Summary
여기에서는 AT4G18020(APRR2)-AirID 단백질을 모델로 사용하여 오이(Cucumis sativus L.)에서 근접 라벨링(PL) 실험을 수행하기 위한 단계별 프로토콜을 제시합니다. 이 방법은 벡터의 구성, 아그로인 침투를 통한 구성물의 변형, 비오틴 침투, 단백질 추출 및 친화성 정제 기술을 통한 비오틴 표지 단백질의 정제를 설명합니다.
Abstract
포유류 세포와 식물에서 변형된 아스코르브산염 과산화효소(APEX) 또는 대장균 비오틴 리가아제 BirA(BioID로 알려짐)를 사용하는 근접 표지(PL) 접근법은 단백질-단백질 상호 작용(PPI)을 식별하는 데 성공적인 것으로 입증되었습니다. APEX, BioID 및 BioID의 개정판인 TurboID는 가치 있는 기술일 뿐만 아니라 몇 가지 제한 사항이 있습니다. 최근 개발된 AirID는 단백질-단백질 상호 작용에서 근접 식별을 위한 BioID의 새로운 버전으로, 이러한 제한을 극복했습니다. 기존에는 동물 모델에서 AirID를 사용했으나, 이번 연구에서는 식물에서 AirID를 사용하는 것을 입증했으며, 그 결과 AirID가 표적 단백질에 근접한 단백질 라벨링을 위해 BioID 및 TurboID와 같은 다른 PL 효소에 비해 식물 시스템에서 더 나은 성능을 발휘한다는 것을 확인했습니다. 다음은 AT4G18020(APRR2) 단백질을 모델로 사용하여 단백질 상호 작용 파트너를 식별하기 위한 단계별 프로토콜입니다. 이 방법은 벡터의 구성, 아그로인 침투를 통한 구성물의 변환, 비오틴 변환, 단백질 추출 및 친화성 정제 기술을 통한 비오틴 표지 단백질의 농축을 설명합니다. 그 결과 AirID는 식물의 PPI를 분석하기 위한 새롭고 이상적인 효소라는 결론을 내렸습니다. 이 방법은 식물의 다른 단백질을 연구하는 데 적용할 수 있습니다.
Introduction
다양한 세포 단백질은 생물학적으로 조절되는 시스템 하에서 작용하며, 단백질-단백질 상호작용(PPI)은 이 시스템의 일부이자 많은 세포 과정의 기초입니다. PPI 외에도 천연 단백질의 기능은 복합체, 유비퀴틴화 및 인산화의 형성과 같은 다양한 변형을 통해 번역 후 촉진됩니다. 따라서 PPI를 연구하는 것은 표적 단백질의 가능한 기능을 이해하는 데 중요합니다. PPI는 면역침전 후 질량 분석 분석(IP-MS 분석)1, 효모 2 하이브리드 시스템(Y2H)2, 무세포 기반 어레이3와 같은 다양한 기술을 사용하여 수행되었습니다. 이러한 방법은 연구 분야에서 다양한 중요한 발견을 탐구했습니다. 그러나 이러한 방법에는 몇 가지 단점이 있습니다. 예를 들어, Y2H는 대상 종의 Y2H 라이브러리를 구축해야 하는 시간과 비용이 많이 드는 전략입니다.
또한 Y2H 기술은 이종 단세포 진핵 생물인 효모를 사용하여 고등 진핵 세포의 세포 상태를 정확하게 반영할 수 없습니다. IP-MS는 소수성이 높은 단백질에 적합하지 않으며 약한 PPI를 포획하는 데 낮은 효율을 보입니다. 뉴클레오티드 결합 도메인, 류신이 풍부한 반복 함유(NLR) 단백질 및 수용체 유사 키나아제(RLK)와 같은 식물의 다양한 필수 단백질은 낮은 수준에서 발현되며 대부분 다른 단백질과 일시적으로 상호 작용합니다. 따라서 이러한 방법을 사용하는 것은 이러한 단백질의 조절의 기저에 있는 메커니즘을 이해하기에 충분하지 않습니다3.
