Name: Efektör CD4 Evlatlık transferi ile Kemirgen Bağırsak Enflamasyon indüksiyonu + CD45RB Yüksek Bağışık yetmezliği olan farelere içine T Hücreleri (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-04-21T13:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 37 s
Description: Öğrenin, bağışıklık yetmezliği olan farelere CD4+ CD45RBhigh T hücrelerinin evlatlık transferi yoluyla kolonik enflamasyon indüksiyonu yöntemini. Bu model, inflamatuar bağırsak hastalıklarının mekanizmalarını ve terapötik müdahaleleri test etmek için kullanılır.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Bu çalışma, Amerikan Gastroenteroloji Derneği (AGA) Araştırma Alimler Ödülü ve Crohn ve Amerika (CCFA) (ECS) (SZS için) Kariyer Geliştirme Ödülü NIH NIDDK F30 DK089692 Kolit Vakfı ve Gastrointestinal Biyoloji Kuzey Carolina Merkezi&#39;nin Üniversitesi tarafından desteklenen ve Hastalık Hibe P30 DK34987 (Histoloji Çekirdek). UNC Sitometrisi Çekirdek Tesisi UNC Lineberger Kapsamlı Kanser Merkezi&#39;nde bir NCI Merkezi Çekirdek Desteği Grant (P30CA016086) tarafından kısmen desteklenmektedir. Biz histopatolojik analiz ve immunohistokimyasal ile yaptığı yardım için Veteriner North Carolina State University College Luke B. Borst teşekkür ederim.

