Name: İlköğretim İnsan Kemik İliği ve Maligniteleri Eğitim Bir Üç boyutlu Doku Kültürü Modeli (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-03-08T15:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 51 s
Description: Keşfedin, insan kemik iliği hücrelerini fizyolojik mikroçevrede yetiştirmek için üç boyutlu doku kültürü modelini kullanmayı. Bu yöntem, hücre davranışlarını in vivo koşullarda çalışmanıza olanak tanır.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Bu çalışma Sağlık Bakanlığı, Ulusal Kanser Enstitüsü (1R21CA141039), BD Biosciences Araştırma Bursu Ödülü, Kanser için Purdue University Center Amerikan Kanser Derneği Kurumsal Araştırma Bursu (IRG # 58-006-53), Ulusal Sağlık Enstitüleri hibe tarafından finanse edildi Araştırma ve Sağlık Araştırma ve Alberta Kanser Araştırma Kurulu Girişimleri Programı Kanada Enstitüleri. MP Ulusal Sağlık Enstitüleri, Ulusal Kanser Enstitüsü, Kanser Önleme Staj Programı tarafından desteklenmiştir (R25CA128770; PI: D. Teegarden) Onkolojik Bilimler Merkezi ve Purdue Üniversitesi Discovery Öğrenme Araştırma Merkezi tarafından yönetilmektedir.