근접 비오틴화(PB)라는 새로운 기술은 연구자들이 PPI를 식별하는 데 도움이 됩니다. PB는 관심 단백질(POI)에 부착되는 PL 효소에 의존하며, 파트너 단백질이 POI에 가까워지면 PL은 파트너 단백질에 화학적 비오틴 태그를 부착합니다. 또한, 태그된 단백질을 식별할 수 있으며, 어떤 파트너 단백질이 표적 단백질에 부착되는지 신속하게 알 수 있다5. 이전 연구에서는 BioID와 TurboID가 특히 식물에서 PPI를 위한 성공적인 도구임이 입증되었지만 특정 한계가 있습니다4. BioID는 파트너 단백질을 라벨링하기 위해 높은 수준의 비오틴이 필요하며, 이는 16시간 이상 소요됩니다. BioID에 비해 TurboID는 10분 안에 단백질을 라벨링하고 실온(RT)에서 파트너 단백질을 라벨링할 수 있기 때문에 더 유리합니다. 또한 특정 조건에서 세포에 독성이 있으며 관심 단백질과 상호 작용하지 않는 단백질에 태그를 붙입니다.
이러한 문제를 극복하기 위해 Kido 등이 개발한 AirID는 BioID와 AirID5 간의 염기서열 유사성이 82%이지만 나머지 라벨링 효소보다 더 효율적입니다. AirID의 효율성을 확인하기 위해 알려진 동료와 함께 POI를 사용하여 실험을 수행했습니다. 이 실험은 AirID가 의심할 여지 없이 식물 세포의 관련 단백질을 라벨링할 수 있음을 확인했습니다. AirID는 체외 및 세포에서 PPI를 분석하는 데 유용한 효소입니다. TurboID보다 독성이 적고 파트너가 아닌 사람을 태그하는 데 걸리는 시간이 적어 세포를 죽일 수 있습니다. 이는 AirID가 근접 비오틴화에 대해 다른 라벨링 효소보다 더 경쟁력이 있음을 보여줍니다. 더 정확하고, 시간이 걸리는 과정에서 더 많은 잠재력을 가지고 있으며, 시험관 내 및 살아있는 세포에서 독성이 적습니다. 현재 프로토콜은 AirID를 PL 효소로 사용하여 APRR2의 상호 작용 단백질을 식별하는 방법을 설명합니다. 또한, 이 방법은 식물 종의 PPI를 조사하기 위해 다른 단백질에 적용할 수 있습니다.
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Protocol
1. 식물 재료의 준비
- Cucumis sativus (오이)는 실험 분석에 사용됩니다. 씨앗을 물에 넣고 50 °C에서 20 분 동안 배양 한 다음 12-16 시간 동안 페트리 판의 여과지에 씨앗을 놓습니다.
- 그 후, 씨앗을 토양이 들어있는 화분 (상업적으로 구입)으로 옮기고 23 °C 온도와 16 시간 밝은 광주기 및 8 시간 어두운 광주기의 기후 챔버에서 자랍니다.
- 성공적인 아그로인 침투를 위해 식물이 3 또는 4 잎 단계에 도달 할 때까지 3-4 주 동안 기후 챔버에서 식물을 유지하십시오.
2. AirID 구성
- APRR2를 표적 단백질로 사용하고 콜리플라워 모자이크 바이러스 35S promoter(p35S: APRR2-AirID)로 APRR2-AirID를 구축합니다. 이를 Gateway 호환 이진 벡터 pEarleyGate1006(캔자스 주립 대학의 Kathrin Schrick 박사 제공)에 도입하고 보충 파일 1에 제공된 서열에 따라 PL 효소를 직접 합성합니다.