NOT: Tüm hayvan protokolleri ile ve Laboratuvar Hayvanları Bakım ve Kullanım Kurumsal Hayvan Bakımı ve Kullanımı Komitesi (IACUC) yönetmelik ve Ulusal Araştırma Konseyi&#39;nin Kılavuz uygun onaylanmış emin olun. Verici fareler erkek veya kadın olabilir, ancak alıcı fareler erkek olmalıdır. Dişi alıcı kullanılacak ise, verici fareler 5 kadın olmalıdır. Böylece, farelerin 5,6 kolit fenotip, bu intestinal mikrobiyota etki edilebilir, düzenli olmayan steril yatak ve asitli-olmayan su kullanılarak koloni bakımı ve. 1. Deneysel hazırlanması <ol><li> Buz soğukluğunda ortamı ve tamponlar kullanın. Deney boyunca buz üzerinde hücreleri tutun. </li><li> Steril tekniği kullanarak steril biyolojik tehlike kaput deney yapın. </li></ol> Dalak T hücrelerinin 2. izolasyonu <ol><li> Donör fare / CO fareler servikal dislocatio 2 odacık ardından euthanizen. % 70 etanol ile karın püskürtün. </li><li> Karın yatay bir kesi yapmak ve periton maruz cilt soymaya. Uzak forseps ile iç organlardan periton tutun ve ortaya çıkarmak ve dalağı tüketim sol karın periton bir kesi yapmak. </li><li> Petri kabındaki tam ortam, 10 ml dalak yerleştirin. Çıkarın ve dalak aşırı doku atın. </li><li> Ezmek ve tek hücre süspansiyonu içine dalak ayrı kızdırmak için 2 steril cam slaytlar kullanın. Filtre hücresi 50 ml konik tüp içine 70 mikron süzgeç vasıtasıyla süspansiyon ve tam Medya 5 ml süzgeç durulayın. Bir 50 ml konik tüp içinde 5 dalak kadar yerleştirin. </li><li> 7 dakika için 450 xg&#39;de Santrifüj hücreleri. Kapalı dökerek ya da atık kabına vakum emme ile süpernatant atın. </li><li> Yavaşça, oda sıcaklığında 10 dakika boyunca, kırmızı kan hücrelerinin lize etmek için Lizis Tamponu dalak başına 5 ml süspansiyon hücrelerin. Tüpe tam ortam içinde eşit hacimde (dalak başına 5 mi) eklenir. </li><li&gt; Santrifüj hücreleri 7 dakika için 450 xg&#39;de. Kapalı dökerek ya da atık kabına vakum emme ile süpernatant atın. </li><li> Yavaşça Etiketleme Tampon, 10 ml hücreler tekrar süspansiyon. </li><li> Tripan mavi dışlama hücreleri saymak. <ol><li> Hücre süspansiyonu 20 ul çıkarın ve bir mikrofüj tüpüne 180 ul, tripan mavisi ekleyin ve iyice karıştırın. 5 dakika sonra, hemositometrede ve mikroskop altında olmayan mavi hücreleri saymak için hücreleri etiketli 10 ul ekleyin. Canlı hücrelerin toplam sayısını belirleyin. Hücre / tripan mavi karışımı atın. </li></ol></li><li> 7 dakika boyunca 450 xg&#39;de Etiketleme Tampon, 10 ml santrifüj hücreleri. Kapalı dökerek ya da atık kabına vakum emme ile süpernatant atın. </li></ol> CD4 + T hücreleri 3. zenginleştirilmesi NOT: Bu bölümde kullanılan belirli ürünler için üreticinin talimatlarına uyun. <ol><li> Yavaşça soğuk etiket 20 x 10 6 hücre / ml &#39;lik bir tek hücre süspansiyonuna hücreleri tekrar süspansiyoning Tampon. </li><li> Biyotinlenmiş CD4 T hücresi zenginleştirme antikor 1 x 10 6 hücre başına 5 ul ekleyin. 15 dakika boyunca buz üzerinde kuluçkaya bırakılır. </li><li> Etiketleme Tampon 10x hacim ekleyin. 7 dakika 450 × g Santrifüj hücreleri. Dikkatle atık kabına vakum emme kullanarak tüm süpernatant aspire. </li><li> İyice streptavidin-konjuge manyetik parçacıklar girdap. 1 x 10 6 hücre başına parçacıkların 5 ul ekle. </li><li> İyice fakat nazikçe karıştırın. 30 dakika boyunca, 6-12 ° C&#39;de bir karışım tutun. </li><li> 20-80 x 10 6 hücre / ml &#39;lik bir konsantrasyona kadar Etiketleme Tamponu ekleyin. 12 x 75 mm yuvarlak alt test tüpüne başına hücreleri etiketli 1.0 ml kadar aktarın (&quot;pozitif kesir tüp&quot; olarak anılacaktır). </li><li> 6-8 dakika mıknatıs her olumlu-fraksiyon tüpü yerleştirin. </li><li> Mıknatıs hala pozitif kesir tüpleri ile dikkatlice (yeni steril 50 ml konik tüp cam Pasteur pipet ile pozitif fraksiyon tüpten referre süpernatant aktarmak&quot;zenginleştirilmiş fraksiyon&quot;) olarak d. Bu zenginleştirilmiş fraksiyon, CD4 + T hücrelerini içerir. Mıknatıs çekti etiketli hücreleri bozmak için değil dikkatli olun. </li><li> Süspanse edin hücreleri aşağı yukarı şiddetle pipetleme ve adım 3.6 gibi Etiketleme Tampon aynı hacimde pozitif kesir tüplerde bıraktı. 6-8 dakika geri mıknatıs üzerinde pozitif kesir tüpü yerleştirin. </li><li> Mıknatıs hala pozitif kesir tüpleri ile dikkatlice mıknatıs bağlı hücrelerin aksatmadan 50 ml Aşama 3,8 konik tüp, steril cam Pasteur pipet ile pozitif fraksiyon tüp süpernatant (zenginleştirilmiş fraksiyonu, CD4 +) aktarın. </li><li> Tekrar Elde edilen CD4 + T hücrelerinin verimini artırmak için 3,9-3,10 adımları tekrarlayın. Zenginleştirilmiş fraksiyon (CD4 + hücreleri) kullanılarak protokolü devam edin. </li></ol> 4. Etiketleme ve sıralama Hücreler 7 <ol><li> Santrifüj 7 dakika için 450 xg&#39;de hücreleri zenginleştirilmiş. Veya vakum emilmesini kapalı dökerek süpernatant atınatık kabına iyon. </li><li> Etiketleme, 1 ml tampon içinde süspanse hücreleri. Saymak ve aşama 2.9 olarak tripan mavisi eksklüzyonu ile hücre canlılığı değerlendirmek için hücreler kısım çıkarın. </li><li> 10 x 10 6 hücre / ml Etiketleme getirme tamponunun bir hacminin ilave et; hücrelerin önceden ise &lt;10 x 10 6, 7 dakika boyunca 450 x g&#39;de santrifüj, atık kabı içine dökülen ya da vakum emiş ile süpernatan atılır ve 10 x 10 6 hücre / ml Etiketleme Tamponu hacmi ekleyin. <ol><li> Mikrofüj tüplerinde izotip lekeli, boyanmadan ve tek boyanmış kontrol hücreleri için yaklaşık 5-10 x 10 5 hücre, her biri ayrı ayrı alikotları ayarlayın. </li></ol></li><li> Hücrelere 5 ug / ml CD4-FITC ve 1 ug / ml CD45RB-PE ekleyin. Mikrofüj tüplerinde alikotları mülk aynı konsantrasyonda izotip kontrol lekeleri ve tek lekeler ekleyin. Iyi bir şekilde fakat nazikçe karıştırın ve 30 dakika için ışıktan korunması buz üzerinde inkübe edilir. </li><li> Hücre ve kontrolü Etiketleme Tampon 10x hacmi ekles. 7 dakika Santrifüj 450 xg. Atık kabına vakum emme ile süpernatant atın. </li><li> Adım 4.5 hacme Etiketleme Tampon süspanse. 