1.. Advance Hazırlık <ol><li> 4 ° C&#39;de steril serolojik pipet ve pipet uçları tutun Sorun Giderme: oda sıcaklığında (RT) Matrigel jeller, soğuk pipet ve ipuçlarını kullanarak kültür kurulumu sırasında jelleşmesini Matrigel önleyecektir. </li><li> Gece boyunca 4 ° C&#39;de Matrigel bir şişe çözülme. </li></ol> 2. Reaktifler hazırlanması <ol><li> Fibronektin stok çözeltisinin hazırlanması: damıtılmış su, 100 ml 100 mg insan fibronektin eritilerek fibronektinin bir 1 mg / ml stok çözeltisi olun. En fazla 6 ay boyunca 4 ° C &#39;de fibronektin çözündükten sonra steril filtre, kısım ve mağaza. Sorun: fibronektin hızlı bir şekilde çözülür, 37 ° C&#39;de bir su banyosu kümesindeki bir kaç dakika için bir çözüm inkübe etmezse </li><li> 10x PBS hazırlanması: 80 g sodyum klorid NaCl, 14.4 g Na 2 HPO 4, 2 g KCI ve 2.4 g KH 2 PO çözündürülür <sub&gt; damıtılmış su, 1 L 4. 7.4 steril filtre pH ayarlama, ve en fazla 6 ay boyunca 4 ° C&#39;de saklayın. </li><li> Nötralizasyon tampon 20 preparasyonu: 1 M HEPES ve 10x PBS solüsyonları kullanılarak 2 x fosfat tamponlu tuzlu su (PBS) içinde 100 mM HEPES içeren bir solüsyon yapın. 7.0 çözeltinin pH ayarlayın. 2-3 ay boyunca 4 ° C&#39;de saklayın. </li><li> Fare kuyruk kolajeni tip 2 mg / ml eriyiğinin hazırlanması I: nötralizasyon tamponu (adım 2.3) de bir 2 mg / ml kolajen I çözüm olun. Düşük hızda çözüm vorteks ve aşağı yukarı pipetleme ve hafifçe karıştırın. Bu kollajen çok viskoz gibi, pipetleme sırasında hava kabarcıklarının oluşmasını önlemek. Bu her zaman yeni kolajen I çözelti hazırlamak için tavsiye edilir. Kullanılana kadar buz üzerinde tutun çözeltisi. </li><li> Endosteal kaplama (parçalamak) hazırlanması: 1x &amp; in, 2 mg / ml kolajen I stok (2.1 ve 2.4 &#39;e adımları) 77 ug / ml&#39; lik bir nihai konsantrasyona kadar ve 29 ug / ml ile 1 mg / ml stok, sırasıyla fibronektin karıştırın# 160; steril PBS. Mix ve 1 aya kadar 4 ° C&#39;de saklayın. </li><li> Yeniden kemik matrisi (RBM) hazırlanması: <ol><li> Buz üzerinde ön soğutma 1.5 ml mikrosantrifüj tüpleri. Her zaman buz üzerinde bütün matris çözümleri tutun. </li><li> 4 parça Matrigel (Matrigel konsantrasyon çok partiye değişiklik gösterir, ancak önemsiz varyasyonlar olduğu bulunmuştur), 1 mg / ml fibronektin 2.5 parça ve ilk pipetleme Matrigel ile buz üzerinde 2 mg / ml kolajen I halinde 1 parça karıştırın Tüp soğuk pipet uçları kullanılarak ve daha sonra Matrigel 4 ° C üzerinde sıcaklıklarda katılaşan başlar, bu Matrigel pipetleme ise hızlı bir şekilde çalışacak fibronektin ve kollajen I. ekleyin. Kabarcıkları tanıtan önlemek, aşağı yukarı pipetleme ve çok yavaşça matrisi karıştırın. RBM karıştırma sırasında buz üzerinde tüpler tutun. </li></ol></li><li> Kemik iliği büyüme ortamı (BMGM) hazırlanması: 6.2 x 10 -4 M CaCl2, 10 -6 M sodyum süksinat, 10 -6 M hidrokortizon,% 20 insan plazması içeren (BMGM 500 ml olunRPMI-1640), normal ve sağlıklı vericilerden veya hastalardan toplanan habis ve% 1 penisilin / streptomisin. CaCl2, sodyum süksinat, hidrokortizon ve ek 1000 x stok çözeltiler olarak&gt; 6 ay boyunca -80 ° C&#39;de saklanabilir. Hücre hatları büyüme olduğunda, fetal sığır serumu (FBS), insan plazma için ikame edilebilir. </li><li> % 10 luk nötral tamponlu formalin (NBF) hazırlanması:% 10 v / v de PBS 1x% 37 formaldehit stok solüsyonu ekleyin İyice karıştırın ve ışıksız bir ortamda 2-3 hafta boyunca oda sıcaklığında saklayın. </li><li> % 1 sığır serum albümini (BSA) hazırlanması: BSA uygun miktarda tartılır ve 1 x PBS içinde çözülür. 4 ° C&#39;de saklayın ve 1 hafta içinde kullanın. BSA çözüm daha uzun süreler için buzdolabında muhafaza edilmesi durumunda kontamine almak eğilimindedir. Seçenek olarak ise, BSA çözeltisi, uzun süreli depolama için parçalara ayrılmış ve -20 ° C de dondurulabilir. Donma-çözülme döngüleri kaçının. </li><li> Hücre elde çözeltisi (CRS) hazırlanması: 5 mM EDTA, 1 mM sodyum vanadat (Na &lt;Yap1x PBS sub&gt; 3 VO 4) ve 1.5 mM sodyum flüorür (NaF) çözeltisi. 6 aya kadar 4 ° C&#39;de steril filtre ve mağaza. </li></ol> 3. Malign olmayan ve Malign İnsan BM Hücreleri Gömülü 3-D Kültürü <ol><li> Üreticinin talimatlarına göre Ficoll-Plaque gradyan santrifüj ile primer mononükleer hücreleri BM arındırın. İsteğe bağlı adım: hücreler kültür süresi boyunca hücre çoğalmasını takip etmek, üretici talimatlarına göre 0,25 uM carboxyfluorescein diasetat süksinimidil ester (CFSE) ile etiketlenebilir. Sorun Giderme: hücreler CFSE boyama sonra ölürsem, konsantrasyon hücre türüne bağlıdır olarak CFSE miktarını titre; 0.25 mikron birincil BM mononükleer hücreler için iyi çalışır. </li><li> 48-çukurlu bir doku kültür plakasının her tedavi oyuğuna parçalamak çözeltisinin 65 ul ekle. Kuyunun tüm yüzeyini kapsayacak şekilde eşit olarak yayıldı ve çözelti&gt; 30 kuluçkalayınoda sıcaklığında min. </li><li> Bir 48-yuvalı plaka içinde çukur başına 1 x PBS içinde 10 ul 0.5 x 10 6 hücre yoğunluğunda hücre süspansiyonu hazırlayın. Bir 1.5 ml mikrosantrifüj tüpü içinde, göz başına RBM matris 100 ul hücre süspansiyonu karıştırılır. Hafifçe aşağı yukarı pipetleme hücreleri ve RBM matris karıştırın; kabarcıkları tanıtan kaçının. Matrisin jelleşmesini önlemek için buz üzerinde hücre / matris karışımı tutun. Not: RBM sistemi tam olarak ölçeklenebilir, kullanılan plakanın yüzey alanına dayalı tüm reaktifleri (matrisler ve orta) miktarlarını ayarlamak olmayan bir 48-çukurlu formatta, sistemi kurmak için. Buna göre kaplama için hücre sayısını Scale. </li><li> Kalan parçalamak aspire ve bir kuyunun merkezi haline hücre / matris karışımı ekleyin. Hızlı, eşit kuyunun bütün yüzeyini kapsayacak şekilde hücre / matris karışımı yayıldı. 