Name: Kuantum Nokta Nanopartiküller kullanma Korelatif Işık- ve Elektron Mikroskobu (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-08-07T14:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 16 s
Description: Keşfedin kuantum nokta nanopartiküller kullanarak korelatif ışık ve elektron mikroskobu yöntemini. İnsan somatostatinoma tümör dokusunda protein lokalizasyonunu görüntülemek için floresan ve transmisyon elektron mikroskobisini birleştirin.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Yazarlar, Xiao Juan Wu (İmmünohistokimya Laboratuvarı) ve Anatomik Patoloji Bölümü, Sidney Güney Batı Patoloji Servisi (SSWPS), NSW Sağlık Patolojisi, Liverpool, Yeni Güney Galler, Avustralya'nın desteğini kabul etmek isterler.

1. Doku Diseksiyon ve Fiksasyon <ol><li> doku Diseksiyon <ol><li> Bir cerrahi rezeksiyon tümör örneği veya doku biyopsisi doku parçaları incelemek. Not: Bu çalışmada kullanılan doku rutin formalin içinde sabitlendi, ancak taze doku da uygundur. Bu rutin histolojik boyama ve anti-somatostatin immün (gösterilmemiştir) sonra, somatostatinoma tümör içeren, anatomik bir patolog tarafından teyit bildirilen bir alan seçilmiştir. </li><li> Yaklaşık 1,0 mm 3 daha büyük doku parçaları kullanın. </li></ol></li><li> Kakodilat tampon hazırlanması <ol><li> sodyum kakodilat 21.4 g eklenerek stok tampon çözeltisi (1 M) hazırlama (Malzeme Listesi) ve 90 ml damıtılmış suya ve daha sonra 100 ml&#39;lik bir nihai hacme solüsyonu tepesi 3.0 mL% 1 kalsiyum klorür çözeltisi. çözüm karıştırın ve kristal reaktif tamamen erir, böylece gece boyunca beklemeye bırakın. </li><li&gt; gösterge şeritleri ile pH kontrol daha sonra su 170 ml stok çözeltisi 20 ml ilave edilerek çözelti çalışan bir tampon hazırlayın. % 3 HCI 4 damla 3 - eklenerek pH 7.4 ayarlayın. 0.1 M nihai molarite 200 ml nihai hacme kadar çözelti doldurun </li></ol></li><li> Sabitleme hazırlanması ve kullanımlar <ol><li> sodyum kakodilat stok çözeltisi (1 M), 20 ml% 50 glutaraldehid çözeltisi, bir 10 mi ampul ekleyin. 190 ml damıtılmış su ile doldurun. pH kontrol edin ve 1 eklenerek 7.4&#39;e ayarlayın, -% 3 hidroklorik asit (HCI) gerektiğinde 4 damla. </li><li> 200 ml &#39;lik bir son hacim yapmak için damıtılmış su ile doldurun. </li><li> Bir cam tüpte 4 o C&#39;de 24 saat süre ile 0.1 M sodyum kakodilat tamponu pH 7.4 içinde% 2.5 glutaraldehid içeren sabitleştirici doku bırakın. 1 hafta sonra kullanılmayan fiksatif atın. </li></ol></li></ol> 2. Doku İşleme ve katıştırma <ol><li> osmiyum Tetroxide Boyama <ol><li> tespit işlemi tamamlandıktan sonra, daha sonra 20 dakika boyunca, sodyum kakodilat tamponu (0.1 M) içerisinde doku daldırın 20 dakika daha tekrarlayın. </li><li> Nihai bir hacim yapmak için, sodyum kakodilat tamponu stok çözeltisi (1 M) 2.0 ml damıtılmış su içinde 10.0 ml% 5 OsO 4 stok solüsyonu 8.0 ml ilave edilerek çalışma çözeltisi 2% sulu ozmiyum tetroksit (OsO 4) hazırlanması 20.0 mi. </li><li> Tampon, daha sonra oda sıcaklığında 4 saat süre ile pH 7.4&#39;de OsO 4 2% doku sokmak çıkarın. Boşaltılması ve OsO 4 çözüm hazırlarken DİKKAT! Her zaman bir davlumbaz uygun kişisel koruyucu ekipman ve iş giyim, dikkatli olun. </li></ol></li><li> Uranil asetat Boyama <ol><li> Doku osmication tamamlandıktan sonra OsO 4 çözüm kaldırmak ve 10 dakika boyunca% 2 sodyum asetat içinde doku bırakın. % 2 sodyum asetat sonra 1 saat sonra% 2 uranil asetat sokmak Kaldıroda sıcaklığı. </li></ol></li><li> kurutma <ol><li> kademeli alkoller ile doku kurutmak. 10 dakika ve oda sıcaklığında 20 dakika her biri için% 100 etanolden iki değişiklik, 10 dakika,% 95 etanol için 10 dakika için% 50 etanol,% 70 etanol kullanımı. </li><li> 30 dakika her biri için% 100 aseton iki değişiklik yapın. </li></ol></li><li> Reçine Emprenye ve Kür <ol><li> tek kullanımlık bir polietilen kap içinde düşük viskoziteli bir epoksi reçine karıştırılır. vinil sikloheksen dioksit (ERL 4221), epoksi monomer 10.0 g, polipropilen glikol diglisidil eter 6 g (DER 732) ve nonenil süksinik anhidrit (NSA) 26.0 g ekleyin. 2 dakika süreyle ahşap çubukları kullanarak elle iyice karıştırın. </li><li> 2-dimetilaminoetanol (DMAE) epoksi hızlandırıcı on beş damla ilave edin ve 2 dakika boyunca daha karıştırıldı. tam DMAE hızlandırıcı eklemeden önce ERL, DER ve NSA bileşenleri karıştırmak için özen gösterin. </li><li> 1 reçinesi: 1% 100 aseton değiştirerek doku reçine emprenye Başlangıç3 saat aseton 1 reçine, ve bir gece boyunca son olarak% 100 reçinesi: aseton, 1 saat boyunca, daha sonra 6 ile değiştirin. </li><li> 8 mm micromoulds taze reçine içine doku aktarın. 