Summary
Plaquing - это обычный метод, используемый для количественной оценки живых вирусов в популяции. Хотя плакуирование часто преподается в различных учебных программах по микробиологии с бактериями и бактериофагами, плакуирование вирусов млекопитающих является более сложным и трудоемким. Этот протокол описывает процедуры, которые надежно функционируют для регулярной работы с вирусами простого герпеса.
Abstract
Существует множество опубликованных протоколов для успокаивания вирусов, включая ссылки в первичной литературе по методологии. Тем не менее, заражение вирусами может быть трудным для выполнения, требуя сосредоточения внимания на его спецификациях и уточнении. Это невероятно сложный метод для новых студентов, главным образом потому, что он требует тщательного внимания к самым мелким деталям. Эта демонстрация заторможенных вирусов простого герпеса должна помочь тем, кто на протяжении многих лет боролся с визуализацией метода, особенно его нюансов. Хотя эта рукопись основана на тех же принципах стандартной методологии упрочнения, она отличается тем, что содержит подробное описание (1) того, как лучше всего обрабатывать клетки-хозяева, чтобы избежать нарушения во время процесса, (2) более полезную вязкую среду, чем агароза, для ограничения диффузии вирионов и (3) простую процедуру фиксации и окрашивания, которая дает надежно воспроизводимые результаты. Кроме того, сопроводительное видео помогает продемонстрировать более тонкие различия в процессе, которые часто упускаются из виду при инструктаже других о проведении анализов бляшек.
Introduction
Начало анализов вирусных бляшек восходит к первым открытиям вирусов в 1890-х годах1. Вирус табачной мозаики сначала был выделен и передан на листьях табака, где отдельные пятна инфекции могли быть распознаны и количественно определены как происходящие от одного живого вирусного образования2, позже идентифицированного как вирион2. Более поздние семенные исследования с бактериями и бактериофагами усовершенствовали методы, используемые для бляшек этих вирусов, включая бактерии в середине фазы роста, последовательное разбавление образцов бактериофагов и верхний агар с последующей визуализацией буквальных отверстий (называемых бляшками) в бактериальном газоне3.
Размещение вирусов животных отставало от захватывающих исследований, проводимых с бактериофагами, главным образом потому, что методы, необходимые для выращивания клеток млекопитающих в культуре, не были разработаны до 1940-х годов. Однако появление растущих мышиных клеток в отсутствие всего организма-хозяина4 породило новую эру в способности культивировать и подсчитывать вирусы. Такая работа была расширена для распространения и количественного определения вируса энцефаломиелита западных лошадей в клетках кур и полиовируса в клетках человека5,6. По мере того, как область культивируемых клеток млекопитающих расширялась, множество различных клеток-хозяев для различных вирусных инфекций дало миру рог изобилия возможностей для изучения всевозможных вирусов7. Это включало распространение и количественную оценку вирусов герпеса человека, особенно вируса простого герпеса-1 (ВПГ-1) и -2 (ВПГ-2), которые вызывают поражения слизистой оболочки8. Важно отметить, что все анализы бляшек зависят от существования живых вирионов, которые могут проникать в клетки-хозяева рецепторно-опосредованным образом в образце9. Несмотря на повсеместное распространение и множество публикаций по выполнению анализов бляшек5,10,11,12,13,14,15,16, эти методы для ВПГ-1/-2 представляют собой смесь как искусства, так и науки; невозможно провести анализ без должного внимания к каждой детали протокола, равно как и нельзя выполнить успешный анализ без критического взгляда на тонкость в процессе. В этой рукописи изображен один из наиболее последовательно воспроизводимых методов анализа Бляшек ВПГ-1/-2 с точными деталями искусства анализа, которые редко обсуждаются.
Этот текущий протокол надежно получает количество живых бляшек (PFU) для ВПГ-1 и -2. Наилучшие результаты получены с использованием клеток Vero (трансформированных эпителиальных клеток почек африканской зеленой обезьяны) при низком пассаже (ниже числа пассажа 155) и обычно выращиваются в альфа-MEM17 с добавлением 10% сыворотки плодного теленка (FCS), L-аланил-L-глутамина и смеси антибиотика / антимикотики18. Клетки Веро стандартно размножаются в этой среде два-три раза в неделю в 1/5 разведения каждый раз.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
Все процедуры с клетками Vero и живыми герпесвирусами были одобрены Институциональным комитетом по биобезопасности Университета Тоусона. Обобщенная схема этих процедур представлена на рисунке 1.
1. Посев клеток Vero
- За день до начала анализа бляшек попробуйте клетки Vero и повторно суспендируйте их в обычной модифицированной среде Dulbecco Eagles Medium (DMEM) и добавьте в соответствии со стандартной методологией клеточной культуры19. Повторное суспендирование трипсинизированных клеток в 10 мл DMEM на колбу Т-75 сливающихся клеток Vero (~107 клеток).
ПРИМЕЧАНИЕ: DMEM используется для анализа бляшек вместо альфа-MEM, потому что он немного замедляет скорость роста клеток и способствует лучшим результатам анализа бляшек. - Подсчитывайте клетки предпочтительным методом (например, стандартным гемоцитометром с исключением Trypan Blue)19.
- Засейте клетки на 4 x 106 клеток / пластину; для ВПГ-2 использовать 6-луночные плиты с 2,5 мл ДМЭМ (с добавками) на скважину; а для ВПГ-1 использовать плиты из 12 скважин с 1,25 мл ДМЭМ (с добавками) на скважину.
ПРИМЕЧАНИЕ: Количество ячеек должно быть постоянным независимо от используемой пластины, хотя размер скважин имеет значение для точности анализа бляшек. Важно, чтобы клетки были равномерно распределены, что может быть наиболее эффективно достигнуто путем перемещения пластины вперед и назад, а не по кругу. - Дайте клеткам расти в течение ночи при 37 °C / 5% CO2 в увлажненном инкубаторе.
ПРИМЕЧАНИЕ: Влажность поддерживается с помощью кастрюли с дистиллированной водой, содержащей альгицид в нижней части инкубатора.
2. Разбавление пробы
- Завершите разбавление образца и добавление вируса к клеткам за один лабораторный сеанс.
ВНИМАНИЕ: ВПГ-1 и -2 являются инфекционными для человека и должны обрабатываться при надлежащем сдерживании биобезопасности (BSL-2). Храните все материалы, которые вступают в контакт с вирусом, отдельно и дезинфицируйте четвертичным агентом в разведении 1/256 (см. Таблицу материалов), йодофор, отбеливатель или сильное ионное моющее средство (например, SDS) перед удалением их из шкафа биобезопасности. - На следующий день после посева клеток Vero последовательно разбавляйте каждый образец вируса, чтобы он был бляширован в 1x PBS; обычно используют 10-кратные разведения для наиболее точного отслеживания.
- Сделайте эти разведения через 10-4 (для низких концентраций вирусов) или через 10-9 (для ожиданий более высоких титров образцов) с не менее 1 мл каждого образца, оставшегося для самого анализа бляшек.
- Храните все вирусные разведения на льду (не дольше 1 ч) до тех пор, пока не будете готовы добавить эти разбавленные образцы вируса в клетки.
3. Добавление вируса в клетки
- Удалите культуральную среду из одной или двух лунок пипеткой.
ПРИМЕЧАНИЕ: Не используйте аспиратор, потому что он удаляет слишком много жидкости из монослоя ячеек и сушит клетки. Одним из важнейших соображений является обеспечение того, чтобы клеточный монослой оставался гидратированным на протяжении всего хода эксперимента. Если клетки высохнут, они смоют пластину на последнем этапе и будут генерировать непригодные для использования данные. Поэтому обрабатывайте только одну или две скважины за раз, чтобы уменьшить эту возможность. - Осторожно добавляют разбавленный образец вируса (100-400 мкл и 50-200 мкл образца вируса используются для 6-луночных и 12-луночных пластин соответственно) по каплям к каждому монослою, добавляя капли вниз по бокам каждой лунки. Повторяйте процесс для каждой одной или двух скважин, пока вся пластина не будет заполнена образцами вируса, которые будут ошлетены.
ПРИМЕЧАНИЕ: Добавление капель в центр скважины может непреднамеренно отслаивать клетки от субстрата. - Аккуратно покачайте всю пластину вручную, чтобы убедиться, что PBS, содержащая вирус, покрывает весь монослой клеток в каждой лунке, затем поместите пластину в инкубатор CO2 при 37 ° C, чтобы позволить вирусу адсорбироваться.
- Каждые 10 мин в течение 1 ч извлекайте пластину из инкубатора, осторожно снова раскачивайте ее, чтобы вирус распространялся более равномерно по каждой лунке, а затем поместите ее обратно в инкубатор.
ПРИМЕЧАНИЕ: Каждый эксперимент будет диктовать количество реплик и то, какие разведения используются; предпочтения читателя диктуют это решение. - Чтобы уменьшить возможность непреднамеренного подсчета неабсорбированного инокулята, извлеките образец вируса из скважин с наконечниками пипетки 1000 мкл и поместите его в стакан для отходов.
ПРИМЕЧАНИЕ: Опять же, эта процедура проводится только с одной или двумя лунками за раз для поддержания гидратации клеточного монослоя. - Поместите 2,5 мл наложения метилцеллюлозы (растворите 5% метилцеллюлозы в 100 мл PBS, автоклав в течение 15 мин при 121 °C и 15 psi в жидком цикле, затем добавьте 375 мл DMEM плюс 25 мл FBS).
- Как только вся пластина содержит накладку, поместите пластину обратно в инкубатор, чтобы обеспечить рост в течение двух дней.
ПРИМЕЧАНИЕ: Если вирусу и клеткам позволить расти в течение трех дней, даже в добавках DMEM плюс, может возникнуть существенная потеря клеток в монослое, тем самым ставя под угрозу окончательные данные. - Дезинфицируйте отработанный стакан, как правило, с добавлением отбеливателя, йодофора или аналогичного вируцида, прежде чем удалить его из шкафа биобезопасности.
4. Окрашивание бляшек
- После двухдневной инкубации удалите наложение метилцеллюлозы пипеткой, снова по одной или двум лункам за раз, и поместите его в стакан для отходов.
- Добавьте ~2 мл 1% кристаллической фиалки (см. Таблицу материалов) в 50% этаноле в каждую лунку, чтобы окрасить бляшки.
ПРИМЕЧАНИЕ: Нет необходимости удалять каждую последнюю каплю наложения. - Инкубируйте пластину со всеми лунками, заполненными пятном, в течение 30 мин при 37 °C. На этом этапе продезинфицируйте стакан для отходов, как указано выше на шаге 3.8.
- Энергично вымойте тарелки водопроводной водой до тех пор, пока сток не станет прозрачным.
ПРИМЕЧАНИЕ: Мягкий поток воды недостаточно силен; требуется полное давление от лабораторной раковины. - На этом этапе убедитесь, что существует примерно 10-кратная разница в количестве бляшек в каждой серии разведения.
- Дайте пластинам высохнуть в течение ночи вверх ногами, после чего отдельные бляшки могут быть подсчитаны.
5. Подсчет бляшек и определение титра вируса
- Независимо от подхода (см. ПРИМЕЧАНИЕ ниже), умножьте количество бляшек на коэффициент разбавления (например, если бы бляшки были подсчитаны в 10-4 лунке, то количество бляшек умножилось бы на 104).
ПРИМЕЧАНИЕ: Хотя подсчет в диапазоне 10-100 бляшек полезен5, подсчет скважин с 30-300 бляшками несколько более надежен и учитывает примерно 1/2 бревенчатых разбавлений вместо полных логарифмических разбавлений. - Разделите это число на объем инокулята (как указано выше на этапе 3.2) и усредните все скважины, которые имеют бляшки в указанном диапазоне, чтобы получить наиболее точный титр ВПГ в исходном образце.
- Выполните расчеты на этапах 5.3.1-5.3.5 с учетом использования условных данных, приведенных в таблице 1.
- Рассмотрим только колодцы с 30-300 бляшками (шаг 5.1). Следовательно, в таблице 1 используйте только столбец 10-5 для реплик 1, 2 и 3.
- Возьмем количество бляшек при данном разведении и умножьте на обратный коэффициент разбавления. Следовательно, 10-5 столбец образца 1 идет от 81 бляшки в 10-5 разведении до 81 бляшки на 105.
- Затем разделите это число на объем (в мл) разбавления вируса, добавленного к клеткам в этой лунке. Предполагая, что данные о ВПГ-1 в таблице 1 взяты из 12-луночной пластины, наиболее подходящим измерением было бы 0,2 мл. Следовательно, расчет из шага 5.3.2 становится 81 x 105 , деленным на 0,2 мл, или 4,0 x 107 PFU/мл HSV-1.
- Повторите этот процесс для всех полезных данных и среднего значения. Следовательно, провести расчет в пунктах 5.3.2-5.3.3 для всех образцов в колонке 10-5 , предполагая, что они произошли из одного и того же образца вируса, и биологические реплики были проведены для получения наиболее точного измерения титра. В случае таблицы 1 в среднем 4,0 x 107, 2,1 x 107 и 2,6 x 107 PFU/мл для получения окончательного среднего титра 2,9 x 107 ± 0,98 x 107 PFU/мл для этого образца.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
В таблице 1 показан эксперимент, который имеет оптимальные результаты. Все 10-кратные разведения следуют за примерно 10-кратным уменьшением количества бляшек. Эти виды данных также можно увидеть на рисунке 2, фактическом анализе бляшек, где счетное количество бляшек упало в диапазоне 10-4 для всех трех реплик. То же самое можно увидеть на рисунке 3, верхнем ряду, где счетное количество бляшек находилось в 10-3 разведении.
Тем не менее, рисунок 3, нижний ряд, показывает совершенно другой результат, когда анализ бляшек не проводится хорошо. Во-первых, очень мало бляшек, видимых из любого разведения; следовательно, данные непригодны для использования. Во-вторых, есть видимые области вокруг вершины, где клетки Vero полностью поднялись из субстрата, что свидетельствует либо о том, что клетки высыхают в процессе, либо о слишком энергичном пипетировании в этой области скважины.
В таблице 2 также показан набор потенциально аберрантных исходов при подсчете бляшек и требуется осторожность на этом пути. Следует отметить, что ни верхний ряд, ни нижний ряд реплик не следуют регулярной 10-кратной разнице в количестве бляшек при переходе от одного разведения к другому; эти данные указывают на ошибку пользователя во время процесса разбавления вируса. Кроме того, маловероятно, что пользователь будет точно насчитывать более 15 000 табличек, поэтому эти данные должны быть поставлены под сомнение. Наконец, можно отметить, что при повторном 1, 10-6 разведении количество бляшек находится в диапазоне 30-300; Тем не менее, учитывая плохой характер остальных данных в этой реплике, маловероятно, что количество 42 бляшек является точным числом. Следовательно, единственные правдоподобные данные в таблице 2 находятся в реплике 2.
На рисунке 4 показаны те же проблемы с высыханием клеток или неправильным обращением во время анализа бляшек. Однако на рисунке 4 критически показан плохой посев клеток Vero; в каждом колодце видны более темные фиолетовые пятна, свидетельствующие о том, что клетки плохо распределены по колодцу и сложены друг на друга кластерами.
Рисунок 1: Общая схема анализа бляшек. Адаптировано из шаблона Biorender «Протокол анализа вирусных бляшек» BioRender.com. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.
Рисунок 2: Анализ бляшек на ВПГ-1 в двенадцатилуночных пластинах. Биологические реплики проводили, как показано на рисунке 1 , на одном образце ВПГ-1. Серийные 10-кратные разведения образца ВПГ-1 (начиная с 10-2 разведения) добавляли к клеткам Веро, инкубировали, затем окрашивали кристаллическим фиолетовым. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.
Рисунок 3: Анализ бляшек на ВПГ-2 в шестилуночных пластинах. Биологические реплики проводили, как показано на рисунке 1 , на одном образце ВПГ-2. Серийные 10-кратные разведения образца ВПГ-2 (начиная с 10-2 разведения) добавляли к клеткам Веро, инкубировали, затем окрашивали кристаллическим фиолетовым. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.
Рисунок 4: Анализ бляшек на ВПГ-1 в двенадцатилуночных пластинах. Биологические реплики проводили, как показано на рисунке 1 , на одном образце ВПГ-1. Серийные 10-кратные разведения образца ВПГ-1 (начиная с 10-2 разведения) добавляли к клеткам Веро, инкубировали, затем окрашивали кристаллическим фиолетовым. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.
| Коэффициент разбавления | ||||
| Повторять | 10-3 см. | 10-4 см. | 10-5 чел. | 10-6 км |
| 1 | 5721 | 635 | 81 | 5 |
| 2 | 4592 | 365 | 42 | 0 |
| 3 | 5,519 | 521 | 53 | 1 |
Таблица 1: Репрезентативная табличка подсчитывается из одного успешного анализа. Проводились серийные разбавления из каждой биологической реплики; репрезентативное количество бляшек (начиная с 10-3 разведения) показано для каждого разведения.
| Коэффициент разбавления | ||||
| Повторять | 10-3 см. | 10-4 см. | 10-5 чел. | 10-6 км |
| 1 | 15225 | 635 | 450 | 42 |
| 2 | 4592 | 365 | 42 | 0 |
| 3 | 5519 | 5400 | 53 | 1 |
Таблица 2: Репрезентативная табличка засчитывается из одного неудачного анализа. Проводились серийные разбавления из каждой биологической реплики; репрезентативное количество бляшек (начиная с 10-3 разведения) показано для каждого разведения.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
Хотя анализы бляшек почти так же стары, как и сама культура клеток млекопитающих, кажется, что каждая лаборатория имеет свой собственный набор протоколов для выполнения этого базового анализа5,6,10,11,12,13,14,15,16,20 . Хотя инструкции в каждой опубликованной версии анализа мемориальной доски немного отличаются, немногие из этих рукописей разъясняют критические нюансы, связанные с получением последовательных результатов.
Следовательно, есть некоторые части этого протокола, которые являются больше искусством, чем наукой. Когда клетки Vero высеваются в лунки для анализа, они должны быть равномерно распределены по всей скважине (рисунок 4). Все этапы, связанные с переносом жидкости (например, этапы 3.1, 3.2, 3.5, 3.6, 4.1 и 4.2), должны выполняться осторожно, чтобы сохранить монослой клеток Vero гидратированным (фиг.3 и фиг.4). Также важно не касаться дна колодца какой-либо пипеткой, иначе ячейки могут соскоблиться, что еще больше поставит под угрозу конечные данные (рисунок 4).
Хотя метилцеллюлоза выгодна в качестве накладного материала для предотвращения диффузии вирионов по всей скважине, могут быть использованы альтернативы. Например, можно использовать микрокристаллическую целлюлозу21,22 или карбоксиметилцеллюлозу21. Несмотря на это, метилцеллюлоза является одной из самых простых и наименее дорогих жидких накладных сред для использования. Можно также использовать другой краситель21 или фиксирующий раствор (например, параформальдегид)21 для окрашивания части протокола (этап 4), но кристаллический фиолетовый в 50% этаноле является самым простым и наименее дорогим среди вариантов.
Хотя проведение этих анализов может быть откровенно простым, они требуют обучения и практики. Стоит использовать образцы, которые не являются незаменимыми для изучения этого метода, чтобы человек освоил технику, когда это наиболее важно.
Однако сами анализы бляшек следует использовать только тогда, когда нужно подсчитать добросовестные живые вирионы. Plaquing является гораздо более старой методологией измерения вирусных частиц5,10 по сравнению с более новыми количественными методами, такими как флуоресцентная микроскопия23, ELISA24, ферментативная активность25,26 или qPCR27. Однако эти последние методы генерируют суррогатные данные, которые предполагают наличие целых вирионов, но могут привести к грубому завышению жизнеспособных частиц, потому что пользователь будет количественно оценивать показатель инфекции, а не реальные вирионы. Флуоресцентная микроскопия измеряет инфекционные вирионы тем, сколько клеток демонстрируют присутствие белка, экспрессируемого вирусом, но не обязательно обнаруживает полные, компетентные к репликации вирионы. ИФА аналогичным образом обнаруживает присутствие вирусных белков, которые могут существовать без полностью инфекционного вириона. Анализ ферментативной активности, хотя и наводит на мысль о неповрежденном вирионе, показывает только то, что присутствует один активный фермент и не отражает истинную заразную природу целого вириона. И qPCR просто количественно определяет копии генома вируса, независимо от того, является ли этот геном дефектным или нет. Единственным методом, сопоставимым с анализом бляшек для количественной оценки живых вирусов, является анализ разбавления конечной точки28, который по-прежнему требует статистической оценки с помощью методов Рида-Мюнха или Спирмана-Кербера29,30,31 для определения концентрации вириона.
Хотя анализы бляшек являются обычным методом, используемым во всей вирусологии, есть особые случаи, когда они не являются количественным анализом выбора. Например, анализы бляшек требуют, чтобы клетки хозяина прикреплялись к субстрату; если лучшая клетка-хозяин для инфекции не является адгезивной, бляшки никогда не образуются32. Некоторые вирусы растут медленнее, чем типичный клеточный цикл их хозяев, и поэтому любые растущие бляшки будут зарастать самими клетками-хозяевами21. Бляшки могут иногда плохо образовываться, просто по характеру цитопатического эффекта, что делает определение добросовестных бляшек ограничением21.
Представленный здесь подход к успокаиванию герпесвирусов не обязательно уникален. Тем не менее, это подробное описание незначительных предостережений, связанных с успешным анализом Бляшек ВПГ, может уменьшить трудности, испытываемые многими пользователями, особенно новичками. Несмотря на это, описанная методология также широко применима к анализам бляшек со многими другими вирусами, включая, но не ограничиваясь, пикорнавирусами33, ортомиксовирусами34, флавирусами35, коронавирусами36 и многими другими системами, в которых требуется количественное количество инфекционных вирусов животных.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.
Acknowledgments
Мы благодарим бесчисленное количество студентов в наших лабораториях (PJD и BJM), которые работали с нами на протяжении многих лет, совершенствуя эти методы. Отдельное спасибо Стэну Персону, под опекой которого эта методика была впервые разработана. Эта работа была частично поддержана Фондом поддержки исследований бакалавриата Университета Тоусона Fisher College of Science and Math и грантом NIGMS Bridges to the Baccalaureate 5R25GM058264. Этот контент является исключительной ответственностью авторов и не обязательно представляет официальную точку зрения Национального института общих медицинских наук Национального института здравоохранения.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| 12-well plates | Corning | 3512 | |
| 6-well plates | Corning | 3516 | |
| Alpha-MEM | Lonza | 12169F | |
| Antibiotic/antimycotic | Gibco | 15240096 | |
| Crystal violet | Alfa Aesar | B2193214 | |
| DMEM | Gibco | 11965092 | |
| Dulbecco's PBS (no Mg++ or Ca++) | Gibco | 14190144 | |
| Fetal calf serum | Millipore-Sigma | TMS-013-B | |
| L-alanyl-L-glutamine (Glutamax) | Gibco | GS07F161BA | |
| Hemacytometer | Thermo Fisher | 02-671-54 | |
| Methylcellulose | Millipore-Sigma | 27-441-0 | |
| Quaternary agent (Lysol I.C.) | Thermo Fisher | NC9645698 | |
| Trypan Blue | Corning | 25900CI | |
| Trypsin | Cytiva | SH30042.01 | |
| Vero cells | ATCC | CCL-81 |
References
- Dimmock, N., Easton, A., Leppard, K. Introduction to Moden Virology. 6th end. , Wiley-Blackwell. (2007).
- Mahy, B., Collier, L. Topley and Wilson's Microbiology and Microbial Infections. 9th edn. 1, Arnold. (1998).
- Anderson, B., et al. Enumeration of bacteriophage particles: Comparative analysis of the traditional plaque assay and real-time QPCR- and nanosight-based assays. Bacteriophage. 1 (2), 86-93 (2011).
- Earle, W. R., et al. Production of malignancy in vitro; IV. The mouse fibroblast cultures and changes seen in the living cells. Journal of the National Cancer Institute. 4 (2), 165-212 (1943).
- Dulbecco, R., Vogt, M. Some problems of animal virology as studied by the plaque technique. Cold Spring Harbor Symposia on Quantitative Biology. 18, 273-279 (1953).
- Enders, J. F., Weller, T. H., Robbins, F. C. Cultivation of the lansing strain of poliomyelitis virus in cultures of various human embryonic tissues. Science. 109 (2822), 85-87 (1949).
- Enders, J. F. Cytopathology of virus infections: particular reference to tissue culture studies. Annual Review of Microbiology. 8, 473-502 (1954).
- Roizman, B., Knipe, D. M., Whitley, R. J. Fields Virology. Knipe, D. M., et al. 1, Wolters Kluwer-Lippincott Williams & Wilkins. 1823-1897 (2013).
- Madavaraju, K., Koganti, R., Volety, I., Yadavalli, T., Shukla, D. Herpes simplex virus cell entry mechanisms: An update. Frontiers in Cellular and Infection Microbiology. 10, 617578 (2020).
- Cooper, P. D. The plaque assay of animal viruses. Advances in Virus Research. 8, 319-378 (1961).
- Farnham, A. E. The formation of microscopic plaques by herpes simplex virus in HeLa cells. Virology. 6 (2), 317-327 (1958).
- Garabedian, G. A., Scott, L. V. Plaque assay for herpes simplex virus in L-929 (Earle) mouse fibroblasts. Proceedings of the Society for Experimental Biology and Medicine. 126 (2), 568-571 (1967).
- Lancz, G. J. Herpes simplex viruses types 1 and 2. Type and strain specific characteristics affecting virus plaque formation. Arch Gesamte Virusforsch. 46 (1-2), 36-43 (1974).
- Muratore, O., Tonoli, E. L., Pesce Schito, A. A short-term plaque assay for antiviral drug research on herpes simplex virus type 2. New Microbiologica. 19 (3), 257-261 (1996).
- Sato, S., Kaneki, H., Shirai, J., Takahashi, K., Kawana, R. Differentiation of herpes simplex virus types 1 and 2 by plaque appearances on semicontinuous rabbit lens epithelial cells in the clinical laboratory. Kansenshogaku Zasshi. 67 (6), 561-573 (1993).
- Yazaki, S., Taniguchi, S., Yoshino, K. Improvement of the plaque assay of herpes simplex virus in HeLa cells. Japanese Jouranl of Microbiology. 10 (3), 133-139 (1966).
- Stanners, C. P., Eliceiri, G. L., Green, H. Two types of ribosome in mouse-hamster hybrid cells. Nature New Biology. 230 (10), 52-54 (1971).
- Giannasca, N. J., Suon, J. S., Evans, A. C., Margulies, B. J. Matrix-based controlled release delivery of acyclovir from poly-(ethylene co-vinyl acetate) rings. Journal of Drug Delivery Science and Technology. 55, 101391 (2020).
- Freshney, R. I. Culture of Animal Cells: A Manual of Basic Technique and Specialized Applications. 7th edn. , John Wiley & Sons, Inc. (2016).
- Dulbecco, R. Production of plaques in monolayer tissue cultures by single particles of an animal virus. Proceedings of the National Academy of Science, USA. 38 (8), 747-752 (1952).
- Baer, A., Kehn-Hall, K. Viral concentration determination through plaque assays: using traditional and novel overlay systems. Journal of Visualized Experiments. (93), e52065 (2014).
- Matrosovich, M., Matrosovich, T., Garten, W., Klenk, H. D. New low-viscosity overlay medium for viral plaque assays. Virology Journal. 3, 63 (2006).
- Culley, S., Towers, G. J., Selwood, D. L., Henriques, R., Grove, J. Infection counter: Automated quantification of in vitro virus replication by fluorescence microscopy. Viruses. 8 (7), 201 (2016).
- Hudu, S. A., et al. Quantitative Hepatitis B e antigen: A better predictor of Hepatitis B virus DNA than quantitative Hepatitis B surface antigen. Clinical Laboratory. 64 (4), 443-449 (2018).
- Baltimore, D. RNA-dependent DNA polymerase in virions of RNA tumour viruses. Nature. 226 (5252), 1209-1211 (1970).
- Scolnick, E. M., Aaronson, S. A., Todaro, G. J., Parks, W. P. RNA dependent DNA polymerase activity in mammalian cells. Nature. 229 (5283), 318-321 (1971).
- Strick, L. B., Wald, A. Diagnostics for herpes simplex virus: is PCR the new gold standard. Molecular Diagnosis and Therapy. 10 (1), 17-28 (2006).
- Ramakrishnan, M. A. Determination of 50% endpoint titer using a simple formula. World Jouranl of Virology. 5 (2), 85-86 (2016).
- Kärber, G. Beitrag zue kollektiven Behandlung pharmakologischer pharmakologischer Reihenversuche. Archiv for Experimentelle Pathologie und Pharmakologie. 162 (4), 480-487 (1931).
- Reed, L. J., Muench, H. A simple method of estimating fifty percent endpoints. American Journal of Hygiene. 27 (3), 493-497 (1938).
- Spearman, C. The Method of 'Right and Wrong Cases' (Constant Stimuli) without Gauss's formula. British Journal of Psychology. 2 (3), 227-242 (1908).
- Ryu, W. -S. Molecular Virology of Human Pathogenic Viruses. 1st edn. , Academic Press. (2017).
- Burrill, C. P., Strings, V. R., Andino, R. Poliovirus: generation, quantification, propagation, purification, and storage. Current Protocols in Microbiology. , Chapter 15 Unit 15H 11 (2013).
- Karakus, U., Crameri, M., Lanz, C., Yanguez, E. Propagation and titration of influenza viruses. Methods in Molecular Biology. 1836, 59-88 (2018).
- Baz, M. Zika virus isolation, purification, and titration. Methods in Molecular Biology. 2142, 9-22 (2020).
- Coleman, C. M., Frieman, M. B. Growth and quantification of MERS-CoV infection. Current Protocols in Microbiology. 37 (1), 1-9 (2015).