37 ° C de 30-60 dakika için plakayı,% 5 CO2 doku kültürü kuluçka makinesi matris katılaşmaya izin vermek. Sallamayın ya da dis etmeyinKuluçka sırasında plakayı TURB. Sorun Giderme: RBM hücrelerin eşitsiz dağılımını önlemek kaplama için de önce karıştırın. Her 5. de tüpün altına yerleşen hücreleri önlemek için kaplama sonrası karıştırın. Bir kez kaplama, hücreler, matris içinde yüzey gerilimi nedeniyle kuyunun dibine çöker yoktur. Sorun Giderme: RBM hücrelerin eşitsiz dağılımını önlemek kaplama için de önce karıştırın. Her 5. de tüpün altına yerleşen hücreleri önlemek için kaplama sonrası karıştırın. Bir kez kaplama, hücreler, matris içinde yüzey gerilimi nedeniyle kuyunun dibine çöker yoktur. </li><li> Bir su banyosu içinde ön ısıtılması BMGM 37 ° C olarak ayarlanmış </li><li> 30 dakika sonra, matris doğru ayarlanmış olduğunu kontrol edin, bu plaka hareket ettirildiğinde hareket etmiyor tabakası gibi yumuşak bir jel oluşturur. Sıcak BMGM 1 ml hücre / matris katmanı kaplar. Çok nazikçe matris pipet orta yırtılmasını önlemek için kullanıyor (drop-by-damla dağıtım)serolojik bir pipet. 37 ° C, istenilen süre boyunca% 5 CO2 doku kültürü inkübatöründe ve kültür içine monte RBM kültür yerleştirin. Not: Hücre canlılığı, orta değiştirmeden en az 30 gün boyunca muhafaza edilir; ortam değişim gerekli ise, sadece her zaman ortam% 50 değiştirin. Kritik adım: Soğuk sıcaklığı önceden ayarlanmış matris rahatsız olabilir gibi orta soğuk olmadığı önemlidir. Bu yumuşak matris katmanı bozabilir de matriks üstüne orta fışkırtma dikkat çekmek. Sorun: RBM sisteminde hücre canlılığı düşük ise, hücre yoğunluğu BM sıvıda primer mononükleer hücrelerde hem diğer hücrelerde ile çalışırken deneysel olarak tespit edilmesi gerekebilir. Hücre hatları ile birlikte çalışırken, ölümsüzleştirilmiş hücre hatları, primer hücrelerde daha hızlı prolifere olarak, hücre sayısı 10-kat azaltılır. </li></ol> 4. &#39;In-matris&#39; Görüntüleme <ol><li><strong&gt; Işık mikroskopisi <ol><li> Resim parlak alan kullanılarak doğrudan RBM olarak kültürlenmiş hücreler, diferansiyel-interferans-kontrast (DIC), konfokal veya matris yaklaşık olarak 1 mm kalınlığında olduğu gibi uzun mesafe görüntüleme izin veren herhangi bir diğer görüntüleme teknikleri. Yukarıdan aşağıya görüntüye tüm kültür mikroskoplar çok üzerinde mevcut Z-yığın özelliğini kullanın. </li></ol></li><li> İmmünofloresan boyama İpucu: Aşağıdaki immünoboyama protokol boyama / yıkama solüsyonları aspire önlemek için, yerine plakasını eğilme ve bir pipet kullanarak çözüm çıkarın. <ol><li> Bir pipet kullanarak BMGM çıkarın ve RT 1x PBS içinde 100 ul / yıkama / well ile 2-3 kez yıkayın. Yeterince PBS kuyunun tüm yüzeyini kapsayacak şekilde kullanıldığından emin olun. </li><li> Oda sıcaklığında 15 dakika boyunca% 10 luk NBF (48-çukurlu bir plaka için) 100 ul / yuva eklenerek matris içinde, hücreler. NBF çıkarın ve RT 1x PBS 100 ul / yıkama / kuyu ile iki kez hücreleri yıkayın. Not: Bu matris sıvılaştırabilen soğuk NBF kullanmaktan kaçının. </li><li> , Gece boyunca PBS çıkarın antikorların spesifik olmayan bağlanmayı bloke etmek için oda sıcaklığında ya da 4 ° C &#39;de, 1 saat boyunca% 1 BSA ekleyin. </li><li> Gerekli seyreltme,% 1 BSA içinde primer antikor çözeltisi hazırlayın. Seyreltme üretici ile kontrol veya optimal bir antikor konsantrasyonunu belirlemek için titre, her bir antikor için değişecektir. Primer antikor solüsyonu, 100 ul / oyuk ilave edin ve üreticinin talimatlarına uygun olarak inkübe edin. Kritik adım: florofor ya da floresan boyalar konjüge edilmiş antikorları içeren tüm inkübasyonlar karanlıkta yapılmalıdır. </li><li> Birincil antikor çözeltisini çıkarın ve 5 dakika için 1 x PBS ile 3 kez yıkayın. </li><li> Dolaylı immünofloresans boyama için, oda sıcaklığında 1 saat için floresan prob konjüge edilmiş ikincil bir antikor ile inkübe edin. Üretici tarafından önerilen yoğunlukta% 1 BSA içinde antikorların seyreltin. </li><li> Ikincil a çıkarınntibody çözeltisi ve 5 dakika süre ile 1x PBS ile 3 kez yıkayın. Sorun: yüksek bir arka plan önlemek için görüntüleme sırasında, floresan konjuge sekonder antikor titre ve yeterli sinyal sağlayan en düşük konsantrasyonu kullanın. Yüksek arka plan hala bir sorun varsa, yıkama adımların sayısını ve süresini artırmak veya doğrudan konjuge primer antikorlar kullanmak ve adımı 4.2.6 atlayın. </li><li> Çekirdekleri üretici tarafından önerilen dilüsyonda, &#39;,6-diamidino-2-fenilindol (DAPI), nükleer boyama çözeltisi 4 eklemek leke ve oda sıcaklığında 7-10 dakika boyunca inkübe etmek. </li><li> Nükleer boyama çözeltisini çıkarın ve 5 dakika süre ile 1x PBS ile 2x yıkayın. </li><li> Son yıkamadan gelen PBS çıkarın ve floresan korumak için numune üzerinde, montaj orta bir damla (normal set) ekleyin. Bir floresan veya konfokal mikroskop uygun uyarma / emisyon ayarları kullanarak görüntü. Not: Görüntüleme boyama 2 gün içinde yapılmalıdırmatris ve RBM bütünlüğü ve flüoresan sinyal kaybı kaybı bozulmasını önlemek için. Hemen görüntülenmiş Değilse, lekeli örnekleri görüntüleme kadar, ışıktan korunan, 4 ° C&#39;de tutulmalıdır. </li></ol></li></ol> 5. RBM ikinci Hücre İzolasyonu <ol><li> Matris katmanı bozmadan nazikçe orta çıkarın. Aspire etmeyin. </li><li> Yıkama hücreler steril 1 x PBS ile 2x. Aspire etmeyin. </li><li> Her bir oyuğa, buzla soğutulmuş CRS 0.5 ml ilave edilir ve kuvvetli bir şekilde yukarı ve aşağı pipetleme ile, hücreleri ile birlikte tüm matris çıkartılmamalıdır. Bir 1.5 ml mikrosantrifüj tüpü içinde hücreleri, matris ve CRS toplayın. Buz üzerine yerleştirin. </li><li> Aynı oyuğuna ilave bir 0.5 mi CRS ekleyin ve geri kalan malzeme toplamak. Aynı mikrosantrifüj tüpüne transfer edin. </li><li> Vortex hücreleri, matris ve CRS karışımı ve 1 saat boyunca buz üzerinde inkübe edilir. Vortex hücreleri her 15 dakika matrisinden salınmasını kolaylaştırmak için. </li><li> 1 saat, görünür bir kümeleri sonra karışımın kontrolmatrisin mevcut olması gerekmektedir. Sorun: matris kümeleri 1 saat sonra hala görünür ise, daha büyük bir boru transfer hücre / matris / CRS kanşımı, CRS ek 2-5 ml ekleyin ve ek bir 30-60 dakika boyunca inkübe edin. </li><li> 4 ° C&#39;de 5-10 dakika süreyle 1000 rpm&#39;de CRS Santrifüj hücreleri Süpernatantı ve soğuk 1 x PBS içinde 1 ml hücre pelletini. </li><li> 5-10 dakika 1.000 rpm&#39;de santrifüj ve süpernatant kaldırmak. PBS yıkandıkları bir kez daha tekrarlayın. </li><li> İkinci PBS yıkama matris ve izole edilmiş hücrelerden hücreleri kurtarma sitometresi in vivo nakli, vb akış, DNA / RNA / protein izolasyonu gibi herhangi bir alt uygulamalar için kullanılabilir tamamlar. </li></ol>

<ol><li>Carrel, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((On+the+Permanent+Life+of+Tissues+Outside+of+the+Organism%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Exp.+Med%22%5BJournal%5D)">On the Permanent Life of Tissues Outside of the Organism.</a> J. Exp. Med. 15, 516-528 (1912).</li>
<li>Harrison, R. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Observations+on+the+living+developing+nerve+fiber%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Soc.+Exp.+Biol.+Med%22%5BJournal%5D)">Observations on the living developing nerve fiber.</a> Proc. Soc. Exp. Biol. Med. 4, 140-143 (1907).</li>
<li>Earle, W. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Production+of+malignancy+in+vitro.+IV.+The+mouse+fibroblast+cultures+and+changes+seen+in+the+living+cells%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Natl.+Cancer+Inst%22%5BJournal%5D)">Production of malignancy in vitro. IV. The mouse fibroblast cultures and changes seen in the living cells.</a> J. Natl. Cancer Inst. 4, 165-212 (1943).</li>
<li>Gey, G. O., Coffman, W. D., Kubicek, M. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tissue+Culture+Studies+of+the+Proliferative+Capacity+of+Cervical+Carcinoma+and+Normal+Epithelium%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Res%22%5BJournal%5D)">Tissue Culture Studies of the Proliferative Capacity of Cervical Carcinoma and Normal Epithelium.</a> Cancer Res. 12, 264-265 (1952).</li>
<li>Barcelloshoff, M. H., Aggeler, J., Ram, T. G., Bissell, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Functional-Differentiation+and+Alveolar+Morphogenesis+of+Primary+Mammary+Cultures+on+Reconstituted+Basement-Membrane%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Functional-Differentiation and Alveolar Morphogenesis of Primary Mammary Cultures on Reconstituted Basement-Membrane.</a> Development. 105, 223-227 (1989).</li>
<li>Lamb, R., Ambler, C. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Keratinocytes+propagated+in+serum-free%2C+feeder-free+culture+conditions+fail+to+form+stratified+epidermis+in+a+reconstituted+skin+model%5BTitle%5D)+AND+%22PloS+One%22%5BJournal%5D)">Keratinocytes propagated in serum-free, feeder-free culture conditions fail to form stratified epidermis in a reconstituted skin model.</a> PloS One. 8, (2013).</li>
<li>Duong, H. S., Le, A. D., Zhang, Q. Z., Messadi, D. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+3-dimensional+culture+system+as+an+in+vitro+model+for+studying+oral+cancer+cell+invasion%5BTitle%5D)+AND+%22Int.+J.+Exp.+Pathol%22%5BJournal%5D)">A novel 3-dimensional culture system as an in vitro model for studying oral cancer cell invasion.</a> Int. J. Exp. Pathol. 86, 365-374 (2005).</li>
<li>Kirshner, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+unique+three-dimensional+model+for+evaluating+the+impact+of+therapy+on+multiple+myeloma%5BTitle%5D)+AND+%22Blood%22%5BJournal%5D)">A unique three-dimensional model for evaluating the impact of therapy on multiple myeloma.</a> Blood. 112, 2935-2945 (2008).</li>
<li>Gudjonsson, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Normal+and+tumor-derived+myoepithelial+cells+differ+in+their+ability+to+interact+with+luminal+breast+epithelial+cells+for+polarity+and+basement+membrane+deposition%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Cell+Sci%22%5BJournal%5D)">Normal and tumor-derived myoepithelial cells differ in their ability to interact with luminal breast epithelial cells for polarity and basement membrane deposition.</a> J. Cell Sci. 115, 39-50 (2002).</li>
<li>Kirshner, J., Chen, C. J., Liu, P., Huang, J., Shively, J. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((CEACAM1-4S%2C+a+cell-cell+adhesion+molecule%2C+mediates+apoptosis+and+reverts+mammary+carcinoma+cells+to+a+normal+morphogenic+phenotype+in+a+3D+culture%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci+U.S.A%22%5BJournal%5D)">CEACAM1-4S, a cell-cell adhesion molecule, mediates apoptosis and reverts mammary carcinoma cells to a normal morphogenic phenotype in a 3D culture.</a> Proc. Natl. Acad. Sci U.S.A. 100, 521-526 (2003).</li>
<li>Weaver, V. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Reversion+of+the+malignant+phenotype+of+human+breast+cells+in+three-dimensional+culture+and+in+vivo+by+integrin+blocking+antibodies%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Reversion of the malignant phenotype of human breast cells in three-dimensional culture and in vivo by integrin blocking antibodies.</a> J. Cell Biol. 137, 231-245 (1997).</li>
<li>Gunn, E. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+natural+products+parthenolide+and+andrographolide+exhibit+anti-cancer+stem+cell+activity+in+multiple+myeloma%5BTitle%5D)+AND+%22Leukemia+Lymphoma%22%5BJournal%5D)">The natural products parthenolide and andrographolide exhibit anti-cancer stem cell activity in multiple myeloma.</a> Leukemia Lymphoma. 52, 1085-1097 (2011).</li>
<li>Hsiao, A. Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((384+hanging+drop+arrays+give+excellent+Z-factors+and+allow+versatile+formation+of+co-culture+spheroids%5BTitle%5D)+AND+%22Biotechnol.+Bioeng%22%5BJournal%5D)">384 hanging drop arrays give excellent Z-factors and allow versatile formation of co-culture spheroids.</a> Biotechnol. Bioeng. 109, 1293-1304 (2012).</li>
<li>Meads, M. B., Gatenby, R. A., Dalton, W. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Environment-mediated+drug+resistance%3A+a+major+contributor+to+minimal+residual+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Rev.+Cancer%22%5BJournal%5D)">Environment-mediated drug resistance: a major contributor to minimal residual disease.</a> Nat. Rev. Cancer. 9, 665-674 (2009).</li>
<li>Golde, D. W., Cline, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Growth+of+Human+Bone-Marrow+in+Liquid+Culture%5BTitle%5D)+AND+%22Blood%22%5BJournal%5D)">Growth of Human Bone-Marrow in Liquid Culture.</a> Blood. 41, 45-57 (1973).</li>
<li>Gartner, S., Kaplan, H. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Long-Term+Culture+of+Human-Bone+Marrow-Cells%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+Biol%22%5BJournal%5D)">Long-Term Culture of Human-Bone Marrow-Cells.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. Biol. 77, 4756-4759 (1980).</li>
<li>Caligaris-Cappio, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Role+of+bone+marrow+stromal+cells+in+the+growth+of+human+multiple+myeloma%5BTitle%5D)+AND+%22Blood%22%5BJournal%5D)">Role of bone marrow stromal cells in the growth of human multiple myeloma.</a> Blood. 77, 2688-2693 (1991).</li>
<li>Pike, B. L., Robinson, W. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Human+bone+marrow+colony+growth+in+agar-gel%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Cell.+Physiol%22%5BJournal%5D)">Human bone marrow colony growth in agar-gel.</a> J. Cell. Physiol. 76, 77-84 (1970).</li>
<li>Bug, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rho+family+small+GTPases+control+migration+of+hematopoietic+progenitor+cells+into+multicellular+spheroids+of+bone+marrow+stroma+cells%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Leukocyte+Biol%22%5BJournal%5D)">Rho family small GTPases control migration of hematopoietic progenitor cells into multicellular spheroids of bone marrow stroma cells.</a> J. Leukocyte Biol. 72, 837-845 (2002).</li>
<li>Provenzano, P. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Collagen+reorganization+at+the+tumor-stromal+interface+facilitates+local+invasion%5BTitle%5D)+AND+%22BMC+Med%22%5BJournal%5D)">Collagen reorganization at the tumor-stromal interface facilitates local invasion.</a> BMC Med. 4, (2006).</li>
<li>Tancred, T. M., Belch, A. R., Reiman, T., Pilarski, L. M., Kirshner, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Altered+Expression+of+Fibronectin+and+Collagens+I+and+IV+in+Multiple+Myeloma+and+Monoclonal+Gammopathy+of+Undetermined+Significance%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Histochem.+Cytochem%22%5BJournal%5D)">Altered Expression of Fibronectin and Collagens I and IV in Multiple Myeloma and Monoclonal Gammopathy of Undetermined Significance.</a> J. Histochem. Cytochem. 57, 239-247 (2009).</li>
</ol>

