Summary

Imágenes de calcio in vivo exitosas con un microscopio miniaturizado head-mount en la amígdala del ratón que se comporta libremente

Published: August 26, 2020
doi:

Summary

La imagen de calcio microendoscópica in vivo es una herramienta invaluable que permite el monitoreo en tiempo real de las actividades neuronales en animales que se comportan libremente. Sin embargo, aplicar esta técnica a la amígdala ha sido difícil. Este protocolo tiene como objetivo proporcionar una guía útil para atacar con éxito las células de amígdala con un microscopio miniaturizado en ratones.

Abstract

El monitoreo in vivo en tiempo real de las actividades neuronales en animales en movimiento libre es uno de los enfoques clave para vincular la actividad neuronal con el comportamiento. Para ello, se ha desarrollado y aplicado con éxito a muchas estructuras cerebrales1,2,3,4,5,6una técnica de imágenes in vivo que detecta transitorios de calcio en las neuronas utilizando indicadores de calcio codificados genéticamente (GECIs), un microscopio de fluorescencia miniaturizado y una lente de índice refractivo degradado (GRIN). Esta técnica de imágenes es particularmente potente porque permite la toma de imágenes simultáneas crónicas de poblaciones celulares genéticamente definidas durante un período a largo plazo hasta varias semanas. Aunque útil, esta técnica de imagen no se ha aplicado fácilmente a las estructuras cerebrales que se encuentran en lo profundo del cerebro como la amígdala, una estructura cerebral esencial para el procesamiento emocional y la memoria del miedo asociativo7. Hay varios factores que dificultan la aplicación de la técnica de imagen a la amígdala. Por ejemplo, los artefactos de movimiento generalmente ocurren con más frecuencia durante las imágenes realizadas en las regiones cerebrales más profundas porque un microscopio de montaje en la cabeza implantado en las profundidades del cerebro es relativamente inestable. Otro problema es que el ventrículo lateral se coloca cerca de la lente GRIN implantada y su movimiento durante la respiración puede causar artefactos de movimiento altamente irregulares que no se pueden corregir fácilmente, lo que dificulta la formación de una vista de imagen estable. Además, debido a que las células de la amígdala suelen estar silenciosas en un estado de reposo o anestesiado, es difícil encontrar y enfocar las células objetivo que expresan GECI en la amígdala durante el procedimiento de placa base para obtener imágenes posteriores. Este protocolo proporciona una guía útil sobre cómo dirigirse eficientemente a las células que expresan GECI en la amígdala con microscopio miniaturizado de montaje en la cabeza para obtener imágenes de calcio in vivo exitosas en una región cerebral más profunda. Se observa que este protocolo se basa en un sistema particular (por ejemplo, Inscopix) pero no se limita a él.

Introduction

El calcio es un segundo mensajero omnipresente, jugando un papel crucial en casi todas las funciones celulares8. En las neuronas, el disparo potencial de acción y la entrada sináptica causan un cambio rápido de libre intracelular [Ca2+]9,10. Por lo tanto, el seguimiento de los transitorios de calcio proporciona una oportunidad para monitorear la actividad neuronal. Los GECIs son potentes herramientas que permiten monitorear [Ca2+] en poblaciones celulares definidas y compartimentos intracelulares11,12. Entre muchos tipos diferentes de indicadores de calcio a base de proteínas, GCaMP, una sonda Ca2+ basada en una sola molécula GFP13,es la GECI más optimizada y por lo tanto ampliamente utilizada. A través de múltiples rondas de ingeniería, se han desarrollado una serie de variantes de GCaMP12,14,15,16. Utilizamos uno de los GCaMPs recientemente desarrollados, GCaMP7b, en este protocolo16. Los sensores GCaMP han contribuido en gran medida al estudio de las funciones de circuito neural en una serie de organismos modelo como la toma de imágenes de los transitorios Ca2+ durante el desarrollo17,la imagen in vivo en una capa cortical específica18,la medición de la dinámica de circuito en el aprendizaje de tareas motoras19 y la imagen de la actividad del conjunto celular relacionada con la memoria de miedo asociativa en el hipocampo y la amígdala20,21.

La imagen óptica de los GECIs tiene varias ventajas22. La codificación genética permite que los GECIs se expresen de forma estable durante un período de tiempo a largo plazo en un subconjunto específico de células definidas por perfil genético o patrones específicos de conectividad anatómica. Las imágenes ópticas permiten un monitoreo simultáneo crónico in vivo de cientos a miles de neuronas en animales vivos. Se han desarrollado algunos sistemas ópticos de imágenes para imágenes in vivo y análisis de GECIs dentro del cerebro de ratones que se comportan libremente con microscopios de fluorescencia miniaturizados de montaje en la cabeza21,23,24,25. A pesar de que la técnica de imagen óptica in vivo basada en GECIs, la lente GRIN y un microscopio en miniatura de montaje en la cabeza son una poderosa herramienta para estudiar el vínculo entre la actividad y el comportamiento de los circuitos neuronales, aplicar esta tecnología a la amígdala ha sido difícil debido a varios problemas técnicos relacionados con la orientación de la lente GRIN a las células que expresan GECIs en la amígdala sin causar artefactos de movimiento que reducen severamente la calidad de la adquisición de imágenes y la búsqueda de células que expresan GECIs. Este protocolo tiene como objetivo proporcionar una guía útil para los procedimientos quirúrgicos de fijación de placa base e implantación de lentes GRIN que son pasos críticos para obtener imágenes ópticas de calcio in vivo exitosas en la amígdala. Aunque este protocolo se dirige a la amígdala, la mayoría de los procedimientos descritos aquí son comúnmente aplicables a otras regiones cerebrales más profundas. Aunque este protocolo se basa en un sistema en particular (por ejemplo, Inscopix), el mismo propósito puede lograrse fácilmente con otros sistemas alternativos.