70 o C gece boyunca Cure. Reçine zor ama Kuruduktan sonra kırılgan olmamalıdır. </li></ol></li></ol> 3. ultramikrotom <ol><li> Bıçak, Kesici Parametreler ve Bölüm Kalınlığı <ol><li> ultramicrotome bir yarı ince elmas bıçak yerleştirin ve 500 nm arasında bir kalınlıkta dokudan kesitler halinde kesilmiştir. </li><li> bıçak kenarının arkasına su banyosu üzerine bölümleri yüzer. Bir bardak slayt bölümleri Pick up ve C o yaklaşık 110 ocak gözünü kullanarak 10 ila 20 saniye boyunca onları kurutun </li><li> 20 sn için sodyum etoksit çözeltisi ile bölümleri çözülmesi ve daha sonra% 100 etanol daha sonra damıtılmış su ile yıkayın. ocak 20 saniye% 1 boraks içinde% 2&#39;lik metilen mavisi ile Leke, 5 saniye ocak üzerinde 5 saniye akan musluk suyu ve kuru ile durulayın. Sonra stain 20 saniye ocak ardından kuru 5 sn ocak üzerinde% 1.5 bazik fuksin ile. </li><li> parlak alan ışık mikroskobu ile incelemek ve bu tümör hücrelerini ve faiz (ROI) bir bölge teyit bölümünde bulunmaktadır. </li><li> ultra ince elmas bıçak yarı ince elmas bıçak değiştirin ve bıçak üreticisi tarafından tavsiye edildiği gibi doğru bıçak açısı ve kesme hızını ayarlamak. </li><li> 90 nm kalınlığında ultra ince kesitler halinde kesilmiştir. su banyosu üzerinde yüzen bölümlerinin altın renginin gözlemleyin. </li><li> Stretch ve bölümlerin birkaç milimetre içinde filtre kağıdı 1 cm 2 parça kloroform buharı sallayarak bölümleri dümdüz. Su yüzeyi ile temas kloroform batırılmış kağıt getirmek için özen gösterin. </li></ol></li><li> Ultra ince Bölüm Izgara Montaj <ol><li> bölüm adhesiv batırılmış olan bir 300 mesh ince çubuk nikel TEM ızgarası kullanılarak su yüzeyinden ultra ince bölümleri kaldırıne çözüm. ızgara donuk tarafında bölümleri bulun. ızgaralar bir tarafında ve diğer tarafta bir cilalı veya parlak yüzeyde donuk veya mat bir yüzeye sahiptir. Hiçbir destek filmi gereklidir. Not: forseps yapışmasını ızgaraları önlemek için anti-manyetik forseps ile bu ızgaraları işlemek için gereklidir. </li><li> aseton 2.0 ml Şişeyi ml bir 5 açık yapışkan bant 20 cm koyarak bölüm yapıştırıcı hazırlayın. Cap ve şişeyi sallayın, yapışkan çözümü bırakarak bandı çıkarın, sonra 10 dakika bekletin. </li></ol></li></ol> 4. ile immün <ol><li> antijeninin ortaya çıkartılması <ol><li> damıtılmış su içinde taze doymuş bir sodyum metaperiodat dağlama çözeltisi 1 ml hazırlayın ve hemen kullanımı. Temiz labfilm yüzeyinde aşındırma çözeltisi Yeri damlacıkları. </li><li> 30 dakika için oda sıcaklığında aşağı sodyum metaperiodat çözeltisinin damlacıklarının bölümlere sahip tamamen kuru ızgaraları yerleştirin. Damıtılmış su DRO&#39;ya ızgaraları aktarınYıkama 60 saniye boyunca plets. </li></ol></li><li> Antikor Kuluçka ve QD Probe Etiketleme <ol><li> Temiz bir Parafilm yüzeyine yerleştirilir çözümün damlacıkları tüm inkubasyon ve etiketleme gerçekleştirin. </li><li> bölümünde artık aldehid engellemek için 10 dakika boyunca PBS içerisinde 0.05 M glisin bir damlacık ilgili kılavuz getirin. kısaca ızgara kenarına blot aldehit bloğunu çıkarın. </li><li> 10 dakika boyunca PBS içinde% 1 normal keçi serumu (NGS) ve% 1 bsac (% 10) bir damlacık ilgili kılavuz getirin. 1000 ul nihai bir hacim verecek şekilde NGS 10 ul PBS içinde 890 ul BSAC 100 ul ilave edilerek bloke çözeltisi hazırlayın. </li><li> 10 dakika antikor seyreltici bir damlacık üzerinde koyarak bölümleri şart. </li><li> Antikor Seyreltici 3.47 g / L&#39;lik bir konsantrasyon vermek 1:10 seyreltilmiş, anti-somatostatin poliklonal antikoru kullanılarak immün inkübasyon gerçekleştirin. Not: Antikor inkübasyon oda sıcaklığında bir sıcaklıkta 1 saat boyunca damlalar ızgaraları yerleştirilmesiyle yapılırnemli bir odada ure. </li><li> daha sonra 2 x 5 dakika süreyle seyreltici ile ilgili bölümleri yıkamak ızgara kenarına blot adım 4.2.5 antikor reaktifi çıkarın. </li><li> Oda sıcaklığında 1 saat süre ile 1:10 oranında seyreltildi ikincil antikor (biyotinile keçi anti-tavşan poliklonal) &#39;de inkübe edin. ikincil antikor çözüm çıkarın. 2 x 5 dakika boyunca seyreltici içinde yıkayın. </li><li> Oda sıcaklığında 1 saat süre ile 1:10 seyreltilmiş streptavidin konjüge QDS (585 nm) &#39;de inkübe edin. İnkübasyon sırasında ışık maruziyeti azaltmak için alüminyum folyo ile örtün. </li><li> 2 dakika için taze damıtılmış su içinde ızgaraları yıkayın. ızgara kuru kenarlarını kurulayın. </li></ol></li></ol> 5. Floresan Işık Mikroskopisi <ol><li> Işık Kaynağı ve Filtre Küpleri <ol><li> geniş alan floresan ışık mikroskobu için 365 nm ışık yayan diyot (LED) aydınlatma kullanın. aşağıdaki özelliklere sahip bir filtre küpü yerleştirin: (Ex G 365 nm, BS FT 395 ve EM LP 420 nm). Not: Bu filtre küp whasta tüm QDS emisyon spektrumları aynı dalgaboyu altında eş zamanlı olarak görüntülenmiştir için boyutları izin verir. </li></ol></li><li> Görüntüleme ve Görüntüleme Bölümleri <ol><li> su damlacığı aşağı bir bardak slayt boyanmış ızgara bölümüne yerleştirin ve bir cam kapak slip (kalınlık numarası 1.5) ile kaplayın. etiketleme desen, herhangi bir non-spesifik etiketleme düzeyini değerlendirmek için ışık mikroskobu kullanın ve bu negatif kontroller etiketleme açık kurmak. </li><li> ızgara çubukları ile ilgili ROI tanımlayın. Bulucu ızgaraları, hedef yapıları koordinatları oluşturulması için yararlı olabilir. </li><li> &quot;FL oto rengi&quot; ve 3,200K ayarlanmış &quot;Beyaz Dengesi&quot; kamera ayarı ile tam renkli dijital kamerayı kullanarak bölümünde olumlu etiketleme görüntü kazanır. 1x ayarlanmış görüntülerin görünümünü ve &quot;Analog Gain&quot; optimize etmek 0.45 ve 1.00 arasında bir &quot;Gamma&quot; ayarıyla &quot;Otomatik pozlama&quot; modunda kamerayı kullanın.&quot;Canlı&quot; ardından resmi odak Framestore görüntüyü yakalamak için &quot;Ek Bileşen&quot; tıklayın Zen 2 Lite yazılımı grafik arayüzü kamera simgesini tıklayın. </li><li> .tif sıkıştırma ve pikselleşme belirgin olma önlemek için dosyaları olarak kaydedin. </li><li> ızgara çubukları veya diğer önemli doku noktalara ilişkin ROI konumunu gösteren bir baskı hazırlayın. Bu baskılar daha sonraki bölümün navigasyon ve yeniden bulma transmisyon elektron mikroskobu (TEM) ile İB&#39;leri için faydalı olacaktır. </li><li> , Slayt ızgara çıkarın distile su ile yıkayın ve yavaşça kenarları kuru kurulayın. Not: floresan görüntüleri elde etmek için aşırı yoğun aydınlatma kullanmayın. QDS fotostabilite birkaç saniye kadar görüntüleme sürelerini tanır ama QD sinyalinin söndürme suyu yaklaşık 1 dakika sonra oluşabilir olarak poz uzatmak için özen gösterin. QD bölümleri toluen ile susuz olan etiketli zaman Genişletilmiş veya kalıcı fotostabilite sadece elde edilir veüreticilerin özelliklerine göre lamelleri altında gömülü. Ancak, bu süreç daha sonra TEM aynı bölümün karşılıklı incelenmesi olasılığını dışlamak olacaktır. </li></ol></li></ol> 6. Transmisyon Elektron Mikroskobu <ol><li> TEM Kurma ve Görüntüleme <ol><li> 100 kV hızlanan gerilim kullanılarak inceleme için TEM ızgara aktarın. ızgara gezinmek ve ışık mikroskobu manzaralı ilişkili ROI&#39;leri bulmak için yaklaşık 1,400X düşük büyütme kullanın. 50,000X etrafında büyütme QDS Görünüm kümeleri. </li><li> Bireysel QD&#39;lerin 70,000X büyütmede ya da yukarıda dikkat edin. orta elektron yoğunluğu ile düzensiz kristal yapılar olarak QD&#39;lerin gözlemleyin. </li></ol></li><li> Görüntüleme <ol><li> TEM görüntüleme için bir dijital fotoğraf makinesi kullanın. Bir monokrom 1392 x 1040 piksel sensör yeterli. </li><li> MICR &quot;On&quot; &quot;Kamera&quot; ikonuna tıklayarak görüntüleri EdinmeDaha sonra &quot;Kapalı&quot; Framestore görüntüyü saklamak için, görüntüleme yazılımının grafik arayüzü Oscope. Not: Bu işlemler kullanılan mikroskop sistemi bağlı olarak farklılık gösterecektir. 1.00 &quot;Gamma&quot; ayarı ile otomatik pozlama modunda kamerayı kullanın. </li><li> dosyaları tif resim olarak kaydedin. </li></ol></li></ol> 7. CLEM Görüntüleme <ol><li> TEM tarafından Floresan ROI bulma <ol><li> TEM ile İB&#39;leri gelen bulmak için ışık mikroskobu görüntü bir baskı kullanın. kan damarları ve luminal yapılar gibi doku mimari özellikleri TEM kullanarak bölüm etrafında navigasyon için yararlıdır. </li><li> TEM ile ilgili ROI bir görüntü yakalamak. </li></ol></li><li> CLEM Görüntü Bindirme <ol><li> TEM görüntüsü doğru ışık mikroskobu görüntüsü ile odaklı olduğundan emin olun ve her yöntemin görülen aynı yapı aynı boyutta olacak şekilde her genişleme düzeltin. </li><li> Doğuışık mikroskopisi ve TEM görüntüleri yedik ve onları yan yana-ya immunolabeled ROI ultrastrüktürel özellikleri vurgulamak için bindirmeleri olarak gösterilecek. </li><li> Photoshop CS2 kullanarak bir bindirme görüntü oluşturun. Birincisi, düşük güç TEM görüntüsü ile aynı büyütme floresan görüntüyü büyütmek. Her iki görüntüleri yönlendirmek ve daha sonra bir tuval üzerine yan yana yapıştırın. </li><li> Görüntüyü düzleştirmek. </li><li> Bu kompozit görüntü floresan katman oluşturun. &quot;Dikdörtgen Marquee Tool&quot; üzerine tıklayın floresan görüntüyü seçin ve ondan bir kopya tabakayı oluşturur. </li><li> % 40 şeffaflık - 30 &quot;seçenekleri karıştırma / Layer Style&quot; ayarlayın. </li><li> &quot;Taşı Aracı&quot; üzerine tıklayın ve ilgili TEM resmin üzerine floresan bindirme tabaka sürükleyin. görüntüleri hizalayın. </li><li> uyum sağlandıktan sonra, nihai bindirme görüntü üretmek için katmanları &quot;düzleştiriniz&quot;. </li><li> Yeni bindirme görüntü a seçmek için &quot;Rectangular Marquee Tool&quot; kullanınnd yeni bir tuvale kopyalayın. Bir .tiff dosyası olarak kaydedin. </li></ol></li></ol>

