Este artigo descreve como bioimprimir hidrogéis fototáveis em 3D para estudar o enrijecimento da matriz extracelular e a ativação de fibroblastos.
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Artigo de método
Este artigo descreve como bioimprimir hidrogéis fototáveis em 3D para estudar o enrijecimento da matriz extracelular e a ativação de fibroblastos.
Os hidrogéis fotosajustáveis podem transformar-se espacial e temporalmente em resposta à exposição à luz. A incorporação desses tipos de biomateriais em plataformas de cultura celular e o desencadeamento dinâmico de mudanças, como o aumento da rigidez microambiental, permite aos pesquisadores modelar as mudanças na matriz extracelular (MEC) que ocorrem durante a progressão da doença fibrótica. Neste trabalho, é apresentado um método para bioimpressão 3D de um biomaterial hidrogel fototável capaz de duas reações sequenciais de polimerização dentro de um banho suporte de gelatina. A técnica de bioimpressão Freeform Reversible Embedding of Suspended Hydrogels (FRESH) foi adaptada ajustando-se o pH do banho de suporte para facilitar uma reação de adição de Michael. Primeiro, a biotinta contendo poli(etilenoglicol)-alfa metacrilato (PEGαMA) foi reagida fora da estequiometria com um reticulante degradável por células para formar hidrogéis moles. Esses hidrogéis moles foram posteriormente expostos ao fotoinibidor e à luz para induzir a homopolimerização dos grupos não reagidos e enrijecer o hidrogel. Este protocolo abrange síntese de hidrogel, bioimpressão 3D, fotoenrijecimento e caracterizações de desfechos para avaliar a ativação de fibroblastos em estruturas 3D. O método aqui apresentado permite aos pesquisadores bioimprimir em 3D uma variedade de materiais que sofrem reações de polimerização catalisadas por pH e pode ser implementado para projetar vários modelos de homeostase, doença e reparo tecidual.
A bioimpressão 3D é uma tecnologia transformadora que permite aos pesquisadores depositar com precisão células e biomateriais em volumes 3D e recriar a complexa estrutura hierárquica dos tecidos biológicos. Na última década, avanços na bioimpressão 3D criaram tecidos cardíacos humanos batidos1, modelos funcionais de tecidos renais2, modelos de trocas gasosas dentro do pulmão3 e modelos tumorais para pesquisa de câncer4. A invenção de técnicas de bioimpressão 3D incorporadas, como a bioimpressão Freeform Reversible Embedding of Suspended Hydrogel (FRESH), tornou possível rep....
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1. Síntese e caracterização de PEGαMA
NOTA: A síntese de poli(etilenoglicol)-alfametacrilato (PEGαMA) foi adaptada de Hewawasam e col. e realizada em condições livres de umidade9.
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Este protocolo descreve como bioimprimir hidrogéis fototáveis em 3D dentro de um banho de suporte para criar construções capazes de enrijecimento dinâmico e temporal para estudar a ativação de fibroblastos em geometrias que mimetizam tecidos humanos. Primeiro, o protocolo explicou como sintetizar PEGαMA, a espinha dorsal desse sistema polimérico fotosintonizável. Medidas de espectroscopia de ressonância magnética nuclear (RMN) mostraram sucesso na funcionalização do PEGαMA em 96,5% (Figura 1.......
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Reações de polimerização em duplo estágio em resposta à exposição controlada à luz podem enrijecer biomateriais com controle espacial e temporal. Vários estudos têm utilizado essa técnica para avaliar interações célula-matriz em diversas plataformas5,8,9,10,11,21,22,23.
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Os autores não têm conflitos de interesse a declarar. Partes deste manuscrito são reproduzidas com permissão da © IOP Publishing https://doi.org/10.1088/1758-5090/aca8cf. 5 Todos os direitos reservados.
Os autores gostariam de agradecer ao Dr. Adam Feinberg (Carnegie Mellon University) e àqueles que organizaram o 3D Bioprinting Open-Source Workshop. Esses indivíduos possibilitaram o aprendizado das técnicas de bioimpressão FRESH e a construção da bioimpressora 3D utilizada para esses estudos. Além disso, os autores gostariam de agradecer Biorender.com, que foi usado para produzir figuras neste manuscrito. Este trabalho foi apoiado por vários grupos ou fontes de financiamento, incluindo a Rose Community Foundation (DDH e CMM), um Colorado Pulmonary Vascular Disease Research Award (DDH e CMM), a National Science Foundation sob Award 1941401 (CMM), o Departamento do Exé....
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| Nome | Empresa | Número de catálogo | Comentários |
|---|---|---|---|
| Kit de Radiômetro/Fotômetro AccuMax | Spectronics Corporation | XPR-3000 | Para medir a intensidade da luz, usado para fotoendurecer |
| Ácido Acético | Fisher Scientific | BP2401-500 | Usado durante a síntese de PEGaMA |
| Acetona | Fisher Scientific | A184 | Usado com as criosseções |
| ActinGreen 488 ReadyProbes | Fisher Scientific | R37110 | Usado para coloração de |
| folha de alumínio | Reynolds | F28028 | |
| Tetrahidrofurano anidro (THF) | Sigma-Aldrich | 401757-1L | Usado durante a síntese de PEGaMA |
| Argônio Gás Comprimido | Airgas | AR R300 | Usado durante a síntese de PEGaMA |
| 8 Arm Poli(etilenoglicol)-hidroxila (PEG-OH) | JenKem Technology | 8ARM-PEG-10K | Usado durante a síntese de PEGaMA |
| 365 nm Filtro passa-banda | Edmund Optics | 65-191 | Usado para fotoendurecimento |
| Albumina de soro bovino (BSA) | Fisher Scientific | BP9700-100 | Usado durante o processo de coloração |
| Buchner Funnel | Quark Glass | QFN-8-14 | Usado durante a síntese de PEGaMA |
| Calcein AM | Invitrogen | 65-0853-39 | Usado durante o processo de coloração |
| Celite 545 (Auxiliar de filtração) | EMD Millipore | CX0574-1 | Usado durante a síntese de PEGaMA |
| Lâminas de microscópio carregadas | Globe Scientific | 1358W | |
| Clorofórmio-d | Sigma-Aldrich | 151823-10X0.75ML | Usado para caracterizar o PEGaMA |
| Click-iT Plus EdU Kit de Proliferação de Células | Invitrogen | C10637 | Usado para colorir |
| tubos cônicos de 50 mL | CELLTREAT | 667050B | |
| Kit de Segurança Criogênica | Cole-Parmer | EW-25000-85 | |
| Criostato | Leica | CM 1850-3-1 | |
| Tubo de Diálise | Repligen | 132105 | |
| 4',6-Diamidino-2-Phylindole (DAPI) | Sigma-Aldrich | D9542-1MG | Usado para coloração |
| Éter Dietílico | Fisher Scientific | E1384 | Usado durante a síntese de PEGaMA |
| 1,4-Dithiothreitol (DTT) | Sigma-Aldrich | 10197777001 | componente Bioink |
| Dulbecco's Modified Eagle's Medium (DMEM) | Cytiva | SH30271. | |
| Papel de Filtro | Whatman | 1001-090 | Usado durante a síntese de PEGaMA |
| Sistema de Liofilização Freezone 2.5L | Labconco | LA-2.5LR | Liofilizador |
| Fusion 360 | Autodesk | N/A | Download de software |
| Seringa à prova de gás de 2,5 mL | Hamilton | 81420 | Usado para bioimpressão |
| 15 Gauge 1.5" IT Series Tip | Jensen Global | JG15-1.5X | Usado para bioimpressão |
| 30 Gauge 0.5" HP Series Tip | Jensen Global | JG30-0.5HPX | Usado para bioimpressão |
| de cabra Anti-Mouse Alexa Fluor 555 Anticorpo | Fisher Scientific | A21422 | Usado para coloração |
| Glycine | Fisher Scientific | C2H5NO2 | Usado durante o processo de coloração |
| Hemocitômetro | Fisher Scientific | 1461 | |
| Hoechst | Thermo Scientific | 62249 | Usado durante o processo de coloração |
| Fibroblastos adventícios da artéria pulmonar humana (HPAAFs) | AcceGen | ABC-TC3773 | De um paciente do sexo masculino de 2 anos de idade |
| Ácido Clorídrico (HCl) | Fisher Scientific | A144-500 | Usado para ajustar o pH das soluções |
| ImageJ | National Institutes of Health (NIH) | N/A | Download gratuito de software |
| ImmEdge® Caneta | Vector Laboratories | H-4000 | Usado durante o processo de coloração |
| Incubadora | VWR | VWR51014991 | |
| LifeSupport Pasta de micropartículas de gelatina (pasta de gelatina) | Advanced Biomatrix | 5244-10GM | Usado para bioimpressão |
| Microscópio de luz Microscópio de luz | invertida | Olympus | CKX53 |
| Lítio Phenyl-2,4,6-Trimethylbenzoilfosfinato ( LAP) | Sigma-Aldrich | 900889-5G | Fotoiniciador usado para fotoendurecimento |
| de Nitrogênio Líquido | N/A | N/A | |
| LulzBot Mini 2 | LulzBot | N/A | Bioprinter adaptado |
| Metacriloxietil Tiocarbamoil Rodamina B | Policiências Inc. | 669775-30-8 | |
| pistões capilares CP1000 | VWR | 76178-166 | pipeta do deslocamento positivo das pontas |
| Sigma-Aldrich | M32631-4L | 2-Methylbutane | |
| (KCGGPQGIWGQGCK) | GL Biochem | N/A | Bioink componente |
| Mouse Anti-Human αSMA Monoclonal Anticorpo | Fisher Scientific | MA5-11547 | Usado para coloração |
| Série OmniCure 2000 | Lumen Dynamics | S2000-XLA | Fonte de luz UV usada para fotoendurecimento |
| Paraformaldeído (PFA) | Ciências de Microscopia Eletrônica | 15710 | Usado para fixar amostras |
| Medidor de pH | Mettler Toledo | FP20 | |
| Tiras de pH | Cytiva | 10362010 | |
| solução salina tamponada com fosfato (PBS) | Hyclone Laboratories, Inc. | Cytiva SH30256. | |
| Conjunto de Pipetas | Fisher Scientific | 14-388-100 | |
| 10 µ L Pontas de Pipeta | USA Scientific | 1120-3710 | |
| 20 µ L Pontas de Pipeta | USA Scientific | 1183-1510 | |
| 200 µ L Pontas de Pipeta | USA Scientific | 1111-0700 | |
| 1000 µ L Pontas de Pipeta | USA Scientific | 1111-2721 | |
| Poli(Etilenoglicol)-Alfa Metacrilato (PEGα MA) | N/A | N/A | Consulte o manuscrito para as etapas de síntese |
| Poli(Óxido de Etileno) (PEO) | Sigma-Aldrich | 372773-250G | Pipeta de Deslocamento Positivo do componente Bioink |
| Fisher | Scientific | FD10004G | 100-1000 µ L |
| Hidróxido de Potássio (KOH) | Sigma-Aldrich | 221473-500G | Usado para ajustar o pH das soluções |
| ProLong Gold Antifade Reagent | Invitrogen | P36930 | Usado durante o processo de coloração |
| Pronterface | All3DP | N/A | Download do software |
| Iodeto de Propídio | Sigma-Aldrich | P4864-10ML | Usado para coloração |
| do Peptídeo RGD (CGRGDS) | GL Biochem | N/A | Componente Bioink |
| Rocker | VWR | 10127-876 | |
| Evaporador Rotativo | Thomas Scientific | 11100V2022 | Usado durante a síntese de PEGaMA |
| Grampos | Elástico | 808659 | |
| Schlenk Flask | Kemtech America | F902450 | Usado durante a síntese de PEGaMA |
| Slic3r | Slic3r | N/A | Download do software |
| Meio de Crescimento de Células de Músculo Liso-2 (SmGM-2) BulletKit | Lonza | CC-3182 | O kit contém componentes CC-3181 e CC-4149 |
| Hidreto de Sódio | Sigma-Aldrich | 223441-50G | Usado durante a síntese de PEGaMA |
| Sorvall ST 40R | Centrifuge Fisher Scientific | 75-004-525 | |
| Stir Bar | VWR | 58948-091 | |
| Filtro de seringa | VWR | 28145-483 | Usado para esterilizar soluções de filtro |
| T-75 Balão tratado com cultura de tecidos VWR | 82050-856 | Usado para trabalho | |
| Tissue-Tek Cyromold | Sakura | 4557 | |
| Composto Tissue-Tek O.C.T (OCT) | Sakura | 4583 | |
| Tris(2-Carboxietil) Fosfina (TCEP) | Sigma-Aldrich | C4706-2G | |
| Triton X-100 | Fisher Biorreagents | C34H622O11 | Usado durante o processo de coloração |
| Trypan Blue | Sigma-Aldrich | T8154-20ML | Usado para cultura de células trabalho |
| 0,05% Tripsina-EDTA | Gibco | 25-300-062 | Usado para trabalho de cultura de células |
| Tween 20 | Fisher Bioreagents | C58H114O26 | Usado durante o processo de coloração |
| Microscópio Vertical | Olympus | BX63F | Capacidades do microscópio fluorescente |
| Banho-maria | PolyScience | WBE20A11B | |
| Placas de cultura de tecidos de 24 poços | Corning | 3527 |
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