3. 유능한 세포의 준비
- DH5α competent cell의 제조
- 2mL의 LB(트립톤 10g/L, 효모 추출물 5g/L, NaCl 10g/L, pH = 7.0)를 대장균 DH5α 세포(해동하지 않고 냉동 육수에서 직접)와 함께 접종하고 37°C에서 밤새 성장(O/N)합니다.
- O/N 배양액의 0.1%-0.5% 접종물을 100mL의 LB 배지에 새로 접종하고 OD600 이 0.4-0.6 사이가 될 때까지 세포를 성장시킨 다음 4°C에서 30분 동안 배양합니다.
- 배양액을 2개의 50mL 원심분리기 튜브에 넣고 4°C에서 5분 동안 2500 x g으로 회전시킵니다.
- 상층액을 버리고 세포를 10mL의 0.1M 얼음처럼 차가운CaCl2에 재현탁시키고 15분 동안 얼음 위에 둡니다. 2500 x g 의 셀을 4°C에서 5분 동안 회전시킵니다.
- 1mL의 얼음처럼 차가운 0.1M CaCl2 + 20% 글리세롤에 세포를 재현탁시키고 각 1.5mL 튜브에 100μL를 분취시키고 즉시 -80°C에서 보관합니다.
- GV3101 competent cell의 제조
- 2mL의 LB(겐타마이신 50μg/mL 및 리팜피신 25μg/mL 함유)를 단일 GV3101 콜로니로 접종합니다. 250rpm에서 흔들면서 28°C에서 배양액 O/N을 배양합니다.
- LB 200mL를 포화 하룻밤 배양액 1mL와 함께 접종합니다. OD 250이 28°C에서 배양하면서600rpm 에서 배양액을 0.5로 흔듭니다.
- 배양액을 사전 냉각된 멸균 50mL 원심분리 튜브 4개로 옮기고 얼음 위에서 30분 동안 발효합니다.
- 세포를 2500 x g에서 4°C에서 10분 동안 펠렛합니다. 상층액을 버리고 펠릿을 얼음 위에 놓습니다.
- 세포를 10mL의 0.1M 얼음처럼 차가운 CaCl2 용액에 재현탁시킵니다. 세포를 미리 냉각된 50mL Oakridge 튜브 하나에 함께 모읍니다.
- 세포를 1,000 x g 에서 4 °C에서 5 분 동안 펠렛합니다. 상층액을 버리고 10mL의 얼음처럼 차가운 CaCl2 용액에 세포를 재현탁시킵니다. 얼음 위에 30분 동안 놓습니다.
- 세포를 1,000 x g에서 4 °C에서 5 분 동안 펠렛합니다. 상층액을 버리고 2mL의 0.1M 얼음처럼 차가운CaCl2 용액에 세포를 재현탁시킵니다.
- 세포를 사전 냉각된 멸균 폴리프로필렌 튜브에서 50μL 부분 표본으로 분주합니다. 셀을 -80 °C에서 보관하십시오.
4. 농업 침투
- 먼저, 플라스미드를 아그로박테리아(agrobacterium)로 옮깁니다
- 2.1단계에서 생성된 플라스미드 2.5μL를 agrobacterium tumefaciens GV3101 균주의 competent cell에 옮기고 얼음 위에서 30분 동안 배양합니다.
- 플라스미드와 competent cell이 들어있는 튜브를 액체 질소로 3분 동안 옮깁니다.
- 인큐베이터에서 37°C에서 5분 동안 열충격을 가한 다음 튜브를 얼음 위에 2분 동안 놓습니다.
- 1,000μLof LB 배지(트립톤 10g/L, 효모 추출물 5g/L, NaCl 10g/L, pH = 7.0)를 아그로박테리움에 넣고 30°C 및 118rpm에서 1시간 동안 배양합니다.
- 3,000 x g 에서 4 °C에서 2 분 동안 원심 분리합니다.
