Hücre Bölünmesi ve Genişleme Kinematik Analizi: Büyüme ve Örnekleme Gelişim Bölgeleri Hücresel Temeli Quantifying Zea mays Yapraklar

Bu analizin genel hedefleri, mısır yaprağı büyümesinin hücresel temelini belirlemek ve bu verileri gelişimsel, aşamaya özgü örnekleme stratejileri uygulayarak moleküler büyüme düzenleyici mekanizmalarını araştırmak için kullanmaktır. Bu yöntem, bitki gelişim biyolojisindeki önemli bir sorunun ele alınmasına yardımcı olabilir. Hücre bölünmesi ve hücre genişlemesi, tüm organ büyümesindeki farklılıklara nasıl katkıda bulunur?

Bu yaklaşım, tüm bitki organının büyümesinin altında yatan biyokimyasal, moleküler ve fizyolojik süreçlerin araştırılmasına ve mekansal haritalandırılmasına izin verir. Bu sistem mısır yaprağı büyümesi hakkında bilgi sağlayabilse de, teknik diğer sistemler için de kullanılabilir. Diğer çim türleri ve organlar dahil.

Bu yöntemlerin görsel gösterimi kritik öneme sahiptir. Hasatta, numune bi-blasyonu ve ölçüm adımlarının bu gösterim olmadan gerçekleştirilmesi zordur. Prosedürü gösteren, Katrien Sprangers ve Viktoriya Avramova olacak.

Laboratuvarımdan iki doktora öğrencisi. Monokotlarda yaprak büyümesinin tam bir chenematic analizini yapmak için, bir yetiştirme odasında kontrollü koşullar altında her tedavi ve genotip için en az 15 bitki yetiştirin. İlgilenilen bir yaprak göründüğünde, yaprağın uzunluğunu, yani topraktan yaprağın ucuna kadar olan uzunluğu, yaprak tamamen genişleyene kadar günlük olarak ölçmek için bir cetvel kullanın.

İlgilenilen gelişim aşamasında, meristematik bölgeyi sağlam tutmak için bitkinin toprak üstü kısmını köklere mümkün olduğunca yakın en az beş temsili bitkiden kesin. Daha sonra, dış yapraklardan başlayarak, ilgilenilen yaprağa kadar tüm yaprakları tek tek nazikçe açın. Yaprakları gerektiği gibi ayırmak için tabandan birkaç milimetre daha çıkarın.

Daha sonra, tepeyi ve ilgilenilen yaprağın çevrelediği küçük yaprakları çıkarın ve orta damarın bir tarafındaki tabandan başlayarak yapraktan üç santimetrelik bir segment kesin. Yaprağın gövdeye bağlandığı yerden kesilmesi çok önemlidir. Yükseğe kesmek, meristemin boyutunun eksik tahmin edilmesine yol açacaktır.

Segmenti, üç iki bir hacimce mutlak etanol asetik asit çözeltisi ile doldurulmuş 1.5 mililitrelik bir test tüpünde, 24 saatten birkaç aya kadar dört santigrat derecede saklayın. Damarın diğer tarafından, tabandan 11 santimetrelik bir segment kesin ve bu segmenti, pigmentleri çıkarmak için en az altı saat boyunca dört santigrat derecede mutlak etanol ile doldurulmuş 15 mililitrelik bir tüpte saklayın. Dört santigrat derecede mutlak etanolde ikinci bir 24 saatlik turdan sonra, etanolü saf laktik asitle değiştirin ve segmenti 24 saat daha veya daha fazla analize kadar dört santigrat derecede saklayın.

Meristemi ölçmek için önce üç santimetrelik yaprak segmentini 20 dakika boyunca yeni hazırlanmış durulama tamponuna aktarın. Kuluçka işleminin sonunda, segmenti karanlıkta buz üzerinde iki ila beş dakika boyunca bir Dapi boyama çözeltisi kabına aktarın. Ardından, dokuyu hızlı bir şekilde bir cam mikroskop lamına monte edin ve segmenti bir kapak camı ile örtün.

UV floresan kullanarak epidermal hücrelerin floresanlarını mikroskop altında onaylayın. Ardından, numuneyi yeni bir cam kapaklı yeni bir mikroskop lamı üzerine bir damla durulama tamponuna monte edin. 20 kat büyütme kullanarak, segmenti mikroskoba geri koyun ve proliferatif mitotik figürleri bulmak için numunede ilerleyin.

Gelişmekte olan stemmatanın herhangi bir biçimlendirici hücre bölünmesinden kaçının ve ardından en distal mitotik figürün nerede olduğunu tanımlayın. Görüntü analizi yazılım programını kullanarak, görüntü çerçevesinin tam uzunluğunu ölçün. Bu örnekte, 645 mikrometre.

