Summary

用于评估小鼠心力衰竭模型心率依赖性舒张功能的起搏控制程序

Published: July 21, 2023
doi:

Summary

本方案描述了通过经食管起搏获得压力-容积关系,这是评估心力衰竭小鼠模型舒张功能的宝贵工具。

Abstract

射血分数保留型心力衰竭 (HFpEF) 是一种以舒张功能障碍和运动不耐受为特征的疾病。虽然运动应激血流动力学测试或 MRI 可用于检测舒张功能障碍和诊断人类的 HFpEF,但这种方式在使用小鼠模型的基础研究中受到限制。跑步机运动试验通常用于小鼠的此目的,但其结果会受到体重、骨骼肌力量和精神状态的影响。在这里,我们描述了一种心房起搏方案,用于检测舒张性能的心率(HR)依赖性变化,并验证其在HFpEF小鼠模型中的有用性。该方法包括麻醉、插管和进行压力-容积 (PV) 环分析,同时进行心房起搏。在这项工作中, 通过 左心室心尖入路插入电导导管,并在食管中放置心房起搏导管。在用伊伐布雷定减慢心率之前收集基线 PV 环。 通过 心房起搏以 400 bpm 至 700 bpm 的 HR 增量收集和分析 PV 环路。使用该协议,我们在代谢诱导的HFpEF模型中清楚地证明了HR依赖性舒张功能障碍。与对照组小鼠相比,弛豫时间常数(Tau)和舒张末期压力-容积关系(EDPVR)均随着HR的增加而恶化。总之,这种心房起搏控制方案可用于检测 HR 依赖性心功能障碍。它为研究HFpEF小鼠模型中舒张功能障碍的潜在机制提供了一种新方法,并可能有助于开发针对这种情况的新疗法。

Introduction

心力衰竭是全球住院和死亡的主要原因,射血分数保留型心力衰竭 (HFpEF) 约占所有心力衰竭诊断的 50%。HFpEF 的特征是舒张功能障碍和运动耐量受损,相关的血流动力学异常,如舒张功能障碍,可以通过运动应激血流动力学测试或 MRI 扫描 1,2 清楚地检测到。

然而,在实验模型中,用于评估与 HFpEF 相关的生理异常的可用模式是有限的 3,4。跑步机运动试验 (TMT) 用于确定跑步时间和距离,这可能反映运动应激心脏血流动力学;然而,这种方法容易受到体重、骨骼肌力量和精神状态等外来变量的干扰。

为了规避这些限制,我们设计了一种心房起搏方案,该方案根据心率 (HR) 检测舒张性能的细微但关键的变化,并验证了其在 HFpEF5 小鼠模型中的有用性。有几个生理因素会影响与运动相关的心脏功能,包括交感神经和儿茶酚胺反应、外周血管舒张、内皮反应和心率6.然而,其中,心率-压力关系(也称为鲍迪奇效应)被称为心脏生理特征的关键决定因素 7,8,9

该方案涉及在基线时进行常规压力-容积分析,以评估收缩压和舒张功能,包括压力发展速率 (dp/dt)、收缩末期压力-容积关系 (ESPVR) 和舒张末期压力-容积关系 (EDPVR) 等参数。然而,应该注意的是,这些参数受心率的影响,由于动物的内在心率不同,心率可能因动物而异。此外,还应考虑麻醉对心率的影响。为了解决这个问题,通过与伊伐布雷定同时进行心房起搏来标准化心率,并以增量心率进行心脏参数测量。值得注意的是,HR依赖性心脏反应将HFpEF小鼠与对照组小鼠区分开来,而在基线PV环测量(使用固有心率)中未观察到显着差异5。

虽然这种起搏协议可能看起来相对复杂,但当它被充分理解时,它的成功率超过 90%。该协议将为研究HFpEF小鼠模型中舒张功能障碍的潜在机制提供有用的方法,并有助于开发针对这种情况的新疗法。

Protocol

该动物方案已获得机构动物护理和使用委员会的批准,并遵循东京大学动物实验和相关活动的规定。本研究以8-12周龄雄性C57/Bl6J小鼠为研究对象。这些动物是从商业来源获得的(见 材料表)。如前所述,通过与NG-硝基-L-精氨酸甲酯一起给予高脂肪饮食15周来建立HFpEF模型10。 1. 导管准备和压力/体积校准 将电导导管放入生理盐…

Representative Results

基线PV环路数据如图1和表1所示。在基线(没有起搏的情况下),对照组和HFpEF小鼠之间的舒张期参数(如弛豫时间常数(Tau)、最小压力变化率(dP / dt min)和EDPVR没有显着差异。然而,HFpEF小鼠表现出更高的血压和动脉弹性(Ea),如图1所示,并在心室收缩期间表现出典型的山形PV环。这应与心室肌肉直接接触压力传感器引起的尖峰区分开…

Discussion

我们提出了一种方法来评估压力-容积与经食管起搏应用的关系。运动不耐受是HFpEF的关键特征之一,但尚无技术可用于评估运动期间小鼠的心脏功能。我们的起搏方案为检测舒张功能障碍提供了有价值的工具,这在静息条件下可能并不明显。

为了获得准确和一致的质量的PV回路,必须仔细执行以下步骤3,4,5,7,8,11,12,13,14:(1)必须小心地<sup cl…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

这项工作得到了福田医疗技术基金会(ET和GN)和JSPS KAKENHI科学研究资助21K08047(ET)的研究资助。

Materials

2-0 silk suture, sterlie Alfresa Pharma Corporation, Osaka, Japan 62-9965-57 Surgical Supplies
2-Fr tetrapolar electrode catheter Fukuda Denshi, Japan and UNIQUE MEDICAL, Japan custom-made Surgical Supplies
Albumin Bovine Serum Nacalai Tesque, Inc., Kyoto, Japan 01859-47 Miscellaneous
C57/BI6J mouse Jackson Laboratory animals
Conductance catheter Millar Instruments, Houston, TX PVR 1035
Electrical cautery, Electrocautery Knife Kit ellman-Japan,Osaka, Japan 1-1861-21 Surgical Supplies
Etomidate Tokyo Chemical Industory Co., Ltd., Tokyo Japan E0897 Anesthetic
Grass Instrument S44G Square Pulse Stimulator Astro-Med, West Warwick, RI Pacing equipment
Isoflurane Viatris Inc., Tokyo, Japan 8803998 Anesthetic
Ivabradine Tokyo Chemical Industory Co., Ltd., Tokyo Japan I0847 Miscellaneous
LabChart software ADInstruments, Sydney, Australia LabChart 7 Hemodynamic equipment
MPVS Ultra Millar Instruments, Houston, TX PL3516B49 Hemodynamic equipment
Pancronium bromide Sigma Aldrich Co., St. Louis, MO 15500-66-0 Anesthetic
PE10 polyethylene tube Bio Research Center  Co. Ltd., Tokyo, Japan 62101010 Surgical Supplies
PowerLab 8/35 ADInstruments, Sydney, Australia PL3508/P Hemodynamic equipment
PVR 1035 Millar Instruments, Houston, TX 842-0002 Hemodynamic equipment
Urethane (Ethyl Carbamate) Wako Pure Chemical Industries, Ltd., Osaka, Japan 050-05821 Anesthetic
Vascular Flow Probe Transonic, Ithaca, NY MA1PRB Surgical Supplies

References

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Cite This Article
Numata, G., Takimoto, E. A Pacing-Controlled Procedure for the Assessment of Heart Rate-Dependent Diastolic Functions in Murine Heart Failure Models. J. Vis. Exp. (197), e65384, doi:10.3791/65384 (2023).

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