7 dakika Santrifüj 450 xg. Atık kabına vakum emme ile süpernatant atın. </li><li> 10 x 10 6 hücre / ml Etiketleme Tamponu içinde yeniden süspanse edin. FACS tüpüne 70 mikron süzgeç vasıtasıyla hücrelere geçerler. FACS için hazır olana kadar ışıktan korunan buz üzerinde tutun. </li><li> Set up ve boyanmamış hücreler ve tek lekeli kontrolleri ile hücre sıralayıcı uygun tazminat belirler. </li><li> Ileriye ve yan dağılım yolluk (Şekil 1A) ile cansız hücreleri hariç. Izotip-lekeli kontrolleri ile CD4 + ve CD45RB + hücreleri için yolluk ayarlayın. CD4 + nüfus Kapı hücreleri. </li><li> Tam ortam, 2 ml tüplere PE-boyanmış hücreler için basit bir histogram kullanarak yüksek CD45RB ve CD45RB alt popülasyon kriteri CD4 + hücreleri. Yüksek CD45RB </sus&gt; nüfus CD4 + CD45RB + hücreleri (yüksek CD45RB) en yüksek% 40 temsil eder ve CD45RB alt popülasyonu, CD4 + CD45RB + hücrelerinin en% 20 (alt CD45RB, Şekil 1B). </li></ol><img alt="Şekil 1," src="/files/ftp_upload/52533/52533fig1.jpg" /> Şekil 1: FACS analizi sırasında, CD4 + CD45RB, T hücre popülasyonlarının sitometrisi lekeleri Örnek akımı (A - C), FITC CD4 ve PE içine FACS ile sınıflandırılmıştır verici, C57BL / 6 farelerinden alınan splenositler CD45RB lekeli CD4 + CD45RB yüksek ve CD4 +. CD45RB alt T hücresi popülasyonu. (A) Doublet olayları ileri dağılım arsa üzerinde dışı bırakıldı. (B) lenfositler ileri ve yan dağılım arsa kapılı edildi. (C), CD4 + </destek&gt; T hücreler geçitlendi ve (D) CD4 + CD45RB + T hücreleri, PE karşı etkinlikler histogram çizilmiştir. CD4 + CD45RB alt hücreler, CD45RB + hücrelerinin en% 20 olarak kabul edildi. CD4 + CD45RB, yüksek hücre CD45RB + hücrelerinin en yüksek% 40 olarak tayin edilmiştir. <ol start="11"><li> Popülasyonlarının saflığı analiz etmek üzere FACS makinede her bir hücre popülasyonunun bir kısım çalıştırın. </li><li> Santrifüj 7 dakika için 450 xg&#39;de hücreleri sıralanır. 1 ml PBS içinde yeniden süspanse. Saymak ve aşama 2.9 olarak tripan mavisi eksklüzyonu ile hücre canlılığı değerlendirmek için hücreler kısım çıkarın. </li></ol> Alıcılar içine Hücreleri 5. Enjeksiyon <ol><li> Süspanse 4 x 10 6 hücre / ml (CD45RB yüksek) veya PBS 2 x 10 6 hücre / ml (düşük CD45RB) hücreleri sıralanır. </li><li> Yeni steril tüpe alıcı başına CD45RB yüksek hücrelerin 100 ul aktarın. PBS Başı 100 ul ekleyinbu tüp alıcısı. Bu nedenle, hayvan başına toplam enjeksiyon hacmi 200 ul ve alıcı için hücrelerin toplam miktarı, 4 x 10 5, CD4 + CD45RB yüksek naiv T hücreleri. </li><li> Regülatör T hücreleri alan deney grubu arzu edildiği takdirde, yeni bir steril tüpe alıcı için CD45RB, yüksek hücre 100 ul aktarın. Aynı tüp alıcı başına CD45RB düşük hücrelerin 100 ul ekleyin. Hayvan başına toplam enjeksiyon hacmi 200 ul; CD45RB yüksek oranı: CD45RB alt hücreler 2: 1 dir. </li><li> Yüksek / düşük CD45RB CD4 + hücreleri intraperitoneal her alıcının karın (200 ul toplam) sağ ve sol tarafına CD45RB yüksek veya CD45RB 100 ul enjekte edilir. </li></ol> Alıcı Hayvanlarda Hastalık ilerleme 6. İzleme <ol><li> Alıcı hayvanların klinik durumunu değerlendirmek aşağıdaki Paramete için toplam klinik skorları atamak içinEnjeksiyon gününde rs 8 haftalık sonra, ve kurban sırasında: <ol><li> Kilo kaybı ölçerek israf belirleyin: 0 - hayır kilo kaybı; 1 - İlk vücut ağırlığının% 0.1-10 kaybı; 2 - Başlangıç ​​vücut ağırlığı (Şekil 2A), ve% 10&#39;dan daha fazla zarar. </li></ol></li></ol><img alt="Şekil 2," src="/files/ftp_upload/52533/52533fig2highres.jpg" width="650" /> Şekil 2: inflamasyonun klinik ve toptan patolojik işaretler Rag1 içine yabani tip CD4 + CD45RB yüksek T hücrelerinin transferinden sonra meydana - / - 11 (A) &#39;NRDKO alıcıları 5 ile başlangıç ​​vücut ağırlıkları 10 ortalama% kayıp NRDKO alıcı fareler. haftalar sonrası transfer, Rag1 ise- / - Alıcıları, şu anda, hastalığın klinik belirtilerini göstermemiştir. Her nokta ± SEM kohort için başlangıç ​​vücut ağırlığının ortalama yüzdesini temsil eder. ** P &lt;0.005. Rektal prolapsus varlığı ile gösterildiği gibi (B) Bazı fareler, şiddetli bağırsak iltihabı geliştirdi. Bu NRDKO alıcı fare rektal prolapsus temsili resim. (C) Büyük oranda, gelen iki nokta üst üste, hem Rag1 - / - ve NRDKO alıcı fareler Rag1 gelen iki nokta üst üste ile karşılaştırıldığında kalınlaşmış ve kısaltılmış - / - ve T hücre evlatlık transferi olmadan NRDKO fareler. NRDKO alıcı farelerin kolonlar şiddetli inflamasyon ve artan kolon ağırlıkları (veriler gösterilmemiştir) gösterir. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/52533/52533fig2highres.jpg" target="_blank">Bu rakamın büyük halini görmek için lütfen buraya tıklayınız.</a> <ol><li><ol start="2"><li> O geçene kadar temiz bir kaba hayvan yerleştirerek dışkı kalitesini belirleyinDışkı: 0 - yok; 1 - yumuşak dışkı; 2 - sulu ve / veya kanlı dışkı. </li><li> Hastalığın belirtileri aşağıdaki varlığı ile hayvanın genel sağlık belirleyin: 0 - hayır kambur duruş, kürk, ya da cilt lezyonları kıllı; 1 - Aşağıdaki mevcut herhangi bir: kambur duruş, kürk, deri lezyonları veya kıllı. </li><li> Rektal prolapsus varlığı belirleyin: 0 - devamsızlık; 1 - Mevcut (Şekil 2B). </li></ol></li><li> Bu, başlangıç ​​vücut ağırlığına göre% 20 kayıp ya da hangisi daha önce arzu edilen bir zaman noktasında, var olduğunda CO, sonra servikal dislokasyon 2 inhalasyon hayvanlar kurban. Klinik hastalık haftada 5 sonrası dolgunluk başlayan tipik açıktır. </li><li> Daha önce açıklandığı gibi 5,7 hastalık şiddeti değerlendirmek. <ol><li> Adım 6.1 8 gibi klinik skorları atayın. </li><li> Kolon uzunluğu ve ağırlığı (Şekil 2C) ölçün. </li><li> Inflamasyon histolojik analiz gerçekleştirin5. </li><li> Bağırsak doku eksplant kültürlerinde 9 spontan sitokin ifadesini belirleyin, mezenterik lenf düğümleri 10, ve / veya serum 11. <ol><li> Kısaca, eksplant kültürler 9, uzunlamasına açık, kurban sonrası iki nokta üst üste kaldırmak ve PBS ile temiz. Oda sıcaklığında 30 dakika boyunca tam ortam içinde 250 rpm&#39;de bir orbital çalkalayıcı üzerinde iki nokta üst üste inkübe edin. </li><li> Küçük parçalar halinde doku doğranır ve 24 saat süre ile tam ortam içinde, 37 ° C&#39;de inkübe edildi. Süpernatan toplamak ve ELISA ile 100 mg doku başına düşen sitokinlerin miktarının belirlenmesi için kullanılır. </li></ol></li><li> T hücre fenotipleri ve / veya fonksiyon 10 ex vivo karakterizasyonu gerçekleştirin. </li></ol></li></ol>