Protocol

Todos los procedimientos fueron aprobados por el Comité de Ética Animal del Instituto Avanzado de Ciencia y Tecnología de Corea. Todos los experimentos se realizaron de acuerdo con las directrices del Comité Institucional de Cuidado y Uso de Animales. NOTA: Este protocolo consta de seis pasos principales: cirugía de inyección de virus, cirugía de implante de lente GRIN, validación de implantación de lente GRIN, accesorio de placa base, grabación óptica de señal GCaMP durante una pr…

Representative Results

Validación de la implantación de lentes GRINAntes de conectar crónicamente la placa base al cerebro mediante la cementación, la implantación de la lente GRIN debe ser validada. En animales con implantación exitosa de lentes, tanto las células que expresan GCaMP como los vasos sanguíneos se observaron claramente dentro de un rango de plano focal determinado por la distancia entre la lente objetiva del microscopio y la lente GRIN implantada(Figura 2</stron…

Discussion

Las técnicas de cirugía hábiles son esenciales para lograr imágenes ópticas de calcio in vivo exitosas con microscopía en miniatura de montaje en la cabeza en regiones cerebrales más profundas como la amígdala como la describimos aquí. Por lo tanto, aunque este protocolo proporciona una guía para procesos quirúrgicos optimizados de fijación de placa base e implantación de lentes GRIN, es posible que sean necesarios procesos de optimización adicionales para pasos críticos. Como se menciona en la sección de…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Este trabajo fue apoyado por subvenciones de Samsung Science and Technology Foundation (Número de proyecto SSTF-BA1801-10).

Materials

26G needle BD 302002 Surgery
AAV1-Syn-GCaMP7b-WPRE Addgene 104493-AAV1 Surgery
AAV2/1-CaMKiiα-GFP custom made Surgery
Acrylic-Dental cement (Ortho-jet Acrylic Pink) Lang 1334-pink Surgery & Baseplate Attachment
Air flow manipulator Neurotar NTR000253-04 Baseplate Attachment
Amoxicillin SIGMA A8523-5G Surgery
Baseplate INSCOPIX 1050-002192 Baseplate Attachment
Baseplate cover INSCOPIX 1050-002193 Baseplate Attachment
Behavioral apparatus (chamber) Coulbourn Instrument Testcage Behavior test
Behavioral apparatus (software) Coulbourn Instrument Freeze Frame Behavior test
Carbon cage Neurotar 180mm x 70mm Baseplate Attachment
Carprofen SIGMA PHR1452-1G Surgery
Data processing software INSCOPIX INSCOPIX Data Processing Software Baseplate Attachment & Behavior test
Dexamethasone SIGMA D1756-500MG Surgery
Drill Seyang marathon-4 Surgery
Drill bur ELA US1/2, Shank104 Surgery
Glass needle WPI PG10165-4 Surgery
GRIN lens (INSCOPIX Proview Lens Probe) INSCOPIX 1050-002208 Surgery
Hamilton Syringe Hamilton 84875 Surgery
Head plate Neurotar Model 5 Surgery
Hex-key INSCOPIX 1050-004195 Baseplate Attachment
Laptop computer Samsung NT950XBV Surgery & Baseplate Attachment
Lens holder, Stereotaxic rod (INSCOPIX proview implant kit) INSCOPIX 1050-004223 Surgery
Microscope gripper INSCOPIX 1050-002199 Baseplate Attachment
Microscope, DAQ software, hardware INSCOPIX nVista 3.0 Baseplate Attachment & Behavior test
Mobile homecage Neurotar MHC V5 Baseplate Attachment
Moterized arm Neurostar Customized Surgery
Moterized arm software Neurostar Customized Surgery
NI board National instrument Behavior test
Removable epoxy bond WPI Kwik-Cast Surgery
Resin cement (Super-bond) Sun medical Super bond C&B Surgery
Skull screw Stoelting 51457 Surgery
Stereotaxic electrode holder ASI EH-600 Surgery
Stereotaxic frame Stoelting 51600 Surgery
Stereotaxic manipulator Stoelting 51600 Baseplate Attachment

References

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Cite This Article
Lee, H., Han, J. Successful In vivo Calcium Imaging with a Head-Mount Miniaturized Microscope in the Amygdala of Freely Behaving Mouse. J. Vis. Exp. (162), e61659, doi:10.3791/61659 (2020).

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