83.33% 56.67% 80.00% 76.67%
ריצה 6 180 166 92.22% - 40 40 - 80 - 35 35 - 70 86.67% 87.50% 87.50% 87.50%
סך 853 737 86.40% 140 154 121 75 490 89 141 83 24 337 82.14% 91.56% 68.60% 69.33% 79.80%

טבלה 1: תוצאות טכניות של ניסויי הבקיעה השונים. הטבלה הנוכחית מדגישה את התוצאות של 6 סדרות של בקיעה ללא חיידקים שבוצעו: מספר הביציות שנאספו, הכדאיות של העובר ב -19 יום וגוזלים בקעו בר קיימא במבודדים השונים.

Discussion

מספר שיטות ליצירת תרנגולות ללא חיידקים תוארו בעבר 7,21,22. שיטות פשוטות, כמו זו המוצגת כאן, משתמשות בחומרי חיטוי שונים כדי להפחית את עומס החיידקים בפני השטח של הביצה ובמבודדים. חומרי החיטוי הנפוצים ביותר הם כספית כלוריד, אמוניום רבעוני, יודופורם, נתרן היפוכלוריט ותמיסות כלור דו חמצני. התוצאות הן לעתים קרובות משביעות רצון. עם זאת, למרות הנגישות של שיטות אלה, מעטים המבנים שיכולים ליישם את השיטה ולגדל את בעלי החיים בקנה מידה גדול, ובכך להפוך את השימוש בתרנגולות ללא חיידקים לגישה נדירה יחסית, המשמשת רק כדי לענות על שאלות מדעיות ספציפיות מאוד. השיטות, החומרים והציוד המתוארים כאן מאפשרים שיעור בקיעה יעיל ביותר של יצורים ללא נבטים, שנשארים בריאים וסטריליים למשך 3 שבועות לפחות (משך הניסויים המדעיים שאליהם הם יוצרו).

התוצאות מראות כי התאמת הפרוטוקול לייצור אפרוחים ללא חיידקים מביצים שנאספו בחוות עופות מסחריות היא מוצלחת. הניסיון בייצור ביצי SPF מגלה כי יעילות הבקיעה תלויה בעיקר בגיל התרנגולות המטילות ובאיכות הביצים שנאספו. שני הפרמטרים נלקחו בחשבון כאשר נבחרו חוות וביצים נאספו. באותה שיטה, שיעור הבקיעה הממוצע של תרנגולות ללא נבטים הוא הרבה יותר טוב מזה שהושג בייצור האחרון של תרנגולות מינון SPF במתקן שלנו (79% לעומת 35%), מבלי להשפיע על עקרות בעלי החיים (87% לעומת 83%). הבדלים אלה עשויים להיות קשורים לרקע הגנטי של הציפורים (broilers לעומת שכבות) כמו גם לאיכות קליפת הביצה, אשר סביר להניח להיות שברירית יותר בביצים של בעלי החיים SPF, המוחזקים ברבייה סגורה במשך יותר מ -40 שנה. יתר על כן, אנו גם מראים כי הובלה של יותר מ 2 שעות (מן החוות למתקן הניסוי) אינו משפיע על יעילות הבקיעה ואיכות.

אף על פי שתהליך העיקור המשמש לבקיעת מבודדים והפרוטוקול לפירוק ביצים עברו אופטימיזציה, כ-10% מהמבודדים לא היו נקיים מחיידקים. על מנת להבין את מקור הזיהום, חשוב מאוד לבצע בקרת סטריליות שגרתית של מבודדי הבקיעה לפני הכנסת הביצים.

