Summary
Le protocole combine une technique de récupération rapide de refroidissement pulmonaire avec une perfusion régionale normothermique abdominale pour l’obtention de greffes abdominales chez des donneurs asystoles contrôlés, ce qui est une méthode sûre et utile pour élargir le bassin de donneurs.
Abstract
Le don contrôlé après mort circulatoire (cDCD) a contribué à augmenter le nombre de donneurs dans le monde entier. Les expériences publiées au cours des dernières années confirment que les résultats après une transplantation pulmonaire à partir de cDCD sont similaires à ceux des donneurs de mort cérébrale; Cependant, l’utilisation des poumons provenant de donneurs d’asystole reste faible. Plusieurs raisons peuvent être impliquées: des cadres juridiques différents entre les pays et les centres avec différentes interventions pré-mortem, des soins inadéquats aux donneurs de poumons avant l’approvisionnement, ou même une mauvaise expérience des procédures et protocoles cDCD.
Initialement, la technique de récupération rapide était couramment utilisée pour l’obtention d’organes thoraciques et abdominaux dans la cDCD, mais, au cours de la dernière décennie, la perfusion régionale normothermique abdominale (ANRP) avec des dispositifs d’oxygénation par membrane extracorporelle est devenue une méthode utile pour rétablir le flux sanguin vers les organes abdominaux, permettant leur amélioration de la qualité et leur évaluation fonctionnelle avant la transplantation. Cela rend la procédure de don plus complexe et génère des doutes sur les lésions des greffons dues à la double température.
L’objectif de cet article est de décrire un protocole basé sur une expérience en un seul centre avec des donneurs Maastricht III combinant refroidissement pulmonaire récupération rapide dans le thorax et perfusion régionale normothermique abdominale. Des trucs et astuces axés sur les interventions pré-mortem et les techniques de procédure d’obtention pulmonaire sont expliqués. Cela peut aider à minimiser la réticence des professionnels à utiliser cette technique combinée et encourager d’autres centres donneurs à l’utiliser, malgré la complexité accrue de la procédure.
Introduction
Le don après mort circulatoire (DCD) a commencé en Espagne avec des donneurs non contrôlés. En 1996, le premier document de consensus national sur le DCD a été publié comme guide pour la pratique du don non contrôlé après une mort circulatoire1 (uDCD), établissant également un moratoire sur le don contrôlé après une mort circulatoire (cDCD). En 2012, un nouveau consensus a émergé établissant la base et le cadre législatif de la pratique de la DCDuM et de la cDCD2. Actuellement, l’Espagne est l’un des pays les plus actifs dans le domaine de la désertification, atteignant le taux de donneurs après décès circulatoire le plus élevé au monde3. Ce type de donateur représentait près de 35% du total des donateurs en 2021 dans le pays, avec une baisse marquée de l’uDCD et des donateurs étant exclusivement cDCD4.
L’obtention d’organes dans la cDCD est généralement effectuée à l’aide de la technique de récupération ultra-rapide5. Après la déclaration de décès et lorsque la période de non-contact est écoulée, une sternotomie et une laparotomie rapides sont effectuées. L’aorte abdominale et l’artère pulmonaire sont canulées et rincées avec des solutions de perfusion froide pour préserver les organes abdominaux et thoraciques, et un refroidissement topique est effectué avant le prélèvement6. Dans cette situation, la cDCD est caractérisée par les conséquences imprévisibles de l’ischémie chaude, après l’arrêt du traitement de maintien de la vie. Les lésions ischémiques pendant cette période d’hypotension agonique et d’hypoxie progressive, suivies de la période de non-contact après l’arrêt cardiaque, sont encore exacerbées par la période ultérieure d’ischémie froide7. Cette combinaison d’ischémie chaude et froide semble être préjudiciable, en particulier aux greffes abdominales 8,9,10, générant plus de réticence chez les professionnels à l’utilisation de ces organes à partir de donneurs de cDCD.
Pour minimiser ces risques, un modèle de préservation in situ , basé sur les expériences antérieures des équipes espagnoles travaillant dans uCDC11, a été développé avec un intérêt croissant. L’utilisation de systèmes d’oxygénation par membrane extracorporelle (ECMO) pour rétablir le flux sanguin après la mort et avant la récupération du greffon peut inverser les déviations métaboliques résultant de l’ischémie et restaurer la physiologie cellulaire12. La perfusion régionale normothermique abdominale (ANRP) peut améliorer la qualité des organes endommagés ischémiques dans cDCD13. La fonction des organes peut être évaluée et améliorée, ce qui permet une meilleure sélection des greffons abdominaux pour la transplantation.
Des expériences multicentriques internationales récentes fournissent des preuves que l’ANRP par rapport à la technique de récupération rapide (RR) aide à surmonter les limitations traditionnelles de la cDCD, à réduire les taux de complications biliaires post-transplantation, à faciliter la transplantation réussie de foies plus âgés et à améliorer la survie du greffon hépatique14,15. Dans les reins, il semble améliorer les résultats à court terme avec une fonction de greffon retardée plus faible et des taux de survie du greffon à 1 anplus élevés 16. Avec ces preuves, l’ANRP dans la cDCD a acquis des avantages par rapport à la technique de récupération rapide pour l’obtention de greffes abdominales et est maintenant appliquée dans plusieurs pays européens et d’autres parties du monde17,18.
L’utilisation de poumons provenant de donneurs de cDCD, cependant, a été rapidement adoptée dans le monde entier. Un temps ischémique chaud fonctionnel pulmonaire allant jusqu’à 60 min ne semble pas affecter la survie19. Au cours de la dernière décennie, plusieurs centres et expériences multi-institutionnelles ont rapporté des résultats après une transplantation pulmonaire à partir de cDCD comparables à ceux de DBD20,21. La technique RR est la méthode de routine pour l’obtention des poumons: les poumons sont refroidis par voie topique et retirés après avoir été rincés avec une solution de conservation à froid22.
Les premières expériences combinant ANRP et RR des poumons dans cDCD ont été rapportées par deux groupes du Royaume-Uni23,24. Des années plus tard, une variante de cette technique ajoutant des interventions pré-mortem a été publiée25. Les résultats présentent cette double technique d’approvisionnement comme sûre et efficace pour les greffes abdominales et thoraciques26. Évidemment, la procédure de don devient plus complexe. Elle nécessite des ressources technologiques et humaines, des capacités organisationnelles suffisantes et a un coût économique plus élevé. Tout cela peut décourager les professionnels de commencer un programme. Le but de cette étude est de présenter un protocole particulièrement axé sur les interventions pré-mortem, la canulation et la mise en place d’un ballonnet d’occlusion aortique, avec des trucs et astuces tirés de l’expérience, et de commenter les différents détails techniques à prendre en compte lors du prélèvement pulmonaire lorsque l’ARNP est utilisé. À l’heure actuelle, au Centre, les donneurs de cDCD sont devenus la principale source de greffes pour la transplantation thoracique et abdominale.
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Protocol
Ces interventions sont effectuées au chevet du patient dans l’unité de soins intensifs (USI). Ce protocole suit les directives du comité d’éthique de l’hôpital universitaire Marqués de Valdecilla et est conforme au cadre juridique espagnol concernant les procédures de don. Le consentement éclairé a été obtenu du plus proche parent pour l’enregistrement vidéo des procédures de recherche. La cDCD est envisagée chez les patients présentant des lésions cérébrales catastrophiques, un cœur en phase terminale ou une maladie neurodégénérative pour lesquels la décision d’arrêter le traitement de maintien de la vie (WSLT) a été prise. Les critères d’exclusion et l’évaluation pulmonaire sont les mêmes que pour les donneurs de mort cérébrale (tableau 1).
1. Interventions pré-mortem chez le donneur
- Héparinisation : administrer par voie intraveineuse un bolus de 300 à 500 UI/kg d’héparine au donneur.
- Canulation
REMARQUE: La canulation est effectuée par le chirurgien cardiovasculaire et est une procédure stérile.- Préparez une table d’instrumentation stérile, avec tout le matériel nécessaire (kit ECMO et outils chirurgicaux), ainsi que le système d’électrocautérisation et d’aspiration.
- Préparez un champ chirurgical sur l’aine sélectionnée avec une solution désinfectante et des champs stériles.
- Faites une incision longitudinale de 8 à 10 cm avec une lame n ° 23, en contrôlant le saignement avec l’électrocautérisation et les clips Liga. Séparez les bords de la plaie avec un rétracteur et procédez à la dissection pour exposer l’artère fémorale et la veine. Embrassez les deux vaisseaux avec des boucles de vaisseaux pour contrôler le saignement.
- Choisir les diamètres de canule appropriés en fonction de la taille des récipients et suffisamment grands pour fournir un débit suffisant pour la perfusion des organes et pour éviter les problèmes d’étiage (généralement 21 français).
- Canuler la veine fémorale, en introduisant d’abord un fil métallique comme guide, suivi de dilatateurs progressifs pour enfin introduire la canule. Si un saignement est observé, effectuer une suture de cordon de bourse péri canule en polypropylène 4-0 pour le contrôle.
- Procédez de la même manière avec l’artère fémorale, en utilisant dans ce cas une canule à double lumière.
- Coupez un morceau de 10 cm de la ligne d’entrée ECMO. Insérez un connecteur droit muni d’un verrou Luer muni d’un robinet d’arrêt à trois voies assemblé à une extrémité de la pièce et reliez l’autre extrémité de la pièce à la canule artérielle (Figure 1).
- Purger les lignes ECMO. Utilisez une poire d’irrigation avec une solution saline pour remplir les lignes tout en vous connectant avec des canules. Connectez la ligne ECMO de sortie à la canule veineuse et la ligne ECMO d’entrée au connecteur droit avec le robinet d’arrêt à trois voies préalablement assemblé à la canule artérielle. Le robinet d’arrêt à trois voies peut être utilisé pour purger le système (Figure 2).
- Maintenez les lignes ECMO serrées. Fixez les deux canules à l’aine avec des sutures en soie de taille 1 pour éviter tout déplacement pendant le transfert.
- Placez une conduite de pression surveillée dans la canule de l’artère fémorale et dans l’artère radiale gauche du donneur.
- Mise en place d’un ballonnet d’occlusion aortique
- Prenons, à titre de référence, la distance entre le processus xiphoïde du donneur et l’extrémité distale de la canule artérielle et déterminer la longueur du cathéter à insérer pour atteindre l’aorte descendante thoracique. Placez une marque de référence dans le ballon avec une suture en soie ou un marqueur.
- Introduisez un guide métallique à travers la lumière libre de la canule de l’artère fémorale. Continuez avec le cathéter de la même manière, guidé par le fil métallique, et introduisez-le jusqu’à la marque référencée.
- Confirmer la position correcte du ballonnet d’occlusion à l’aide d’une radiographie thoracique portable ou d’une fluoroscopie (vérifier les marques radio-opaques du cathéter au-dessus du diaphragme).
- Vérifiez le bon fonctionnement du ballonnet d’occlusion en le remplissant avec une seringue à cône de 50 cc avec une solution saline pendant 4-5 s seulement, en confirmant que la pression artérielle de la canule fémorale disparaît tandis que la pression de l’artère radiale gauche est maintenue (Figure 3).
- Lorsque le pouls fémoral disparaît, notez le volume de remplissage comme volume minimum à utiliser pour bloquer l’aorte thoracique pendant la PNRA. Si un écoulement est détecté dans la canule fémorale, vérifier à nouveau le positionnement ou le remplissage correct.
2. Arrêt du traitement de maintien de la vie (WLST) et déclaration de décès
- Transférez le donneur connecté au système ECMO dans la salle d’opération. Préparez et drapez le donneur de manière stérile.
- Préparez et préparez les solutions et les lignes de préservation pulmonaire et abdominale. Gardez l’équipe chirurgicale nettoyée et stérile et prête dans la salle d’opération adjacente.
- Utilisez un chronomètre pour enregistrer les temps ischémiques chauds.
REMARQUE: Le temps ischémique chaud fonctionnel (FWIT), défini comme le temps écoulé entre la pression artérielle systolique <60 mmHg et l’ANRP, est commencé pour les greffes abdominales et l’administration d’une solution de préservation pulmonaire par l’artère pulmonaire pour les poumons (une période de 5 minutes sans contact est incluse). Des limites supérieures de 30 min pour le foie et le pancréas et de 60 min pour les reins et les poumons sont envisagées. - Permettre aux proches d’être avec leur proche pendant la WLST jusqu’à la déclaration de décès.
- Lancez WLST. L’extubation est facultative selon les souhaits du parent. Après la déclaration de décès, conduisez les proches hors de la zone chirurgicale.
- Après la période de 5 minutes sans contact, remplissez le ballon d’occlusion aortique avec le volume minimum préalablement déterminé qui assure la descente du bloc aortique thoracique.
- Si la pression de l’artère radiale gauche disparaît, initier l’ANRP. La pression de la canule fémorale se transformera en un flux continu non pulsatile fourni par l’ECMO.
- Si le débit dans la ligne radiale augmente parallèlement à la pression fémorale, arrêtez la PNRA et vérifiez la position correcte et le remplissage ou serrez l’aorte thoracique après une autre période de 5 minutes sans contact avant de rétablir la PRNA. La PRNA n’est pas commencée tant que l’occlusion aortique n’est pas complètement confirmée.
REMARQUE: WLST peut être effectué dans la salle d’opération ou dans l’unité de soins intensifs selon la préférence des parents et des proches. S’il est effectué dans l’unité de soins intensifs, après la période de 5 minutes sans contact, le ballon est rempli et la fonction vérifiée, l’ARNP est initié et le donneur est transféré dans la salle d’opération où l’équipe chirurgicale est prête à commencer. Si un dysfonctionnement du ballonnet d’occlusion est détecté, l’ARNP est arrêté jusqu’à ce que l’aorte thoracique soit serrée dans la salle d’opération.
3. Récupération pulmonaire et technique d’approvisionnement
REMARQUE : Les techniques de récupération pulmonaire et d’approvisionnement sont effectuées par le chirurgien thoracique et le coordonnateur de la transplantation (figure 4).
- Effectuer une sternotomie moyenne: procéder à une incision cutanée verticale médiane de l’encoche suprasternale à la pointe du processus xiphoïde. Étendre l’incision au fascia pectoral et au périoste sternal par électrocautérisation.
- Divisez le ligament interclaviculaire et créez un plan par dissection digitale derrière le sternum, à la fois au niveau de l’encoche suprasternale et du processus xiphoïde. Divisez le sternum avec une scie électrique. Placez un rétracteur sternal et ouvrez-le soigneusement, en libérant le péricarde de la surface postérieure du sternum. Contrôlez tout point de saignement par électrocautérisation.
- Dans le même temps, réintuber et ventiler le donneur avec 100% d’oxygène et une pression expiratoire positive de 5 cm H2O.
- Si la bronchoscopie n’a pas été réalisée pendant le séjour du donneur à l’USI en tant que manœuvre critique de prise en charge du patient, elle peut être effectuée à ce stade par le deuxième chirurgien de l’équipe thoracique. Pour la bronchoscopie, introduisez un bronchoscope flexible à travers le tube endotrachéal et évaluez l’anatomie, l’aspect des muqueuses et les sécrétions claires.
- Ouvrez les deux cavités pleurales par incisions longitudinales dans la plèvre médiastinale.
- S’il y a des doutes ou des problèmes concernant un bloc adéquat des vaisseaux supra-aortiques avec le ballonnet d’occlusion, rétractez le poumon gauche médialement pour exposer et serrer l’aorte thoracique aussi bas que possible en vision directe.
- Examiner les poumons en effectuant une évaluation visuelle et palpatoire. Inspecter les bulles, les contusions, l’atélectasie, la pneumonie et les tumeurs occultes. Administrer 1 L de solution saline à 4 °C dans les deux cavités pleurales.
- Réduire la fraction inspirée d’oxygène à 50%. Ouvrez le péricarde avec une incision en T inversé. Rétractez latéralement les bords du péricarde avec 2-0 sutures de soie fixées à la peau avec des pinces anti-moustiques pour exposer les structures cardiaques.
- Placez une suture de corde de sac à main en polypropylène 4-0 sur l’artère pulmonaire principale sous la bifurcation. Effectuez une artériotomie avec une lame n ° 11 et dilatez avec une pince anti-moustique incurvée.
- Canuler l’artère pulmonaire (PA) avec une canule droite à angle droit serrée à l’extrémité. Connectez la canule artérielle pulmonaire à la conduite du système d’irrigation, en assemblant un connecteur droit avec un verrou Luer et un robinet d’arrêt à trois voies. Connectez le système d’irrigation à la solution de préservation pulmonaire. Purgez les lignes.
- Commencez à rincer 50 à 60 mL/kg de solution de conservation à froid de façon antégrade. Commencez à rincer 500 μg de prostaglandine diluée dans 100 mL de solution saline en même temps à travers le robinet d’arrêt à trois voies.
- Ouvrez directement l’appendice auriculaire gauche ou l’oreillette gauche pour permettre un drainage libre. Si des zones d’atélectasie sont trouvées, recrutez-les avec de courtes prises inspiratoires à une pression de 25-30 cm H2O.
- Une fois la conservation terminée, retirez la canule PA. Annoncez au reste de l’équipe l’intention de serrer la veine cava et de commencer l’excision cardiaque.
- Administrer 1-1,2 L de solution saline au donneur avant de serrer les veines de cava pour éviter une diminution du débit de la pompe due à la perte de retour veineux sanguin du thorax.
- Placez une pince croisée dans la veine inférieure du cava, en vous assurant qu’il y a suffisamment de moignon pour le foie. Liférer et diviser la veine cava inférieure avec le brin de soie n ° 3.
- Attacher et diviser la veine cava supérieure caudale à azygote avec le brin de soie n ° 3. Fixez le moignon distal avec une pince.
- Laissez les pinces rester dans le champ chirurgical, en prenant soin de ne pas les retirer par accident, sinon l’ANRP sera compromise. Excise le reste du cœur d’une manière standard.
- Après l’excision cardiaque, retirez les poumons en suivant la même procédure qu’avec les donneurs de mort cérébrale, comme décrit ci-dessous.
- Divisez les ligaments pulmonaires inférieurs, ouvrez le péricarde postérieur et exposez l’œsophage. Libérer les attaches médiastinales postérieures du poumon avec dissection émoussée, assurant une hémostase prudente.
- Disséquer les artères pulmonaires loin de l’aorte. Isolez la trachée au-dessus de la carène et passez une agrafeuse TA autour.
- Gonfler les poumons à 50%-60% du volume courant avant de retirer le tube endotrachéal et diviser la trachée. Retirez tout accessoire restant et extrayez le bloc pulmonaire du donneur.
- Vérifiez soigneusement la cavité thoracique pour détecter tout point de saignement, en particulier la ligature de la veine azygos et la cautérisation des vaisseaux ou des capillaires du médiastin postérieur, des structures paratrachéales et des tissus environnants. Une perte de sang continue peut diminuer le débit de la pompe.
- Prenez le bloc pulmonaire à la table arrière et procédez à la chirurgie de banc. Séparez les poumons gauche et droit.
- Avec un cathéter de Foley avec une ampoule gonflée à l’extrémité, effectuer séquentiellement, à travers chaque veine pulmonaire, un rinçage rétrograde avec 0,2-0,25 L de solution de conservation à froid.
- Emballer chaque poumon dans un premier sac stérile contenant uniquement une solution de conservation au froid, entouré de deux autres sacs en plastique, et conserver dans un réfrigérateur portatif contenant une solution saline glacée à 4 °C.
- Lorsqu’un système de perfusion pulmonaire ex vivo est indiqué, suivez les étapes ci-dessous pour les connexions de l’appareil à l’artère pulmonaire et à la trachée pendant l’obtention pulmonaire.
- Préserver le tronc principal de l’artère pulmonaire et pas seulement sa bifurcation lors de l’approvisionnement.
- Si ce n’est pas possible, prenez un morceau de 3-4 cm de l’aorte pour le suturer postérieurement à la bifurcation de l’artère pulmonaire pour remplacer le tronc de l’artère pulmonaire.
- Répartir la trachée de quatre à cinq anneaux au-dessus de la carène pour avoir une longueur suffisante pour l’intubation.
- Gardez et stockez les poumons en bloc.
4. Perfusion régionale normothermique abdominale
- Lancez l’ANRP après avoir rempli le ballonnet d’occlusion aortique et vérifié le bon fonctionnement.
- Fixer les points cibles de surveillance suivants : débit de la pompe = 2-2,5 L/min, pression continue de 60-65 mmHg dans la canule de l’artère fémorale, température = 37 °C, pH = 7,35-7,45, hématocrite >25%.
- Obtenir des échantillons de sang de la canule de l’artère fémorale avec une seringue de 10 ml après le début de l’ANRP et toutes les 30 minutes pour l’analyse biochimique hépatique et rénale, les taux de lactate sérique, les gaz artériels sanguins et les valeurs d’hématocrite. Maintenir l’ARNP pendant au moins 90-120 min.
- Jeter le foie si les valeurs de l’alanine transaminase (ALT) ou de l’aspartate transaminase (AST) sont plus de quatre fois supérieures à la limite normale supérieure pendant la PNRA.
5. Récupération hépatique et rénale
REMARQUE: La récupération hépatique et rénale est effectuée par le chirurgien hépatique et le chirurgien rénal, respectivement.
- Effectuer une laparotomie moyenne: procéder à une incision cutanée verticale médiane le long de la linea alba, du processus xiphoïde (joindre à la sternotomie précédente) au pubis, en courbant l’incision autour de l’ombilic. Utilisez l’électrocautérisation pour disséquer la graisse sous-cutanée et les couches fasciales superficielles jusqu’à la gaine droite.
- Disséquer à travers les composants antérieur et postérieur de la gaine droite et ouvrir le péritoine pour accéder à la cavité péritonéale. Élargissez l’incision en enfonçant les doigts dans le trou créé, en prenant soin de ne pas blesser les structures sous-jacentes. Placez les rétracteurs pour avoir une exposition adéquate de l’abdomen.
- Évaluer la qualité macroscopique des organes abdominaux en effectuant des évaluations visuelles et palpatoires. Une biopsie du foie peut être effectuée si une préoccupation est soulevée, comme avec les donneurs de mort cérébrale.
- Si les valeurs chimiques sont correctes et que l’aspect macroscopique est normal, validez les organes.
- Arrêtez le périphérique ECMO. Rincer la solution de conservation des organes abdominaux via la canule artérielle fémorale et utiliser la canule veineuse fémorale pour l’exsanguination.
- Se procurer des organes abdominaux adaptés à la transplantation d’une manière standard comme dans DBD27,28.
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Representative Results
Nous avons effectué une analyse descriptive de 30 transplantations pulmonaires effectuées à l’hôpital universitaire Marqués de Valdecilla avec des poumons obtenus à partir de donneurs de cDCD au cours des 2 dernières années, 2020 et 2021. Les caractéristiques démographiques des donateurs et des receveurs, les données techniques, les résultats postopératoires et les résultats à court terme sont présentés ici. Ces résultats sont présentés sous forme de nombres absolus et de pourcentages pour les variables catégorielles et de mesures de la tendance centrale et de la dispersion pour les variables continues. Le test de Kolmogorov-Smirnov a été utilisé pour tester la distribution normale des données.
Caractéristiques des donneurs et données techniques
Le tableau 2 présente les caractéristiques démographiques et les données techniques des donateurs. La moitié des donneurs étaient des hommes et l’âge médian était de 56,5 ans. Seulement 16,7 % avaient des antécédents de tabagisme. Les lésions cérébrales ont été causées dans la plupart des cas par une hémorragie (53,3 %), suivie de l’anoxie (23,3 %) et d’un traumatisme (3,35 %). D’autres causes comprenaient l’arrêt du traitement de maintien de la vie chez les patients atteints de sclérose latérale amyotrophique. La durée médiane du séjour en USI du donneur et de la ventilation mécanique était de 6 jours. La valeur moyenne de la pression partielle d’oxygène du donneur final dans le sang artériel par rapport à la concentration fractionnée d’oxygène inspiré (PaO 2/FiO2) était de 427 mmHg. Dans deux cas, une perfusion pulmonaire ex vivo a été nécessaire pour reconditionner les poumons en raison de l’aspect macroscopique de l’œdème.
Caractéristiques du receveur de poumon et de la greffe
Le tableau 3 montre les caractéristiques du receveur de poumon et de la greffe. Le pourcentage de patients atteints de pneumopathie interstitielle (MPI) était le plus élevé (50 %), suivi de la bronchopneumopathie chronique obstructive (BPCO ; 40 %) et de la bronchectasie (10 %). La plupart des bénéficiaires avaient des antécédents de tabagisme (83,3 %), seulement 16,7 % souffraient d’hypertension systémique et 10 % de diabète sucré (DM). L’hypertension pulmonaire était présente chez 14 receveurs (46,7 %). Toutes les procédures étaient des transplantations pulmonaires bilatérales, et aucune n’a été réalisée dans une situation d’urgence. Un receveur avait besoin d’un maintien extracorporel peropératoire des fonctions vitales pendant la chirurgie avec ECMO. Le temps ischémique médian à froid était de 292,5 min pour le premier greffon et de 405 min pour le second.
Complications post-transplantation et résultats à court terme
Il n’y a eu aucun décès peropératoire. L’incidence des grades de dysfonction primaire du greffon (DPI) est présentée dans le tableau 4. Deux bénéficiaires (6,6 %) ont eu besoin d’un soutien ECMO postopératoire en raison du DPI3. Il n’y avait pas besoin de re-thoracotomie en raison de saignements ou d’autres causes dans la période postopératoire. Le temps médian pour l’intubation postopératoire était de 24 heures, pour le séjour en USI était de 3,1 jours et pour le séjour à l’hôpital était de 18,9 jours. Un rejet cellulaire aigu au cours des 3 premières semaines était présent chez 12 receveurs (40 %). Il n’y a pas eu de mortalité à l’hôpital et la survie à 30 jours était de 100%.
Figure 1 : Assemblage des connexions de canule artérielle. La figure montre les matériaux utilisés pour la connexion de la canule artérielle avec l’ECMO et les conduites de pression. Un morceau de 10 cm de la ligne ECMO est coupé et utilisé comme pont entre la canule artérielle et un connecteur droit avec verrouillage Luer avec un robinet d’arrêt à trois voies assemblé. Le robinet d’arrêt à trois voies se rapporte à la conduite de pression, et l’autre extrémité du connecteur droit est insérée dans la conduite ECMO. Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figure.
Figure 2 : Canulation. (A) La figure montre la canule à double lumière utilisée pour la canulation de l’artère fémorale. (B) L’artère fémorale et la canulation veineuse sont effectuées dans une aine par accès ouvert. Les canules sont purgées, serrées et connectées au dispositif ECMO. L’incision de la plaie est fermée et les canules sont fixées à la peau avec des sutures en soie pour éviter le déplacement. (C) Le ballonnet d’occlusion aortique est introduit par la lumière libre de la canule de l’artère fémorale. Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figure.
Figure 3 : Ballon d’occlusion aortique. Vérification de la position et de la fonction. (A) Le cathéter d’occlusion aortique dans la position correcte vérifiée par radiographie pulmonaire (voir marques radio-opaques au-dessus du diaphragme). Le pouls fémoral dans la canule artérielle disparaît lorsque le ballonnet est rempli, tandis que le pouls radial est maintenu (impulsion d’onde et saturationO2). La disparition complète du pouls fémoral indique le volume minimal de remplissage du ballonnet. (B) Si le ballonnet n’est pas complètement plein ou est trop avancé, la pression sera détectée dans les artères fémorales et radiales. Ce chiffre a été modifié à partir de Tanaka et al.29. Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figure.
Figure 4 : Schéma d’approvisionnement en poumons RR avec ARNP. La figure montre un résumé de la procédure. Abréviations : ECMO = oxygénation par membrane extracorporelle; PEP = pression expiratoire positive; ANRP = perfusion régionale normothermique abdominale, RR = récupération rapide. Cette figure a été modifiée et adaptée à partir de Miñambres et al.36. Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figure.
Tableau 1 : Critères de sélection pour le don de poumon dans le don de poumons dans le cDCD. Ce tableau montre les critères généraux de sélection des donneurs de poumon dans la cDCD. Abréviations : cDCD = don contrôlé après mort cardiaque; WLST = arrêt du traitement de maintien de la vie; FWIT = temps ischémique chaud fonctionnel. Veuillez cliquer ici pour télécharger ce tableau.
Tableau 2 : Caractéristiques des donateurs et données techniques. Ce tableau présente les principales caractéristiques des donateurs et les données techniques enregistrées. Abréviations : cDCD = don contrôlé après mort circulatoire; MV = ventilation mécanique; USI = unité de soins intensifs; WLST = arrêt du traitement de maintien de la vie; AC = arrêt cardiaque; WIT = temps ischémique chaud; PaO 2/FiO2 = pression partielle d’oxygène dans le sang artériel/fraction d’oxygène inspiré; EVLP = perfusion pulmonaire ex vivo; IQR = intervalle interquartile; ET = écart type. Veuillez cliquer ici pour télécharger ce tableau.
Tableau 3 : Caractéristiques des receveurs de poumons et des greffes. Ce tableau présente les principales caractéristiques des receveurs de poumons et les données enregistrées lors de la chirurgie de transplantation. Abréviations : MPOC = bronchopneumopathie chronique obstructive; PID = maladie pulmonaire interstitielle; DM = diabète sucré; IMC = indice de masse corporelle; CMV = cytomégalovirus; ECMO = oxygénation par membrane extracorporelle; USI = unité de soins intensifs; MV = ventilation mécanique; PaO 2/FiO2 = pression partielle d’oxygène dans le sang artériel/fraction d’oxygène inspiré; IQR = intervalle interquartile; ET = écart type. Veuillez cliquer ici pour télécharger ce tableau.
Tableau 4 : Complications post-transplantation et résultats à court terme. Ce tableau présente les données enregistrées pendant le séjour à l’hôpital et les résultats à court terme. Abréviations : DPI = dysfonctionnement primaire du greffon, ECMO = oxygénation par membrane extracorporelle; USI = unité de soins intensifs. Veuillez cliquer ici pour télécharger ce tableau.
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Discussion
Bien que l’utilisation simultanée de la perfusion à froid pulmonaire avec ARNP dans la cDCD ait été publiée pour la première fois en 2014, très peu d’expériences ont été décrites pour ce25,26,29. De plus, l’utilisation des poumons cDCD, quelle que soit la technique utilisée, reste faible dans la plupart des pays.
Les étapes critiques de ce protocole sont l’utilisation d’interventions pré-mortem; une méthodologie spécifique pour s’assurer que la perfusion coronaire et cérébrale n’est pas restaurée avec l’ANRP ; la minimisation des lésions des greffons dues à la double température; et l’objectif de maintenir un débit adéquat dans le dispositif ECMO pour assurer la perfusion des organes abdominaux.
Les interventions pré-mortem sont envisagées dans les protocoles espagnols. Bien qu’elles ne soient pas essentielles, l’héparinisation et la canulation prémortem peuvent non seulement réduire le temps ischémique chaud fonctionnel des organes abdominaux, mais aussi éviter la nécessité d’accéder à l’aorte pour la canulation après la déclaration du décès. S’il y a manipulation prémortem, elle doit être correctement expliquée, et le consentement éclairé explicite doit être obtenu en respectant toujours les souhaits et les valeurs des patients et de leurs proches. Initialement, les deux arêtes ont été utilisées: une pour la canulation et une autre pour l’insertion du ballonnet d’occlusion aortique. L’utilisation d’une canule artérielle à double lumière fournit à la fois une ligne d’entrée ECMO et un port d’accès pour le ballon d’occlusion, laissant l’aine controlatérale libre en cas de besoin.
La principale préoccupation éthique entourant l’utilisation de l’ANRP est la possibilité de réanimation. Il est obligatoire d’assurer un débit insuffisant vers les vaisseaux de l’arc aortique et d’éviter toute possibilité de rétablissement de la circulation cérébrale et coronaire une fois que le décès a été déclaré et que l’ANRP est commencée. Pour ce faire, un clampage de l’aorte (thoracique ou abdominale) est effectué23,24,30. L’occlusion aortique avec un ballonnet a été rapportée pour la première fois par notre groupe25 et validée31. Cette méthodologie assure un blocage approprié de l’aorte, garantissant l’absence de perfusion pendant toute la procédure par une surveillance continue du volume du ballonnet et de la pression de l’artère radiale gauche. Il évite également la nécessité d’un accès rapide à l’aorte, transformant une procédure précipitée en une procédure plus calme, ce qui pourrait potentiellement réduire les dommages et les pertes d’organes dus aux événements chirurgicaux générés par la hâte32,33.
Initialement, l’abdomen était ouvert simultanément avec le thorax. Ceci, ajouté au refroidissement topique des poumons avec une solution saline froide, a favorisé la perte de chaleur. Pour minimiser les blessures de greffon dues à la double température, l’équipe thoracique commence la procédure tandis que l’abdomen est laissé fermé pendant l’obtention des poumons. Cela contribue à maintenir la normothermie abdominale et rend le champ chirurgical plus confortable. De plus, seulement 1 L de solution saline froide est délivrée à chaque hémithorax pour le refroidissement topique des poumons. Avec l’expérience, nous avons remarqué que ce n’est pas obligatoire, car les poumons ventilés ont une bonne tolérance à l’ischémie chaude19,34.
L’une des raisons de la faible récupération des poumons dans la cDCD avec ANRP combinée est la crainte des équipes abdominales concernant le mauvais débit dans la pompe lors de la préservation et de l’approvisionnement des poumons. Le maintien du débit de la pompe et l’évitement de la perte de volume pour assurer la perfusion des organes abdominaux sont deux objectifs principaux au cours de la procédure. Avec l’utilisation de la technique de la veine cava non tactile35, la veine cava inférieure n’est pas serrée pendant la préservation des poumons, ce qui améliore le retour du sang dans le circuit ECMO. De plus, une surcharge liquidienne est administrée au donneur avant que le cava ne soit serré pour éviter l’absence de retour veineux thoracique. Malgré l’isolement de la veine cave inférieure et de l’aorte descendante dans la poitrine, un suintement continu des vaisseaux sanguins intrathoraciques, en particulier de la veine azygote, pendant et après l’obtention des poumons peut entraîner une perte de volume. La ligature de la veine azygote est obligatoire et l’hémostase doit être prudente lors du retrait du bloc pulmonaire. La cavité thoracique doit être vérifiée pour tout point de saignement avant que le chirurgien thoracique ne quitte le champ chirurgical.
Les limites de la méthode sont les suivantes. Les interventions pré-mortem ne sont pas acceptées d’un point de vue éthique ou légal dans de nombreux pays. Il existe une grande variabilité dans les protocoles sur la cDCD dans le monde17. Bien qu’elles ne soient pas indispensables, ces manœuvres présentent des avantages importants tels que la réduction de FWIT.
Cette procédure combinée augmente la complexité de l’ensemble du processus d’obtention d’organes et exige des besoins logistiques. Les protocoles doivent être soutenus par les autorités compétentes et l’expérience de toutes les personnes impliquées est importante. Les professionnels des soins intensifs qualifiés dans la gestion des donneurs de cDCD, ainsi que les équipes thoraciques et abdominales familières avec les systèmes ECMO, sont généralement concentrés dans les centres de référence, décourageant les autres petits centres de démarrer un programme de cDCD. De nombreux hôpitaux sur le territoire national de l’Espagne sont rattachés à des programmes de dons mais ne disposent pas des moyens nécessaires pour mettre en pratique la cDCD avec l’ANRP. Pour cette raison, des équipes mobiles ECMO ont été mises en place dans plusieurs communautés pour voyager et soutenir la préservation et l’obtention d’organes abdominaux36,37,38.
Récemment, en tant qu’évolution de l’ANRP, la perfusion régionale normothermique thoraco-abdominale in situ est apparue comme une nouvelle technique pour récupérer les cœurs des donneurs de cDCD39,40.
À l’hôpital universitaire Marqués de Valdecilla, situé en Cantabrie, la région où le taux de dons est le plus élevé du territoire espagnol, le programme cDCD a été mis en œuvre en 2014. L’expérience antérieure avec uDCD41 nous a aidés à faire face à cette transition rapide vers cDCD et à adopter ce nouveau scénario. Au fur et à mesure que le nombre de donneurs de cDCD augmentait, le protocole et la technique ont évolué et ont été affinés. Au cours des 2 dernières années, 38,4% des transplantations pulmonaires ont été réalisées avec des donneurs cDCD (30 sur 78), et le don de poumon cDCD a considérablement réduit le temps passé sur la liste d’attente (médiane de 67 jours en 2020, 94 jours en 2019, 129 jours en 2018 et 206 jours en 2017), comme publié dans le registre national espagnol42.
Malgré la complexité accrue de la gestion des donneurs et de l’obtention d’organes, cette méthode de prélèvement combinée est réalisable et sans danger pour les greffes thoraciques et abdominales.
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Disclosures
Les auteurs déclarent qu’il n’y a pas de conflits d’intérêts.
Acknowledgments
Les auteurs remercient tous les membres impliqués dans le programme de transplantation pulmonaire de l’hôpital universitaire Marqués de Valdecilla.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Vial 5 mL Heparin 1000 UI/mL | ROVI | For donor heparinization | |
| ECMO KIT (MATERIALS FOR CANNULATION) | |||
| Artery pressure lines | BEXEN MEDICAL | 137.15 | Artery pressure line por radial artery and femoral cannula |
| Bandage scissors | SURGIMEDIC | BC-881R | Shear to cut ECMO lines |
| Bio-medicus Venous cannula 21 Fr (7.0 mm) x 27.5 in (69.9 cm) | MEDTRONIC | 96670-121 | Venous cannula |
| Clhorhexidine solution 2% | Disinfectant solution | ||
| ECMO device Maquet Rotaflow | Maquet, Rasttat, Germany | ECMO system | |
| Electrocautery handle | DEXTRO | SW12200 | |
| EndoReturn Arterial Cannula Kit 21-23F | Edwards Lifesciences | ER21B, ER23B | Arterial cannula with a doble lumen to ECMO connection and to introduce aortic oclussion balloon |
| Ethicon LigaClip med/short 20 titanium medium | ETHICON | MCS30 | Ligaclips for control bleeding during groin dissection |
| Ethicon LigaClip med/short 20 titanium small | ETHICON | MCS20 | Ligaclips for control bleeding during groin dissection |
| Insertion Kit Bio-medicus 180cm | MEDTRONIC | 96551 | Insertion Kit for ECMO cannulas, with catheter, metal wire guide and dilators |
| Irrigation pear | MEDLINE | DYNDE 20125 | Pear to be filled with saline and purge ECMO lines at the site of connection with cannulas |
| Luer cone syringe 50cc | CARDIONATUR | 60ML | Syringe filled with saline to fill occlusion balloon |
| Mersilk no 1, LR-60 CONV , 75 cm | ETHICON | W562H | Silk curved suture for ECMO cannulas fixation |
| Prolene 4/0 | ETHICON | W8355 | polypropylene suture for purse string in femoral vessels or vascular suture |
| Prolene 5/0 , 60 cm | ETHICON | 8325 | polypropylene suture for vascular suture |
| Prolene 5/0, 90 cm | ETHICON | 8720 | polypropylene suture for vascular suture |
| Reliant Stent Graft Balloon Catheter 12F | Medtronic, Ireland | AB46 | Aortic occlusion balloon introduced through femoral artery. It is used as an endoclamp |
| Scalpel blade no 11 | INTRAVEN | 150011 | |
| Scapel blade no 23 | INTRAVEN | 150023 | |
| Silicone tube | IBERHOSPITEX | 0027224-P | Silicone tube to connect suction system |
| Sofsilk braided silk no 1 strands | COVIDIEN | L-12 | Silk strand for ligation or bleeding control |
| Sofsilk braided silk no 3 strands | COVIDIEN | L-115 | Silk strand for ligation or bleeding control |
| straight connector 3/8"x3/8" with Luer lock | ANDOCOR | 04CS0022 | Piece to connect arterial cannula with ECMO line and the three way stop-cock for pressure line and blood sampling |
| Surgical pads pack | TEXPOL | 146500 | |
| Surgical stapler | COVIDIEN | 8886803712 | Stapler to close surgical wound |
| Three-way stopcock | BD CONNECTA | 394501 | Three way stop-cock to connect farterial cannula with pressure line |
| Vessel loop large | MEDLINE | VLMAXR | Vascular loop to embrace femoral artery and vein for bleeding control. |
| Vessel loop small | MEDLINE | VLMINR | Vascular loop to embrace femoral artery and vein for bleeding control. |
| Yankauer suction terminal 50 V | DEXTROMEDICA | 349701 | Suction terminal for suction while surgical dissection |
| SURGICAL TOOLS FOR CANNULATION | |||
| Adson retractor 20 cm adn 33 cm | |||
| Aortic clamp | |||
| Boyd Scissors 18 cm | |||
| Dissection forceps without jaws 21 cm | |||
| Farabeuf retractor small | |||
| Mayo scissors straight 14 cm and 16 cm | |||
| Metzembaum scissors 18 cm, 20 cm and 23 cm | |||
| Mosquito forceps straigth and curved | |||
| Needle holder 18 cm and 23 cm | |||
| Russ dissection forceps 15 cm | |||
| Scalpel handle no 23 and no 21, 21 cm | |||
| Surgical Dissector 23 cm | |||
| MATERIALS FOR LUNG PROCUREMENT | |||
| 10 cc syringe | BD DISCARDIT | 309110 | |
| Alprostadil 500 mcgs injectable solution | PFIZER | Prostaglandin injected with lung preservation solution | |
| Disposable GIA cartridge Steril 6/Ca | MEDTRONIC | 1141634 | |
| Disposable GIA stapler 60/3.8 3/Ca | MEDTRONIC | 2802122 | Stapler for trachea and bronquial division |
| Foley catheter 18 Ch Folysil | Folysil, Coloplast | AA6118 | urinary catheter employed to canulated pulmonary veins for retrograde perfusion |
| Lung preservation solution Perfadex 1000 mL | Medisan, Uppsala, Sweeden | 19811 ( box of 10 units) | Lung preservation solution |
| Mersilk no 1, LR-60 CONV , 75 cm | ETHICON | W562H | Silk curved suture for pericardium sutures |
| Paediatric Venous cannula | SORIN GROUP | V132-12 | Cannula used for pulmonary artery cannulation |
| Prolene 4/0 | ETHICON | W8355 | polypropylene suture for purse string in pulmonary artery |
| Scalpel blade no 11 | INTRAVEN | 150011 | |
| Sofsilk braided silk no 1 strands | COVIDIEN | L-12 | Silk strand to fix arterial cannula with the tourniquet |
| Sofsilk braided silk no 3 strands | COVIDIEN | L-115 | Silk strand for vessel ligation |
| Sterile bags | To keep and store lungs. | ||
| Straigth connector 1,4"/1,4" with luer lock | ANDOCOR | 04CS0032 | Piece to connect pulmonary artery arterial cannula with preservation line and the three way stop-cock for prostaglandin |
| Three-way stopcock | BD CONNECTA | 394501 | Three way stop-cock to connect farterial cannula with pressure line |
| Uromatic set for irrigation double lead | MEDISAVE | TRC4007N | Irrigation system for lung preservation solution |
| Uromatic set for irrigation single lead | MEDISAVE | TRC4002 | Irrigation system for lung preservation solution |
| SURGICAL TOOLS FOR LUNG PROCUREMENT | |||
| Aortic cross- clamp | |||
| Battery-powered surgical saw | |||
| Cooley vascular clamp | |||
| Dissecting forceps 18 cm and 27,9 cm | |||
| Finochietto sternal retractor | |||
| Metzembaum scissors 20 cm and 23 cm | |||
| Mosquito forceps curved 12,5 cm | |||
| Vascular clamps | |||
| SURGICAL TOOLS FOR ABDOMINAL ORGAN PROCUREMENT | |||
| Adson articulated retractors | |||
| Allis forceps 16 cm | |||
| Aortic cross-clamps | |||
| Boyd scissors 17 cm | |||
| Castroviejo needle holder | |||
| Cooley Vascular clamps | |||
| Crile forceps curved 18 cm | |||
| Davis retractor 24.5 cm | |||
| DeBakey dissecting forceps 19.7 cm adn 24.1 cm | |||
| DeBakey vascular clamps | |||
| Dissecting forceps 18 cm and 27.9 cm | |||
| Duval forceps 23 cm | |||
| Farabeuf retractors | |||
| Kidney Trays 300 cc and 500 cc | |||
| Kocher forceps straigth 18 cm | |||
| Langenbeck retractors 21 cm and 23 cm | |||
| Mayo scissors straigth and curved , 17 cm | |||
| Mosquito forceps straigth and curved, 12.5 cm | |||
| Needle holders 15 cm, 18 cm, 23 cm and 23 cm. | |||
| Pean forceps 16 cm | |||
| Potts scissors 19cm | |||
| Rochester forceps curved 24 cm | |||
| Rochester forceps straigth 24 cm | |||
| Russ dissection forceps 15 cm and 20 cm | |||
| Scalpel handles | |||
| Senn-mueller retractor 16 cm |
References
- Matesanz, R. Spanish National Consensus Document on the recovery of organs from non-heart beating donors. Nefrología. 16, 48-53 (1996).
- Donation after circulatory death in Spain: State of the art and recommendations. Consensus Document 2012, Organización Nacional de Trasplantes. , Available from: htpp://www.ont.es/infesp/DocumentoDeConsenso/DONACION%20EN%20ASISTOLIA%20EN%20ESPEÑA%20SITUACION%20ACTUAL%20Y%20RECOMENDACIONES.pdf (2017).
- Global Observatory on Donation and Transplantation. , Available from: htpp://www.transplant-observatory.org (2022).
- Organización Nacional de Trasplantes. Memoria de actividad donación y trasplante. Organización Nacional de Trasplantes. , Spain. (2020).
- Bellingham, J. M., et al. Donation after cardiac death: A 29-year experience. Surgery. 150 (4), 692-702 (2011).
- Algahim, M. F., Love, R. B. Donation after circulatory death: The current state and technical approaches to organ procurement. Current Opinion in Organ Transplantation. 20 (2), 127-133 (2015).
- Lepoittevin, M., et al. Preservation of organs to be transplanted: An essential step in the Transplant process. International Journal of Molecular Sciences. 23 (9), 4989 (2022).
- Wadei, H. M., et al. Comparison of kidney function between donation after cardiac death and donation after brain death kidney transplantation. Transplantation. 96 (3), 274-281 (2013).
- Jay, C., et al. A comprehensive risk assessment of mortality following donation after cardiac death liver transplant-An analysis of the national registry. Journal of Hepatology. 55 (4), 808-813 (2011).
- O'Neill, S., Roebuck, A., Khoo, E., Wigmore, S. J., Harrison, E. M. A meta-analysis and meta-regression of outcomes including biliary complications in donation after cardiac death liver transplantation. Transplant International. 27 (11), 1159-1174 (2014).
- Fondevila, C., et al. Applicability and results of Maastricht type 2 donation after cardiac death liver transplantation. American Journal of Transplantation. 12 (1), 162-170 (2012).
- Hessheimer, A. J., Riquelme, F., Fudora-Suarez, Y., García Pérez, R., Fondevila, C. Normothermic perfusion and outcomes after liver transplantation. Transplantation Reviews. 33 (4), 200-208 (2019).
- Oniscu, G. C., et al. In situ normothermic regional perfusion for controlled donation after circulatory death- The United Kingdom Experience. American Journal of Transplantation. 14 (12), 2846-2854 (2014).
- Watson, C. J. E., et al. et al. In situ normothermic perfusion of livers in controlled circulatory death donation may prevent ischemic cholangiopahy and improve graft survival. American Journal of Transplantation. 19 (6), 1745-1758 (2019).
- Hessheimer, A. J., et al. Abdominal normothermic regional perfusion in controlled DCD liver transplantation: outcomes and risk factors for graft loss. American Journal of Transplantation. 22 (4), 1169-1181 (2022).
- Padilla, M., et al. Improved short-term outcomes of kidney transplants in controlled donation after the circulatory determination of death with the use of normothermic regional perfusion. American Journal of Transplantation. 21 (11), 3618-3628 (2021).
- Lomero, M., et al. Donation after circulatory death today: An updated overview of the European Landscape. Transplant International. 33 (1), 76-88 (2020).
- Dominguez-Gil, B., et al. Expanding controlled donation after the circulatory determination of death: Statement from an international collaborative. Intensive Care Medicine. 47 (3), 265-281 (2021).
- Levvey, B., et al. Influence of lung donor agonal and warm ischemic times on early mortality: Analyses from the ISHLT DCD Lung Transplant Registry. Journal of Heart and Lung Transplantation. 38 (1), 26-34 (2019).
- Van Raemdonck, D., et al. Donation after circulatory death in lung transplantation- Five-year follow-up form ISHLT Registry. Journal of Heart and Lung Transplantation. 38 (12), 1235-1245 (2019).
- Palleschi, A., et al. Lung transplantation from donation after controlled cardiocirculatory death. Systematic review and meta-analysis. Transplantation Reviews. 34 (1), 100513 (2020).
- Keshavamurthy, S., Rodgers-Fishl, P. Donation after circulatory death (DCD)-Lung procurement. Indian Journal of Thoracic and Cardiovascular Surgery. 37, 425-432 (2021).
- Oniscu, G. C., Siddique, A., Dark, J. Dual temperature multiorgan recovery from a Maastricht category III donor after circulatory death. American Journal of Transplantation. 14 (9), 2181-2186 (2014).
- Perera, M. T., Clutton-Brock, T., Muiesan, P. One donor, two types of preservation: First description of a donation after circulatory death donor with normothermic abdominal perfusion and simultaneous cold perfusion of lungs. Liver Transplantation. 20 (8), 1012-1015 (2014).
- Miñambres, E., et al. Improving the outcomes of organs obtained from controlled donation after circulatory death donors using abdominal normothermic regional perfusion. American Journal of Transplantation. 17 (8), 2165-2172 (2017).
- Miñambres, E., et al. Combined lung and liver procurement in controlled donation after circulatory death using normothermic abdominal perfusion. Initial experience in two Spanish centers. American Journal of Transplantation. 20 (1), 231-240 (2020).
- He, B., Han, X., Fink, M. A. Procurement of Abdominal Organs in Multi-Organ Donation in Deceased Donor. Organ Donation and Transplantation - Current Status and Future Challenges. Tsoulfas, G. , IntechOpen. London, UK. (2018).
- Baranski, A. Surgical Technique of the Abdominal Organ Procurement. , Springer London. London, UK. (2009).
- Tanaka, S., et al. Effect on the donor lungs of using abdominal normothermic regional perfusion in controlled donation after circulatory death. European Journal of Cardiothoracic Surgery. 59 (2), 359-366 (2021).
- Wind, J., Faut, M., Van Smaalen, T. C., Van Heurn, E. L. Variability in protocols on donation after circulatory death in Europe. Critical Care. 17 (5), 217 (2013).
- Perez-Villares, J. M., Rubio, J. J., Del Río, F., Miñambres, E. Validation of a new proposal to avoid donor resuscitation in controlled donation after circulatory death with normothermic regional perfusion. Resuscitation. 117, 46-49 (2017).
- Ausania, F., White, S. A., Pocock, P., Manas, M. Kidney damage during organ recovery in donation after circulatory death donors: Data from UK National Transplant Database. American Journal of Transplantation. 12 (4), 932-936 (2012).
- Ausania, F., White, S. A., Coctes, R., Hulme, W., Manas, D. M. Liver damage during organ donor procurement in donation after circulatory death compared with donation after brain death. British Journal of Surgery. 100 (3), 381-386 (2013).
- Palleschi, A., et al. Successful preservation and transplant of warm ischaemic lungs from controlled donors after circulatory death by prolonged in situ ventilation during normothermic regional perfusion of abdominal organs. Interactive Cardiovascular and Thoracic Surgery. 29 (5), 699-705 (2019).
- Caralt, M., et al. 34;Non-touch" vena cava technique as an improvement in combined lung and liver procurement in controlled donation after circulatory death. Transplantation Proceedings. 51 (1), 9-11 (2019).
- Miñambres, E., Rubio, J. J., Coll, E., Dominguez-Gil, B. Donation after circulatory death and its expansion in Spain. Current Opinion in Organ Transplantation. 23 (1), 120-129 (2021).
- Perez-Villares, J. M., et al. Mobile ECMO team for controlled donation after circulatory death. American Journal of Transplantation. 18 (5), 1293-1294 (2018).
- Rubio Muñoz, J. J., Domínguez-Gil, G., Miñambres García, E., del Rio Gallegos, F., Pérez-Villares, J. M. Papel de la perfusión normo térmica con oxigenación de membrana extracorpórea en la donación en asistolia controlada en España. Role of normothermic perfusion with ECMO in donation after controlled cardiac death in Spain. Medicina Intensiva. 46 (1), 31-41 (2021).
- Miñambres, E., et al. Spanish experience with heart transplants from controlled donation after the circulatory determination of death using thoraco-abdominal normothermic regional perfusion and cold storage. American Journal of Transplantation. 21 (4), 1597-1602 (2021).
- Messer, S., et al. Human heart transplantation from donation after circulatory-determined death donors using normothermic regional perfusion and cold storage. Journal of Heart and Lung Transplantation. 37 (7), 865-869 (2018).
- Suberviola, B., et al. Excellent long-term outcome with lungs obtained from uncontrolled donation after circulatory death. American Journal of Transplantation. 19 (4), 1195-1201 (2019).
- Actividad de donación y trasplante pulmonar España Organización Nacional de Trasplantes. , Spain. Available from: htpp://www.ont.es/infesp/Memorias/ACTIVIDAD%20DE%20DONACI%C3%93N%20Y%20TRANSPLANTE%20PULMONAR%20ESPA%C3%91A.pdf (2020).
