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Medicine

Protocollo ad ultrasuoni nervosi per rilevare neuropatie disimmuni

Published: October 7, 2021 doi: 10.3791/62900

Summary

Questo articolo presenta un protocollo per l'ecografia nervosa nelle polineuropatie per aiutare la diagnosi di neuropatie infiammatorie.

Abstract

L'ecografia nervosa è sempre più utilizzata nella diagnosi differenziale della polineuropatia come strumento complementare agli studi di conduzione nervosa. Alterazioni morfologiche dei nervi periferici, come l'aumento dell'area della sezione trasversale (CSA), sono state descritte in varie polineuropatie immuno-mediate. I cambiamenti morfologici più importanti nell'ecografia nervosa sono stati descritti per la malattia dello spettro della polineuropatia demielinizzante infiammatoria cronica (CIDP). La CIDP può essere distinta dalle polineuropatie ereditarie e da altre polineuropatie misurando l'estensione e il modello dei gonfiori nervosi (aumento della CSA). I segni tipici delle neuropatie infiammatorie demielinizzanti sono gonfiori nervosi multifocali con struttura fascicolare disomogenea, mentre l'aumento della CSA nelle neuropatie ereditarie demielinizzanti avviene in modo più generalizzato e omogeneo. In altre neuropatie assonale non infiammatorie, i nervi possono comparire con aumenti normali o lievi di CSA, specialmente nei tipici siti di intrappolamento. Questo articolo presenta i requisiti tecnici per l'ecografia nervosa, una procedura di esame che utilizza un protocollo di esame standardizzato, i valori di riferimento attuali per il CSA e i tipici risultati patologici ecografici nei pazienti con neuropatie infiammatorie.

Introduction

Oltre all'esame clinico, la valutazione di qualsiasi polineuropatia a fibra grande include un esame elettrofisiologico per caratterizzare il coinvolgimento del sistema motorio o sensoriale e differenziare il danno assonale da quello demielinizzante1. Nella polineuropatia assonale, la neuropatia tossica e diabetica sono le cause principali, mentre nelle polineuropatie demielinizzanti, le neuropatie ereditarie o infiammatorie come la CIDP dovrebbero essere considerate 2,3,4. I criteri diagnostici comunemente utilizzati per la CIDP sono i criteri della Federazione europea delle società neurologiche/Società dei nervi periferici (EFNS/PNS) stabiliti nel 2005 e rivisti nel 2010 e nel 20215. Questi definiscono criteri clinici ed elettrofisiologici per diagnosticare la CIDP e descrivono criteri aggiuntivi come la biopsia nervosa per rilevare la demielinizzazione o l'infiammazione. Tuttavia, in alcuni casi, nonostante un accurato lavoro diagnostico, la causa della neuropatia rimane ambigua. In questi casi, l'ecografia nervosa offre un metodo complementare per esaminare i nervi non funzionalmente ma morfologicamente6. Diversi studi hanno dimostrato l'uso dell'ecografia nervosa come strumento aggiuntivo nella diagnosi di CIDP, in modo che i criteri EFNS / PNS rivisti del 2021 abbiano implementato l'ecografia nervosa nella linea guida5. Il vantaggio dell'ecografia nervosa rispetto ad altri metodi di imaging come la neurografia a risonanza magnetica (MRN) è che può essere utilizzata direttamente dai neurologi curanti come strumento da letto del paziente; È relativamente efficiente in termini di costi. Può essere usato ripetutamente, in quanto non è invasivo e non doloroso.

Le caratteristiche tipiche della CIDP osservate nell'ecografia nervosa sono l'aumento dell'area trasversale (CSA)7,8, riscontrato anche nelle polineuropatie ereditarie. Nella CIDP, questo colpisce i singoli segmenti nervosi in modo eterogeneo 7,9.

Sono stati pubblicati vari protocolli di esame 10,11,12,13,14,15 cercando di chiarire i normali valori CSA e determinare le posizioni anatomiche adeguate dell'esame ecografico. Alcune di queste posizioni sono simili nella maggior parte dei protocolli di esame. Tuttavia, non esiste un protocollo ampiamente accettato per standardizzare il processo di esame e semplificare l'interpretazione delle misurazioni.

Questo articolo dimostra l'esame ecografico del nervo utilizzando un protocollo standardizzato per le polineuropatie, presenta vari valori di riferimento per il CSA e mostra i risultati patologici tipici nei pazienti con neuropatie infiammatorie.

Requisiti tecnici per l'ecografia nervosa
L'ecografia neuromuscolare viene eseguita in modalità B (modalità Brightness, immagine bidimensionale con livelli di grigio) utilizzando l'imaging composto del corrispondente dispositivo ecografico 6,16. L'imaging composto consente il controllo elettronico degli elementi piezoelettrici nella sonda sonica (trasduttore) per illuminare la struttura target da diverse angolazioni17. Le onde ultrasoniche vengono riflesse in diverse direzioni a causa della struttura istologica dei nervi periferici. Come risultato del suono proveniente da diverse angolazioni, una parte più significativa dei riflessi altrimenti persi ritorna alla sonda sonora (ricevitore) e può generare immagini. Per gli ultrasuoni neuromuscolari, una sonda ad ultrasuoni ad alta risoluzione con trasduttore lineare a 18 MHz, per i nervi più profondi, viene utilizzata una sonda ad array lineare aggiuntiva a 12 MHz (ad esempio, per visualizzare il nervo tibiale e fibulare nella fossa poplitea) 6,16. I trasduttori con frequenze più basse comportano una riduzione della risoluzione spaziale e laterale in modo che la differenziazione dei confini nervosi dalle strutture circostanti sia meno precisa. Le impostazioni ottimali possono essere mantenute costanti utilizzando un preset per l'imaging neuromuscolare fornito dal produttore. Durante l'esame, la profondità dell'immagine e la posizione di messa a fuoco devono essere adattate alla struttura da esaminare e costantemente adattate alla posizione del nervo. Il guadagno dell'immagine B e il guadagno dipendente dalla profondità possono essere regolati per l'ottimizzazione dell'immagine con luminosità uniforme. I vasi sanguigni sono spesso vicini alle strutture neurali e sono spesso usati come punti di riferimento per effettuare le misurazioni nella stessa posizione. Per rappresentare la loro interazione anatomica e distinguere tra nervi e vasi, è anche necessario visualizzare la velocità e la direzione del flusso utilizzando Doppler pulsato e l'ecografia duplex codificata a colori16,18. La frequenza di ripetizione dell'impulso deve essere adattata alle basse velocità di flusso previste nei vasi sanguigni delle estremità, oppure il Doppler di potenza deve essere selezionato per la codifica a colori16.

I nervi riflettono le onde ultrasoniche in modo diverso da diversi angoli di incidenza in modo che l'immagine ecografica vari in ecogenicità (anisotropia)16,19. L'immagine migliore si ottiene da un angolo ortogrado poiché le onde ultrasoniche sono riflesse più fortemente dai nervi in questo angolo. Per evitare l'anisotropia artificiale o la deformità nervosa, la sonda deve quindi essere tenuta in posizione neutra durante l'esame senza applicare ulteriore pressione perpendicolare ai nervi (Figura 1). L'area della sezione trasversale (CSA) viene misurata all'interno del sottile epineurio iperecogeno (Figura 2) per evitare alterazioni del tessuto epinervale nella misurazione19. Maggiori dettagli sugli ultrasuoni tecnici sono disponibili nei riferimenti 6,16,17,18,19,20,21.

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Protocol

Tutti gli esami per questo lavoro sono stati eseguiti in conformità con le linee guida istituzionali della Ruhr-University Bochum, Germania.

1. Preparati sperimentali

  1. Preparazione del paziente
    1. Verificare i criteri di inclusione del paziente: esaminare pazienti adulti con diagnosi di polineuropatia, sospetti di origine infiammatoria.
    2. Controllare i criteri di esclusione del paziente: non esaminare pazienti con ferite aperte o infezioni nelle regioni da esaminare.
  2. Punti di controllo strumentali
    1. Controllare l'integrità della macchina ad ultrasuoni e di tutti i materiali utilizzati (vedi Tabella dei materiali).
    2. Inserire il nome e i dettagli del paziente nella macchina ad ultrasuoni prima di iniziare l'esame ecografico (a seconda della macchina).
    3. Scegliere una sonda ecografica appropriata (preferita 14-18 MHz) (vedi Tabella dei materiali) e preimpostare per l'ecografia neuromuscolare.
    4. Durante l'intero esame, regolare la profondità e mettere a fuoco per ottenere una qualità dell'immagine ottimale.
    5. Quando possibile, esaminare il corso completo di ciascun nervo in una vista trasversale.
      NOTA: I nervi raccomandati per l'esame sono: mediana, ulnare, nervo radiale, radici cervicali, plesso brachiale e nervo vagale, nonché nervo tibiale, fibulare e surale (Figura 3). L'esame di ciascuno di questi nervi è mostrato nella prossima sezione e nel video. L'intero esame ecografico secondo il seguente protocollo richiederà ~ 30-45 min.

2. Esame ecografico

  1. Inizia a esaminare i nervi del braccio con il paziente seduto in posizione neutra con il braccio supinato su una superficie, ad esempio la gamba.
  2. Posizionare un gel per ultrasuoni sulla sonda del trasduttore, sul polso, sull'avambraccio, sul gomito e sulla parte superiore del braccio.
  3. Per l'esame del nervo mediano, iniziare eseguendo una scansione trasversale a livello del polso.
  4. Muoversi prossimalmente per seguire il decorso anatomico del nervo mediano fino alla parte superiore del braccio.
  5. Misurare il CSA del nervo mediano nei seguenti siti: all'ingresso del tunnel carpale (retinaculum flexorum); all'avambraccio (10-15 cm prossimale al retinaculum flexorum; al gomito (incavo del gomito); alla parte superiore del braccio vicino all'arteria brachiale (al centro della distanza tra l'epicondilo mediale e la fossa ascellare).
  6. Per l'esame del nervo ulnare, iniziare eseguendo una scansione trasversale a livello del polso ulnare al nervo mediano.
  7. Muoversi prossimalmente per seguire il decorso anatomico del nervo ulnare lungo il solco fino alla parte superiore del braccio.
    NOTA: Spostandosi verso la parte superiore del braccio, lasciare che il paziente sollevi il braccio piegato al gomito per esaminare il solco e la parte superiore del braccio.
  8. Misurare il CSA del nervo ulnare nei seguenti siti: all'ingresso del canale di Guyon; all'avambraccio (10-15 cm prossimale al canale di Guyon); al gomito (tra l'epicondilo mediale e l'olecrano); nella parte superiore del braccio (al centro della distanza tra l'epicondilo mediale e la fossa ascellare).
  9. Per esaminare il nervo radiale, lasciare che il paziente tenga il braccio davanti allo stomaco piegato nel gomito e scansionare il nervo radiale direttamente accanto all'omero.
  10. Utilizzare la modalità duplex a colori per evitare confusione con l'arteria e la vena di accompagnamento.
    NOTA: la modalità duplex a colori mostra il flusso sanguigno nell'arteria profunda brachii e potrebbe mostrare un flusso basso nella vena corrispondente, mentre nessun flusso si verifica nel nervo radiale. Inoltre, la vena può essere compressa esercitando una pressione esterna e il nervo non può.
  11. Misurare il CSA del nervo radiale nel seguente sito: nervo radiale nel solco della spirale.
  12. Continua con l'esame del nervo vagale, delle radici del nervo cervicale e del plesso brachiale.
  13. Posizionare il gel ad ultrasuoni al centro del collo.
  14. Per esaminare il nervo vagale, eseguire una scansione trasversale al centro del collo e trovare l'arteria carotide.
    NOTA: Il nervo vagale si trova direttamente accanto all'arteria carotide e alla vena giugulare.
  15. Misurare il CSA del nervo vagale nel seguente sito: alla guaina carotidea a livello della biforcazione carotidea.
  16. Per l'esame delle radici del nervo cervicale, C5, C6, C7 spostano la sonda dorsale e un po 'su e giù.
    NOTA: Le radici del nervo cervicale compaiono tra il tubercolo anteriore e posteriore del processo trasversale. C7 può essere riconosciuto dall'assenza del tubercolo anteriore dal suo processo trasversale, mentre entrambi i tubercoli anteriori e posteriori si trovano con le altre radici nervose cervicali.
  17. Misurare il CSA o il diametro delle radici nervose cervicali nella posizione più prossimale possibile, dove la radice nervosa esce sul processo trasversale: C5; C6; C7.
  18. Per esaminare il plesso brachiale, seguire il decorso anatomico delle radici nervose cervicali distalmente e trovarle eseguire tronchi e corde.
  19. Misurare il CSA del plesso nei seguenti siti: Spazio intrascaleno (tra muscolo scaleno anteriore e mediale); Spazio sopraclavicolare (accanto ad A. subclavia).
  20. Continua con l'esame dei nervi delle gambe.
  21. Lascia che il paziente si sdrai su un lato con le gambe leggermente piegate. Posizionare un gel per ultrasuoni sulla sonda del trasduttore, sulla fossa poplitea, sul perone, sul malleolo e sulla parte inferiore della gamba.
  22. Per l'esame del nervo fibulare, sentire la testa del perone, posizionare il trasduttore direttamente dietro di esso, quindi seguire il corso del nervo fino alla fossa poplitea.
  23. Misurare il CSA del nervo fibulare nei seguenti siti: appena prossimale alla testa fibulare; nella fossa poplitea.
  24. Per esaminare il nervo tibiale nella fossa poplitea, trovare il nervo fibulare e l'arteria poplitea nella fossa poplitea.
    NOTA: Il nervo tibiale può essere trovato appena sopra l'arteria poplitea nella maggior parte dei casi.
  25. Misurare il CSA del nervo tibiale nel seguente sito: nella fossa poplitea.
  26. Per l'esame del nervo tibiale alla caviglia, posizionare la sonda direttamente dietro il malleolo mediale.
    NOTA: Il nervo tibiale può essere trovato proprio accanto all'arteria tibiale posteriore nella maggior parte dei casi.
  27. Misurare il CSA del nervo tibiale nel seguente sito: a livello della caviglia mediale.
  28. Per l'esame del nervo surale, posizionare la sonda sulla caviglia laterale.
    NOTA: Il nervo surale può essere trovato vicino a una vena superficiale nella maggior parte dei casi.
  29. Seguire il decorso anatomico del nervo surale prossimalmente alla parte inferiore della gamba.
  30. Misurare il CSA del nervo surale nel seguente sito: tra la testa laterale e mediale del muscolo gastrocnemio.
  31. Eseguire tutte le misurazioni su entrambi i lati.
  32. Salvare i risultati di tutte le misurazioni (a seconda della macchina ad ultrasuoni) e terminare l'esame.
    NOTA: la Figura 3 fornisce una panoramica di tutti i siti di misurazione per CSA.

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Representative Results

Ogni laboratorio di ultrasuoni dovrebbe stabilire i suoi valori di riferimento CSA raccogliendo dati dalla popolazione locale sana, poiché specifiche macchine ad ultrasuoni ed esaminatori o variabili dipendenti dalla popolazione possono portare a risultati leggermente diversi in ciascun laboratorio. Tuttavia, per indicare quali valori CSA possono essere considerati normali, i dati di due principali gruppi di ecografia nervosa tedesca e una recente meta-analisi di tutti i valori di riferimento pubblicati finora 13,14,15,22,23 sono riassunti nella Tabella 1. I valori di riferimento per i pazienti studiati secondo questo protocollo nel nostro dipartimento sono quelli di Kerasnoudis et al.22 (Tabella 1).

I segni tipici nelle neuropatie infiammatorie demielinizzanti sono gonfiori nervosi multifocali con fasci disomogenei, mentre i gonfiori nervosi nelle neuropatie ereditarie demielinizzanti si verificano in modo più generalizzato e omogeneo12,24. Si presume che il correlato istologico dell'aumento della CSA sia un'infiammazione acuta e una demielinizzazione ripetuta; Tuttavia, questo aspetto resta da indagare7. In altre neuropatie assonale non infiammatorie, i nervi possono apparire normali o leggermente aumentati di dimensioni, specialmente nei tipici siti di intrappolamento25,26,27,28.

Per semplificare l'interpretazione dei risultati, il punteggio ecografico di Bochum aggiustato è suggerito come sistema di punteggio, che aiuta a distinguere le neuropatie infiammatorie croniche come la CIDP dalle neuropatie non infiammatorie.

Il punteggio ecografico di Bochum aggiustato viene calcolato dal numero di siti con CSA significativamente allargato di sei dei siti di misurazione sopra descritti: nervo mediano all'avambraccio, nervo mediano nella parte superiore del braccio, nervo ulnare all'avambraccio, nervo ulnare nella parte superiore del braccio, nervo radiale nella parte superiore del braccio e nervo surale al polpaccio. L'esame di questi sei siti richiederà ~ 15 minuti. Ciascuno di questi sei siti viene valutato con 1 punto se il nervo mostra un allargamento patologico del CSA su uno o entrambi i lati del corpo. Pertanto, il punteggio minimo è 0 punti e il punteggio massimo è di 6 punti. Con questo sistema di punteggio, se vengono assegnati ≥2 punti, la diagnosi di CIDP è possibile con una sensibilità di ~ 53% e una specificità di ~ 83%, anche se un ulteriore danno assonale negli studi di conduzione nervosa risulta in una difficile rilevazione con criteri elettrofisiologici.

Diversi gruppi hanno proposto altri sistemi di punteggio per differenziare tra neuropatie 10,11,18,29,30. Nessuno di questi punteggi è ampiamente utilizzato. Il punteggio ecografico di Bochum aggiustato si basa su pubblicazioni precedenti che descrivono il punteggio ecografico di Bochum10 derivato da quattro siti di misurazione per distinguere la CIDP dalla sindrome di Guillain-Barré e il protocollo ecografico nervoso30 derivato da nove siti di misurazione per differenziare CIDP da MMN, MADSAM e neuropatia vasculitica o paraproteinemica. Questi diversi punteggi dovrebbero essere utilizzati in base alla domanda esatta. Il punteggio ecografico di Bochum aggiustato è stato sviluppato per diagnosticare la CIDP se gli studi di conduzione nervosa mostrano possibili CIDP definite dai criteri elettrofisiologici EFNS/PNS5.

Tuttavia, anche se il punteggio ecografico di Bochum aggiustato utilizza solo sei siti nervosi per il calcolo, tutti gli altri siti nervosi descritti e l'intero decorso di ciascun nervo devono essere esaminati per rilevare lesioni focali31 o escludere l'allargamento omogeneo. In caso di ingrossamento omogeneo del nervo, la neuropatia ereditaria deve essere considerata24. I sistemi di punteggio per l'omogeneità e le alterazioni della struttura fascicolare sono stati descritti in precedenza e possono aiutare a valutare l'omogeneità 8,24,32.

Per le immagini ecografiche di una persona sana, vedere Figura 4; ad esempio, immagini di un paziente CIDP, vedere la Figura 5.

Figure 1
Figura 1: Esame del nervo mediano al polso. Per evitare anisotropia artificiale o deformità nervosa, la sonda deve essere tenuta in posizione neutra durante l'esame senza applicare ulteriore pressione perpendicolare ai nervi. Fare clic qui per visualizzare una versione ingrandita di questa figura.

Figure 2
Figura 2: Misurazione dell'area della sezione trasversale (CSA). L'area della sezione trasversale viene misurata all'interno del sottile epineurio iperecogeno. Fare clic qui per visualizzare una versione ingrandita di questa figura.

Figure 3
Figura 3: Panoramica dei siti di misurazione per CSA. Stelle blu - nervo mediano, stelle verdi - nervo ulnare, stella rossa - nervo radiale, stella rosa - nervo vagale, stelle gialle - radici cervicali e plesso brachiale, stelle bianche - nervo fibulare, stelle viola - nervo tibiale, stella marrone - nervo surale. Fare clic qui per visualizzare una versione ingrandita di questa figura.

Figure 4
Figura 4: Immagini di esempio di una persona sana dei sei siti nervosi utilizzati nel punteggio ecografico di Bochum regolato. A - nervo mediano all'avambraccio, B - nervo mediano nella parte superiore del braccio, C - nervo radiale nella parte superiore del braccio, D - nervo ulnare all'avambraccio, E - nervo ulnare nella parte superiore del braccio, F - nervo surale al polpaccio. Fare clic qui per visualizzare una versione ingrandita di questa figura.

Figure 5
Figura 5: Immagini di esempio di un paziente con CIDP dei sei siti nervosi utilizzati nel punteggio ecografico di Bochum regolato. A - nervo mediano all'avambraccio, B - nervo mediano nella parte superiore del braccio, C - nervo radiale nella parte superiore del braccio, D - nervo ulnare all'avambraccio, E - nervo ulnare nella parte superiore del braccio, F - nervo surale al polpaccio. Fare clic qui per visualizzare una versione ingrandita di questa figura.

Kerasnoudis et al.22 Grimm et al.23 Meta-analisi di
Fisse et al.13-15
Nervo Sito CSA media deviazione standard CSA media CSA media IC al 95%
(mm2) (mm2) (mm2) (mm2)
Nervo mediano Polso 8.43 2.07 10.6 8.3 7.9 - 8.7
Avambraccio 6.6 1.6 7.2 6.4 5.9 - 6.9
Gomito - - 9.2 - -
Braccio superiore 8.4 2.87 9.1 8.3 7.5 - 9.0
Nervo ulnare Guyon loge 5.16 1.03 - 4.1 3.6 - 4.6
Avambraccio 5.46 1.26 5.9 5.2 4.8 - 5.7
Gomito 5.33 1.4 8.7 5.9 5.4 - 6.5
Braccio superiore 6.53 1.82 7 6.6 5.1 - 6.1
Nervo radiale Braccio superiore 3.26 1.52 - 5.1 4.0 - 6.2
Nervo vagale Guaina carotide - - 2.2 2.2 1.5 – 2.9
C5 - - 2.4* 5.6 4.6 – 6.7
C6 - - 3.4* 8.8 7.4 – 10.3
C7 - - - 9.5 8.0 – 10.9
Plesso brachiale Spazio intrascaleno 30.93 10.82 - - -
Spazio sopraclavicolare 46.13 18.27 - - -
Nervo fibulare Testa del perone 7.1 2.3 - 8.4 6.8 – 9.9
Fossa poplitea 8.60 1.77 8.4 7.9 6.6 – 9.2
Nervo tibiale Fossa poplitea 8.43 2.68 23.2 25.9 17.5 – 34.4
Malleolo 6.36 1.45 10.2 10 7.7 – 12.4
Nervo surale Teste del muscolo gastrocnemio 1.82 0.64 2.2** 2.4 1.7 – 3.1
* Grimm et al.23 hanno misurato il diametro, non il CSA per la radice C5 e C6.
** Grimm et al.23 hanno misurato il nervo surale alla caviglia laterale.

Tabella 1: Valori CSA di riferimento per i pazienti. I valori di riferimento proposti si basano sulla pubblicazione di Kerasnoudis et al.22, Grimm et al.23 e su una recente meta-analisi di Fisse et al.13,14,15. I valori di riferimento per i pazienti studiati nel nostro reparto secondo il protocollo qui presentato sono quelli di Kerasnoudis et al.22.

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Discussion

L'ecografia nervosa è un utile strumento diagnostico aggiuntivo nelle polineuropatie. Può fornire informazioni sulle possibili cause della polineuropatia a seconda dell'estensione e del modello di allargamento del nervo. Inoltre, sono state descritte alterazioni della CSA nel decorso longitudinale della malattia dei pazienti con CIDP correlate al decorso clinico della malattia e alla risposta al trattamento33,34,35,36.

Passaggi critici all'interno del protocollo
Per ottenere risultati riproducibili, la metodologia coerente e la standardizzazione degli esami sono essenziali37,38. Ogni esaminatore deve considerare le deviazioni derivanti da diversi dispositivi a ultrasuoni e le differenze locali di dati demografici. Per garantire l'alta qualità e riproducibilità delle misurazioni ecografiche, è necessaria anche una formazione specifica dell'esaminatore 13,14,15,21,39.

Modifiche e risoluzione dei problemi della tecnica
I segni tipici delle neuropatie infiammatorie demielinizzanti sono gonfiori nervosi multifocali con fasci disomogenei33,40. Pertanto, è necessaria la misurazione del CSA di specifici siti nervosi, ma l'intero nervo deve essere scansionato. Inoltre, la valutazione della struttura fascicolare e dell'ecogenicità può aiutare in casi inconcludenti, poiché non solo l'aumento della CSA dell'intero nervo, ma anche i gonfiori intrafascicolari e i nervi ipoecogeni e iperecogeni si trovano nella CIDP. I nervi ipoecogeni sono considerati il risultato di edema acuto, mentre il nervo iperecogeno deriva dal rimodellamento fibroso40,41.

Limiti della tecnica
Ci sono limitazioni anatomiche per l'ecografia nervosa, cioè l'esame delle radici del nervo cervicale può essere difficile o impossibile nei pazienti con obesità e collo corto. Inoltre, l'imaging delle radici nervose prossimali dei nervi degli arti inferiori del plesso lombosacrale non è possibile a causa della limitata profondità di penetrazione dei raggi ultrasonici. Un metodo alternativo, valutando questi nervi, è possibile con MRN42, ma l'ecografia è il metodo più comune grazie alla sua flessibilità spaziale e temporale e all'uso economico43.

Importanza rispetto ai metodi esistenti
L'ecografia nervosa è raccomandata come strumento aggiuntivo e complementare nella diagnosi di polineuropatie per valutare la morfologia nervosa. Gli allenamenti diagnostici standard, compresi gli studi di conduzione nervosa e altri strumenti come l'analisi del liquido cerebrospinale, dovrebbero comunque essere eseguiti.

Applicazioni future della tecnica
Per gli esperti in polineuropatie, l'ecografia nervosa è di interesse per la diagnosi nella routine clinica e in quanto può fornire approfondimenti su possibili aspetti fisiopatologici, cioè rappresentare l'infiammazione. Pertanto, l'ecografia nervosa è un metodo promettente non solo nell'uso clinico ma anche nella ricerca neuromuscolare. Inoltre, con i crescenti progressi nella tecnologia degli ultrasuoni, le future caratteristiche ecografiche come l'elastografia ad onda trasversale o la vascolarizzazione dei nervi periferici possono aggiungere ulteriori aspetti nella valutazione delle polineuropatie.

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Disclosures

Gli autori non dichiarano conflitti di interesse relativi a questo manoscritto.

Acknowledgments

Riconosciamo il sostegno della Ruhr-University Bochum per la nostra ricerca sugli ultrasuoni neuromuscolari.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Affiniti 70 Philips GmbH n/a with preset for neuromuscular ultrasound
L18-5 linear array transducer Philips GmbH n/a
Ultrasound gel C + V Pharma Depot GmbH n/a

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Lehmann, H. C., Wunderlich, G., Fink, G. R., Sommer, C. Diagnosis of peripheral neuropathy. Neurological Research and Practice. 2 (1), 20 (2020).
  2. Sommer, C., et al. Polyneuropathies- etiology, diagnosis, and treatment options. Deutsches Arzteblatt International. 115 (6), 83-90 (2018).
  3. Shahrizaila, N., Lehmann, H. C., Kuwabara, S. Guillain-Barré syndrome. The Lancet. 397 (10280), 1214-1228 (2021).
  4. Lehmann, H. C., Burke, D., Kuwabara, S. Chronic inflammatory demyelinating polyneuropathy: update on diagnosis, immunopathogenesis and treatment. Journal of Neurology, Neurosurgery, and Psychiatry. 90 (9), 981-987 (2019).
  5. den Bergh, P. Y. K. V., et al. European Academy of Neurology/Peripheral Nerve Society guideline on diagnosis and treatment of chronic inflammatory demyelinating polyradiculoneuropathy: Report of a joint Task Force - Second revision. Journal of the Peripheral Nervous System. , 1-27 (2021).
  6. Kramer, M., et al. Nerve ultrasound as helpful tool in polyneuropathies. Diagnostics. 11 (2), 211 (2021).
  7. Grimm, A., et al. A look inside the nerve - Morphology of nerve fascicles in healthy controls and patients with polyneuropathy. Clinical Neurophysiology. 128 (12), 2521-2526 (2017).
  8. Padua, L., et al. Heterogeneity of root and nerve ultrasound pattern in CIDP patients. Clinical Neurophysiology. 125 (1), 160-165 (2014).
  9. Winter, N., et al. Nerve ultrasonography as an additive tool to clinical examination and electrodiagnostics in sporadic mononeuritis - Imaging is the key. Ultraschall in der Medizin - European Journal of Ultrasound. 40 (4), 465-472 (2019).
  10. Kerasnoudis, A., Pitarokoili, K., Gold, R., Yoon, M. -S. Bochum ultrasound score allows distinction of chronic inflammatory from multifocal acquired demyelinating polyneuropathies. Journal of the Neurological Sciences. 348 (1-2), 211-215 (2015).
  11. Grimm, A., Rattay, T. W., Winter, N., Axer, H. Peripheral nerve ultrasound scoring systems: benchmarking and comparative analysis. Journal of Neurology. 264 (2), 1-11 (2016).
  12. Telleman, J. A., Grimm, A., Goedee, S., Visser, L. H., Zaidman, C. M. Nerve ultrasound in polyneuropathies. Muscle & Nerve. 57 (5), 716-728 (2017).
  13. Fisse, A. L., Katsanos, A. H., Gold, R., Pitarokoili, K., Krogias, C. Cross-sectional area reference values for peripheral nerve ultrasound in adults: a systematic review and meta-analysis-Part I: Upper extremity nerves. European Journal of Neurology. 28 (5), 1684-1691 (2021).
  14. Fisse, A. L., Katsanos, A. H., Gold, R., Krogias, C., Pitarokoili, K. Cross-sectional area reference values for peripheral nerve ultrasound in adults: A systematic review and meta-analysis-Part II: Lower extremity nerves. European Journal of Neurology. 28 (7), 2313-2318 (2021).
  15. Fisse, A. L., Katsanos, A. H., Gold, R., Pitarokoili, K., Krogias, C. Cross-sectional area reference values for peripheral nerve ultrasound in adults: A systematic review and meta-analysis-Part III: Cervical nerve roots and vagal nerve. European Journal of Neurology. 28 (7), 2319-2326 (2021).
  16. Carroll, A. S., Simon, N. G. Current and future applications of ultrasound imaging in peripheral nerve disorders. World Journal of Radiology. 12 (6), 101-129 (2020).
  17. Entrekin, R. R., et al. Real-time spatial compound imaging: Application to breast, vascular, and musculoskeletal ultrasound. Seminars in Ultrasound, CT and MRI. 22 (1), 50-64 (2001).
  18. Walker, F. O., et al. Indications for neuromuscular ultrasound: Expert opinion and review of the literature. Clinical Neurophysiology. , 1-67 (2018).
  19. Dengler, R., et al. AANEM - IFCN glossary of terms in neuromuscular electrodiagnostic medicine and ultrasound. Muscle & Nerve. 62 (1), 10-12 (2020).
  20. Mah, J. K., van Alfen, N. Neuromuscular ultrasound: Clinical applications and diagnostic values. Canadian Journal of Neurological Sciences / Journal Canadien des Sciences Neurologiques. 45 (6), 605-619 (2018).
  21. Tawfik, E. A., et al. Guidelines for neuromuscular ultrasound training. Muscle & Nerve. 60 (4), 361-366 (2019).
  22. Kerasnoudis, A., Pitarokoili, K., Behrendt, V., Gold, R., Yoon, M. -S. Cross sectional area reference values for sonography of peripheral nerves and brachial plexus. Clinical Neurophysiology. 124 (9), 1881-1888 (2013).
  23. Grimm, A., Axer, H., Heiling, B., Winter, N. Nerve ultrasound normal values - Readjustment of the ultrasound pattern sum score UPSS. Clinical Neurophysiology. 129 (7), 1403-1409 (2013).
  24. Padua, L., et al. Intra- and internerve cross-sectional area variability: New ultrasound measures. Muscle & Nerve. 45 (5), 730-733 (2012).
  25. Kühn, E., et al. Correlates of polyneuropathy in Parkinson's disease. Annals of Clinical and Translational Neurology. 7 (10), 1898-1907 (2020).
  26. Pitarokoili, K., et al. Facing the diagnostic challenge: Nerve ultrasound in diabetic patients with neuropathic symptoms. Muscle & Nerve. 54 (1), 18-24 (2016).
  27. Pitarokoili, K., et al. High-resolution nerve ultrasound and electrophysiological findings in restless legs syndrome. Journal of Neuroimaging. 28 (5), 506-514 (2018).
  28. Fisse, A. L., et al. New approaches to critical illness polyneuromyopathy: High-resolution neuromuscular ultrasound characteristics and cytokine profiling. Neurocritical Care. 35 (1), 139-152 (2021).
  29. Grimm, A., Décard, B. F., Axer, H., Fuhr, P. The Ultrasound pattern sum score - UPSS. A new method to differentiate acute and subacute neuropathies using ultrasound of the peripheral nerves. Clinical Neurophysiology. 126 (11), 2216-2225 (2015).
  30. Kerasnoudis, A., Pitarokoili, K., Haghikia, A., Gold, R., Yoon, M. -S. Nerve ultrasound protocol in differentiating chronic immune-mediated neuropathies. Muscle & Nerve. 54 (5), 864-871 (2016).
  31. Klauser, A. S., et al. Carpal tunnel syndrome assessment with US: Value of additional cross-sectional area measurements of the median nerve in patients versus healthy volunteers. Radiology. 250 (1), 171-177 (2009).
  32. Grimm, A., et al. Ultrasound pattern sum score, homogeneity score and regional nerve enlargement index for differentiation of demyelinating inflammatory and hereditary neuropathies. Clinical Neurophysiology. 127 (7), 2618-2624 (2016).
  33. Fisse, A. L., et al. Clinical, sonographic, and electrophysiologic longitudinal features of chronic inflammatory demyelinating polyneuropathy. Journal of Neuroimaging. 29 (2), 223-232 (2018).
  34. Fionda, L., et al. Changes of clinical, neurophysiological and nerve ultrasound characteristics in CIDP over time: a 3-year follow-up. Journal of Neurology. 268 (8), 3011-3019 (2021).
  35. Härtig, F., et al. Nerve ultrasound predicts treatment response in chronic inflammatory demyelinating polyradiculoneuropathy-a prospective follow-up. Neurotherapeutics. 15 (2), 439-451 (2018).
  36. Décard, B. F., Pham, M., Grimm, A. Ultrasound and MRI of nerves for monitoring disease activity and treatment effects in chronic dysimmune neuropathies - Current concepts and future directions. Clinical Neurophysiology. 129 (1), 155-167 (2018).
  37. Alshami, A. M., Cairns, C. W., Wylie, B. K., Souvlis, T., Coppieters, M. W. Reliability and size of the measurement error when determining the cross-sectional area of the tibial nerve at the tarsal tunnel with ultrasonography. Ultrasound in Medicine & Biology. 35 (7), 1098-1102 (2009).
  38. Impink, B. G., Gagnon, D., Collinger, J. L., Boninger, M. L. Repeatability of ultrasonographic median nerve measures. Muscle & Nerve. 41 (6), 767-773 (2010).
  39. Garcia-Santibanez, R., Dietz, A. R., Bucelli, R. C., Zaidman, C. M. Nerve ultrasound reliability of upper limbs: Effects of examiner training. Muscle & Nerve. 57 (2), 189-192 (2018).
  40. Gamber, D., et al. High-resolution nerve ultrasound to assess nerve echogenicity, fascicular count, and cross-sectional area using semiautomated analysis. Journal of Neuroimaging. 30 (4), 493-502 (2020).
  41. Fisse, A. L., et al. Nerve echogenicity and intranerve CSA variability in high-resolution nerve ultrasound (HRUS) in chronic inflammatory demyelinating polyneuropathy (CIDP). Journal of Neurology. 266 (2), 468-475 (2019).
  42. van Rosmalen, M. H. J., et al. Quantitative assessment of brachial plexus MRI for the diagnosis of chronic inflammatory neuropathies. Journal of Neurology. 268 (3), 978-988 (2021).
  43. Pitarokoili, K., Schlamann, M., Kerasnoudis, A., Gold, R., Yoon, M. S. Comparison of clinical, electrophysiological, sonographic and MRI features in CIDP. Journal of the Neurological Sciences. 357 (1-2), 198-203 (2015).

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Questo mese su JoVE numero 176
Protocollo ad ultrasuoni nervosi per rilevare neuropatie disimmuni
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Fisse, A. L., Pitarokoili, K., Gold, R. Nerve Ultrasound Protocol to Detect Dysimmune Neuropathies. J. Vis. Exp. (176), e62900, doi:10.3791/62900 (2021).

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