Yazarlar herhangi bir çıkar çatışması beyan ederim.

RBM modeli BM hücresel kompozisyonu kadar 30 gün boyunca ex vivo korunur kapsamlı bir sistem sağlar. Onların fonksiyonu yakından in vivo bulunan BM mimarisini taklit göre RBM kendini katmanlaştırma yetişen BM hücreler. Ayrıca, bu çoklu miyelom klon 8 genişlemesi için izin veren ilk sistemdir. BM hücrelerinin güçlü büyüme ve kültür genel başarı sağlanması için en önemli adımlar şunlardır: 1)&gt;% 70 canlılığı ve kırmızı kan hücreleri daha çok serbest ile BM hücrelerinin sağlıklı bir nüfus eld...

Doku kültürü dokunulmamış organizmalar çeşitli işlemleri karşılaştırırken sistemik değişkenliği en aza indirmek için, bir kontrollü bir ortamda hücre davranışını incelemek için geliştirilmiştir. Bu yöntem, ilk olarak 1900&#39;lerin başında 1,2 kurulan ve doku eksplantlar bir cam tabak içinde ex vivo kültürlenmiş bir teknik anlamına gelir edildi. 1900&#39;lü yılların ortalarında sistem oldukça sağlam dokuların parçaları daha dağınık hücreleri büyümek için uyarlanmış ve terimleri &#39;doku kültürü&#39; ve &#39;hücre kültürü&#39; 3 eşanlamlı oldu. Bu tür geleneksel hücre kültürü sistemlerinde çeşitli hücre büyüme faktörü ile desteklenmiş büyüme ortamı ile kaplanmış doku kültür plastiğin yüzeyi üzerinde yetiştirilir. Yapışık hücre kültürü, hücre eklemek ve hücrelerin süspansiyon içinde yayılır doku kültürü plastik ve yapışkan olmayan kültürleri, yayılmış: kültürler iki tip çeşitli hücre yapışma kapasitesine göre ortaya çıkmıştır. Hücrenin ilk günlerinden beriKültür, çok ölümsüz hücre çizgileri örneğin HeLa 4, ilk insan kanser hücre çizgisi olarak, yaratılmıştır. Bu hücre hatları, hücre kültürü içinde süresiz olarak çoğalma kapasitesine sahip ve en canlılığını korumak için özel bir muamele gerekmez. Orijinal hücre kültürü yöntemleri indirgemeci yaklaşım, hücre canlılığı ve çoğalmasını sürdürmek için gereken minimum bileşenleri içerecek şekilde mümkün olduğu kadar sistem basitleştirmek için tasarlanmıştır. Ancak, basitleştirilmiş hücre kültürü yaklaşımlar sonlu ömrü ile ex vivo en temel insan hücre tiplerini desteklemek için başarısız. Bu nedenle, yeni bir kültür sistemleri böylece hücre eksplantlan fizyolojik koşullar altında büyümeye izin, mümkün olduğunca yakından doku mikroçevreyi yaklaştığı dizayn edilmektedir. Geleneksel / indirgemeci yaklaşımlar hücre kültürü, 3 boyutlu (3-D) aksine kültür sistemleri şimdi çeşitli etkin bir kültür için tercih edilen bir yöntem haline gelmektedirinsan hücre hatları ve primer hücreler daha sonra destekleyici bir mikro-bağlamında, sağlık ve hastalık ile ilgili mekanizmaların çalışılmasına. 3-B sistemleri genellikle ilgi hücre türlerini incelemek için doku mikroçevreyi özetlemek amacıyla, büyüme faktörleri ile takviye yeniden matrisler ve / veya orta kullanılarak ayarlanır. Bu 3-boyutlu (3-D) kültür modellerinin ilk meme bezi gelişimini incelemek için geliştirilmiştir. Meme epitelyal hücreleri, Matrigel gömülü olan yerel koşullar, kollajen IV ve hücre dışı matrisin (ECM) laminin-zengin bir kaynak ile hücre sağlamak ve büyüme ortamı ile kaplanmış için. Bu koşullar altında, meme epitelyum hücreleri meme asinüsü benzeyen kümeleri oluşturulmuş ve laktojenik hormonlar ile uyarılması üzerine, bu acininin acininin benzeri yapıların içi boş LUMENA ​​içine, kazein ve diğer süt proteinleri salgılanır. Kazein salgılama bile prolaktin 5 ilave edildikten sonra standart kültürlerde gözlenmedi, Ayrıca hücrelerin morfolojik ve fenotipik özelliklerini koruyarak mikroçevresinin rolünü vurgulayarak. Hücreler fizyolojik mikroçevresinin bağlam dışına alınır, normal hücresel fonksiyonunun kaybı başka gösteri destekleyici mikro olmaksızın, keratinositler tabakalı epidermis 6 oluşturmak için başarısız bir gösteri. Diğer 3-D modellerin bir dizi birincil hücrelerinin ex vivo yayılmasını 7,8 izin yaratılmıştır. Hücre davranış mikroçevresinin önemli rolü zarif ben matris zaman kollajen kültüre meme epitel hücreleri Matrigel&#39;de oluşmuştur doğru polarize asinüs göre, &quot;iç-dış&quot; asinüsü oluşan bir çalışmada gösterildi. Laminin üreten miyoepitelial hücreler kolajen I 9 kültürlere ilave edildi zaman uygun morfoloji bu kayıp dönülmüştür. Ayrıca, doğru bir mikro-ortam doğru için gereklidirgenotip tezahürüdür. Bir tabak içinde yetiştirilen, bir hücre-hücre yapışma molekülü ile transfekte CEACAM1 MCF7 meme kanseri hücrelerinin transfekte edilmemiş CEACAM negatif hücreleri ile tam olarak aynı şekilde davranır. Ancak, habis olmayan meme epitel 10 ile kurulmuştur gibi CEACAM1 ile transfekte MCF7 hücreleri, oyuk LUMENA ​​normal bir fenotip ve form asinüs dönmek ise ECM, vahşi tip bir şekilde MCF7 tümör benzeri yapılar ile temas halinde, Matrigel kültürlenmiştir. Benzer şekilde, β1-integrin meme kanseri hücrelerinde engelleme standart kültür koşulları altında davranışlarını değiştirmek, ancak 3-D kültürde gerçekleştirilen aynı deney β1-integrin bloke normal bir fenotip 11 malign hücrelerin döner göstermektedir etmez. Bu nedenle, yalnızca doku mikro çevre hücre canlılığını korumak için gerekli değildir, ancak, aynı zamanda, uygun hücre fonksiyonunu korumak için. Hücre davranış, fizyolojik koşullar altında incelenebilir bir sistem sağlamaya ek olaraks, 3-B kültürleri yeni terapötik 8,12,13 klinik öncesi testleri için olduğu gibi sağlam ve güvenilir orta çalışır. 3-B hücrelerinin kültürlenmesi hücre-hücre ve hücre-ECM yapışmasının katkı değerlendirilebilir çevre aracılığında ilaç direnci 14, koşullarında araştırma bileşiklerin tarama sağlar. Bundan başka, yeni bileşimlerin hedef dışı toksisite çeşitli dokuların birden fazla hücre bölmeleri dahil edilmesi ile tespit edilebilir. Bu tür taramalar daha hızlı gerçekleştirilir ve daha düşük maliyetli bir in vivo 8 karşılaştırılabilir çalışmalara göre girmektedir. Burada normal ve habis kemik iliği (BM) hücreleri yakından insan BM mikro taklit eden bir sistem içinde ex vivo çoğalan yeniden kemik iliği (RBM) bir 3-D modeli bir kurulum mevcut. BM stroma çeşitli bileşenleri ile 2-B kültürler, sıvı ya da yapışkan cocultures primer insan BM hücrelerinin büyüyen bir önceki girişimlerVeya 3-D, yarı katı agar kültürleri nedeniyle doku mikro 15-18 bileşenleri ile hücre kaynağı kendi yetersizlik sınırlı başarı ile bir araya geldi. Bu sistemlerde birincil BM hücreler kötü canlılığı vardı ve ex vivo çoğalırlar başarısız oldu. İnsan BM progenitör hücrelerin BM stromal hücreleri ile küremsi cocultures yetiştirilen bir başka sistem hematopoetik kök hücre canlılığı ve proliferasyonu, en az 96 saat 19 için sürekli bir 3-D sistemidir. Hematopoietik progenitör biyoloji anlaşılması için son derece faydalı olmasına rağmen, ancak, bu sistem sadık yararlılığını sınırlama, bu nedenle ECM bileşenlerinin bulunmaması nedeniyle DM&#39;nin mikro özetlemek değildir. Burada açıklanan model, insan RBM DM&#39;nin hem hücresel hem de hücre dışı bölme in vitro yeniden inşa edilir kapsamlı bir sistem sunar. Biz RBM kültürleri, normal insan BM hücrelerinin ex vivo büyümesini desteklemek olduğunu göstermektedir bizçeşitli hematolojik hastalıkları olan hastalardan izole edilen hücreler olarak Ll.

<table><tbody><tr><td>Akış sitometrisi için CellTrace CFSE proliferasyon kiti</td><td>Invitrogen/Life Technologies</td><td>C34554</td><td></td></tr><tr><td>İnsan plazmasından fibronektin</td><td>Millipore NG1884448</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Ficoll-Paque PLUS</td><td>GE Lifesciences</td><td>17-1440-02</td><td></td></tr><tr><td>Matrigel bazal membran matrisi</td><td>BD Biosciences</td><td>354234</td><td></td></tr><tr><td>Sıçan kuyruğu kollajen tip I</td><td>BD Biosciences</td><td>354249</td><td>Millipore'dan elde edilen Kollajen I, bu protokolü kullanarak düzgün bir şekilde polimerize olmuyor</td></tr><tr><td>Floresan için VECTASHIELD montaj ortamı (normal set)</td><td>Vector Laboratories</td><td>H-1000</td><td></td></tr><tr><td>SigmaFast Red TR / Napthol AS-MX tabletleri</td><td>TRAP boyama için</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>F4648</td></tr><tr><td>SigmaFast BCIP / NBT tabletleri</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>B5655</td><td>Alkalin fosfataz boyama için</td></tr><tr><td>Zeiss konfokal LSM 510 mikroskobu;</td><td>Carl Zeiss</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Zeiss 510 yazılımı</td><td>Carl Zeiss</td><td></td><td>Konfokal analiz için görüntü analiz yazılımı</td></tr><tr><td>Zeiss Axiovert 200M ters mikroskop&nbsp;</td><td>Carl Zeiss</td><td></td><td></td></tr><tr><td>MetaMorph yazılımı</td><td>Moleküler Cihazlar</td><td></td><td>Axiovert 200M</td></tr><tr><td>FACSort akış sitometresi için görüntü analiz yazılımı&nbsp;</td><td>BD Biosciences</td><td></td><td></td></tr><tr><td>CellQuest Pro yazılımı&nbsp;</td><td>Akış sitometrisi verilerinin analizi için</td> <td>BD Biosciences</td><td></td> Yazılımı</tr></tbody></table>

İlköğretim İnsan kemik İliği ve maligniteleri eğitim bir Üç boyutlu doku kültürü modeli

A Three-dimensional Tissue Culture Model to Study Primary Human Bone Marrow and its Malignancies

Doku kültürü, normal geliştirme hastalığı, hücre fonksiyonunda birçok yönlerini incelemek için paha biçilmez bir araç olmuştur. Geleneksel yöntemler, bir hücre kültürü, doku kültürü çanağı, bir katı alt döküm takmak ya da sıvı bir ortam içinde süspansiyon içinde büyümeye ya da hücrelerin kabiliyetine dayanır. Birden fazla ölümsüz hücre çizgileri birincil hücreler ex vivo büyümüş olması gerekir, ancak, bu yöntemler genellikle başarısız oluşturulur ve bu tür yaklaşımlar kullanılarak büyütülmüştür. Bu başarısızlık plastik doku kültürü, hücre büyümesi için bir yüzey olarak kullanılan standart sistemlerden doku mikro uygun hücre dışı matris bileşenlerinin yokluğunda atfedilmiştir. Hücre dışı matriks doku mikro ayrılmaz bir bileşeni olan ve bunun varlığı, hücre polarizasyon, hayatta kalma ve proliferasyon gibi fizyolojik fonksiyonların korunması için çok önemlidir. Burada bir 3 boyutlu doku kültürü yöntemi primer kemik iliği cel sunmakls, insan kemiği (RBM sistemi) mikro özetlemek için formüle hücre dışı matris içinde büyütülür. Hücre dışı matris içinde gömülü hücreler, böylece birincil dokusunun hücresel bileşimi korurken, hücre hayatta kalması ve çoğalması kadar 30 gün boyunca sürekli olabilir kapsamlı bir sistem sağlamaktadır, insan plazması ile desteklenmiş ortam boyunca besin ile temin edilmektedir. RBM sistemi kullanarak başarıyla normal donörlerin ve hastaların amiloidoz ile, ve çeşitli hematolojik maligniteler primer kemik iliği hücrelerini büyüdü. RBM sistemi yeni terapötiklerin klinik öncesi etki hücre davranış ve değerlendirme doğrudan, in-matris gerçek zamanlı görüntülenmesi için izin verir. Ayrıca, hücreler RBM izole edilir ve daha sonra in vivo nakli, hücre sıralama, akış sitometrisi, ve nükleik asit ve protein analizi için kullanılabilir. Birlikte ele alındığında, RBM yöntem primer kemik Marro büyümesi için güvenilir bir sistem sağlarfizyolojik koşullar altında w hücreleri.

Primer kemik iliği hücreleri standart doku kültürü koşulları altında çoğalırlar başarısız yana, RBM sistemi yakından kültürüne bir sistem sağlayarak, kemik mikroçevreyi taklit ve ex vivo BM hücreleri genişletmek için kuruldu. BM dışı matrisin, fibronektin, kolajen I, kolajen IV, laminin ve 21 ana bileşenleri, bu 3-D kültürüne yapısal iskele temin etmek üzere RBM matris içine dahil edilmiştir. Endosteum, kolajen I ve fibronektin zengin kemik ve BM arasında arayüz, bu proteinlerle çalışan bir doku kült...

Standart yöntemlerle olarak hücreler, fizyolojik bir ortam üzerinden alınır ve bir çanak plastik yüzeyi üzerinde büyütülür. Birincil insan kemik iliği hücrelerinin davranışını incelemek için biz hücreler doku yerel mikro yansıtan koşullar altında yetiştirilen bir 3-D kültür sistemi oluşturulur.

İlköğretim İnsan Kemik İliği ve Maligniteleri Eğitim Bir Üç boyutlu Doku Kültürü Modeli

Tissue culture has been an invaluable tool to study many aspects of cell function, from normal development to disease. Conventional cell culture methods ...

Bu prosedürün genel amacı, insan kemik iliğinin hücresel ve hücre içi mikroortamını yakından taklit eden bir kültür sistemi kurmaktır. İlk olarak, bir doku kültürü kuyusunun yüzeyi endüstriyel matris ile kaplanır. Ardından kemik iliği mononükleer hücreleri veya ilgilenilen diğer hücreler kemik iliği matrisi ile karıştırılır.Daha sonra, endüstriyel matris uzaklaştırılır ve hücre-matris karışımı kuyucuğa eklenir. Matris jelleştikten sonra, üzerine büyüme medyumu eklenir. Sonuç olarak hücreler, mevcut hücre kültüre alma yöntemleriyle karşılaştırıldığında, doğrudan matris içinde görüntülenebilir veya alt analizler için izole edilebilir.Örneğin, standart doku kültürü yöntemleri veya hücrelerin plastik üzerinde büyütüldüğü ko-kültür modelleri. 3D kültür yöntemi kullanmanın temel avantajı, hücrelerin fizyolojik mikro çevre içerisinde büyütülmesidir ve bu sayede hücreleri dokunun doğal koşulları altında incelemenize olanak tanır. Hücrelerin ekileceği 48 kuyucuklu bir plaka hazırlayın.Her birine önce 65 µL endüstriyel kaplama çözeltisi ekleyerek, çözeltiyi kuyucuğun tüm yüzeyini kaplayacak şekilde eşit olarak yayın. Bu yöntem diğer yüzeylere de ölçeklenebilir. Plakaları oda sıcaklığında en az 30 dakika inkübe edin.Bu sırada, mikrolitre başına 50.000 hücre içeren PBS hücre süspansiyonunu hazırlayın. Her kuyucuğa 10 mikrolitre ekleyecek kadar hazırlayın, ardından bir eppendorf tüpünde, hücre süspansiyonunu kuyucuk başına 100 mikrolitre rekonstrüktif kemik matriksi ile karıştırın. Nazikçe karıştırın ve hava kabarcığı oluşmamasına dikkat edin.Plaka işlemi bittiğinde matrisin jelleşmemesi için karışımı buz üzerinde tutun. İnkübasyon sonrası tüm sıvıyı ve kaplama solüsyonunu aspirasyon yoluyla uzaklaştırın. Ardından, her bir kuyucuğa matris içeren ve iyice karıştırılmış hücre süspansiyonundan 100 µL ekleyin.Kuyucuğun tüm yüzeyini eşit şekilde kaplamak için bir pipet kullanarak plakayı hızlıca eğin. Hücreler tamamen yüklendiğinde kümeleşeceği için, kuyucuklar doldurulurken süspansiyonu karıştırmaya devam edin. Matriks katılaşana kadar plakayı sarsmadan 30 ila 60 dakika boyunca inkübe edin.Ardından, kemik iliği büyüme ortamını 37 °C'ye ayarlanmış bir su banyosunda önceden ısıtın. 30 dakikalık inkübasyonun ardından, matriksin uygun şekilde donup donmadığını kontrol edin. İyi bir matriks, plaka eğildiğinde hareket etmeyen yumuşak, jel benzeri bir tabaka oluşturur.Matriks hazır olduğunda, serolojik bir pipet kullanarak üzerine damla damla 1 mL besiyeri ekleyin. Ardından, hazırlanan yeniden yapılandırılmış kemik matriksi kültürünü, besiyeri değişimi yapmadan 30 güne kadar inkübatöre geri yerleştirin. Eğer besiyeri değişimi gerekirse, her seferinde besiyerinin sadece yarısını değiştirin.Matriks tabakasını bozmadan besiyerini nazikçe uzaklaştırın. Plakayı eğerek besiyerini bir pipet yardımıyla yavaşça boşaltın. Besiyerini matriks tabakasının üzerinden aspire etmeyin.Hücreler boyanırken, solüsyon değişimleri için bu tekniği kullanın. 3D kültürün kuyucuklarından medyumu uzaklaştırırken, medyumun kuyucuğun yan tarafından alınması oldukça kritik önem taşır.Aksi takdirde, matriks bozulacak ve hücreler kaybolabilecektir. Aynı tekniğe bağlı kalarak, hücreleri iki kez steril 1x PBS ile yıkayın. Ardından her birine yarım mililitre buz gibi soğuk hücre geri kazanım çözeltisi ekleyin.Hücrelerle birlikte tüm matriks tabakasını, pipetle güçlü bir şekilde yukarı-aşağı çekerek uzaklaştıracağız. Her biri için, toplanan materyali bir mikrosantrifüj tüpüne aktarıp buz üzerine yerleştireceğiz. Ardından, aynı kuyucuğa yarım mililitre daha recovery çözeltisi ekleyip geri kalan tüm materyali toplayacağız.Tüm koleksiyonları vorteksleyin ve buz üzerinde bir saat boyunca inkübe edin. Bu bir saatlik süre boyunca, hücrelerin matriksten salınımını kolaylaştırmak için tüpleri her 15 dakikada bir vorteksleyin. Bir saatin sonunda, karışımda görünür matris kümeleri olup olmadığını kontrol edin.Hiçbiri bulunmamalıdır, ancak mevcutsa, karışımı daha büyük bir tüpe aktarın ve iki ila beş mililitre ek hücre geri kazanım çözeltisi ekleyin. Ardından hücreleri 30 ila 60 dakika daha inkübe edin. Periyodik olarak vorteksleyin ve matris kümelerinin yokluğunu tekrar kontrol edin.Matriks artık topaklanmadığında, karışımı 4 °C'de 1000 RPM'de beş ila 10 dakika boyunca santrifüj edin. Ardından süpernatanı uzaklaştırın ve hücre peletini 1 mL soğuk 1X PBS içinde yeniden süspande edin.Santrifüj işlemini tekrarlayın. Süpernatantı taze PBS ile değiştirin ve yıkama işlemini tekrarlayın. Üçüncü kez.Üçüncü PBS yıkamasından sonra, hücreleri bir sonraki prosedür için uygun olan çözeltide geri kazanın. Kemik iliği hücreleri, yeniden yapılandırılmış kemik matrisinde 30 gün boyunca büyütülmüş ve ışık mikroskobu ile 200 kat büyütmede periyodik olarak görüntülenmiştir. Stromal elementler ilk olarak beşinci günde tespit edilmiş, ancak 14. güne gelindiğinde belirgin şekilde görünür hale gelmişlerdir.Kültür süresi boyunca hücreler matris boyunca göç etmiş ve belirgin kümeler halinde bir araya gelmiştir. RBM'de aşırı büyüyen stromal bileşenlerin kompozisyonunu değerlendirmek amacıyla, malign hücre kütleleri zamanla genişletilmiştir. RBM ile endüstriyel kaplama arasındaki geçiş bölgesindeki hücrelerin morfolojisi değerlendirilmiştir.Hücreler fibronectin, aktin ve çekirdekler için boyandı. Stromal morfolojiye sahip hücrelerin görselleştirilmesi, yüksek alkali fosfataz aktivitesine sahip prek-osteoblastlar olduklarını göstermiştir. Bunların, zarin red boyaması ile belirlendiği üzere kalsiyumu mineralize etme yeteneğine sahip oldukları görülmüştür. Lipid damlacıklarının görünür olduğu hücreler, oil boyamasıyla pozitif sonuç vermeleri nedeniyle adipositler olarak tanımlanmıştır.Ara sıra çok çekirdekli görülen kırmızı hücreler pres osteoklastlar olarak tanımlanmış ve tartrat dirençli asit fosfataz için pozitif sonuç vermiştir. Hücrelerin 3D kültürden izole edilmesinin ardından çeşitli çalışmalar yapabilirsiniz. Örneğin, mikroçevrede büyütülen çeşitli hücrelerin hücresel fenotiplerini inceleyebilirsiniz.Gen ve protein ekspresyonunu inceleyebilir, hatta 3D koşullar altında bu hücreler tarafından ne tür moleküllerin salgılandığını belirleyebilirsiniz.

a-three-dimensional-tissue-culture-model-to-study-primary-human-bone

Research

JoVE Journal

Medicine

Tıp

Hematopoez için 3D kültür sistemi, insan kordon kanı ve lösemiye kemik iliği hücreleri kullanılarak anlatılmıştır. Metodu hücre dışı matris proteinlerine ile kaplanmış bir emici sentetik poliüretan iskele kullanımına dayanmaktadır. Bu yapı iskelesi hücreleri geniş bir uyum sağlamak için uyarlanabilir.

Normal ve Anormal İnsan Hematopoezin ex vivo Mimicry

Test sistemleri olarak insan 3D tümör dokuları oluşturmak için yöntemler tarif edilmiştir. Bu teknolojiler, decellularized Biyolojik Vaskülarize İskele (BioVaSc), primer insan hücreleri ve bir akış biyoreaktör içinde dinamik koşullar altında hem de statik altında kültürlenebilir bir tümör hücre hattı, dayanmaktadır.

İnsan 3D Doku Mühendisliği<em&gt; In vitro</em&gt; Tümör Test Sistemi

Protokoller, insan kemik doku eksplantı model sisteminde göğüs kanseri hücre hareketi, çoğalması ve kolonizasyonu çalışmak için tarif edilmiştir.

Kültürleme İnsan Femur Doku Eksplantlarından yöntemleri Metastatik Niche Meme Kanseri Hücre Kolonizasyon Eğitim için

İnsan multipl miyeloma (MM) hücreler, mezenkimal hücreler ve hayatta kalma ve proliferasyon için hücre dışı matris bileşenlerinin destek mikro-gerektirir. Biz tümör büyümesi, işgali ve anjiyogenez üzerine kanser ilaçlarının etkilerini incelemek için engrafted insan miyelom ve mezenkimal hücreler ile in vivo tavuk embriyo modelini kurdu.

Chicken İnsan Multipl Miyelom Xenograftlarında Modeli Kurulması Tümör Büyüme, Invasion ve Anjiogenez Eğitim için

Farelerde farklı insanlaştırılmış kemik iliği nişleri oluşturmak ve canlı görüntü oluşturmak için bir yöntem sunulmuştur. İnsan mezenşimal hücreleri tarafından oluşturulan destekleyici niş dayanarak, insan endotel hücrelerinin eklenmesi, insan damarlarının oluşumunu indüklerken rhBMP-2 ilavesi, insan-fare kimerik olgun kemik dokusunun oluşumunu indükler.

Fare Malı İnsani Kemik İliği Mikro Çevrelerinin Biyomühendisliği ve Canlı Görüntüleme ile Görselleştirilmesi

Bu iletişim kuralı bir vitro insan preklinik modeli osteoclastogenesis kanser hücre-Osteoklast etkileşimi taklit etmek için meme kanseri hücre hatları ile kültürlü periferik kan monosit üzerinden gelişimi anlatılmaktadır. Model kemik metastaz oluşumunu anlayışımız daha fazla ve tedavi olanakları geliştirmek için kullanılabilir.

Osteoclastogenesis periferik kan monosit kültürlü meme kanseri hücre hatları ile birlikte gelen bir insan preklinik modelinin geliştirilmesi

Kemik eksektijinin ex vivo kültürü kemik fizyolojisi ve kemik remodeling ve kemik hastalıklarında ilaçların potansiyel değerlendirilmesi çalışmaları için değerli bir araç olabilir. Sunulan protokol, yeni doğan fare kafataslarından izole edilen calvariaların hazırlanmasını ve kültürünün yanı sıra uygulamalarını da açıklamaktadır.

Calvaria Co-culture ve Histomorfometri Kullanarak Kemik Remodeling ve Tümör-Kemik Mikroortamı yeniden oluşturma

Kemik hücre dışı Matriks (BEM) modeli osteosarkom (OS) için de kurulan ve gösterilen işte. Bu uygun bir iskele birincil tümör büyüme vitro taklit ve OS histolojik ve cytogenic heterojenlik eğitim için ideal bir model sağlamak için kullanılabilir.

Üç boyutlu kemik hücre dışı matriks modeli osteosarkom için

Burada, insan kemik iliğinin in vivo yapısının karmaşıklığını yansıtan, çok çeşitli normal ve patolojik olayları ince bir şekilde incelemek için uygun bir model sağlayan, uygulaması kolay, standartlaştırılmış, mikrofizyolojik bir sistemi tanımlıyoruz.

Fizyolojik veya Tümöral Bağlamlarda Yerleşik Hücreler Arasındaki Dinamiği ve Etkileşimleri Araştırmak için Bir İnsan Kemik İliği 3D Modeli

Kemik iliği vasküler nişinin in vitro bir modeli, mezenkimal ve endotel hücrelerinin önceden dökülmüş 3D PEG hidrojelleri üzerine tohumlanmasıyla oluşturulur. Nişlerin endotel ağları, ECM bileşenleri ve ALP aktivitesi kullanılan büyüme faktörüne bağlı olarak değişir. Platform, gelişmiş kanser modelleri için kullanılabilir.

Bir görüntüleme mikroplakasında önceden dökülmüş poli (etilen glikol) (PEG) hidrojeller kullanılarak vaskülarize osteojenik kemik iliği nişinin basit bir şekilde kurulması

Bu protokol, metakrilatlenmiş jelatin (GelMA) hidrojellerine gömülü insan osteositleri kullanılarak 3D kemik yapılarının üretilmesini ve decellularize ekstrasellüler matriks ile desteklenmesini açıklar. Yöntem düşük maliyetli, ölçeklenebilir ve temel laboratuvar ekipmanlarıyla uyumludur; bu da kas-iskelet hastalıkları süreçlerini incelemek için translasyonel bir platform sağlar.

Kas-iskelet hastalıklarının modellenmesi için insan osteositleri ve hücresizleştirilmiş ekstrasellüler matriks kullanan 3D kemik kültürü platformu

Keşfedin, insan kemik iliği hücrelerini fizyolojik mikroçevrede yetiştirmek için üç boyutlu doku kültürü modelini kullanmayı. Bu yöntem, hücre davranışlarını in vivo koşullarda çalışmanıza olanak tanır.

İlköğretim İnsan Kemik İliği ve Maligniteleri Eğitim Bir Üç boyutlu Doku Kültürü Modeli

Daha fazla video keşfet