<ol><li>Kukulski, W., Schorb, M., Welsch, S., Picco, A., Kaksonen, M., Briggs, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Correlated+fluorescence+and+3D+electron+microscopy+with+high+sensitivity+and+spatial+precision%5BTitle%5D)+AND+%22J+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Correlated fluorescence and 3D electron microscopy with high sensitivity and spatial precision.</a> J Cell Biol. 192 (1), 111-119 (2011).</li>
<li><a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Introduction+to+correlative+light+and+electron+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Introduction to correlative light and electron microscopy.</a> Methods Cell Biol. Müller-Reichert, T., Verkade, P. , (2012).</li>
<li>De Boer, P., Hoogenboom, J. P., Giepmans, B. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Correlated+light+and+electron+microscopy%3A+ultrastructure+lights+up%21%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Methods%22%5BJournal%5D)">Correlated light and electron microscopy: ultrastructure lights up!</a> Nat Methods. 12 (6), 503-513 (2015).</li>
<li>Faas, F. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Localization+of+fluorescently+labeled+structures+in+frozen-hydrated+samples+using+integrated+light+electron+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22J+Struct+Biol%22%5BJournal%5D)">Localization of fluorescently labeled structures in frozen-hydrated samples using integrated light electron microscopy.</a> J Struct Biol. 181 (3), 283-290 (2013).</li>
<li>Redemann, S., Müller-Reichert, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Correlative+light+and+electron+microscopy+for+the+analysis+of+cell+division%5BTitle%5D)+AND+%22J+Microsc%22%5BJournal%5D)">Correlative light and electron microscopy for the analysis of cell division.</a> J Microsc. 251 (2), 109-112 (2013).</li>
<li>Spiegelhalter, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((From+dynamic+live+cell+imaging+to+3D+ultrastructure%3A+novel+integrated+methods+for+high+pressure+freezing+and+correlative+light-electron+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">From dynamic live cell imaging to 3D ultrastructure: novel integrated methods for high pressure freezing and correlative light-electron microscopy.</a> PLoS One. 5 (2), e9014(2010).</li>
<li>Killingsworth, M. C., Lai, K., Wu, X., Yong, J. L., Lee, C. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantum+dot+immunocytochemical+localization+of+somatostatin+in+somatostatinoma+by+widefield+epifluorescence%2C+super-resolution+light%2C+and+immunoelectron+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22J+Histochem+Cytochem%22%5BJournal%5D)">Quantum dot immunocytochemical localization of somatostatin in somatostatinoma by widefield epifluorescence, super-resolution light, and immunoelectron microscopy.</a> J Histochem Cytochem. 60 (11), 832-843 (2012).</li>
<li>Nisman, R., Dellaire, G., Ren, Y., Li, R., Bazett-Jones, D. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Application+of+quantum+dots+as+probes+for+correlative+fluorescence%2C+conventional%2C+and+energy-filtered+transmission+electron+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22J+Histochem+Cytochem%22%5BJournal%5D)">Application of quantum dots as probes for correlative fluorescence, conventional, and energy-filtered transmission electron microscopy.</a> J Histochem Cytochem. 52 (1), 13-18 (2004).</li>
<li>Giepmans, B. N., Deerinck, T. J., Smarr, B. L., Jones, Y. Z., Ellisman, M. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Correlated+light+and+electron+microscopic+imaging+of+multiple+endogenous+proteins+using+quantum+dots%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Methods%22%5BJournal%5D)">Correlated light and electron microscopic imaging of multiple endogenous proteins using quantum dots.</a> Nat Methods. 2 (10), 743-749 (2005).</li>
<li>Kuipers, J., de Boer, P., Giepmans, B. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Scanning+EM+of+non-heavy+metal+stained+biosamples%3A+Large-field+of+view%2C+high+contrast+and+highly+efficient+immunolabeling%5BTitle%5D)+AND+%22Exp+Cell+Res%22%5BJournal%5D)">Scanning EM of non-heavy metal stained biosamples: Large-field of view, high contrast and highly efficient immunolabeling.</a> Exp Cell Res. 337 (2), 202-207 (2015).</li>
<li>Barroso, M. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantum+dots+in+cell+biology%5BTitle%5D)+AND+%22J+Histochem+Cytochem%22%5BJournal%5D)">Quantum dots in cell biology.</a> J Histochem Cytochem. 59 (3), 237-251 (2011).</li>
<li>Michalet, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantum+dots+for+live+cells%2C+in+vivo+imaging%2C+and+diagnostics%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Quantum dots for live cells, in vivo imaging, and diagnostics.</a> Science. 5, 538-544 (2005).</li>
<li>Shu, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+genetically+encoded+tag+for+correlated+light+and+electron+microscopy+of+intact+cells%2C+tissues+and+organisms%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+Biol%22%5BJournal%5D)">A genetically encoded tag for correlated light and electron microscopy of intact cells, tissues and organisms.</a> PLoS Biol. 9 (4), e1001041(2011).</li>
<li>Thomas, J. M., Midgley, P. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High-resolution+transmission+electron+microscopy%3A+the+ultimate+nanoanalytical+technique%5BTitle%5D)+AND+%22Chem+Commun%22%5BJournal%5D)">High-resolution transmission electron microscopy: the ultimate nanoanalytical technique.</a> Chem Commun. , 1253-1267 (2004).</li>
<li>Loussert Fonta, C., Humbel, B. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Correlative+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Arch+Biochem+Biophys%22%5BJournal%5D)">Correlative microscopy.</a> Arch Biochem Biophys. 581, 98-110 (2015).</li>
<li>Marc, R. E., Liu, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fundamental+GABAergic+amacrine+cell+circuitries+in+the+retina%3A+nested+feedback%2C+concatenated+inhibition%2C+and+axosomatic+synapses%5BTitle%5D)+AND+%22J+Comp+Neurol%22%5BJournal%5D)">Fundamental GABAergic amacrine cell circuitries in the retina: nested feedback, concatenated inhibition, and axosomatic synapses.</a> J Comp Neurol. 425 (4), 560-582 (2000).</li>
<li>Studer, D., Humbel, B. M., Chiquet, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Electron+microscopy+of+high+pressure+frozen+samples%3A+bridging+the+gap+between+cellular+ultrastructure+and+atomic+resolution%5BTitle%5D)+AND+%22Histochem+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Electron microscopy of high pressure frozen samples: bridging the gap between cellular ultrastructure and atomic resolution.</a> Histochem Cell Biol. 130 (5), 877-889 (2008).</li>
<li>Tokuyasu, K. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Immunochemistry+on+ultrathin+frozen+sections%5BTitle%5D)+AND+%22Histochem+J%22%5BJournal%5D)">Immunochemistry on ultrathin frozen sections.</a> Histochem J. 12 (4), 381-403 (1980).</li>
<li>Loussert Fonta, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Analysis+of+acute+brain+slices+by+electron+microscopy%3A+a+correlative+light-electron+microscopy+workflow+based+on+Tokuyasu+cryo-sectioning%5BTitle%5D)+AND+%22J+Struct+Biol%22%5BJournal%5D)">Analysis of acute brain slices by electron microscopy: a correlative light-electron microscopy workflow based on Tokuyasu cryo-sectioning.</a> J Struct Biol. 189 (1), 53-61 (2015).</li>
</ol>

Yazarların açıklayacak herhangi bir çıkar çatışması yoktur.

Bu çalışma CLEM çalışmaları için evrensel prob olarak QDS potansiyel yarar göstermiştir. Geniş açılı ışık mikroskobu ile inceledi ve kolayca TEM gözlendi kullanılan 585 nm QD nanopartiküller parlak ve istikrarlı floresan gösterdi. Mevcut yazarlardan birinin bir önceki çalışmada da süper çözünürlük ışık mikroskobu 7 için uygun olduğu QD&#39;lerin göstermiştir. Onların fotostabilite genişletilmiş izleme süreleri ve uzun görüntüleme pozlama için özellikle yararlı oldu. QDS farklı büyüklükte probları, aynı eksita...

Bağıntılı ışık ve elektron mikroskobu (CLEM) geçici dinamik olaylara 1, nadir olaylar 2, 3 ve karmaşık sistemler 4 analizi için güçlü bir yaklaşımdır. Sorusuna bağlı olarak 5 mevcuttur birçok farklı teknik permütasyon isteniyor vardır ancak ortak bir gereksinim tek bir örnek 6 aynı yapı birden mikroskopi modaliteleri tarafından görüntülenmiş olmasıdır. Clem bizim özel yaklaşım, arşiv insan patolojisinde dokusunun çalışma ve iyi karakterize edilmiş ve 7, daha önce yayınlanmış olan burada kullanılan durum için geliştirilmiştir. Amaç ultrastrüktürel düzeyde görülen İmmünositokimyasal etiketleme desen bağlamını netleştirmeye yardımcı olmak için floresan ışık mikroskobu kullanımı, ikincisi tek biyopsi veya cerrahi örnek ve analitik verileri en üst düzeye çıkarmak, öncelikle oldu. Kuantum nokta nanokristaller (QD&#39;lerin) evrensel bir işaret sistemi abl potansiyel sunmaktadırE, her iki tarafından izlenmek üzere, floresan ışık ve elektron mikroskopi 8, 9, 10. kristalin çekirdek yapısı emisyon spektrumları 11 uzak dalga boylarında ışık ile uyarıldığında, farklı boyutlarda QDS floresans emisyon tepe geniş oluşturmasına olanak sağlar. Atom ağırlığı transmisyon elektron mikroskopisi, tarama elektron mikroskopisi (STM) ya da alan emisyonu tarama elektron mikroskopisi ile tespit edilebilir, elektron yoğunluğu elde etmek için yeterlidir. Hatta tek QDS hedef moleküle 12 başına bir QD nihai bir duyarlılık veren gözlenmiştir edilebilir Özellikle immünositokimyasal çalışmalar için uygundur. Ayrıca, QD bağlı onlar haritalama için uygun bir bireysel element imza sahip olabilir kullanılır. İnsan patoloji örnekleri translasyonel biyomedikal araştırmalar için önemli faydalar sunar. Cerrahi doku ve biyopsi örnekleri rutin biobanking ve approp ile gönderilenyaklaşımlarına yön etik açıklıklar araştırma çalışmaları için erişilebilir. İnsan doku hayvandaki veya hastalığın in vitro modellerinde oluşabilir alaka ya yorumlama sorunları yok. Ancak, patoloji örneklerinin numune hazırlama genellikle optimal değildir. dokuda gecikme sabitleştirici konuyor olabilir, uygunsuz sabitleyici gibi TEM ve uygunsuz örnekleme için formalin yerine glutaraldehit olarak kullandı. CLEM yöntemler tek bir insan numuneden temin tanısal ve prognostik bilgi optimize etmek için bir potansiyele sahiptir. Ancak, bu tür küçük Singlet Oksijen Jeneratör (miniSOG) kullananlar gibi bazı yeni geliştirilen karşılıklı yaklaşımlar nedeniyle etiket genetik ilgi 13 hücreye kodlanacak için ihtiyaç patoloji kullanılmak üzere mevcut değildir. Bu nedenle biz karşılıklı immünositokimyasal çalışmalar için rutin olarak hazırlanan TEM dokusunun QD etiketleme programı incelemiş bulunuyoruz. QDS kazınmış epoksi veya Li&#39;den akrilik reçine bölümlere uygulananghtly aldehit sabit biyopsi ve doku örnekleri tek bir örnekten bağıntılı floresan ışık mikroskobu ve TEM veri elde etmek imkanı sunuyoruz.

<table><tbody><tr><td>Sodyum kakodilat</td><td>Proscitech</td><td>C0205</td><td>Zararlı kimyasal</td></tr><tr><td>Osmiyum tetroksit</td><td>Proscitech</td><td>C010</td><td>Sadece çeker ocakta kullanın</td></tr><tr><td>Uranil asetat</td><td>Univar-Ajax</td><td>569</td><td>Tehlikeli kimyasal</td></tr><tr><td>Etanol %100</td> <td>Fronine</td><td>JJ008</td><td></td></tr><tr><td>Aseton %100</td> <td>Fronine</td><td>JJ006</td><td></td></tr><tr><td>ERL 4221</td><td>Proscitech</td><td>C056</td><td></td></tr><tr><td>DER 732</td><td>Proscitech</td><td>C047</td><td></td></tr><tr><td>NSA</td><td>Proscitech</td><td>C059</td><td></td></tr><tr><td>DMAE</td><td>Proscitech</td><td>C050</td><td></td></tr><tr><td>Sodyum metaperiyot</td><td>Analar BDH</td><td>10259</td><td></td></tr><tr><td>anti-somatostatin antikoru</td><td>Dako</td><td>A0566</td><td></td></tr><tr><td>Antikor seyreltici</td><td>Dako</td><td>S3022</td><td></td></tr><tr><td>Qdot 585 Streptavidin Konjugat&nbsp;</td><td>İnvitrojen</td><td>Q10113MP</td><td></td></tr><tr><td>Biyotinile keçi anti-tavşan IgG antikoru</td><td>Sigma</td><td>B7389-1ML</td><td></td></tr><tr><td>Glutaraldehit% 50</td> <td>EMS</td><td>16320</td><td></td></tr><tr><td>Normal keçi serumu</td><td>Invitrogen</td><td>PCN5000</td><td></td></tr><tr><td>PBS "Dulbecco A"</td> <td>Oxoid & nbsp;</td><td></td><td></td>BR0014G</tr><tr><td>BSAc (%10)</td><td>Aurion</td><td>900.022</td><td></td></tr><tr><td>Parafilm</td><td>Pechiney PP</td><td>M</td><td></td></tr><tr><td>pH indikatör şeritleri (pH 2.0 - 9.0)</td><td>Merck</td><td>1.09584.0001</td><td></td></tr><tr><td>Mikro kalıplar</td><td>Proscitech</td><td>RL063</td><td></td></tr><tr><td>Elmas bıçak</td><td>Diatome</td><td>Ultra 45</td><td></td></tr><tr><td>Transmisyon elektron mikroskobu</td><td>FEI</td><td>Morgagni 268D</td><td></td></tr><tr><td>Floresan ışık mikroskobu</td><td>Carl Zeiss</td><td>Axioscope A1</td><td></td></tr><tr><td>Izgaralar 300 mesh nikel (ince çubuk)</td><td>Agar Scientific</td><td>G2740N</td><td></td></tr><tr><td>Ultramicrotome</td><td>RMC</td><td>Powertome</td><td></td></tr><tr><td>TEM kamera kontrol yazılımı</td><td>Soft Imaging System</td><td>AnalySIS</td><td>Version 3.0</td></tr><tr><td>Görüntü işleme yazılımı</td><td>Adobe Systems Dahil</td><td>Photoshop CS2</td><td></td></tr></tbody></table>

kuantum nokta nanopartiküller kullanma korelatif işık- ve elektron mikroskobu

Correlative Light- and Electron Microscopy Using Quantum Dot Nanoparticles

kuantum noktası (QD) nanopartiküller Geniş açılı, floresan ışık mikroskopisi ve transmisyon elektron mikroskopisi (TEM) ile insan patolojisinde doku bağıntılı immünositokimyasal çalışmaları için kullanılabilir ve böylece bir yöntem tarif edilmektedir. streptavidin konjüge 585 nm kadmiyum selenyum (CdSe) kuantum noktaları (QDS) ile biyotinlenmiş sekonder antikor ve görüntüleme ile, takiben de somatostatin birincil antikor kullanılarak, insan somatostatinoma tümör ultra-ince epoksi bölümleri immunolabeled olan protokolü, göstermek için. Kesitler daha sonra Geniş açılı, floresan ışık mikroskopisi ile, gözlem için bir cam lam üzerine yerleştirilir TEM numune ızgara üzerine monte edilmiştir. Işık mikroskopisi tümör hücre sitoplazması içinde bir zerre desen oluşturan parlak turuncu floresan gibi 585 nm QD etiketleme ortaya koymaktadır. ışık mikroskobu ile orta menzilli büyütme düşük at etiketleme desen kolayca kabul edilebilir ve non-spesifik ya da arka plan etiketleme düzeyi değerlendirilir. Bu kritikmorfolojik bağlamda sonraki TEM ile immün desen yorumlanması ve değerlendirilmesi için adım. Aynı bölüm daha sonra kuru lekelenen ve TEM tarafından görülüyor. QD problar bireysel ifrazi tanecikler içerisinde bulunan şekilsiz malzemeye bağlı olmak görülmektedir. Görüntüler bağıntılı analizi için ışık mikroskobu ile görülen faiz (ROI) aynı bölgeden elde edilir. Her modalite görüntüleri mukabil sonra ilgili bölgenin TEM ultrastrüktürü floresan verilerini bindirmek için karışık olabilir.

Bu çalışma için kullanılan somatostatinoma tümör örnek kollajen stoma dokusu ile karışık duktal yapılar oluşturan tümör hücrelerini oluşmaktadır. floresan ışık mikroskobu ile, bol salgı granülleri içeren bireysel tümör hücreleri somatostatin hormonu pozitif etiketleme gösterdi. Çekirdekler az spesifik olmayan etiketleme tespit (Şekil 1) ile birlikte koyu delikler ortaya çıktı. Düşük büyütmelerde, değişken yoğun granül-turuncu flüoresansın bu da iyi karakterize edici özel...

Kuantum nokta (QD) nanopartiküllerinin epoksi gömülü insan patoloji dokusunun korelasyon immünositokimyasal çalışmaları için kullanılabileceği bir yöntem tanımlanmıştır. Geniş alan floresan ışık mikroskobu ve transmisyon elektron mikroskobu ile görselleştirilen ticari antikor fragmanı konjuge QD'ler kullanıyoruz.

Kuantum Nokta Nanopartiküller kullanma Korelatif Işık- ve Elektron Mikroskobu

A method is described whereby quantum dot (QD) nanoparticles can be used for correlative immunocytochemical studies of human pathology tissue using ...