- 용액의 상단 800μL를 버리고 나머지 용액을 혼합합니다. 그런 다음 LB에 플레이트를 올립니다(4.1.4단계에서 언급한 바와 같이 플라스미드의 경우 한천과 50μg/mL 카나마이신, GV3010 유능한 세포의 경우 50μg/mL 겐타마이신 및 25μg/mL 리팜피신을 첨가). 플레이트를 30°C에서 48시간 동안 배양합니다.
참고: 관심 유전자를 확인하기 위해 일부 콜로니를 선택하고 PCR을 수행하는 것이 좋습니다7.
- 플레이트에서 일부 박테리아 콜로니를 집어 LB 배지와 적절한 항생제에 넣습니다(4.1.6단계 참조). 30 °C 및 218 rpm에서 36-48 시간 동안 배양합니다.
- 세포를 3,000 x g에서 2분 4°C 동안 원심분리합니다. 아그로인 여과 완충액(10 mM MgCl2, 10 mM MES, pH = 5.6, 250 μM 아세토시링곤)에서 세포를 OD600 = 1.0으로 재현탁시킵니다.
- 1mL 바늘 없는 주사기를 사용하여 (abaxial) 표피의 접종물(4.3단계에서 생성)을 침투시킵니다.
참고 : 전체 리프에 침투하고 복제를 선택하는 것이 좋습니다. 4-5개의 식물에 대해 하나의 구조를 사용합니다. 각 잎에 대해 1.5mL의 재현탁 농균이면 충분합니다. - 23°C에서 16시간 빛(약 75μmol·m-2·s-1)과 8시간 어두운 광주기로 기후 챔버에서 36시간 동안 식물을 유지합니다.
- 36시간의 작제물 침투 후 1mL의 5μM 비오틴(10mMMgCl2 용액)을 이미 여과된 작제물의 잎에 침투시킵니다.
- 잎 조직을 수확하기 전에 처리된 식물을 추가로 4-12시간 동안 유지합니다.
참고: 이전 연구에 따르면 표적 단백질은 36시간에 최고조에 달하므로 36hpi 비오틴 침투 4,6을 선택하십시오. 비오틴의 배양 기간은 대상 연구에 따라 다르지만 현재 실험에 따르면 8시간의 배양 기간이 단백질 라벨링에 더 적합합니다.
5. 샘플 수집
참고: 검체 채취를 위한 모든 물질은 케라틴 오염을 방지하기 위해 멸균되어야 하며, 모든 프로토콜 단계는 오염이 없는 환경에서 수행되어야 합니다.
- 침투된 잎을 자르고 빠르게 액체 질소로 옮겨 단백질 분해를 방지합니다.
- 면역블롯 분석을 통한 단백질의 사전 검출수행 6; 이것은 Co-immunoprecipitation(Co-IP) 전에 적극 권장됩니다.
6. 잎에서 총 단백질 추출
- 유봉과 절구를 사용하여 잎을 갈고 2x PBS-BSA PH 7.4 1mL를 빠르게 넣고 천천히 갈아줍니다.
- 15mL 원뿔형 튜브를 가져다가 원뿔형 튜브 위에 급속 여과 재료 필터를 놓고 빠른 여과 재료 필터를 통해 샘플 혼합물을 튜브로 옮긴 다음 얼음 위에 보관합니다.
- 샘플을 2mL 튜브로 옮기고 1% 단백질 억제제 칵테일을 추가합니다.
- 내용물을 상하로 7-8회 돌려 혼합하고 1,000 x g 에서 4°C에서 2분 동안 원심분리합니다.
- 샘플의 상부 용매를 새 2mL 튜브로 옮기고 10% β-D-말토사이드(β-DM)를 넣고 얼음 위에 5분 동안 둡니다. 20,000 x g 에서 4°C에서 10분 동안 원심분리합니다.
7. 탈염 컬럼의 평형을 맞춥니다
- 컬럼을 1,000 x g 에서 4°C에서 1분 동안 원심분리합니다.
알림: 컬럼의 한쪽을 표시하고 모든 원심분리 과정에서 표시된 면이 바깥쪽을 향하도록 합니다. - 컬럼의 상단 및 하단 커버를 제거하고 4°C에서 2분 동안 1,000 x g 의 원심분리기를 제거합니다.
- 컬럼의 수집 튜브에서 액체 용액을 버리고 세척을 위해 5mL의 1x PBS 완충액을 추가합니다.
- 컬럼을 1,000 x g 에서 4°C에서 2분 동안 원심분리합니다.
- 7.3단계와 7.4단계를 5회 이상 반복합니다.
8. 자석 구슬 세척
- 1.5mL 튜브에 50μL의 스트렙타비딘-C1 복합 마그네틱 비드를 추가합니다.
- 세척을 위해 1x PBS-BSA 1mL를 넣고 잘 섞은 다음 자석 스탠드에 3분 동안 놓습니다. 상층액을 버리십시오.
- 8.2단계를 세 번 이상 반복합니다.
- 세탁할 때마다 튜브를 마그네틱 랙에 올려 비드를 튜브의 한쪽으로 흡착시켜 세탁 버퍼를 제거합니다.
9. 비오틴화 단백질의 농축
- 시료 2mL를 컬럼에 넣고 4°C에서 8분 동안 1,000 x g 으로 원심분리합니다.
- 탈염된 단백질 추출물 1mL를 50μL의 스트렙타비딘-C1 복합 마그네틱 비드에 첨가하여 평형을 이룹니다.
- 튜브를 정상 속도로 로테이터에 올려 용액이 완전히 혼합되고 실온(RT)에서 30분 동안 배양되도록 합니다.
- 비드를 마그네틱 랙에 놓고 RT에서 3분 동안 또는 튜브의 한쪽에 모일 때까지 올려 상층액을 부드럽게 제거합니다.
- 세척 완충액 I 1mL(물에 2% SDS)를 첨가하고 회전기에서 2분 동안 상온으로 회전하고 9.4단계를 반복합니다.
- 세척 완충액 II 1mL(50mM HEPES: pH = 7.5, 500mM NaCl, 1mM EDTA, 0.1% 데옥시콜산[w/v] 및 1% Triton X-100)를 추가한 후 튜브를 RT에서 2분 동안 놓습니다. 9.4단계를 반복합니다.
- 세척 완충액 III 1mL(10mM Tris-HCl: pH = 7.4, 250mM LiCl, 1mM EDTA, 0.1% 데옥시콜산[w/v], 1% NP40[v/v])를 넣고 셰이커를 사용하여 RT에서 2분 동안 회전합니다. 그런 다음 9.4단계를 반복합니다.
- 세제를 제거하려면 1.7mM Tris-HCl 50 (pH = 7.5)를 넣고 9.4 단계를 반복하십시오. 이 단계를 한 번 더 반복합니다.
- RT에서 50mM 중탄산 암모늄 완충액 1mL에서 각각 2분 동안 비드를 6회 세척하고 9.4단계를 반복합니다.
- 50 mM Tris-HCl (pH 8.0), 12 % (w / v) 자당 (Suc), 2 % (w / v) 리튬 라 우릴 설페이트 및 1.5 % (w / v) 디티 오 트레이톨을 함유 한 단백질 추출물 50 μL를 비드에 첨가하고 100 ° C에서 5 분 동안 인큐베이터에서 열 충격을 가하고 9.4 단계를 따릅니다. LC-MS/MS 분석을 위해 상층액을 -80°C에서 보관합니다.