Ardından, en distal mitotik figürden yaprak tabanına kadar tam meristem uzunluğunu kaplayan çerçeve sayısını sayın ve tam meristem uzunluğunu elde etmek için bu sayıyı bir çerçevenin uzunluğuyla çarpın. Bir hücre uzunluğu profili elde etmek için, 11 santimetrelik segmenti laktik asitten tezgaha aktarın ve dokuyu 10 bir santimetrelik segmente kesmek için bir neşter kullanın. Elde edilen yaprak segmentlerini tek bir mikroskop lamına ve küçük bir damla laktik aside monte edin.

Tüm parçaları aynı tarafı yukarı bakacak şekilde yerleştirin. Ardından, slaydı diferansiyel girişim kontrast optikleriyle donatılmış bir mikroskop altına aktarın. Yaprak tabanına en yakın segmentten başlayarak, aynı hücre tipinin eşit aralıklı konumlarda tutarlı bir şekilde seçilmesini sağlamak için en az 20 replike epidermal hücrenin ve doğrudan stemmatal eğelere bitişik dosyaların uzunluğunu ölçmek için uygun bir görüntü analiz yazılım programı kullanın.

Yaprak boyunca her ölçüm için karşılık gelen konumu aşağı doğru itmek için alın. Ardından, ek bir dosya olarak mevcut olan R betiğinde uygulanan yerel bir polinom yumuşatma prosedürünü kullanarak yaprak ekseni boyunca her milimetredeki ortalama hücre uzunluğunu belirleyin. Aşırı pürüzsüz olmamasına dikkat edin.

Düzgünleştirme, hücre verilerindeki gürültüyü ortadan kaldırmalı, ancak eğrinin genel şeklini etkilememelidir. Burada, iyi sulanan bitkiler ile kuraklık stresi koşullarına maruz kalan bitkiler arasında yaprak büyümeleri açısından bir karşılaştırma gösterilmektedir. Kontrol bitkilerinin nihai yaprak uzunluğu, daha düşük yaprak uzama oranı nedeniyle kuraklık stresi altındaki bitkilerinkinden yüzde 40 daha düşüktü.

Kuraklık stresi altındaki bitkilerin yaprak uzama oranı, hücre üretiminin azalması nedeniyle iyi sulanan kontrollere göre yüzde 73 daha düşüktür. Sumruda, esas olarak hücre bölünme hızının azalmasından kaynaklanır. Kinematik analiz, moleküler ve biyokimyasal analiz için subzonal çözünürlükle örneklemeye izin vererek, yaprak büyüme bölgesi lokalizasyonunun bir haritasını sağlar.

Örneğin, iyi sulanan kontrol ve kuraklık koşullarına maruz kalan bitkide mısır yaprağının büyüme bölgesi boyunca MDA miktar tayini, su tutma koşullarına yanıt olarak büyüme bölgesi boyunca bu lipit parçalanması ürününde önemli bir artış olduğunu göstermektedir. Kuraklığa tepki olarak yaprak kısalması nedeniyle, bu deneyde kontrolde ve stresli bitkilerde gelişim bölgeleri uyuşmadı. Bununla birlikte, hücre uzunluğu profili kullanılarak, gelişimsel bölgelerin uzunluğu belirlenebilir ve bu da tek tek bölgelerdeki MDA seviyelerinin karşılaştırılmasına olanak tanır.

Bir kez ustalaştıktan sonra, teknik uygun şekilde gerçekleştirilirse, tek bir numune dört saat içinde işlenebilir. Bu prosedürü denerken, hasat sırasında meristemi sağlam tutmayı unutmamak önemlidir. Bu prosedürü takiben, büyüme regülasyonuna katılımlarını incelemek için moleküler ve biyokimyasal parametrelerin belirlenmesi gibi başka teknikler de uygulanabilir.

Bu videoyu izledikten sonra, büyüyen mısır yaprağında hücre bölünmesini ve hücre genişlemesini nasıl ölçeceğinizi, farklı büyüme bölgelerinin boyutunu nasıl belirleyeceğinizi ve moleküler ve biyokimyasal verileri buna göre nasıl yorumlayacağınızı iyi anlamış olmalısınız. Laktik ve asetik asitler ve EDTA ile çalışmanın tehlikeli olabileceğini unutmayın. Bu nedenle, bu işlem yapılırken eldiven giymek ve kullanımdan sonra her aşamada mikroskobu temizlemek gibi önlemler her zaman alınmalıdır.