Bu yöntemin genel amacı, floresan immünositokimyasal bilgileri ile transmisyon elektron mikroskobundan elde edilen ultra-yapısal morfolojiyi tek bir görüntüde birleştirerek korelatif ışık ve elektron mikroskobisi (CLEM) verileri elde etmektir. Bu yöntem, immünositokimya ve patoloji alanındaki, örneğin ilgilenilen belirli bir proteinin hangi hücre altı yapı ile ilişkili olduğu gibi temel soruların yanıtlanmasına yardımcı olabilir. Bu tekniğin temel avantajı, hedef proteinden gelen canlı mikroskopi sinyalini ve elektron mikroskobu yapısal lokalizasyonunu elde etmek için aynı kuantum nokta nanoparçacık probunu kullanmasıdır.Metin protokolüne uygun olarak insan somatostatinoma tümör dokusunu fiksasyon, gömme ve kesit alma işlemlerinden geçirdikten sonra, 2,0 mL aseton içeren beş mililitrelik bir şişeye 20 santimetre şeffaf yapışkan bant yerleştirerek bir kesit yapıştırıcı çözeltisi hazırlayın ve 10 dakika bekletin. Bandı çıkarın ve bir nikel ızgarayı çözeltiye daldırın, ardından ızgarayı çıkarıp havada kurumaya bırakın. Kuruduğunda, ultra ince bir kesiti almak için ızgaranın körelmiş tarafını kullanın.Seçilen reçine formülasyonu için doğru aşındırma süresini belirlemek kritik önem taşır. Bu formülasyon için 30 dakika etkili sonuçlar vermektedir, ancak daha sert veya daha yumuşak formülasyonlar için bu sürenin yeniden hesaplanması gerekebilir. Distile su içerisinde bir mililitre taze doygun sodyum metaperiyodat aşındırma çözeltisi hazırlayın ve çözeltiden damlaları temiz bir laboratuvar filmi yüzeyine yerleştirin.Kesitlerin bulunduğu tamamen kuru ızgaraları damlacıkların üzerine yerleştirin ve oda sıcaklığında 30 dakika boyunca inkübe edin. Ardından, yıkamak için ızgaraları 60 saniye boyunca distile su damlacıklarına aktarın. Temiz bir laboratuvar filmi yüzeyinde antikor ve kuantum nokta (QD) etiketlemesi yapmak için, 0,05 molar glisin ve PBS damlatın.Kesitlerdeki kalıntı aldehitleri bloke etmek için ızgaraları damlacıkların üzerine yerleştirin ve 10 dakika boyunca inkübe edin. Aldehit bloğunu uzaklaştırmak için ızgaranın kenarını kısaca kurulayın. Ardından ızgarayı, %1 normal keçi serumu (NGS) ve PBS içinde %1 BSAC içeren bir damlacığın üzerine yerleştirerek 10 dakika bekletin.890 µL PBS'ye 10 µL NGS ve 100 µL BSAC ekleyerek bir mililitre bloklama solüsyonu hazırlayın. Ardından, kesitleri 10 dakika boyunca bir damla antikor dilüent üzerine yerleştirerek koşullandırın. Sonra, anti-somatostatin poliklonal antikoru antikor dilüent ile 1/10 oranında seyreltin ve gridleri solüsyon damlacıkları üzerine yerleştirin.Sıcaklıkta bir saat boyunca nemli bir oda içerisinde inkübe edin. İnkübasyonun ardından, ızgaranın kenarını tamponlayarak antikor reaktifini uzaklaştırın. Ardından, kesitleri beşer dakikalık iki yıkama işlemi için antikor dilüenti kullanın.Sekonder antikoru 1:10 oranında seyreltip damlalar hazırladıktan sonra, gridleri damlacıklar üzerinde oda sıcaklığında bir saat boyunca inkübe edin. Ardından, antikor çözeltisini uzaklaştırın ve kesitleri iki kez yıkayın. Streptavidin konjuge QD'leri 1:10 oranında seyreltin ve numuneleri çözelti damlaları üzerinde, karanlıkta, oda sıcaklığında bir saat boyunca inkübe edin.Ardından, gridleri her seferinde beş dakika boyunca iki kez antikor dilüenti ile yıkayın ve gridlerin kenarlarını kurulayın. Sonra, kenarları kurulayıp temizlemeden önce gridleri iki dakika boyunca distile su ile yıkayın. İmmün boyanmış grid kesitini bir lam üzerindeki bir damla suyun içine yerleştirin ve üzerini kapatmak için bir lameli kullanın.Floresan ışık mikroskopisi gerçekleştirmek için, aşağıdaki özelliklere sahip bir filtre kübü yerleştirin ve 365 nanometre LED aydınlatma kullanın. İmmün boyanmış kesiti immünofloresan mikroskop tablasına yerleştirin. Boyama modelini, herhangi bir spesifik olmayan boyama düzeyini değerlendirmek ve negatif kontrollerin temiz olduğunu doğrulamak için ışık mikroskopisi kullanın.Ardından, ızgara çubuklarıyla ilişkili olarak ilgilenilen bölgeleri (ROI) belirleyin. Daha sonra, tam renkli bir dijital kamerayı FL otomatik renge ayarlayın ve beyaz dengesini 3.200 K olarak belirleyin. Görüntülerin görünümünü optimize etmek için kamerayı, gama ayarı 0,45 ile 1,00 arasında olacak şekilde otomatik pozlama moduna getirin ve analog kazancı 1X olarak ayarlayın. Canlı görüntüleme için ZEN Two Light yazılımı grafik arayüzündeki kamera simgesine tıklayın. Ardından görüntüye odaklanın ve görüntüyü kare deposuna kaydetmek için ZEN Two Light yazılımı grafik arayüzündeki Snap düğmesine tıklayın.Sıkıştırmayı ve piksellenmeyi önlemek için görüntüleri tf dosyaları olarak kaydedin. ROI'nin ızgara çubuklarına veya diğer önemli doku işaretlerine göre konumunu gösteren bir baskı hazırlayın. Ardından ızgarayı lamdan çıkarın, distile su ile yıkayın ve kenarları nazikçe kurulayın.Geçirimli elektron mikroskobisi gerçekleştirmek için, gridi 100 kilovolt hızlandırma voltajı kullanarak inceleme amacıyla mikroskoba aktarın. Grid üzerinde gezinmek ve ışık mikroskobisiyle belirlenen ilgi bölgelerini (ROI) bulmak için yaklaşık 1.400X düşük büyütme ile başlayın. Münferit QD'leri 70.000X veya daha yüksek büyütmede gözlemleyin.Bunlar, orta düzeyde elektron yoğunluğuna sahip düzensiz kristal yapılar olarak görünecektir. Ardından, görüntüleme yazılımının grafik arayüzündeki monokrom 1.392'ye 1.040 piksellik sensöre sahip bir dijital kamera kullanarak, görüntüleri elde etmek için kamera simgesine tıklayarak açın. Görüntüyü kare depolama alanına kaydetmek için kamera simgesini kapalı konumuna getirin.CLEM görüntülemesini gerçekleştirmek için, TEM ile karşılık gelen ROI'leri belirlemek amacıyla ışık mikroskobu görüntüsünün bir çıktısını kullanın. Doku mimari özellikleri, kesit üzerinde yön bulmak için kullanışlıdır. TEM ile karşılık gelen ROI'nin görüntüsünü yakalayın.Ardından, bir CLEM görüntüsü hazırlamak için TEM görüntüsünün doğru yönlendirildiğinden ve ışık mikroskobu görüntüsüyle aynı boyuta ve çözünürlüğe, bu durumda inç başına 300 piksel olacak şekilde büyütüldüğünden emin olun. Işık mikroskobu görüntüsü kanvasının boyutunu iki katına çıkarın. Daha sonra TEM görüntüsünü floresan görüntüsünün yanına kopyalayıp yapıştırın.Photoshop CS2'de bir floresan üst üste bindirme (overlay) oluşturmak için dikdörtgen seçim aracına (rectangular marquee tool) tıklayın, floresan görüntüsünü seçin ve bundan yinelenen bir katman oluşturun. Katman stili karıştırma seçeneklerini (blending options) %30 ila %40 şeffaflığa ayarlayın. Ardından taşıma aracına (move tool) tıklayıp floresan üst üste bindirme katmanını ilgili TEM görüntüsünün üzerine sürükleyin ve görüntüleri hizalayın.Görüntüleri hizaladıktan sonra, nihai üst üste bindirmeyi oluşturmak için görüntüyü düzleştirin. Ardından, yeni üst üste bindirme görüntüsünü seçmek için dikdörtgen seçim aracını kullanın ve görüntüyü yeni bir tuvale kopyalayın. Son olarak, görüntüyü tf dosyası olarak kaydedin.Bu floresan mikroskopi görüntüsünde, tekil somatostatinoma tümör hücreleri bol miktarda sekretuar granül içermektedir ve somatostatin hormonu için pozitif olarak etiketlenmiştir. Çekirdekler koyu delikler şeklinde görünmektedir ve düşük büyütmede, sitoplazmada değişken yoğunlukta granüler turuncu QD floresansı görülmüştür. Işık mikroskobu ile seçilen ROI, burada belirtildiği gibi 20X ışık mikroskobu görüntüsüne başvurularak TEM kullanılarak tanımlanmış ve görüntülenmiştir.Daha yüksek büyütmede, hücre sitoplazmik granüllerde parlak floresans ve yoğun QD etiketlemesi göstermektedir. Bu örnekte olduğu gibi, floresans verilerinin TEM görüntülerinin üzerine bindirilmesi, güçlü pozitif etiketlemenin vezikül sınırlayıcı membranı içindeki orta derecede elektron yoğunluğundaki materyali içeren granüllere karşılık geldiğini göstermektedir. Son olarak, burada daha yüksek büyütmede görüldüğü üzere, orta derecede elektron yoğunluğundaki granüller yoğun QD nanokristal immünolabeling göstermiştir.Bu teknik uzmanlaşıldığında, doğru şekilde uygulandığı takdirde sekiz saat içinde tamamlanabilir. Prosedür uygulanırken, ızgaraların yalnızca kenarlarından tutularak dikkatli bir şekilde taşınması gerektiğini hatırlamak önemlidir. Izgara alınırken kesite dokunulması, kesitin ızgaradan ayrılmasına neden olabilir.Bu prosedürün ardından, ilgilendiğiniz proteinin başka bir proteinle aynı bölgede konumlanıp konumlanmadığı gibi ek soruları yanıtlamak için multipleks immünlekeleme gibi diğer yöntemler uygulanabilir. Bu teknik geliştirildikten sonra, patoloji alanındaki araştırmacıların arşivlenmiş insan doku örneklerindeki protein lokalizasyonunu elektron mikroskobu ile incelemelerinin önünü açmıştır. Bu videoyu izledikten sonra, floresan ışık mikroskobundan elde edilen immünositokimyasal bilgilerin, transmisyon elektron mikroskobundan elde edilen ultrastrüktür ile nasıl birleştirileceği konusunda iyi bir anlayışa sahip olmalısınız.Osmiyum tetroksit ile çalışmanın son derece tehlikeli olabileceğini unutmayın; bu prosedürü gerçekleştirirken koruyucu ekipman kullanımı, çeker ocakta çalışma ve uygun atık imhası gibi önlemler alınmalıdır.

correlative-light-electron-microscopy-using-quantum-dot

Research

JoVE Journal

Bioengineering

Biyomühendislik

CLEM tekniği enjekte edilen moleküller tarafından etkilenen membranlar, organeller ve hücre içi yapıların ultrastrüktürel morfolojisini analiz etmek için adapte edilmiştir. Bu yöntem çok nanometre çözünürlükte milimetre izin mikromanipülasyon / mikroenjeksiyon güçlü teknikleri, konfokal floresan mikroskopi ve elektron mikroskopi birleştirir. Bu teknik, uygulamaların geniş bir çeşitliliği için müsait.

Bir Aracı Olarak Korelatif Işık ve Elektron Mikroskobu (CLEM) microinjected Moleküller ve Ökaryotik Alt hücresel Hedefler Visualize&#39;a

Biz elektron mikrograflarında fluoresan ışığı ile işaretlenmiş proteinler yerelleştirmek için bir yöntem açıklanmaktadır. Floresans ilk ince kesitler üzerinde fotoğraf ile aktive localisation mikroskopi kullanılarak yerelleştirilmiştir. Bu görüntüler daha sonra aynı bölümde elektron mikroskop ile hizalanır.

Nano-fem: Foto-aktif Yerelleştirme Mikroskobu ve Elektron Mikroskop Kullanarak Protein Yerelleştirme

Biz tek-molekül floresan görüntüleme için minimize hidrodinamik büyüklüğü ile kolloidal Kuantum noktalarının hazırlanması tarif. Konvansiyonel kuantum noktaları ile karşılaştırıldığında, bu nanopartiküller globüler proteinlerin boyut olarak benzer ve tek-molekül parlaklık, fotodegradasyon karşı kararlılık ve proteinleri ve hücreleri nonspesifik bağlanma direnci için optimize edilmiştir.

Tek molekül Görüntüleme için kompakt Kuantum Noktaları

Biz yüksek hızlı 3D canlı hücre floresan ışık mikroskobu ve yüksek çözünürlüklü kriyo-elektron tomografi birleştiren bir karşılıklı mikroskopi yöntemi açıklanmaktadır. Biz burada görüntüleme, dinamik ana HeLa hücreleri ile etkileşime küçük bir HIV-1 parçacıkların bağıntılı yöntemin özelliği göstermektedir.

Dinamik Etkileşimler 3D Yapısal Analiz için karşılıklı Mikroskopi

Tek flüoroforlar FIONA'sı kullanarak nanometre hassasiyetle lokalize edilebilir. Burada FIONA tekniğin bir özet bilgi ve nasıl Fiona deneyleri tarif edilir.

Bir nanometre Hassasiyet Floresans Görüntüleme (Fiona)

Burada, nanopartiküllerin şişme kapsülleme yoluyla bir polimer konak matrisine dahil edilmesini izlemek için güvenilir bir yöntem sunuyoruz. Kadmiyum selenit kuantum noktalarının yüzey konsantrasyonunun, kesitsel floresan görüntüleme yoluyla doğru bir şekilde görselleştirilebileceğini gösteriyoruz.

Doğrudan Floresan Görüntüleme kullanma Nanoparçacık-polimer kompozitler Gelişmiş Bileşim Analizi

Bu protokolde, rekombinant SARS-CoV-2 spike'a konjuge edilen kuantum noktaları, hücre bazlı testlerin, plazma zarındaki hACE2'ye ve ardından bağlı proteinlerin sitoplazmaya endositozunu izlemek için hücre bazlı tahlilleri izlemesini sağlar.

HEK293T Hücrelerinde Bağlanma ve Endositozu İzlemek için Kuantum Nokta Konjuge SARS-CoV-2 Spike Trimerlerinin Yüksek Verimli Konfokal Görüntülemesi

Mevcut protokol, kuantum noktaları kullanarak kalp dokusu bölümlerindeki bir proteini immüno-etiketleme yöntemini açıklamaktadır. Bu teknik, herhangi bir proteinin hücre altı lokalizasyonunu ve ekspresyonunu ultrayapısal düzeyde görselleştirmek için yararlı bir araç sağlar.

Kuantum Noktaları Aracılı İmmüno-Etiketleme ve ardından İletim Elektron Mikroskobu ile Kalpteki Bir Proteinin Hücre Altı Lokalizasyonunu Görselleştirme

Burada, hücresel üst yapı ile ilgili olarak nadir proteinlerin lokalizasyonunu araştırmak için bir araç olarak endojen, floresan etiketlemeye dayalı optimize edilmiş kesit korelasyonlu ışık-elektron mikroskobu için bir protokol sunuyoruz. Bu yaklaşımın gücü, Bafilomisin tedavisi olmadan aç bırakılmış hücrelerde endojen LC3'ün ultrastrüktürel lokalizasyonu ile gösterilmiştir.

Kesit Üzerinde Korbağül Işık-Elektron Mikroskobu ile Endojen LC3'ün Ultrastrüktürel Lokalizasyonu

mScarlet adı verilen bir floresan proteini kullanarak Epon gömme sonrası bağıntılı ışık ve elektron mikroskobu için ayrıntılı bir protokol sunuyoruz. Bu yöntem, floresan ve üst yapıyı aynı anda koruyabilir. Bu teknik, çok çeşitli biyolojik uygulamalara uygundur.

Epon Post Gömme Korbağıntılı Işık ve Elektron Mikroskobu

Bu protokol, sırasıyla mEosEM ve APEX2 ile etiketlenmiş mitokondri ve lizozomların etkileşimini görselleştirmek için bağıntılı ışık ve elektron mikroskobu kullanmak için bir mekanizmayı açıklar.

Mitokondri ve Lizozomlar Arasındaki Etkileşimlerin Görselleştirilmesi için Çift Renkli İlişkili Işık ve Elektron Mikroskobu

Keşfedin kuantum nokta nanopartiküller kullanarak korelatif ışık ve elektron mikroskobu yöntemini. İnsan somatostatinoma tümör dokusunda protein lokalizasyonunu görüntülemek için floresan ve transmisyon elektron mikroskobisini birleştirin.

Kuantum Nokta Nanopartiküller kullanma Korelatif Işık- ve Elektron Mikroskobu

Daha fazla video keşfet