<ol><li>Xavier, R. J., Podolsky, D. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Unravelling+the+pathogenesis+of+inflammatory+bowel+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Unravelling the pathogenesis of inflammatory bowel disease.</a> Nature. 448 (7152), 427-434 (2007).</li>
<li>Cho, J. H., Brant, S. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Recent+insights+into+the+genetics+of+inflammatory+bowel+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Gastroenterology%22%5BJournal%5D)">Recent insights into the genetics of inflammatory bowel disease.</a> Gastroenterology. 140 (6), 1704-1712 (2011).</li>
<li>Jostins, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Host-microbe+interactions+have+shaped+the+genetic+architecture+of+inflammatory+bowel+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Host-microbe interactions have shaped the genetic architecture of inflammatory bowel disease.</a> Nature. 491 (7422), 119-124 (2012).</li>
<li>Powrie, F., Leach, M. W., Mauze, S., Caddle, L. B., Coffman, R. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Phenotypically+distinct+subsets+of+CD4%2B+T+cells+induce+or+protect+from+chronic+intestinal+inflammation+in+C.+B-17+scid+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Int+Immunol%22%5BJournal%5D)">Phenotypically distinct subsets of CD4+ T cells induce or protect from chronic intestinal inflammation in C. B-17 scid mice.</a> Int Immunol. 5 (11), 1461-1471 (1993).</li>
<li>Ostanin, D. V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((T+cell+transfer+model+of+chronic+colitis%3A+concepts%2C+considerations%2C+and+tricks+of+the+trade%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Physiol+Gastrointest+Liver+Physiol%22%5BJournal%5D)">T cell transfer model of chronic colitis: concepts, considerations, and tricks of the trade.</a> Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol. 296 (2), 135-146 (2009).</li>
<li>Ma, B. W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Routine+habitat+change%3A+a+source+of+unrecognized+transient+alteration+of+intestinal+microbiota+in+laboratory+mice%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Routine habitat change: a source of unrecognized transient alteration of intestinal microbiota in laboratory mice.</a> PLoS One. 7 (10), e47416(2012).</li>
<li>Read, S., Powrie, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Induction+of+inflammatory+bowel+disease+in+immunodeficient+mice+by+depletion+of+regulatory+T+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Protoc+Immunol%22%5BJournal%5D)">Induction of inflammatory bowel disease in immunodeficient mice by depletion of regulatory T cells.</a> Curr Protoc Immunol. Chapter 15 (Unit 15 13), (1999).</li>
<li>Maillard, M. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Wiskott-Aldrich+syndrome+protein+is+required+for+the+function+of+CD4%28%2B%29CD25%28%2B%29Foxp3%28%2B%29+regulatory+T+cells%5BTitle%5D)+AND+%22J+Exp+Med%22%5BJournal%5D)">The Wiskott-Aldrich syndrome protein is required for the function of CD4(+)CD25(+)Foxp3(+) regulatory T cells.</a> J Exp Med. 204 (2), 381-391 (2007).</li>
<li>Hegazi, R. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Carbon+monoxide+ameliorates+chronic+murine+colitis+through+a+heme+oxygenase+1-dependent+pathway%5BTitle%5D)+AND+%22J+Exp+Med%22%5BJournal%5D)">Carbon monoxide ameliorates chronic murine colitis through a heme oxygenase 1-dependent pathway.</a> J Exp Med. 202 (12), 1703-1713 (2005).</li>
<li>Kole, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Type+I+IFNs+regulate+effector+and+regulatory+T+cell+accumulation+and+anti-inflammatory+cytokine+production+during+T+cell-mediated+colitis%5BTitle%5D)+AND+%22J+Immunol%22%5BJournal%5D)">Type I IFNs regulate effector and regulatory T cell accumulation and anti-inflammatory cytokine production during T cell-mediated colitis.</a> J Immunol. 191 (5), 2771-2779 (2013).</li>
<li>Kobayashi, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((NFIL3-deficient+mice+develop+microbiota-dependent%2C+IL-12%2F23-driven+spontaneous+colitis%5BTitle%5D)+AND+%22J+Immunol%22%5BJournal%5D)">NFIL3-deficient mice develop microbiota-dependent, IL-12/23-driven spontaneous colitis.</a> J Immunol. 192 (4), 1918-1927 (2014).</li>
<li>Steinbach, E. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Innate+PI3K+p110delta+Regulates+Th1%2FTh17+Development+and+Microbiota-Dependent+Colitis%5BTitle%5D)+AND+%22J+Immunol%22%5BJournal%5D)">Innate PI3K p110delta Regulates Th1/Th17 Development and Microbiota-Dependent Colitis.</a> J Immunol. 192 (8), 3958-3968 (2014).</li>
<li>Kobayashi, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((NFIL3+is+a+regulator+of+IL-12+p40+in+macrophages+and+mucosal+immunity%5BTitle%5D)+AND+%22J+Immunol%22%5BJournal%5D)">NFIL3 is a regulator of IL-12 p40 in macrophages and mucosal immunity.</a> J Immunol. 186 (8), 4649-4655 (2011).</li>
<li>Leach, M. W., Bean, A. G., Mauze, S., Coffman, R. L., Powrie, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Inflammatory+bowel+disease+in+C.B-17+scid+mice+reconstituted+with+the+CD45RBhigh+subset+of+CD4%2B+T+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Pathol%22%5BJournal%5D)">Inflammatory bowel disease in C.B-17 scid mice reconstituted with the CD45RBhigh subset of CD4+ T cells.</a> Am J Pathol. 148 (5), 1503-1515 (1996).</li>
<li>Powrie, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Inhibition+of+Th1+responses+prevents+inflammatory+bowel+disease+in+scid+mice+reconstituted+with+CD45RBhi+CD4%5BTitle%5D)+AND+%22T+cells.+Immunity%22%5BJournal%5D)">Inhibition of Th1 responses prevents inflammatory bowel disease in scid mice reconstituted with CD45RBhi CD4.</a> T cells. Immunity. 1 (7), 553-562 (1994).</li>
<li>Read, S., Malmstrom, V., Powrie, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cytotoxic+T+lymphocyte-associated+antigen+4+plays+an+essential+role+in+the+function+of+CD25%28%2B%29CD4%28%2B%29+regulatory+cells+that+control+intestinal+inflammation%5BTitle%5D)+AND+%22J+Exp+Med%22%5BJournal%5D)">Cytotoxic T lymphocyte-associated antigen 4 plays an essential role in the function of CD25(+)CD4(+) regulatory cells that control intestinal inflammation.</a> J Exp Med. 192 (2), 295-302 (2000).</li>
<li>Rogers, G. B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Functional+divergence+in+gastrointestinal+microbiota+in+physically-separated+genetically+identical+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Sci+Rep%22%5BJournal%5D)">Functional divergence in gastrointestinal microbiota in physically-separated genetically identical mice.</a> Sci Rep. 4, 5437(2014).</li>
<li>Fukata, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+myeloid+differentiation+factor+88+%28MyD88%29+is+required+for+CD4%2B+T+cell+effector+function+in+a+murine+model+of+inflammatory+bowel+disease%5BTitle%5D)+AND+%22J+Immunol%22%5BJournal%5D)">The myeloid differentiation factor 88 (MyD88) is required for CD4+ T cell effector function in a murine model of inflammatory bowel disease.</a> J Immunol. 180 (3), 1886-1894 (2008).</li>
<li>Kurtz, C. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Extracellular+adenosine+regulates+colitis+through+effects+on+lymphoid+and+nonlymphoid+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Physiol+Gastrointest+Liver+Physiol%22%5BJournal%5D)">Extracellular adenosine regulates colitis through effects on lymphoid and nonlymphoid cells.</a> Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol. 307 (3), 338-346 (2014).</li>
<li>Naganuma, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cutting+edge%3A+Critical+role+for+A2A+adenosine+receptors+in+the+T+cell-mediated+regulation+of+colitis%5BTitle%5D)+AND+%22J+Immunol%22%5BJournal%5D)">Cutting edge: Critical role for A2A adenosine receptors in the T cell-mediated regulation of colitis.</a> J Immunol. 177 (5), 2765-2769 (2006).</li>
<li>Ranatunga, D. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+protective+role+for+human+IL-10-expressing+CD4%2B+T+cells+in+colitis%5BTitle%5D)+AND+%22J+Immunol%22%5BJournal%5D)">A protective role for human IL-10-expressing CD4+ T cells in colitis.</a> J Immunol. 189 (3), 1243-1252 (2012).</li>
<li>Srikrishna, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Carboxylated+glycans+mediate+colitis+through+activation+of+NF-kappa%5BTitle%5D)+AND+%22B.+J+Immunol%22%5BJournal%5D)">Carboxylated glycans mediate colitis through activation of NF-kappa.</a> B. J Immunol. 175 (8), 5412-5422 (2005).</li>
<li>Wang, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((IFN-gamma-induced+TNFR2+expression+is+required+for+TNF-dependent+intestinal+epithelial+barrier+dysfunction%5BTitle%5D)+AND+%22Gastroenterology%22%5BJournal%5D)">IFN-gamma-induced TNFR2 expression is required for TNF-dependent intestinal epithelial barrier dysfunction.</a> Gastroenterology. 131 (4), 1153-1163 (2006).</li>
</ol>

Yazarlar, rekabet eden hiçbir finansal çıkarları olmadığını beyan ederler.

Burada bağışıklık yetersizliği olan farelere, CD4 + CD45RB + T hücrelerinin adoptif nakli ile farelerde kolon inflamasyonu yol açan bir adım adım protokol açıklar. Alıcı fareler başka soybaşları rağmen (örneğin, BALB / c, 129S6 / SvEv, obez olmayan diyabetik (NOD)) immün yetmezlik ve genetik modelleri (örneğin, SCID, Rag2 - / - Bu, C57BL / 6 verici dalak ve genetik olarak özdeş Rag1 kullanılan - / -) da 4,14-16 kullanılabilir. İyi...

İnflamatuar barsak hastalıkları (IBD) Crohn hastalığı ve ülseratif kolit, konak immün yanıtları, genetik yatkınlık, çevresel faktörler ve enterik luminal içerikler arasındaki tam olarak tanımlanmamış ve karmaşık bir etkileşimden kaynaklanır1. Son genom çapında ilişkilendirme çalışmaları, bağışıklık hücresi düzenleyici genler ile IBD duyarlılığı arasındaki ilişkileri bildirmektedir2,3. Bu çalışmalarda hem doğuştan gelen hem de adaptif immün hücre intrinsik genleri temsil edilmektedir, bu da bu hücre popülasyonlarının IBD patogenezinde merkezi bir rol oynadığını göstermektedir.
Şu anda insan IBD'nin 50'den fazla hayvan modeli var. Hiç kimse insan IBD'sini mükemmel bir şekilde fenoskopileştirmese de, birçoğu hastalığın başlangıcı ve ilerlemesi ve yara iyileşme tepkisi dahil olmak üzere insan hastalığının çeşitli yönlerini incelemek için yararlıdır. Burada anlatılan yöntemde, sinjenik dalak CD4+CD45RByüksek T hücresi adoptif transferi ile T ve B hücre eksikliği olan alıcı farelere4 bağırsak iltihabı başlatılır. CD4 + CD45RByüksek T hücresi popülasyonu, kronik ince bağırsak ve kolon iltihabını indükleyebilen, aktivasyon için hazırlanmış esas olarak naif T hücreleri içerir. Bu yöntem, araştırmacının, hastalık patogenezi ile ilgili biyolojik olarak ilgili soruları yanıtlamak için hem doğuştan gelen hem de adaptif bağışıklık hücresi popülasyonları dahil olmak üzere temel deneysel değişkenleri değiştirmesine izin verir. Ek olarak, bu yöntem, hastalık başlangıcının kesin olarak başlatılmasını ve iyi karakterize edilmiş bir deneysel zaman seyri sağlar. Bu, farelerde hastalık ilerlemesinin klinik özelliklerinin kinetik çalışmasına izin verir. Bu yöntemle indüklenen bağırsak iltihabı, kronik kalın ve ince bağırsak transmural iltihabı, TNF ve IL-12 gibi sitokinler tarafından yönlendirilen patogenez ve israf gibi sistemik semptomlar dahil olmak üzere insan IBD'si ile birçok özelliği paylaşır5. Bu nedenle, insan IBD'sinin patogenezini incelemek için ideal bir model sistemdir.
Buradaki yöntem, CD4+CD45RB yüksek T hücrelerinin Rag1-/- farelere evlat edinerek aktarılmasıyla deneysel koliti indükleme protokolünü ayrıntılı olarak açıklamaktadır. Önemli teknik adımları, beklenen sonuçları, optimizasyonu ve sorun gidermeyi tartışıyoruz. Araştırma amaçlı bu murin bağırsak iltihabı modelinin başarılı bir şekilde geliştirilmesi için gerekli unsurları ele alıyoruz.

<table><tbody><tr><td>Reaktifin Adı / Ekipman</td><td>Firma</td><td>Katalog Numarası</td><td>Yorumlar/Açıklama</td></tr><tr><td>10x PBS</td><td>Gibco</td><td>14200075</td><td></td></tr><tr><td>12 mm x 75 mm yuvarlak tabanlı tüp</td><td>Falcon</td><td>352052</td><td></td></tr><tr><td>15 ml konik</td><td>Corning</td><td>430790</td><td></td></tr><tr><td>26 G x 3/8 İğne</td><td>BD Biosciences</td><td>305110</td><td></td></tr><tr><td>50 ml konik</td><td>Corning</td><td></td><td></td>430828</tr><tr><td>70 & # 956; m Hücre Süzgeci</td><td>Fisherbrand</td><td>22363548</td><td></td></tr><tr><td>BD IMagnet</td><td>BD Biosciences</td><td>552311</td><td></td></tr><tr><td>&beta;-merkaptoetanol</td><td>Thermo Scientific</td><td>35602</td><td></td></tr><tr><td>CD4-FITC IgG2b</td><td>eBioscience</td><td>11-0041</td><td></td></tr><tr><td>CD45RB-PE IgG2a</td><td>BD Pharminogen</td><td>553101</td><td></td></tr><tr><td>Komple Medya</td><td></td><td></td><td>RPMI-1640,% 1 Kalem/Strep, %10 FBS, %0.0004 &beta;-ME</td></tr><tr><td>FACS tüp + süzgeç</td><td>BD Falcon</td><td>352235</td><td></td></tr><tr><td>Cam Mikroskop Slaytları</td><td>Fisherbrand</td><td>12550A3</td><td></td></tr><tr><td>Isıyla İnaktive Edilmiş FBS</td><td>Gemini</td><td>100-106</td><td></td></tr><tr><td>Etiketleme Tamponu</td><td></td><td></td><td>1x PBS, %0,5 BSA, 2 mM EDTA</td></tr><tr><td>Lizis Tamponu</td><td></td><td></td><td>%0,08 NH4Cl, %0,1 KHCO3, 1 mM EDTA</td></tr><tr><td>MoFlo XDP</td><td>Beckman Coulter</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Fare CD4 T lenfosit Zenginleştirme Seti - DM</td><td>BD Biosciences</td><td>558131</td><td></td></tr><tr><td>Fare IgG2a-PE</td><td>BD Pharminogen</td><td>553457</td><td></td></tr><tr><td>Fare IgG2b-FITC</td><td>eBioscience</td><td>11-4732</td><td></td></tr><tr><td>Pasteur pipeti</td><td>Fisherbrand</td><td>13-678-20D</td><td></td></tr><tr><td>Penisilin-Streptomisin Çözeltisi, 100X</td><td>Corning Cellgro</td><td>30-002-CI</td><td></td></tr><tr><td colspan="4">[header]</td></tr><tr><td>Petri Kabı</td><td>Fisherbrand</td><td>875713</td><td></td></tr><tr><td>Saf Etanol 200 Kanıt</td><td>Decon Labs</td><td>2705-HC</td><td></td></tr><tr><td>RPMI-1640</td><td>Gibco</td><td>11-875-093</td><td></td></tr><tr><td>Şırınga</td><td>BD Biosciences</td><td>309597</td><td></td></tr><tr><td>Tripan mavisi</td><td>Corning Cellgro</td><td>25-900-CI</td><td></td></tr><tr><td>Yıkama Ortamı</td><td></td><td></td><td>RPMI-1640, %1 Kalem/Strep, %0,0004 &beta;-ME</td></tr></tbody></table>

efektör cd4 evlatlık transferi ile kemirgen bağırsak enflamasyon indüksiyonu<sup&gt; +</sup&gt; cd45rb<sup&gt; yüksek</sup&gt; bağışık yetmezliği olan farelere içine t hücreleri

Induction of Murine Intestinal Inflammation by Adoptive Transfer of Effector CD4+CD45RBhigh T Cells into Immunodeficient Mice

İnsan inflamatuar barsak hastalıklarının (IBD), kendi avantajları ve dezavantajları her patogenezi çalışmak için birçok farklı hayvan modelleri vardır. Burada T ve B hücresi eksik alıcı farelere singeneik dalak CD4 + CD45RB yüksek T hücrelerinin adoptif nakli ile başlatılır deneysel kolit modelini açıklar. Büyük ölçüde naif efektör hücrelerin oluşur CD4 + T hücre CD45RB yüksek popülasyonu yakından insan IBD&#39;nin kilit yönlerini benzeyen, kronik bağırsak inflamasyonu uyarma yeteneğine sahiptir. Bu yöntem, hastalığın başlangıcında ve ilerlemesinde yönlerini incelemek için manipüle edilebilir. Ayrıca bağırsak iltihabı yani doğuştan gelen, adaptif fonksiyonlarını ve düzenleyici immün hücre popülasyonları ve çevresel maruziyet rolü, Mikrobiyota, incelemek için kullanılabilir. Bu yazıda, bir adım-adım protokolü ile Kolit için bir metodoloji göstermektedir. Bu incidarecisi başarıyla araştırma amaçlı deneysel kolit bu fare modeli geliştirilmesi için gerekli anahtar teknik yönlerini bir video gösterisi.

Yaklaşık yetişkin, C57BL / 6 verici fareden 10 dalaklarından 10 x 10 6, CD4 + T hücreleri, CD45RB yüksek güvenilir izole edilir. Bu sayı yaşla ve gerginlik verici fare ve araştırmacı yeterliliğine bağlı olarak değişecektir. Ne zaman 4 x 6 CD4 + T hücreleri CD45RB yüksek C57BL / 6 Rag1 aktarılır / 10 5 C57BL - / - alıcı fareler, hastalığın klinik belirtileri hafta 5 sonrası dolgunluk etrafında ortaya veya fareler (daha ağır hastalığa ge...

Burada, sinjeneik CD4 + CD45RByüksek T hücrelerinin T ve B hücresi eksikliği olan alıcılara evlat edinici transferi yoluyla farelerde kolon iltihabını indüklemek için bir protokol sunuyoruz. Klinik ve histopatolojik özellikleri insan inflamatuar barsak hastalıklarını taklit eder. Bu yöntem, kolon iltihabının başlaması ve hastalığın ilerlemesinin incelenmesine izin verir.

Efektör CD4 Evlatlık transferi ile Kemirgen Bağırsak Enflamasyon indüksiyonu<sup&gt; +</sup&gt; CD45RB<sup&gt; Yüksek</sup&gt; Bağışık yetmezliği olan farelere içine T Hücreleri

There are many different animal models available for studying the pathogenesis of human inflammatory bowel diseases (IBD), each with its own advantages ...

Bu prosedürün genel amacı, immünodefisyent farelere naif T hücrelerinin adoptif transferi yoluyla intestinal inflamasyonu indüklemektir. Bu işlem, öncelikle fare dalaklarından hücrelerin izole edilmesi, kan hücrelerinin lizlenmesi ve ardından popülasyonun CD four pozitif T hücreleri için zenginleştirilmesiyle gerçekleştirilir. İkinci adım, bu hücrelerin floresan DI konjuge CD four ve CD 45 RB antikorları ile işaretlenmesidir.Ardından, işaretlenmiş hücreler FACS kullanılarak CD 45, RB düşük ve CD 45 RB yüksek popülasyonlarına göre ayrıştırılır. Son adım, CD 45 RB yüksek hücrelerin intraperitonal enjeksiyon yoluyla immünodeficient farelere aktarılmasıdır. Nihayetinde, aktarılan hücreler aktive olur ve T düzenleyici hücrelerin yokluğunda lokal doku hasarına yol açarak deneysel kolit oluşturur.Bu yöntem, inflamatuar bağırsak hastalıklarının çalışılmasında, spesifik hücre popülasyonlarının ve gastrointestinal mikrobiyotanın hastalık patogenezindeki rolü gibi temel soruların yanıtlanmasına yardımcı olabilir. Donör fareyi ötanazı ettikten sonra, bölgeyi sterilize etmek için abdomen üzerine %70 ethanol püskürtün. Ardından, abdomen boyunca yatay bir insizyon yapın ve pens kullanarak peritonu açığa çıkarmak için deriyi geriye doğru soyun.Peritonu iç organlardan uzaklaştırın ve sol abdominal peritonda bir insizyon yapın. Ardından, dalağı fareden çıkarın ve 10 mililitre buz gibi soğuk, komple ortam içeren bir Petri kabına yerleştirin. Tek hücreli süspansiyon oluşturmak için dalağı iki steril lam ile ezin.Hücreleri 70 µm'lik bir süzgeçten geçirerek 50 mL'lik konik bir tüpe filtreleyin ve ardından süzgeci 5 mL tam besiyeri ile durulayın; tek bir konik tüpte beş adete kadar dalağı süzebilirsiniz. Ardından, hücreleri 4 °C'de 7 dakika boyunca 450 ×g kuvvetinde santrifüj edin. Süpernatantı bir atık kabına aspire edin ve ardından hücreleri 10 mL buz gibi soğuk etiketleme tamponunda nazikçe yeniden süspande edin.20 µL hücre süspansiyonunu 180 µL %0,4 trypan blue çözeltisi ile birleştirin ve hücreleri oda sıcaklığında beş dakika inkübe edin. Ardından, 10 µL hücre süspansiyonunu bir hemositometreye ekleyin ve zenginleştirme peleti hazırlığına başlamak için mikroskop altında mavi boyanmamış hücre sayısını sayın ve hücreleri buz gibi soğuk etiketleme tamponunda 20 × 10⁶ hücre/mL konsantrasyonda nazikçe yeniden süspanse edin. Her 1 × 10⁶ hücre için 5 µL biotinylated CD4 T hücresi zenginleştirme antikoru ekleyin ve ardından hücreleri antikorla birlikte buz üzerinde 15 dakika inkübe edin.Hücre süspansiyonuna, hacminin 10 katı kadar işaretleme tamponu ekleyin ve ardından hücreleri 450 ×g hızda yedi dakika boyunca santrifüjleyin. Hücre peletini dağıtmadan süpernatantı dikkatlice aspire edin. Daha sonra, streptavidine konjuge manyetik partikülleri vorteksleyerek yeniden süspande edin ve her 1 × 10⁶ hücre için beş mikrolitre partikül ekleyin.Tüpü nazikçe sallayarak partikülleri hücrelerle karıştırın ve ardından karışımı 6 ila 12 °C'de 30 dakika boyunca inkübe edin. Hücreleri etiketleme tamponu ile mililitre başına 20 ila 80 × 10⁶ hücre konsantrasyonuna gelecek şekilde yeniden süspanse edin. Ardından, etiketlenmiş hücrelerin 1 mL'sini 12 mm × 75 mm'lik yuvarlak tabanlı bir test tüpüne aktarın ve bu pozitif fraksiyon tüpünü 6 ila 8 dakika boyunca bir mıknatıs üzerine yerleştirin.Tüp mıknatıs üzerindeyken, etiketlenmiş hücreleri rahatsız etmeden süpernatanı bir cam pastör pipetiyle dikkatlice uzaklaştırın ve yeni, steril 50 mililitrelik konik bir tüpe aktarın. Bu fraksiyon CD4 pozitif T hücrelerini içerir. Pozitif fraksiyon tüpünü mıknatıstan çıkarın ve hücreleri şiddetli pipetleme yaparak etiketleme tamponunda yeniden süspanse edin.Tüpü tekrar altı ila sekiz dakika boyunca mıknatısa yerleştirin. Ardından, SUP'ı dikkatlice zenginleştirilmiş fraksiyon tüpüne aktarın. Hücreleri işaretlemeye hazırlamak için, gerektiğinde zenginleştirme işlemini tekrarlayarak CD4 pozitif T hücrelerinin verimini artırın. İlk olarak, zenginleştirilmiş fraksiyonu 450 ×g hızında yedi dakika boyunca santrifüjleyin ve süpernatanı uzaklaştırın.Ardından hücreleri, mililitre başına 10 x 10⁶ hücre konsantrasyonuna ulaşacak şekilde etiketleme tamponunda yeniden süspande edin. Boyanmamış, izotop boyalı ve tekli boyalı kontrol hücreleri için 5 x 10⁵ hücreyi ayrı mikro santrifüj tüplerine paylaştırın. Daha sonra, orijinal hücre süspansiyonunu içeren tüpe 5 µg/mL CD4 FITC ve 1 µg/mL CD45 RB PE antikorları ekleyin.İzotop kontrol boyalarını ve tekli boyaları aynı konsantrasyonda uygun hücre alikotlarına ekleyin. Hücreleri antikorlarla nazikçe karıştırın ve ardından tüpleri 30 dakika boyunca buz üzerinde inkübe edin. Tüpleri ışıktan korumak için üzerini kapatın.Ardından, metin protokolünde belirtildiği gibi hücreleri etiketleme tamponu ile iki kez yıkayın ve hücreleri etiketleme tamponu içerisinde mililitre başına 10x10 hücre olacak şekilde yeniden süspanse edin. Daha sonra, hücre süspansiyonunu 70 mikronluk bir süzgeçten geçirerek bir FACS tüpüne aktarın. Boyaların fotobeyazlamasını (photo bleaching) önlemek için tüpü buz üzerine yerleştirin ve üzerini kapatın.Hücre ayırıcıdaki kompanzasyonu kalibre etmek için boyanmamış ve tek aşamalı kontrol hücrelerini kullanın. İleri ve yan saçılım geçitlerini (gating) kullanarak canlı olmayan hücreleri hariç tutun. Ardından, izotop boyalı kontrollerle CD4 pozitif ve CD4 RB pozitif hücreler için geçitleri ayarlayın.Bir sonraki kapılamada, CD4 pozitif popülasyonu seçin ve ardından hücreleri CD45RB yüksek ve CD45RB düşük popülasyonlarına göre ayrıştırın. Hücreleri iki mililitre komple ortam içeren tüplere toplayın ve ardından örnek saflığını değerlendirmek için her fraksiyondan yaklaşık 10 × 10³ hücre içeren bir alikotu hücre ayrıştırıcıda çalıştırın. CD45RB yüksek ve CD45RB düşük hücreleri enjeksiyona hazırlamak için, metin protokolünde belirtilen uygun hücre yoğunluğunda PBS ile yıkayın ve yeniden süspande edin. Ardından, alıcı fareyi sıkıca sabitleyin ve 100 µL hücre süspansiyonunu abdomenin sağ ve sol taraflarına intraperitoneal olarak enjekte edin.Alıcı fareleri, metin protokolünde belirtilen klinik parametreler açısından her hafta izleyin. Enjeksiyon sonrası hastalık ilerlemesi genellikle beşinci haftada belirginleşir. Fareyi önceden belirlenmiş bir zaman noktasında veya başlangıç vücut ağırlığının %20'sini kaybettiğinde sakrifiye edin ve kolonu çıkarın.Ardından kolonun uzunluğunu ve ağırlığını ölçüp kaydedin. Beş haftalık enjeksiyon sonrası, CD4 pozitif CD45RB yüksek T hücreleri rag1 knockout ve NFIL3 RAG1 çift knockout alıcı farelere transfer edildi. Çift knockout fareler başlangıç vücut ağırlıklarının %10'unu kaybetmişti; hem rag1 knockout hem de çift knockout farelerin kolonları incelendi.Alıcı farelerin kolonları, kontrol farelerin kolonlarına kıyasla kalınlaşmış ve kısalmıştı; CD4 pozitif CD45RB yüksek T hücreleri rag1 knockout ve rag1 knockout P110 delta mutant alıcı farelere transfer edildi. Transferden üç hafta sonra yapılan histolojik analizler, rag1 knockout farelerde değil, rag1 knockout delta mutant alıcıların kolonlarında epitelyal hiperplazi, inflamatuar hücre infiltrasyonları ve kript abseleri olduğunu gösterdi. Bir kez ustalaşıldığında, bu teknik uygun şekilde uygulandığı takdirde dört ila altı saat içinde tamamlanabilir.

induction-murine-intestinal-inflammation-adoptive-transfer-effector

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

İmmünoloji ve Enfeksiyon

Burada, fare intestinal dendritik hücrelerinin (DC'ler) ve makrofajların hızlı izolasyonu için bir metodolojiyi detaylandırıyoruz. İntestinal DC'lerin ve makrofajların fenotipik karakterizasyonu çok renkli akış sitometrik analiz kullanılarak gerçekleştirilirken, fonksiyonel çalışmalar için yüksek saflıkta popülasyonlar elde etmek amacıyla manyetik boncuk zenginleştirmesi ve ardından hücre ayıklama yöntemi kullanılır.

Fare Barsak ayrı dendritik hücreler ve makrofajlar İzolasyonu ve Karakterizasyonu

Bu video, allojenik hematopoietik kök hücreler ve GvHD'yi indükleyen splenik alloreaktif T lenfositleri kullanılarak letoral ışınlanmış bir alıcı farede bağırsak greftine karşı konak hastalığının (GvHD) indüksiyonunu göstermektedir. Bu protokol, hastalığın mekanizmasını anlamak ve yenilikçi terapötik seçenekler geliştirmek için ciddi bir akut intestinal GvHD modeli oluşturmaya yardımcı olur.

Allojenik Kemik İliği ve Splenik Hücre Nakli ile Fare Modellerinde Graft Versus Host Hastalığının İndüksiyonu

Biz adacık antigen spesifik primer CD4 + T-hücrelerinin adoptif transfer yoluyla, iki hafta içinde farenin tip 1 diyabet (tip 1 diyabetin) ikna etmek için tekrarlanabilir bir yöntem sağlar.

Diyabetojenik CD4 Kabul edilmiş Transfer ile Farelerde Hızlandırılmış Tip 1 Diyabet İndüksiyon + T Hücreleri

Bu antijen güdümlü kolit modelinde, kırmızı bir floresan proteini eksprese eden OT-II CD4+ T hücreleri, mononükleer fagositlerde (MP'ler) yeşil bir floresan proteini eksprese eden RAG-/- farelere evlat edinilmiş olarak aktarıldı. Ev sahipleri, bir camgöbeği floresan proteinine (CFP) kaynaşmış ovalbümin proteinini (OVA) eksprese eden Escherichia coli (E.coli) ile sorgulandı.

Bir Antijen odaklı Kolit Modelinin Geliştirilmesi Antijen T hücreleri için Hücreler sunulması ile Antijen Sunumu Eğitim için

Burada, farklı fare dokuları içindeki IL-22 üreten hücreleri görselleştirmek için bir transgenik raportör fare modelini açıklıyoruz. Bu yöntem, faredeki diğer sitokinlerin veya salgı proteinlerinin yerini izlemek için kullanılabilir.

Raportör fareler kullanılarak IL-22 eksprese eden lenfositlerin Görselleştirme

Burada biz lenfositler gut ilişkili lenfoid doku Peyer's yamalar ve boşaltma Mezenterik lenf düğümleri de dahil olmak üzere İndüktif sitelerinden ve lamina propria dahil efektör mekanları ekran koruyucu yalıtım için detaylı bir protokol tanımlamak ve bağırsak epitel küçük bağırsak bağışıklık sisteminin.

Lenfositler fare küçük bağırsak bağışıklık sistemi yalıtma

Burada, Allojeneik Hematopoietik kök hücre transplantasyonu açıklar ve distal kolonun tekrarlayan mini-endoskopik değerlendirme yerinde varlığı, özellikleri ve canlı içinde kolon iltihabı şiddeti için izin veren bir protokol mevcut bağırsak graft - versus - host hastalığı fareler.

İndüksiyon bağırsak Graft - versus - host hastalığı ve canlı fareler, Mini-endoskopik değerlendirme

Bu protokolde bağırsak mikrobiyota antijenine özgü T hücreli benimseyen transfer kolit modeli tanımlanmıştır. CD4+ T hücreleri CBir1 TCR transgenik farelerden izole edilmiştir. Bunlar, alıcı Rag1/- farelere aktarılan ve bağırsak iltihabına yol açan immünodominant bağırsak mikrobiyota antijeni CBir1 flagellin için özeldir.

CBir1 TCR Transgenik CD4+ T Hücrelerinin İmmün Yetmezlikçi Farelere Benimsenen Transferi ile Bağırsak İltihabının İndüksiyonu

Genetik duyarlılık, mukozal bağışıklık ve intestinal mikroekolojik ortamın etkileşimi, inflamatuar barsak hastalığının (İBH) patogenezinde rol oynar. Bu çalışmada, IL-10 eksikliği olan farelere fekal mikrobiyota transplantasyonu uygulanmış ve kolonik inflamasyon ve kalp fonksiyonu üzerine etkisi araştırılmıştır.

Fekal Mikrobiyota Transplantasyonunun İnterlökin 10 Eksikliği Olan Fare Modelinde Terapötik Değerlendirmesi

Çalışma, epikütan (EC) bağışıklama yoluyla farelerde bağışıklık tepkilerini modüle etmede cildin rolünü göstermektedir. Bir protein antijeni ile EC bağışıklaması, patojenle ilişkili moleküler paternlerle birleştirildiğinde temas aşırı duyarlılığında veya ters cilt kaynaklı baskılamada bağışıklık tepkilerini baskılayabilir. EC bağışıklaması, immünoterapiye etkili, iğnesiz bir yaklaşım olarak umut vaat etmektedir.

Epikütan İndüklenen İmmünomodülasyonun Murin Modeli

Burada, SKG farelerinden CD4 + T hücrelerinin evlat edinilmiş transferi yoluyla bir romatoid artrit (RA) fare modeli oluşturan, immünolojik mekanizmaları, patolojik ilerlemeyi ve RA için yeni tedavilerin geliştirilmesini araştırmak için hızlı ve güvenilir bir deneysel araç sağlayan bir protokol sunuyoruz.

Farelerde Romatoid Artritin Evlat Edinen Bir Transfer Modeli

Öğrenin, bağışıklık yetmezliği olan farelere CD4+ CD45RBhigh T hücrelerinin evlatlık transferi yoluyla kolonik enflamasyon indüksiyonu yöntemini. Bu model, inflamatuar bağırsak hastalıklarının mekanizmalarını ve terapötik müdahaleleri test etmek için kullanılır.

Efektör CD4 Evlatlık transferi ile Kemirgen Bağırsak Enflamasyon indüksiyonu + CD45RB Yüksek Bağışık yetmezliği olan farelere içine T Hücreleri (Video) | JoVE Journal

Efektör CD4 Evlatlık transferi ile Kemirgen Bağırsak Enflamasyon indüksiyonu

Daha fazla video keşfet