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Representative Results
선행 연구에 따르면, 오이 유전자 APRR2 는 백색의 미성숙 과일 색을 조절하는 후보 유전자이다8. 여기서는 오이에서 APRR2 의 상호작용 파트너 단백질을 찾기 위해 AirID를 근접 표지 효소로 사용하는 프로토콜을 개발했습니다. 작제물을 오이 잎으로 옮기고, 침투 후 36시간 후, 비오틴을 옮겼다. 48시간 후 성공적인 형질전환을 확인하기 위해 웨스턴 블롯 분석을 위해 샘플을 채취했습니다. 단백질은 웨스턴 블롯에 대한 프로토콜에서 위에서 언급한 바와 같이 추출되었습니다. 그림 1 의 대표 데이터는 침윤된 오이 잎에서 단백질 발현과 비오틴화를 나타냈으며, 이는 새로 수정된 기술을 기반으로 예상되는 결과였습니다. 그 결과, 대조군에 비해 표지된 단백질과 여분의 띠의 발현 수준이 더 높았습니다. 이를 통해 AirID가 관심 유전자(GOI)의 표적 단백질에 성공적으로 태그를 지정했음을 확인할 수 있습니다. 또한, 항 플래그 항체 및 항 마우스 항체를 사용하여 결과를 확인했으며, 이는 항 플래그 항체를 가진 표적 밴드를 성공적으로 보여주었습니다(그림 2). 웨스턴 블롯 분석을 통한 확인 후, 위에서 언급한 프로토콜을 사용하여 Co-IP를 추가로 수행했으며, 그림 3과 같이 침윤 잎의 비오틴화된 단백질을 질량 분석 분석을 위해 성공적으로 농축했습니다. 스트렙타비딘 C1 복합 자성 비드로 비오틴화된 단백질을 농축한 후 크기가 다른 여러 단백질이 관찰되었으며 웨스턴 블롯 분석에서 번진 띠가 발견되었습니다(그림 3).
그림 1: streptavidin-HRP를 사용하여 AirID의 기능을 확인하기 위해 잎으로 형질전환한 후 단백질의 웨스턴 블롯 분석. 이 그림은 비오틴화된 단백질이 구성된 형질전환된 샘플에 대해 4개의 독립적인 복제를 갖는다는 것을 확인합니다. 야생형 잎을 대조군으로 사용했습니다. 각 반복에 대해 10μL의 샘플이 웨스턴 블랏 분석을 위해 로드되었습니다. Streptavidin-HRP(1:6000 희석)를 사용하여 다양한 샘플에서 비오틴화된 단백질을 분석했습니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
그림 2: Taq 염기서열을 검출하기 위해 잎으로 형질전환한 후 단백질의 웨스턴 블롯 분석. 3x-Flag 태그 서열을 관심 유전자와 융합하여 성공적인 형질전환을 확인했습니다. taq 서열은 모든 형질전환된 샘플에서 웨스턴 블롯 분석을 통해 확인되었습니다. 야생형 오이 잎 샘플을 대조군으로 사용했습니다. 총 10 μL의 시료를 웨스턴 블랏 분석을 위해 로딩하였고, 1:3000 희석시 anti-flag를 제1 항체로, anti-mouse를 1:10000 희석시 제2 항체로 사용하여 결과를 확인하였다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
그림 3: 단백질 추출물의 면역블롯 분석. Co-immunoprecipitation(Co-IP) 후, streptavidin-HRP를 사용하여 Cucumis sativus (오이)의 아그로인 침윤 잎에서 비오틴화된 단백질의 웨스턴 블롯 분석을 수행했습니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
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Discussion
이번 실험에서 AirID는 근접 라벨링에 사용되었으며, Kido 등은 대규모 게놈 데이터 세트와 5개의 기존 BirA 효소를 사용하여 조상 효소 재구성 알고리즘을 통해 개발했습니다5. 무작위 돌연변이는 동적 서열 변화를 일으킬 수 없기 때문에 활성 9,10을 향상시키기 위해 전통적인 진화 단백질 공학에서 무작위 돌연변이가 사용되었습니다. 다른 PL 효소와 비교할 때 AirID에는 몇 가지 장점이 있습니다. 이전에는 이 PL 방법이 동물 시스템에만 적용되었습니다. 이 연구에서는 식물의 단백질-단백질 상호 작용을 조사하는 데 사용되었습니다. 이 프로토콜은 잎 샘플 준비, 유리 비오틴 제거, 추출된 단백질 정량화, 비오틴화된 단백질 농축을 포함하여 식물에 AirID 기반 PL을 단계별로 설정하는 방법을 설명합니다.
오이에서 잘 확립된 Agrobacterium 매개 일시적 발현을 사용하여 이 접근법은 오이에서 관심 있는 표적 단백질의 PPI를 찾는 데 사용됩니다. 일시적인 발현은 융합 단백질의 과발현을 초래할 수 있습니다. AirID 융합은 또 다른 중요한 고려 사항인 관심 대상 단백질의 기능을 방해하지 않는지 확인하기 위해 테스트해야 합니다. 그러나 PL은 일시적이거나 약한 PPI를 검출하기 위해 표준 IP-MS 기술에 비해 몇 가지 이점을 제공하지만 몇 가지 제한 사항도 있습니다. 무엇보다도, 후보 상호작용 단백질을 발견하는 것은 자동으로 미끼 단백질과의 직간접적인 상호작용을 의미하는 것이 아니라, 미끼 단백질9에 대한 근접성을 반영한다. PPI는 PPI를 추가로 검증하기 위해 수행할 수 있는 독립적인 분석(예: 공동 면역침전, BiFC(BiMolecular Fluorescence Complementation) 또는 in vitro GST-풀다운 분석)을 사용하여 in vivo에서 추가로 검증할 수 있습니다.
이 연구는 AirID의 근위 비오틴화 활성이 TurboID보다 현저히 낮다는 것을 발견했습니다. 시험관 내 및 세포 내에서 TurboID는 가장 높은 근위 비오틴화 활성을 보였습니다. 이 효소는 10분 이내에 비오틴화 9,11에 활용될 수 있습니다. 그러나 6시간 이상 장기간 배양하고 더 높은 비오틴 농도를 위해 처리된 세포에서 가장 높은 TurboID 활성은 튜불린 및 GFP(예: 50mM 비오틴)와 같은 예상치 못한 단백질에서 추가 비오틴화를 유도했습니다. PPI의 근위 비오틴화 효소로 사용되는 것과는 대조적으로, TurboID는 비오틴 표지 효소 4,6,5,7로 처음 보고되었습니다. TurboID가 PPI를 평가하는 경우 셀에서 약 1시간의 짧은 시간과 같은 제한 조건에서 가장 잘 작동합니다. AirID, 튜불린의 비오틴화 및 GFP는 TurboID 비오틴화에서 관찰된 것과 동일한 조건에서 발견되지 않았습니다. AirID-융합 단백질은 스트렙타비딘 풀다운 분석 및 LC-MS/MS 분석5에 의해 입증된 바와 같이 두 과도 현상 모두에서 잘 알려진 각 상호작용기의 비오틴화가 가능한 것으로 밝혀졌습니다. 낮은 ATP 농도(1mM)에서 비오티노일-5-AMP의 형성은 TurboID보다 AirID에서 더 강했습니다. 더 높은 농도를 선호하는 TurboID보다 낮은 농도의 비오틴(5mM 비오틴 포함 또는 비오틴 보충제 없음)을 선호합니다. 또한, LC-MS/MS를 이용한 비오틴화 부위를 조사한 결과, AirID 비오틴화는 근처의 Lys 잔기에서 고유한 염기서열 선호도 없이 발생했으며, 이는 비오틴화 과정이 비우선적이었음을 나타낸다5. BioID와 AirID의 염기서열 유사성은 82%이지만, AirID는 상호작용하는 단백질에 대해 높은 비오틴화 활성을 보였다. Kido et al., 2020은 AirID가 체외 및 세포에서 단백질-단백질 상호 작용을 분석할 수 있음을 발견했습니다. 그들의 발견은 AirID에 의존하는 비오틴화가 화합물의 PPI 분석에 유용할 수 있음을 시사합니다. 표적 단백질의 생체 내 파트너를 식별하는 것은 생물학적 기능을 이해하는 데 매우 중요하며12,13 새로운 PPI를 밝혀냈으므로 BioID를 사용한 생체 내 근접 비오틴화는 수많은 연구에서 사용되었습니다. 비오틴을 보충한 경우에도 AirID의 안정적인 발현은 세포 성장 억제를 초래하지 않았으며, 이는 AirID 융합 단백질의 발현이 매우 낮은 독성을 나타낸다5. AirID는 PPI에 의존하는 비오틴화 정확도를 함께 향상시킬 것으로 예상됩니다. 요약하면, AirID는 식물의 PPI 분석에 이상적이라는 결론을 내렸습니다.
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Disclosures
저자들은 이해 상충이 없다고 선언했습니다.
Acknowledgments
이 연구는 중국 국립 자연 과학 재단 (X.H.에 보조금 번호 32000197), 중국 박사후 과학 재단의 특별 재정 보조금 (X.H.에 보조금 번호 2019T120467)의 지원을 받았습니다.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Acetosyringone | Beijing solaribo science and technology Co.Ltd | S1519 | |
| Acryl/Bis 30% solution | Sangon Biotech (Shanghai) Co.Ltd | 1510KA4528 | |
| Agar | BioFroxx GmbH | D64683 | |
| Agarose | tsingke (Shanghai) Co.Ltd | TSJ001 | |
| Ammonium bicarbonate | Sangon Biotech (Shanghai) Co.Ltd | G313BA0018 | |
| Biotin | BBI life Sciences | G908BA0012 | |
| CaCl2 | BBI life Sciences | E209BA0008 | |
| Competent cells GV3101 | Made in the current experiment | ||
| Desalting column | Thermo scientific | WC321753 | |
| Deoxycholic acid | Sangon Biotech (Shanghai) Co.Ltd | G818BA0029 | |
| DH5α competent cells | Made in the current experiment | E.coli DH5α | |
| β-D-maltoside | Beijing Scolario Science and Tech Co.Ltd | S818 | |
| EDTA | Sangon Biotech (Shanghai) Co.Ltd | E104BA0029 | |
| Glycine | Sangon Biotech (Shanghai) Co.Ltd | 161BA0031 | |
| HEPES | Beijing solaribo science and technology Co.Ltd | H8090 | |
| LiCl | Sangon Biotech (Shanghai) Co.Ltd | H209BA0003 | |
| MES | Beijing solaribo science and technology Co.Ltd | M8019 | |
| MiraCloth | EMD Milipore Corp/MERCK kgAa Darmstadt, Germenay | 3429963 | Quick filtration material filter |
| MgCl2 | Beijing solaribo science and technology Co.Ltd | 20200819 | |
| NaCl | Sangon Biotech (Shanghai) Co.Ltd | H324BA0003 | |
| NP40 | Sangon Biotech (Shanghai) Co.Ltd | N8030 | |
| Protein inhibitor cocktail | Beijing Scolario Science and Tech Co.Ltd | S3450 | |
| PVDF | BIO-RAD | 5820172 | |
| SDS | Beijing Scolario Science and Tech Co.Ltd | S1015 | |
| Silwet | Sangon Biotech (Shanghai) Co.Ltd | S9430 | |
| Streptavidin-C1-conjugated magnetic beads | Enriching Biotechnology | 7E511E1 | Magnetic beads |
| TEMED | Servicebio | G2056 | |
| Triton X-100 | Sangon Biotech (Shanghai) Co.Ltd | GB03BA007 | |
| Tris-HCl | Sangon Biotech (Shanghai) Co.Ltd | F828BA0020 | |
| Tryptone | Thermo scientific | LP0042 |
References
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