בנוגע למצב הסטריליות של הציפורים, ניסינו ליישם שיטות המאפשרות צמיחה של חיידקים אנאירוביים אירוביים ולא עמידים מדגימות צואה, ובכך להבטיח שאנו מזהים חיידקים חיים בני קיימא. שיטות אלה תואמות את הפרמקופיות הבינלאומיות לבדיקות סטריליות ומייצגות טכניקות מהירות, קלות ומופחתות עלויות לשימוש שגרתי. עם זאת, ניתן ליישם טכניקות ביולוגיה מולקולרית כגון ריצוף גנים של 16S rRNA, אם כי לא נותנות מידע על כדאיות החיידקים, לאישור נוכחותם של חיידקים שאינם ניתנים לעיבוד. ואכן, מחקר שנערך לאחרונה העלה את ההשערה כי חלק מהחיידקים של המיקרוביוטה האימהית אובידוקט מועברים לעובר דרך חלבון הביצית, ובהמשך מהווים את רוב אוכלוסיית חיידקי המעיים העוברית5. יתר על כן, מחקר אחר העלה את ההשערה כי חלק מהמתיישבים המיקרוביאליים שהוכנסו לעוברים מוקדמים עברו בתורשה מתרנגולות אימהיות, והשפע והמגוון המיקרוביאליים של המעיים הושפעו מאוחר יותר מגורמים סביבתיים ומגנטיקה של המארחים במהלך התפתחות23. עם זאת, תוצאות המחקרים האלה מבוססות על ניתוח רצף דנ"א, שבו מספר גדול של חיידקים אלה יכולים להיות מתים או לא ניתנים לשכפול בחלבון הביצה (עמוס מאוד במולקולות אנטי-מיקרוביאליות). תומס ושותפיו16 ביצעו בדיקות סטריליות באמצעות הערכה של חיידקים אירוביים אירוביים וסיפקטיביים הניתנים לעיבוד באמצעות הטלת צואה על צלחות BHI, ובכך הדגישו את היעילות של שיטות בקטריולוגיות סטנדרטיות לבקרת סטריליות ללא חיידקים. יתר על כן, בפרוטוקול המוצע, השתמשנו בניטור גדילה בציר תיוגליקולאט עם רזאורין כדי להיות מסוגלים לזהות את הצמיחה של חיידקים אנאירוביים שאינם עמידים.

הפרוטוקול, שכבר שימש לייצור שליו ותרנגולות ללא נבטים, ניתן להתאמה לייצור בעלי חיים נטולי חיידקים מרוב הציפורים המקננות ומציע נקודות מבט לחקר תרומת המיקרוביוטה לפיזיולוגיה של בעלי חיים אלה. מלבד השימוש במודל זה כדי לחקור את האינטראקציות ההדדיות בין פונדקאי למיקרוביוטה במעי העופות, הוא עשוי להיות שימושי גם למחקר יישומי. לדוגמה, ניתן להשתמש בו כדי להעריך את הבטיחות והיעילות של פרוביוטיקה שמקורה במיקרואורגניזמים של המעיים כדי לשפר את בריאותם ועמידותם של בעלי החיים.

Disclosures

למחברים אין מה לחשוף.

Acknowledgments

המחברים מודים למגדלים ולחברה Boyé accouvage (La Boissière en Gâtine, צרפת) על אספקת ביציות מופרות. מחקר זה נערך בחסות קונסורציום המחקר APR-IA "INTEGRITY" (2017-2019), אשר מומן על ידי מרכז רג'יון ואל דה לואר, צרפת.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
2 mL sterile plastic pipettes Starsted 86.1252.001
50 mL tubes Falcon
BHI agar plates Thermo fisher diagnostic PO1198A
Brain Heart Infusion broth Thermo fisher diagnostic CM1135
Glass tubes with 9 mL BHI broth home made and sterilized by autoclaving
Glass tubes with 9 mL thioglycolate broth with resazurin home made and sterilized by autoclaving
Hatching incubator Fieme MG 576
Incubator Memmert for bacteriological culture, 37 °C
Irradiated feed Safe U8983G10R 40 kG irradiated
Isolators home made. 1 m3 rigid isolator under positive pressure
Microbiological safety cabinet thermon electron corporation model: Hera Safe
Microscope Visiscope series 300 VWR
Pipette aid Drummond
Plastic pipettes
Sterile sealed boxes Tuperware diameter
Sterilized glass tube "sovirel"
Thioglycolate Broth with Resazurin Merck 90404-500G
Water bath Fisher scientific model: polystat 36, used to incubate 10 min at 100 °C the glass tubes with 9 mL thioglycolate broth with resazurin in order to regenerate the medium

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Shang, Y., Kumar, S., Oakley, B., Kim, W. K. Chicken microbiota: importance and detection echnology. Frontiers in Veterinary Science. 23, 5 (2018).
  2. Grover, M., Kashyap, P. C. Germ-free mice as a model to study effect of gut microbiota on host physiology. Neurogastroenterology & Motility. 26 (6), 745-748 (2014).
  3. Umesaki, Y. Use of gnotobiotic mice to identify and characterize key microbes responsible for the development of the intestinal immune system. Proceedings of the Japan Academy, Ser. B, Physical and Biological Sciences. 90 (9), 313-332 (2014).
  4. Carrasco, J. M., Casanova, N. A., Fernández, M. E. Microbiota, gut health and chicken productivity: what is the connection? Miyakawa. Microorganisms. 7 (10), 374 (2019).
  5. Lee, S., et al. Characterization of microbial communities in the chicken oviduct and the origin of chicken embryo gut microbiota. International Journal of Scientific Reports. 9 (1), 6838 (2019).
  6. Hincke, M. T., et al. Dynamics of structural barriers and innate immune components during incubation of the avian egg: critical interplay between autonomous embryonic development and maternal anticipation. Journal of Innate Immunity. 11 (2), 111-124 (2019).
  7. Le Bars, J. Demonstration of a protocol for obtaining germ-free chickens. Annals of Veterinary Research. 7, 383-396 (1976).
  8. Lafont, J. P., et al. Experimental study of some factors limiting 'competitive exclusion' of Salmonella in chickens. Research in Veterinary Science. 34 (1), 16-20 (1983).
  9. Brée, A., Dho, M., Lafont, J. P. Comparative infectivity for axenic and specific-pathogen-free chickens of O2 Escherichia coli strains with or without virulence factors. Avian Diseases. 33 (1), 134-139 (1989).
  10. Dozois, C. M., et al. Bacterial colonization and in vivo expression of F1 (type 1) fimbrial antigens in chickens experimentally infected with pathogenic Escherichia coli. Avian Diseases. 38 (2), 231-239 (1994).
  11. Schouler, C., Taki, A., Chouikha, I., Moulin-Schouleur, M., Gilot, P. A genomic island of an extraintestinal pathogenic Escherichia coli strain enables the metabolism of fructooligosaccharides, which improves intestinal colonization. Journal of Bacteriology. 191 (1), 388-393 (2009).
  12. Porcheron, G., Chanteloup, N., Trotereau, A., Brée, A., Schouler, C. Effect of fructooligosaccharide metabolism on chicken colonization by an extra-intestinal pathogenic Escherichia coli strain. PLoS One. 7 (4), 35475 (2012).
  13. Kraimi, N., et al. Effects of a gut microbiota transfer on emotional reactivity in Japanese quails (Coturnix japonica). of Experimental Biology. 222, (2019).
  14. Stanley, D., et al. Intestinal microbiota associated with differential feed conversion efficiency in chickens. Applied microbiology and biotechnology. 96, 1361-1369 (2012).
  15. Han, Z., et al. Influence of the gut microbiota composition on Campylobacter jejuni colonization in chickens. Infection and Immunity. 85 (11), 0038017 (2017).
  16. Thomas, M., et al. Gut microbial dynamics during conventionalization of germ-free chicken. mSphere. 4 (2), 00035-00119 (2019).
  17. Langhout, D. J., Schutte, J. B., de Jong, J., Sloetjes, H., Verstegen, M. W., Tamminga, S. Effect of viscosity on digestion of nutrients in conventional and germ-free chicks. British Journal of Nutrition. 83 (5), 533-540 (2000).
  18. European Pharmacopoeia. European Pharmacopoeia (Ph. Eur.): Supplement 6.3, Sterility. , reference 01/2009:20601 (2009).
  19. Japanese Pharmacopoeia, Japanese Pharmacopoeia. Japanese Pharmacopoeia (JP): The 4.06 Sterility Test as it appeared in the partial revision of the JP 15th edition. , made official March 31, 2009, by the Ministry of Health, Labour and Welfare Ministerial Notification No. 190 (2009).
  20. United States Pharmacopeia (USP). United States Pharmacopeia (USP): Sterility Tests as presented in Pharmacopeial Forum, Interim Revision Announcement No. 6. 34 (6), December 1, 2008, official on May 1, 2009 (2008).
  21. Harrison, G. F. Production of germ-free chicks: a comparison of the hatchability of eggs sterilized externally by different methods. Laboratory Animals. 3 (1), 51-59 (1969).
  22. Yokota, H., Furuse, M., Okumura, J., Iwao Task, I. A simple method for production and rearing of the germ-free chick. J-STAGE home Nihon Chikusan Gakkaiho. 55 (8), (1984).
  23. Ding, J., et al. Inheritance and establishment of gut microbiota in chickens. Frontiers in Microbiology. 8, 1967 (2017).

Tags

אימונולוגיה וזיהום גיליון 160 עוף ברוילר ללא חיידקים מיקרוביוטה רוס PM3 ביצים
ייצור של ברוילרים ללא חיידקים הגדלים במהירות מקו מסחרי ללימודי מיקרוביוטה
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Guitton, E., Faurie, A., Lavillatte, More

Guitton, E., Faurie, A., Lavillatte, S., Chaumeil, T., Gaboriaud, P., Bussière, F., Laurent, F., Lacroix-Lamandé, S., Guabiraba, R., Schouler, C. Production of Germ-Free Fast-Growing Broilers from a Commercial Line for Microbiota Studies. J. Vis. Exp. (160), e61148, doi:10.3791/61148 (2020).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter