Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
JoVE Journal Medicine
Click here for the English version

Medicine

שיטה פשוטה שונה להשראת אוטם שריר הלב בעכברים

Published: December 3, 2021 doi: 10.3791/63042
Automatic Translation
*1,2, *1,2, *2, 1, 1, 1,2
1Department of Cardiology, The First Affiliated Hospital of Bengbu Medical College, 2Department of Cardiology, Ren Ji Hospital, School of Medicine, Shanghai Jiao Tong University
* These authors contributed equally

Summary

תחת הרדמה מספקת, לב העכבר הוחצן דרך החלל הבין-קוסטלי, ואוטם שריר הלב נגרם בהצלחה על ידי קשירת העורק היורד הקדמי השמאלי (LAD) באמצעות חומרים הזמינים ברוב המעבדות.

Abstract

אוטם שריר הלב (MI) מייצג את אחד הגורמים המובילים למוות. מודלים של MI נמצאים בשימוש נרחב לחקר הפתומנגנונים של שיפוץ פוסט-MI והערכה של טיפולים חדשניים. שיטות שונות (למשל, טיפול באיזופרוטרנול, קריופציעה, קשירת עורקים כליליים וכו ') שימשו להשראת MI. בהשוואה לטיפול באיזופרוטרנול והקפאה, קשירת עורקים כליליים עשויה לשקף טוב יותר את התגובה האיסכמית ואת העיצוב מחדש הכרוני לאחר MI. עם זאת, שיטות מסורתיות לקשירה כלילית בעכברים מאתגרות מבחינה טכנית. המחקר הנוכחי מתאר תהליך פשוט ויעיל להשראת MI בעכברים עם חומרים זמינים. עור החזה של העכבר נחתך בהרדמה יציבה. הלב הוחצן מיד דרך החלל הבין-קוסטלי לאחר הפרדה בוטה של החזה הגדול והפקטורליס מינור. הענף היורד הקדמי השמאלי (LAD) היה קשור בתפר 6-0 3 מ"מ ממקורו. לאחר קשירת LAD, צביעה עם 2,3,5-Triphenyltetrazolium כלוריד (TTC) הצביעה על השראת MI מוצלחת ושינויים זמניים בגודל הצלקת שלאחר MI. בינתיים, תוצאות ניתוח ההישרדות הראו תמותה גלויה תוך 7 ימים לאחר MI, בעיקר בגלל קרע לבבי. יתר על כן, הערכה אקוקרדיוגרפית לאחר MI הדגימה השראות מוצלחות של תפקוד לקוי של התכווצות ועיצוב מחדש של חדרים. לאחר השליטה, מודל MI ניתן להקים בעכברים בתוך 2-3 דקות עם חומרים זמינים.

Introduction

אוטם שריר הלב (MI) מייצג את אחד הגורמים המשמעותיים למוות ונכות ברחבי העולם 1,2,3,4,5. למרות reperfusion בזמן, יש כיום מחסור של טיפולים יעילים לטיפול remodeling לב לאחר MI. בהתאמה, נעשו מאמצים ניכרים לחקירה מכניסטית ולניצול טיפולי עבור MI 6,7,8. יש לציין כי הקמת מודלים של אמ"ן היא תנאי מוקדם לעמידה ביעדים אלה.

מספר שיטות (למשל, טיפול באיזופרוטרנול, קריופציעה, קשירת עורקים כליליים וכו ') הוצעו כדי לגרום למודלים של MI בבעלי חיים קטנים. טיפול באיזופרוטרנול הוא שיטה פשוטה להשראת MI, אך הוא אינו יכול לגרום לאוטם של אזור היעד9. Cryoinjury מוביל לנמק שריר הלב באמצעות יצירת גבישי קרח ושיבוש של קרום התא במקום איסכמיה ישירה10. לעומת זאת, קשירת עורקים כליליים מאפשרת שליטה מדויקת באתר החסימה ובהיקף אזור האוטם ומשחזרת נאמנה את תגובת השיפוץ לאחר אוטם11,12. קשירת עורקים כליליים מבוצעת בדרך כלל לאחר אינטובציה, אוורור מכני ותורקוטומיה, שהיא מאתגרת מבחינה טכנית13,14. מספר פרוטוקולים ששונו לקשירת עורקים כליליים (למשל, ללא אוורור) דווחו והעצימו את השראת MI, אך הדגמות חזותיות מפורטות חסרות15,16,17. סוגיות אלה מציבות חסם פיננסי וטכני משמעותי בפני קבוצות המעוניינות לעסוק במחקר באמצעות מודלים של אמ"ן. דו"ח זה מציג גישה להשראת MI בעכברים. השיטה הנוכחית קלה, חוסכת זמן, ומשתמשת בכלים כירורגיים ובציוד שניתן למצוא ברוב המעבדות.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

הניסויים הכוללים עבודה בבעלי חיים מבוצעים עם כל האישורים הדרושים מוועדת האתיקה לרווחת בעלי חיים במעבדה של בית החולים רנג'י, אוניברסיטת ג'יאו טונג בשנחאי, בית הספר לרפואה (R52021-0506). במחקר נעשה שימוש בעכברי C57BL/6J נקבות וזכרים בגילאי 8-10 שבועות.

1. הכנת ציוד הרדמה פשוט (אופציונלי)

הערה: זוהי התקנה אופציונלית לפני הניתוח וניתן להחליפה בהרדמה טיטראטית כנזכר בסעיף 2. יש להתייעץ עם ועדת האתיקה המוסדית של בעלי חיים ועם הווטרינרים לפני התאמת מערך זה בנוהלי בעלי חיים.

  1. קח צינור צנטריפוגה 15 מ"ל, ולעשות חתך בניצב לציר הארוך של הצינור כ 3 ס"מ מהפתח.
    הערה: ודא שהחתך גדול ממחצית ההיקף המעגלי של לומן הצינור, כך שניתן יהיה להחדיר את השסתום בהצלחה.
  2. קידוח חורים (קוטר, 2 מ"מ) בדופן צינור הצנטריפוגה בין החתך לפתח הצינור.
  3. חותכים חתיכה בגודל מתאים של השסתום מיריעת פלסטיק ומכניסים את השסתום לחתך בדופן הצינור.
    הערה: ניתן להשתמש בשסתום כדי לשלוט בקצב השחרור של איזופלורן על ידי שינוי עומק ההחדרה.
  4. בתוך מכסה אדים, חתכו את תחתית הצינור וחברו אותו לאספקת החמצן. מניחים כדור צמר גפן קרוב לקצה התחתון של הצינור, מוסיפים עומס 0.5 מ"ל איזופלורן (כפי שהושג, ראו טבלת חומרים) על כדור הצמר גפן, וסוגרים את השסתום.
  5. בדוק את יעילות ההרדמה על ידי מיסוך העכברים עם צינורות שהוכנו כמתואר לעיל. עקוב אחר קצב הנשימה ועומק ההרדמה על ידי תגובת צביטת הבוהן.
    הערה: קצב נשימה נמוך מפי 10/10 שניות מצביע על הרדמת יתר, ויש להתאים את עומק החדרת המסתם. עבור כל ההליכים הכרוכים בהרדמה, יש להשתמש במסנן גז מלא ביריעות פחם פעיל (איור 1A-i), ולבצע ניתוח בתוך מכסה מנוע.

2. הכנה אופרטיבית והרדמה

  1. הכינו ועיקרו את כל המכשירים הדרושים ביום הניתוח, כולל זוג מלקחיים, המוסטט מיקרו-יתוש, זוג מספריים כירורגיים, שני זוגות מחזיקי מחט, תפר כירורגי משי 4-0, תפר כירורגי משי 6-0, מסנן גז ומקור אור (ראו טבלת חומרים) (איור 1A).
  2. שימו מסכה כירורגית וכפפות סטריליות.
  3. החל את קרם depilatory על תיבת העכבר ולחכות 1 דקה. נגבו בעדינות את קרם ההידור והשיער עם גזה רטובה.
  4. החזק את העכבר עם היד הדומיננטית לאחר depilation. יש להשרות הרדמה באמצעות שאיפת איזופלורן מאדה (4%) עם אספקת חמצן (1L/min) ולשמור על 2-3% איזופלורן.
  5. יש לאשר הרדמה נאותה על ידי חוסר תגובה של צביטת בוהן.
  6. יש למרוח קרם עיניים סטרילי על שתי העיניים למניעת יובש בקרנית.
  7. אבטחו את העכברים על משטח ניתוח במצב שכיבה. יש למרוח מקלוני פובידון-יוד (ראו טבלת חומרים) על החזה שלוש פעמים ולכסות את החזה המחוטא במקלון סטרילי.

3. אינדוקציה של אוטם שריר הלב

  1. החליפו את הכפפות המזוהמות כדי להבטיח סטריליות.
  2. יש לחתוך עור בקוטר 0.5 ס"מ לאורך הקו המחבר בין הקסיפואיד לבית השחי לאחר בלוק מקומי עם לידוקאין.
  3. הפרידו בבוטות את שרירי החזה והחזה המינוריים באמצעות מלקחיים והמוסטאט מיקרו-יתוש כדי לחשוף את החלל הבין-קוסטלי הרביעי.
  4. פתח את החלל הבין-קוסטלי הרביעי באמצעות המוסטט מיקרו-יתוש.
  5. להחצין את הלב על ידי דחיפת הלב לכיוון החלל הבין-קוסטלי הרביעי עם האצבע המורה של יד שמאל.
  6. לאבטח את הלב ביד שמאל, ולקשור את הענף היורד הקדמי השמאלי עם תפר 6-0 3 מ"מ ממקורו.
  7. החזירו את הלב לחלל בית החזה במהירות.
    הערה: זה בטוח להחצין את הלב במשך פחות מ -30 שניות.
  8. יש לפנות את האוויר החוצה מחלל בית החזה על ידי לחיצה עדינה על חלל החזה באופן ידני.
  9. סוגרים את שכבת השריר מעל הצלעות בתפר משי 6-0.
  10. סגרו את העור בתפר משי 4-0.
  11. הניחו את העכברים על פד (37°C) מיד לאחר הניתוח.
  12. הזריקו בופרנורפין (0.05-0.1 מ"ג/ק"ג) תת עורית כל 4-6 שעות כדי להפחית את הכאב שלאחר הניתוח למשך עד 72 שעות.
  13. החזירו את העכברים המנותחים לכלובים כאשר החלימו לחלוטין.
    הערה: העכברים יחלימו לחלוטין תוך 3-5 דקות לאחר הניתוח.
  14. בזהירות לפקח על העכברים ולספק מזון רטוב עד 7 ימים.

4. קצירת הרקמות

  1. להקריב את העכברים בנקודות זמן שונות לאחר הקמת MI על ידי נקע צוואר הרחם.
  2. אבטחו את העכברים שהוקרבו על משטח הניתוח במצב שכיבה.
  3. בצע חתך גחוני (~ 3-4 ס"מ) בבטן העליונה. חותכים את הצלעות משני צידי חלל בית החזה, ומסירים את הסרעפת.
  4. לנקב את הלב עם 10 מ"ל מלוחים חוצצים פוספט קר (1x PBS, 4 ° C) באמצעות הזרקה תוך חדרית.
  5. לאסוף את הלב על ידי חיתוך שורש אבי העורקים ומיד לאחסן את הלב ב -80 ° C.
    הערה: על פי ניסיון המחברים, ניתן לבצע צביעת TTC תוך שבועיים מהאחסון.
  6. להכתים את הלב עם 2,3,5-Triphenyltetrazolium כלוריד (TTC).
    1. פורסים את הלב הקפוא למקטעים בעובי 1 מ"מ על קרח באמצעות סכיני גילוח.
    2. יש לדגור על פרוסות הלב המוכנות בתמיסת TTC 1% (מומסת ב-1x PBS) בטמפרטורה של 37°C למשך 10-15 דקות.
      הערה: לאחר דגירה של 15 דקות, השליכו את תמיסת TTC וטבלו את פרוסות הלב המוכתמות לתוך PBS אחד.
  7. צלמו את הפרוסות באמצעות מצלמה דיגיטלית.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

פרוטוקול הניסוי וחלק מהשלבים הקריטיים מוצגים באיור 1. ציוד ההרדמה הפשוט גרם להרדמה. כפי שניתן לראות באיור 2A, ההרדמה המושרה הייתה יציבה, כפי שמשתקף מקצב הנשימה הסדיר (נע בין 90 ל-107 נשימות לדקה בעכברים שנבדקו). לאחר קשירת עורקים כליליים, ניתוח צביעת TTC הצביע על השראת אוטם שריר הלב מוצלחת ושינויים זמניים בגודל הצלקת שלאחר MI (איור 2B). בינתיים, תוצאות ניתוח הישרדות הראו תמותה גלויה בתוך 7 ימים לאחר MI בעכברים זכרים ונקבות C57BL/6J (איור 2C,D). קרע חדרי (56% בעכברים זכרים; 40% בעכברים נקבות) היה סיבה שכיחה למוות לאחר MI. יתר על כן, הערכה אקוקרדיוגרפית לאחר MI הדגימה השראות מוצלחות של תפקוד לקוי של התכווצות ועיצוב מחדש של החדרים (איור 2E,F).

Figure 1
איור 1: חומרים ושלבים קריטיים בשיטות המותאמות להשראת MI . (A) מכשירים וחומרים כירורגיים הדרושים לפרוטוקול זה. (א) תפר משי 4-0. (ב) תפר משי 6-0. (ג) מלקחיים. (ד) מספריים. (ה-ו) מחזיקי מחט. (ז) המוסטט מיקרו-יתוש. (ח) מקור אור. (i) מסנן גז. (B) תמונות מייצגות המציגות שלבים מרכזיים להשראת MI בעכברים. (א) העכבר אובטח לאחר ההרדמה, ופובידון-יוד הוחל על אתר הניתוח. (ב) אתר הניתוח עטוף. (ג) חתך של 0.5 ס"מ באתר הניתוח לאחר חסימה מקומית עם לידוקאין. (ד) צלעות חשופות. החץ מציין את הצלעות. (ה) ניתח את שרירי החזה והחזה המינוריים כדי לחשוף את החלל הבין-קוסטלי הרביעי. (ו) לב חיצוני. (ז-ח) LAD קשור עם תפר משי 6-0. החץ מציין LAD. (i) הלב מוחזר לחלל החזה. (י) האוויר פונה מחלל בית החזה. (k) שכבת השריר נסגרה מעל הצלעות בתפר משי 6-0 והעור נסגר בתפרי משי 4-0. אנא לחץ כאן כדי להציג גרסה גדולה יותר של איור זה.

Figure 2
איור 2: שינויים היסטולוגיים ותפקודיים לאחר קשירת עורקים כליליים. (A) קצב נשימה בעכברים שהורדמו על ידי ציוד הרדמה פשוט (n=10). (B ) תוצאות צביעת TTC של פרוסות לב (4 פרוסות מכל לב) נאספו בנקודות זמן שונות לאחר MI. האזור הלבן הצביע על אזור אוטם, והאזור האדום חשף שריר לב בר קיימא. (C) עקומת קפלן-מאייר מראה את שיעור התמותה לאחר MI בעכברים זכרים (n=20 לקבוצה). (D) עקומת קפלן-מאייר מראה את שיעור התמותה לאחר MI בנקבות עכברים (n=20 לקבוצה). (E) תמונות מייצגות של ניתוח אקו לב בנקודות זמן שונות לאחר MI (דמה, 3 ימים, 7 ימים, 21 ימים ו-28 ימים לאחר MI). (F) הניתוח הכמותי של ערכי מקטע פליטת חדר שמאל (LVEF), קיצור שבר חדר שמאל (LVFS), קוטר סיסטולי קצה חדר שמאלי (LVsD) וממד דיאסטולי קצה חדר שמאל (LVdD) בקרב הקבוצות שצוינו (n=5 לכל קבוצה). **p<0.01 או ***p<0.001 לעומת שאם; ##p<0.01 או ###p<0.001 לעומת 3 ימים לאחר MI. ניתוח חד-כיווני של שונות עם מבחן Tukey HSD (Honestly Significant Difference) פוסטהוק בוצע לצורך ניתוח סטטיסטי. אנא לחץ כאן כדי להציג גרסה גדולה יותר של איור זה.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

הדו"ח הנוכחי הדגים פרוטוקול קל להשראת MI בעכברים עם חומרים זמינים, אשר שונה משיטה שדווחה על ידי גאו16. מודלים של Murine MI הם הכרחיים לחקירה מכניסטית וסינון תרופות עבור תפקוד לקוי לאחר MI ושיפוץ12. בין הטכניקות הקיימות להשראת MI, קשירת עורקים כליליים מייצגת את הנפוצה ביותר. קשירת עורקים כליליים משחזרת נאמנה את אופי האיסכמיה של אוטם שריר הלב ומובילה לתגובת ריפוי ושיפוץ צלקת בדומה לתרחיש הקליני18,19. עם זאת, הפרוטוקול המקובל לקשירת עורקים כליליים כולל אינטובציה, אוורור ופתיחה רחבה של בית החזה, דבר מאתגר מבחינה טכנית וגוזל זמן. במהלך השנים האחרונות, פרוטוקולים שונים לקשירת עורקים כליליים דווחו והעצימו את הקמת MI במידה מסוימת 15,16,17. המחקר הנוכחי הציג פרוטוקול פשוט ויעיל באמצעות כלים וציוד כירורגי שניתן למצוא ברוב המעבדות.

שלבים קריטיים ופתרון בעיות
לקבלת ביצועים אופטימליים בתרגול שיטה זו, ראוי לציין מספר שלבים מרכזיים. כדי להחצין את הלב, חלל החזה לא צריך להיות סחוט בעוצמה, אשר ישפיע לרעה על זרימת הדם הכלילי לטשטש את העורק הכלילי, מה שמוביל את הבלתי נראה של העורק הכלילי וכישלון של קשירת LAD. יתר על כן, זה עלול לגרום לפגיעה ריאתית חמורה. ברוב המקרים, דחיפה עדינה לצד ימין של קיר החזה תצליח להחצין את הלב דרך החלל הבין-קוסטלי הפתוח. לעיתים, תחושת התנגדות במהלך החצנת הלב עשויה להצביע על חוסר התאמה בין קודקוד הלב לבין הפתח הבין-קוסטלי. ניתן לטפל בכך על ידי תנועות קלות של המוסטאט המיקרו-יתוש לאורך קו אמצע בית השחי. נקודה קריטית נוספת היא פינוי נאות של שאריות האוויר בחלל בית החזה לפני תפירת השרירים והעור. אם לא תעשו זאת, תמותה לאחר הניתוח כתוצאה מדלקת ריאות.

יתרונות ומגבלות
שיטות קונבנציונליות לקשירה כלילית דורשות אינטובציה, אוורור מכני, חיתוך צלעות, ואינן קלות לזיהוי עורקים כליליים עקב קצב לב גבוה. נושאים אלה מאריכים באופן דרמטי את זמן הניתוח ומעלים את התמותה הקשורה לניתוח. בהשוואה לשיטות קונבנציונליות, הפרוטוקול המתוקן מציג את היתרונות הבאים: (1) הוא חוסך זמן (כלומר, לוקח בערך 3 דקות מהרדמה, קשירת LAD לתפירה מוצלחת של העור); (2) הכלים והחומרים הכירורגיים הדרושים זמינים ברוב המעבדות. עם זאת, מגבלה משמעותית של שיטה ייחודית זו היא הזמן המוגבל המותר לקשירת LAD לאחר החצנת הלב בשל היעדר תמיכה מכנית באוורור. לכן, תמותה גבוהה הנגרמת על ידי pneumothorax עשוי להיות צפוי למתחילים. בהתבסס על ניסיונם של המחברים, החצנת לב במשך פחות מ -30 שניות נסבלת היטב על ידי כל העכברים שנבדקו. חלון זמן זה מספיק לטכנאי מנוסה כדי לסיים את השראת MI עם תמותה היקפית נמוכה (<5%).

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

למחברים אין מה לחשוף.

Acknowledgments

עבודה זו נתמכה על ידי מענקים מהקרן הלאומית למדעי הטבע של סין (81930007, 81625002, 81800307, 81470389, 81500221, 81770238), תוכנית המנהיגים האקדמיים המצטיינים של שנחאי (18XD1402400), ועדת המדע והטכנולוגיה של עיריית שנחאי (201409005200), תוכנית הכישרונות של שנחאי פוג'יאנג (2020PJD030) והקרן למדע פוסט-דוקטורט בסין (2020M671161, BX20190216).

Materials

Name Company Catalog Number Comments
2,3,5-Triphenyltetrazolium chloride SIGMA T8877-25G TTC staining
4-0 silk suture YUANKANG 4-0 Surgical instrument
Autoclave HIRAYAMA HVE-50 Sterilization for the solid
Buprenorphine Qinghai Pharmaceutical FACTORY Co., Ltd. H10940181 reduce post-operative pain
Centrifugation tube Biological Hope 1850-K 15ML
Depilatory cream ZIKER BIOTECHNOLOGY ZK-L2701 Depilation agent for laboratory animals
Forcep RWD F12028 Surgical instrument
Gas filter ZHAOXIN SA-493 Operator protection
Isoflurane RWD 20071302 Used for anesthesia
Light source Beijing PDV LG-150B Operating lamp
Micro-mosquito hemostat FST 13011-12 Surgical instrument
Needle BINXIONG 42180104 Surgical instrument
Needle and the 6-0 silk suture JIAHE SC086 Surgical instrument
Needle holder ShangHaiJZ J32030 Surgical instrument
Needle holder ShangHaiJZ J32010 Surgical instrument
Povidone-iodine swabs SingleLady GB26368-2010 Skin disinfection
Scissors CNSTRONG JYJ1030 Surgical instrument
Sterile eye cream Shenyang Xingqi Pharmaceutical Co., Ltd. H10940177 prevent corneal dryness
Ultra-high resolution ultrasound imaging system for small animals VisualSonics Vevo 2100 Echocardiographic analysis

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Fu, Y., et al. A simple and efficient method for in vivo cardiac-specific gene manipulation by intramyocardial injection in mice. Journal of Visualized Experiments. (134), e57074 (2018).
  2. Pell, S., Fayerweather, W. E. Trends in the incidence of myocardial infarction and in associated mortality and morbidity in a large employed population. The New England Journal of Medicine. 312 (16), 1005-1011 (1985).
  3. Ramunddal, T., Gizurarson, S., Lorentzon, M., Omerovic, E. Antiarrhythmic effects of growth hormone--in vivo evidence from small-animal models of acute myocardial infarction and invasive electrophysiology. Journal of Electrocardiology. 41 (2), 144-151 (2008).
  4. Tabrizchi, R. β-blocker therapy after acute myocardial infarction. Expert Review of Cardiovascular Therapy. 11 (3), 293-296 (2013).
  5. Virani, S. S., et al. Heart disease and stroke statistics-2020 update: A report from the American Heart Association. Circulation. 141 (9), 139 (2020).
  6. Cahill, T. J., Choudhury, R. P., Riley, P. R. Heart regeneration and repair after myocardial infarction: Translational opportunities for novel therapeutics. Nature Reviews Drug Discovery. 16 (10), 699-717 (2017).
  7. Froese, N., et al. Anti-androgenic therapy with finasteride improves cardiac function, attenuates remodeling and reverts pathologic gene-expression after myocardial infarction in mice. Journal of Molecular and Cellular Cardiology. 122, 114-124 (2018).
  8. Wang, W., et al. Defective branched chain amino acid catabolism contributes to cardiac dysfunction and remodeling following myocardial infarction. American Journal of Physiology-Heart and Circulatory Physiology. 311 (5), 1160-1169 (2016).
  9. Acikel, M., et al. Protective effects of dantrolene against myocardial injury induced by isoproterenol in rats: Biochemical and histological findings. International Journal of Cardiology. 98 (3), 389-394 (2005).
  10. vanden Bos, E. J., Mees, B. M. E., de Waard, M. C., de Crom, R., Duncker, D. J. A novel model of cryoinjury-induced myocardial infarction in the mouse: A comparison with coronary artery ligation. American Journal of Physiology-Heart and Circulatory Physiology. 289 (3), 1291-1300 (2005).
  11. Guo, Y., et al. Demonstration of an early and a late phase of ischemic preconditioning in mice. American Journal of Physiology-Heart and Circulatory Physiology. 275 (4), 1375-1387 (1998).
  12. Kumar, M., et al. Animal models of myocardial infarction: Mainstay in clinical translation. Regulatory Toxicology and Pharmacology. 76, 221-230 (2016).
  13. Das, S., MacDonald, K., Chang, H. Y., Mitzner, W. A simple method of mouse lung intubation. Journal of Visualized Experiments. (73), e50318 (2013).
  14. Johns, T. N., Olson, B. J. Experimental myocardial infarction. I. A method of coronary occlusion in small animals. Annals of Surgery. 140 (5), 675-682 (1954).
  15. Ahn, D., et al. Induction of myocardial infarcts of a predictable size and location by branch pattern probability-assisted coronary ligation in C57BL/6 mice. American Journal of Physiology. Heart and Circulatory Physiology. 286 (3), 1201-1207 (2004).
  16. Gao, E., Koch, W. J. A novel and efficient model of coronary artery ligation in the mouse. Methods in Molecular Biology. 1037, 299-311 (2013).
  17. Most, P., et al. Cardiac S100A1 protein levels determine contractile performance and propensity toward heart failure after myocardial infarction. Circulation. 114 (12), 1258-1268 (2006).
  18. Christia, P., et al. Systematic characterization of myocardial inflammation, repair, and remodeling in a mouse model of reperfused myocardial infarction. Journal of Histochemistry & Cytochemistry. 61 (8), 555-570 (2013).
  19. Frantz, S., Bauersachs, J., Ertl, G. Post-infarct remodelling: Contribution of wound healing and inflammation. Cardiovascular Research. 81 (3), 474-481 (2008).

Tags

שיטה פשוטה שונה אינדוקציה של אוטם שריר הלב מודלים MI שיפוץ לאחר MI טיפולים חדשניים טיפול isoproterenol cryoinjury קשירת עורקים כליליים תגובה איסכמית שיפוץ כרוני אתגרים טכניים חומרים זמינים עור חזה עכבר חלל intercostal Pectoralis גדול Pectoralis מינור ענף יורד קדמי שמאלי (LAD) תפר 6-0 2,3,5-triphenyltetrazolium כלוריד (TTC) שינוי גודל צלקת תוצאות ניתוח הישרדות קרע לב הערכה אקוקרדיוגרפית
שיטה פשוטה שונה להשראת אוטם שריר הלב בעכברים
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Jiang, C., Chen, J., Zhao, Y., Gao,… More

Jiang, C., Chen, J., Zhao, Y., Gao, D., Wang, H., Pu, J. A Modified Simple Method for Induction of Myocardial Infarction in Mice. J. Vis. Exp. (178), e63042, doi:10.3791/63042 (2021).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter